1. OBJETIVO Determinar la concentración de nitratos en la muestra

DETERMINACIÓN DE NITRATOS EN AGUA
(Método espectrométrico ultravioleta selectivo)
Código
PFQ-NITRATOS
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1. OBJETIVO
Determinar la concentración de nitratos en la muestra de agua analizada por método
Espectrofotométrico.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos










Espectrofotómetro
Equipo de filtración al vacío
Balanza analítica
Bureta de 25 mL
Embudo en v
Matraces volumétricos 1 L y 25 Ml
Pipeta graduado 1 mL, 10 mL
Pipeta volumétrica 2 mL, 5 mL y 10 mL
Vidrio reloj
Celdas de cuarzo
2.2. Reactivos
2.2.1. Nitrato de potasio 99%
2.2.2. Cloroformo
2.2.3. Ácido clorhídrico 1N: Diluir 8.3 mL de HCl concentrado en 80 mL de agua destilada y
aforar hasta 100 mL.
2.2.4. Solución madre de nitrato (50 mg/L): Tomar una porción adecuada de KNO3 y llevar
a la estufa a 105 °C durante 24 horas. Se debe disolver 0.0815 g de KNO3 en agua
libre de nitrato, posteriormente aforar en un matraz de 1L y adicionar 2 mL de CHCl3.
La solución es estable por 6 meses si se conserva en la nevera.
2.2.5. Soluciones patrón de nitratos para la curva de calibración: En la tabla N°1, se
encuentran los volúmenes de solución madre que se debe emplear para preparar los
patrones de la curva de calibración de nitratos, todos los patrones de deben llevar a 25
mL y adicionar 1 mL de ácido Clorhídrico 1N.
DETERMINACIÓN DE NITRATOS EN AGUA
(Método espectrométrico ultravioleta selectivo)
Código
PFQ-NITRATOS
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Patrón
Concentración
Volumen de solución
(mg/L)
madre (ml)
1
5
2.5
2
10
5.0
3
15
7.5
4
20
10.0
5
25
12.5
6
30
15.0
7
35
17.5
Tabla N° 1. Volúmenes de solución madre necesarios para la preparación de patrones de
nitratos.
Nota: Agitar las muestras y dejar reposar para la lectura. Medir la absorbancia contra el
blanco a 220 nm, 10 minutos después.
2.2.6. Solución Blanco: Tomar 25 mL de agua destilada y añadir 1 mL de ácido clorhídrico
1N.
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Filtrar 100 mL de la muestra de nitratos por gravedad empleando un embudo en V.
2.3.2. Tomar la muestra filtrada y transferir 25 ml a un matraz volumétrico de 25 ml.
2.3.3. Agregar 1 ml de HCl 1 N al matraz.
2.3.4. Mezclar la solución contenida en el matraz.
2.3.5. Depositar la muestra en la celda de cuarzo.
2.3.6. medir la absorbancia a 220 nm.
2.3.7. Cambiar la longitud de onda a 275nm para la determinación de la absorbancia debida
a la materia orgánica remanente.
DETERMINACIÓN DE NITRATOS EN AGUA
(Método espectrométrico ultravioleta selectivo)
Código
PFQ-NITRATOS
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1
Tomar 100 mL de la
muestra de agua
Filtrar por gravedad y
trasferir 25 mL del filtrado al
matraz
Adicionar 1 mL de HCL 1N
Medir
absorbancia
a 220 nm
Medir
absorbancia
a 275 nm
Registrar los datos y
calcular el resultado final
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DETERMINACIÓN DE NITRATOS EN AGUA
(Método espectrométrico ultravioleta selectivo)
Código
PFQ-NITRATOS
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4 de 4
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Construcción de graficas: Una vez obtenidas las lecturas de absorbancia de cada patrón,
se tabulan y grafican los datos para obtener la curva de calibración. Como el sistema
obedece la ley de Beer, se realiza el ajuste de la recta pasando por cero para obtener a
ecuación.
Determinación del contenido de nitratos en una muestra: Se obtiene directamente de la
curva de calibración la concentración de nitratos en la muestra si no fue necesaria
ninguna dilución. Si fue necesaria una dilución de la muestra para poder utilizar la curva,
entonces la concentración de nitratos en la muestra original es:
𝒎𝒈 𝑵𝑶𝟑 /𝑳 =
(𝒑𝒑𝒎 𝒅𝒆 𝑵𝑶𝟑 𝒍𝒆í𝒅𝒐𝒔 𝒅𝒊𝒓𝒆𝒄𝒕𝒂𝒎𝒆𝒏𝒕𝒆 𝒅𝒆 𝒍𝒂 𝒄𝒖𝒓𝒗𝒂 ) ∗ 𝑽𝒐𝒍. 𝑭𝒊𝒏𝒂𝒍
𝒎𝑳 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
DETERMINACION DE NITRITOS
(Método colorimétrico)
Código
PFQ-NITRITOS
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1. OBJETIVO
Determinar la concentración de nitritos en la muestra de agua analizada por método
colorimétrico.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos















Espectrofotómetro, con celdas de 1 cm de vidrio
Balanza Analítica
Placa de calentamiento – Agitador Magnético
Beaker de 250 ml
Bureta de 50 ml
Crisol Gooch
Embudos en V
Erlenmeyer de 125 y 250 ml
Erlenmeyer de 250 ml con tapón
Matraces volumétricos de 50, 100, 250, 500 y 1000 ml
Pipetas graduadas de 5 y 10 ml
Pipetas volumétricas de 2, 5, 10 y 25 ml
Varilla de agitación
Vidrio de reloj
Papel filtro
2.2. Reactivos
2.2.1.
2.2.2.
2.2.3.
2.2.4.
2.2.5.
2.2.6.
2.2.7.
2.2.8.
Ácido fosfórico 85%
Ácido Sulfúrico 98%
Cloroformo 99%
Diclorhidrato de N-(1-naftil)-etilendiamina 99.5%
Nitrito de Sodio 99%
Oxalato de Sodio (0.05 N)
Solución de Permanganato de Potasio 0.05 N estandarizado.
Sulfanilamida 99.5%
DETERMINACION DE NITRITOS
(Método colorimétrico)
Código
PFQ-NITRITOS
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2.2.9. Reactivo colorante: Añadir 25 ml de ácido fosfórico al 85 % y 2.5 g de sulfanilamida
a 200 ml de agua contenidos en un matraz volumétrico de 250 ml. Tras disolver
completamente la sulfanilamida, adicionar 0.25 g de diclorhidrato de N-(1-naftil)etilendiamina. Mezcle hasta disolución total y diluya con agua hasta el aforo. La
solución es estable durante cerca de un mes cuando se conserva en frigorífico en un
frasco oscuro.
2.2.10. Solución Madre de Nitrito (200 mg/L, 200000 µg/L): Pesar aproximadamente 0.304
g de NaNO2 de pureza menor a 99 % y llévese a un matraz volumétrico de 1000 ml.
Dilúyase con agua destilada hasta la marca. Consérvese agregando 1 ml de CHCl3.
2.2.11. Solución intermedia de nitrito (2000 µg/L): Calcular el volumen necesario para
preparar 1000 ml de una solución de 2000µg NO2-/L a partir de la solución madre
(aproximadamente 5 ml).
2.2.12. Solución Estándar de nitrito: Medir 10 ml de solución intermedia con pipeta
volumétrica y llévense a un matraz volumétrico de 100 ml, aforar con agua destilada.
2.2.13. Solución Blanco: Tomar 2 ml de reactivo de color en un matraz volumétrico de 50
ml y añadir agua destilada hasta el aforo.
2.2.14. Solución patrón de nitritos para la curva de calibración: Tomar los mililitros
necesarios de la solución estándar de nitrito para preparar cada uno de los patrones
que se muestran en la siguiente tabla (Tabla N°2).
Patrón
Concentración
Volumen de solución
(μg/L)
estándar (ml)
1
20
0.2
2
40
0.4
3
60
0.6
4
80
0.8
5
100
1
Tabla N°2. Volúmenes de solución estándar necesaria para preparar los patrones para la
curva de calibración de nitritos.
Nota: Todos los patrones anteriores deben ser llevados a un matraz volumétrico de 50 ml,
añádanse 2 ml de reactivo de color y aforar con agua destilada.
DETERMINACION DE NITRITOS
(Método colorimétrico)
Código
PFQ-NITRITOS
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2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Desarrollo del color: Medir una porción adecuada de muestra de 25 ml que contenga
máximo 100 µg de NO2- en un volumen máximo de 40 ml. Si el pH de la muestra no
estuviera comprendido entre 5 y 9, ajústese a ese rango con HCl 1N o NH4OH según
convenga.
Añadir 2 ml de reactivo de color y aforar a 50 ml con agua destilada, mezclar.
2.3.2. Medida fotométrica: Entre 10 minutos y 2 horas después de añadir el reactivo de color
a la muestra, patrones y blanco, proceder a la lectura de la muestra a una absorbancia
de 543 nm.
Tomar 25 mL de la
muestra de agua
Medir pH de la muestra, si
este no está en el rango
de 5-9 se debe ajustar
Adicionar 2 mL de reactivo
color y llevar a un matraz de
50 mL, Tomar la medida 10
minutos después.
Medir
absorbancia
a 543 nm
Registrar los datos y
calcular el resultado final
DETERMINACION DE NITRITOS
(Método colorimétrico)
Código
PFQ-NITRITOS
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3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Construcción de la gráfica: Una vez obtenidas las lecturas de absorbancia de cada patrón,
tabular y graficar los datos para obtener la curva de calibración. Como el sistema obedece
la ley de Beer, realizar el ajuste de la recta pasando por cero y para obtener la ecuación.
Determinación del contenido de nitritos en una muestra: Con la absorbancia de la muestra
calcular a partir de la ecuación de la curva la concentración final, en los 50 ml de volumen.
𝑪𝒐𝒏𝒄𝒆𝒏𝒕𝒓𝒂𝒄𝒊ó𝒏 𝒇𝒊𝒏𝒂𝒍 =
𝑨𝒃𝒔𝒐𝒓𝒃𝒂𝒏𝒄𝒊𝒂
𝟎, 𝟎𝟎𝟎𝟗𝟓𝟖𝟐
A continuación obtener la concentración de nitrito en la muestra:
𝝁 𝑵𝑶𝟐
−
(𝝁𝑵𝑶𝟐 − /𝑳 𝒆𝒏 𝟓𝟎 𝒎𝒍 𝑽𝒐𝒍. 𝒇𝒊𝒏𝒂𝒍)
/𝑳 =
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
Absorbancia = Lectura realizada por el espectrofotómetro.
mg NO2– /L = Concentración de nitritos calculada y registrada por el espectrofotómetro
UV-VIS
DETERMINACION DE SULFATOS
(Método Nefelómetrico)
Código
PFQ-SULFATOS
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1. OBJETIVO
Determinar la concentración de sulfatos en la muestra de agua analizada por método
Nefelometrico.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos










Espectrofotómetro
Equipo de filtración al vacío
Balanza analítica
Bureta de 25 mL
Embudo en v
Matraces volumétricos 1 L y 25 Ml
Pipeta graduado 1 mL, 10 mL
Pipeta volumétrica 2 mL, 5 mL y 10 mL
Vidrio reloj
Celdas de cuarzo
2.2. Reactivos
2.2.1. Solución Buffer: Disolver 7.5 g de Cloruro de Magnesio (MgCl2.6H2O), 1,666 g de
Acetato de Sodio (CH3COONa3H2O), 0,25 g de Nitrato de Potasio (KNO3) y 5 ml de
Ácido Acético (CH3COOH 99%), 125 ml de agua destilada y aforar hasta 250 mL.
2.2.2. Solución BaCl2 (10%): Llevar 10g de BaCl2 a un matraz de 100 ml, disolver y aforar
con agua destilada.
2.2.3. Solución estándar de Sulfato (40 mg/L): Disolver 0.0592 g de sulfato de sodio
anhidro (Na2SO4) en agua destilada y diluir hasta 1000 ml.
2.2.4. Solución Blanco: Utilizar 100 ml de la muestra sin diluir o de la misma dilución usada
para el análisis, añadir 20 ml de solución buffer y 10 ml de agua destilada en lugar del
BaCl2. Agitar y leer la turbiedad en las mismas condiciones que los patrones y la
muestra.
DETERMINACION DE SULFATOS
(Método Nefelómetrico)
Código
PFQ-SULFATOS
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2.2.5. Soluciones patrón para la curva de calibración: Tomar los volúmenes de solución
de 40 ppm necesarios para la preparación de cada patrón mostrado en la tabla N°3, se
debe llevar cada patrón a un matraz de 25 mL.
Patrón
Concentración
(ppm)
Volumen de solución
estándar (ml)
1
10
1
2
15
1,5
3
20
2
4
25
2,5
5
30
3
6
35
3,5
7
40
4
Tabla N°3. Volumen de solución de 40 ppm necesario para la preparación de la curva de
calibración.
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Formación de la turbiedad de sulfato de Bario: Medir 100 ml de muestra y llevar a
un Erlenmeyer de 250 ml, adicionar 20 ml de la solución buffer y agitar.
Posteriormente adicione 10 ml de solución de BaCl2 y se debe comenzar a medir
inmediatamente el tiempo de agitación por 60 ± 2 segundos a velocidad constante.
2.3.2. Medida de la turbiedad: Después de que el período de agitación ha terminado,
coloque la solución en la celda del turbidímetro y mida la turbiedad a los 5 ± 0.5
minutos.
Nota: El procedimiento anterior se debe realizar para cada uno de los patrones de la curva
de calibración.
DETERMINACION DE SULFATOS
(Método Nefelómetrico)
Código
PFQ-SULFATOS
Tomar 100 mL de la
muestra de agua.
Llevar a un Erlenmeyer de
250 mL y adicione 20 mL
de solución Buffer. Agitar
Adicionar 10 mL de BaCl2 y
continuar con la agitación a
velocidad constante por 60
segundos.
Medir la turbidez
de los patrones, 5
minutos más
tarde.
Registrar los datos y
calcular el resultado final
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1
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DETERMINACION DE SULFATOS
(Método Nefelómetrico)
Código
PFQ-SULFATOS
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1
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4 de 4
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Construcción de graficas: Graficar las concentraciones de sulfato contra las respectiva
turbiedades corregidas al restar la del blanco. Obtener la ecuación de la línea obtenida.
Determinación del contenido de sulfato en una muestra: Una vez obtenida la turbiedad de
la muestra, Obtener directamente de la ecuación de la recta la concentración de ion
sulfato en los 100 ml de volumen final. Si el volumen de muestra medido fue menor a 100
ml y se completó con agua destilada, calcúlese la concentración en la muestra original.
𝒎𝒈 𝑺𝑶𝟒 −𝟐 /𝑳 =
(𝒑𝒑𝒎 𝒆𝒏 𝟏𝟎𝟎 𝒎𝒍 𝒗𝒐𝒍. 𝒇𝒊𝒏𝒂𝒍) ∗ 𝟏𝟎𝟎
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
DETERMINACION DE FOSFATOS
(Método del ácido ascórbico)
Código
PFQ-FOSTATOS
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1. OBJETIVO
Determinar la concentración de fosfatos en la muestra de agua analizada por el método
del ácido ascórbico.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos








Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100 ml y 25 ml.
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Beaker de 250 ml.
Vidrio de reloj.
Embudos en V.
Balanza analítica (precisión 0,1 mg).
Espectrofotómetro.
Plancha de calentamiento.
2.2. Reactivos
2.2.1. Ácido sulfúrico concentrado.
2.2.2. Ácido nítrico concentrado.
2.2.3. Fenolftaleína: Pesar 0,1 g de colorante y disolver en etanol al 95% hasta un volumen
de 20.
2.2.4. Hidróxido de sodio 6N: Disuelva 2,4 g de NaOH en un vaso de precipitado de un 100
ml, lleve a temperatura ambiente y complete a un 100 ml con agua destilada.
2.2.5. Ácido sulfúrico 5N: En un vaso de precipitado de 400 mL, agregue 40 mL de agua
destilada y adiciónele lentamente 14 mL de H2SO4 concentrado, como se produce una
reacción exotérmica, espere hasta que se enfríe la solución, en ese momento transfiera
cuantitativamente la solución a un balón de 100 mL y complete con agua destilada.
Mantenga en frasco de vidrio a temperatura ambiente.
2.2.6. Ácido ascórbico 0,1M: Disolver 1,76g de ácido ascórbico en 100 Ml de agua
ultrapura.
2.2.7. Solución de Tartrato de antimonio y potasio: Disolver 0,6858g de tartrato de
antimonio y potasio, mezclar y aforar en un matraz de 250 mL.
2.2.8. Solución de molibdato de amonio: Disolver 20g de heptamolibdato de amonio
tetrahidratado en 500 mL de agua.
2.2.9. Reactivo combinado: Adicionar cada uno de los siguientes reactivos, 5 mL de
solución de tartrato de antimonio y potasio, 50 mL de ácido sulfúrico 5N, 15 mL de
solución de molibdato de amonio y 30 mL de solución de ácido ascórbico.
2.2.10. Solución patrón de fosfato (50mg/L): Pesar 0,25 g de fosfato monobásico de
fosfato, secar durante dos horas a 105°C, posteriormente pesar 0,2195 g y diluir a
1000ml.
2.2.11. Solución Blanco: se toma 20 ml de solución para desarrollar color y aforar hasta un
volumen de 100 ml con agua destilada.
2.2.12. Soluciones Patrones para la curva de calibración: Tomar los mililitros de solución
estándar de fósforo necesarios para preparar la serie de patrones para la curva de
calibración de acuerdo con la tabla N°4 en matraces volumétricos de 100 ml y 200
mL, a continuación añádanse 5 ml del reactivo combinado y aforar los matraces
utilizando agua destilada.
Patrón
Concentración
[ppm]
Preparación
Patrón 4, tomar 10 mL y llevar a 200
mL.
Patrón 4, tomar 10 mL y llevar a 100
2
0,1
mL.
Patrón 6, tomar 10 mL y llevar 200
3
0,5
mL.
Patrón 6, tomar 10 mL y llevar a 100
4
1
mL
Sln madre 50 mg/L tomar 10 mL y
5
5
llevar a 100 mL.
Sln madre 50 mg/L tomar 20 mL y
6
10
llevar a 100 mL.
Tabla N°4. Volúmenes de solución necesaria para la curva de calibración.
1
0,05
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Digestión de la muestra, estándares y blanco
Adicionar 1 mL de ácido sulfúrico concentrado y 5 mL de ácido nítrico concentrado a 50
mL de las muestras, calentar hasta presencia de humo blanco y un volumen final de 1
mL, dejar enfriar en cabina y enjuagar hasta un volumen de 30 mL. Adicionar una gota
de solución indicadora de fenolftaleína y neutralizar hasta un color rosa profundo con
hidróxido de sodio 6N, posteriormente neutralizar con ácido sulfúrico 5N hasta
desaparición de color, aforar a 50 mL y pasar cada muestra a un Erlenmeyer.
DETERMINACION DE FOSFATOS
(Método del ácido ascórbico)
Código
PFQ-FOSTATOS
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1
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3 de 4
2.3.2. Curva de calibración
Adicionar 4 mL de reactivo combinado a una alícuota de 25 mL de las muestras,
posteriormente preparar la curva de calibración a partir de los patrones digeridos, la
lectura se desarrolla a 880 nm.
Nota: La digestión de la muestra dependerá del estado de la misma.
Tomar 25 mL de la
muestra de agua.
Adicionar 4 mL de reactivo
combinado.
Desarrollar los patrones para
la curva de calibración, como
se indica en el apartado 2.2.
Reactivos (tabla 4).
Medir la
absorbancia
a 880 nm.
Registrar los datos y
calcular el resultado final
DETERMINACION DE FOSFATOS
(Método del ácido ascórbico)
Código
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1
PFQ-FOSTATOS
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3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Registrar los resultados en forma de tabla para construir la gráfica.
Interpolar directamente las concentraciones de las muestras a partir de la curva de
calibración, esta concentración será la final, es decir, en los 25 ml de volumen.
A continuación se debe calcular el contenido de fósforo en la muestra original:
𝒎𝒈 𝑷/𝑳 =
(𝒑𝒑𝒎 𝑷 𝒆𝒏 𝟐𝟓 𝒎𝒍 𝑽𝒐𝒍. 𝒇𝒊𝒏𝒂𝒍) ∗ 𝟐𝟓
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
DETERMINACIÓN DE METALES
Cd, Fe, Cu, Pb, Cr, Zn
(Absorción atómica)
Código
PFQ-METALES
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1 de 3
1. OBJETIVO
Determinar la concentración de metales pesados como: Cd, Fe, Cu, Pb, Cr, Zn, en la
muestra de agua analizada, empleando la técnica instrumental de absorción atómica.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos







Espectrofotómetro de absorción atómica de llama.
Plancha calefactora.
Balanza analítica
Pipetas aforadas de 5 - 100 mL.
Erlenmeyer de 100 - 250 mL.
Papel de filtro libre de ceniza.
Matraces aforados de 25 - 1000 mL.
Nota: Todo el material de vidrio utilizado deberá lavarse con detergente y agua, enjuagarse
por inmersión en una solución de HNO3 al 5% v/v durante toda la noche, o un enjuague
único con una solución de HNO3 al 20% v/v. Luego se enjuagan tres veces con agua
destilada.
2.2. Reactivos
2.2.1.
2.2.2.
2.2.3.
2.2.4.
Solución estándar de 1000 ppm del metal a analizar.
Ácido nítrico 65%.
Ácido clorhídrico concentrado.
Ácido sulfúrico concentrado.
2.2.5. Solución madre de metales: Tomar 1 mL de la solución estándar de 1000 ppm del
metal a analizar y llevarlos a 250 mL, quedando a una concentración de 4 ppm.
2.2.6. Patrones para la curva de calibración: En la tabla N°5, se encuentran los
volúmenes de solución madre que se debe emplear para preparar los patrones de la
curva de calibración para el metal a analizar, todos los patrones de deben llevar a 100
mL y agregar 1 mL de ácido nítrico a cada uno, posteriormente desarrollar la medida.
DETERMINACIÓN DE METALES
Cd, Fe, Cu, Pb, Cr, Zn
(Absorción atómica)
Código
Versión
1
PFQ-METALES
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2 de 3
Patrón
Concentración
Volumen de
(mg/L)
solución madre (ml)
1
1
25
2
0,8
20
3
0,6
15
4
0,4
10
Tabla N° 5. Volúmenes de solución madre para la curva de calibración de metales.
Nota: Se debe tener presente la turbiedad de la muestra para desarrollar digestión ácida, si
esta es mayor a 1 NTU de hace digestión.
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Para condiciones sin digestión: Homogenizar la muestra, llevar a temperatura
ambiente, tomar 40 mL de muestra y llevar a tubo graduado y adicionar 1 mL de
solución de ácido nítrico 1:1, cuantificar.
2.3.2. Para condiciones con digestión: Tomar 100 mL de muestra en un vaso de
precipitado y agregar perlas de ebullición, adicionar 3 mL de ácido nítrico
concentrado, tapar, calentar en placa calefactora hasta obtener un volumen menor a
5 mL, evitar la sequedad. Dejar enfriar y adicionar un volumen mínimo de agua
desionizada, y repetir el procedimiento anterior.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Para este caso el cálculo es:
𝒎𝒈/𝑳 𝒅𝒆𝒍 𝒎𝒆𝒕𝒂𝒍 = (𝑳 − 𝒃𝒄𝒐)
Dónde:
L= lectura de la muestra en mg/L
bco.= lectura del blanco reactivo sometido al mismo proceso de las muestras
DETERMINACIÓN DE METALES
Cd, Fe, Cu, Pb, Cr, Zn
(Absorción atómica)
Código
PFQ-METALES
Tomar 40 mL de la
muestra de agua.
Llevarla a temperatura
ambiente.
Adicionar 1 mL de ácido nítrico
1:1, homogenizar con la
muestra.
Medir la señal
con el equipo
de absorción
atómica
Registrar los datos y
calcular el resultado final
Versión
1
Página
3 de 3
DEMANDA DE CLORO
Código
PFQ-DEMANDACLORO
Versión
1
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1. OBJETIVO
Determinar la demanda de cloro en la muestra de agua analizada.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos










Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100 ml.
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Erlenmeyer de 250 ml.
Vidrio de reloj.
Varilla de agitación.
Embudos en V.
Bureta.
Balanza analítica.
Placa de agitación.
Conductímetro medidor de pH.
2.2. Reactivos
2.2.1. Ácido Acético concentrado 96%.
2.2.2. Yoduro de Potasio 99.5%.
2.2.3. Tiosulfato de Sodio 0.1N: Disolver 2,5 g Na2S2O3 * 5 H2O en agua destilada recién
hervida y fría y dilúyase a 100 ml.
2.2.4. Almidón: Pesar 0,5 g de almidón, añadir a 5 mL de agua, mezclar hasta la formación
de una pasta uniforme, posteriormente adicionar en 45 mL de agua hirviendo y agitar
de manera continua.
2.2.5. Solución Madre de Cloro: Preparar una solución de cloro de 50.000 mg / L.
2.2.6. Solución Concentrada para la dosificación de cloro: Disolver 20 ml de Solución
Madre de Cloro en agua destilada y diluir a 100 ml. Cada gota de ésta solución
representa una dosis de cloro de 1 mg / L, cuando se agrega a 500 ml de muestra.
2.2.7. Solución Diluida para la dosificación de cloro: Se vierten 10 ml de solución
concentrada de cloro en un balón aforado de 100 ml y se afora con agua destilada. Cada
gota de ésta solución representa una dosis de cloro de 0.1 mg / L, cuando se agrega a
500 ml de muestra.
DEMANDA DE CLORO
Código
PFQ-DEMANDACLORO
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1
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2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Comprobación de la concentración de ésta solución: En un Erlenmeyer adicionar 2
ml ácido acético, 10 ml de agua destilada y 1 g de KI, mezclar, adicionar una cantidad
adecuada de solución de cloro. Al escoger éste volumen se debe tener en cuenta que
1 ml de solución de Na2S2O3 0.025 N es equivalente a aproximadamente 0.9 mg de
cloro.
Titule la solución anterior con la solución de Na2S2O3 0.025 N hasta que el amarillo del
yodo haya casi desaparecido. Adicione 1 ml de solución indicadora de almidón y
continúe la titulación hasta la desaparición del color azul.
Haga la misma determinación a un blanco, adicionando idénticas cantidades de ácido,
KI y solución de almidón a un volumen de agua destilada que corresponda al volumen
de muestra analizada.
Nota: Se debe conservar en un frasco ámbar, cerrado herméticamente, en el
refrigerador para mantener la concentración por un mes.
2.3.2. Selección del volumen de muestra: Medir diez porciones iguales de muestra, (500
ml) preferiblemente en frascos oscuros de tapón esmerilado de suficiente capacidad
para permitir el mezclado.
2.3.3. Tratamiento de la muestra: Se llevan las muestras envasadas a la temperatura
deseada, se agregan a los frascos las siguientes cantidades de gotas de la solución
diluida para la dosificación de cloro, como se muestra en la tabla N°6:
Gotas de solución diluida
Cloro
dosificación de cloro
( mg/L)
1
0.2
2
0.4
3
0.6
4
0.8
5
1.0
6
1.2
7
1.4
8
1.6
9
1.8
10
2.0
Tabla N°6. Gotas de solución diluida para la dosificación de cloro.
DEMANDA DE CLORO
Código
Versión
1
PFQ-DEMANDACLORO
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Nota: El período de contacto debe ser de 1 hora, 2 horas o 24 horas. Es indispensable
mezclar bien al hacer las adiciones.
2.3.4. Titulación de la muestra: Al final del período de contacto determine el cloro residual
de cada muestra cómo se realizó la determinación de cloro en la solución diluida para
2.3.5. la dosificación de cloro.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Determine la cantidad de cloro de acuerdo a la ecuación.
𝒎𝒈 𝑪𝒍 𝒄𝒐𝒎𝒐 𝑪𝒍𝟐 /𝑳 = (𝑩 − 𝑨)
Dónde:
A = Cloro residual al final del tiempo de contacto
B = Cantidad dosificada de cloro
Nota: Se debe registrar la cantidad dosificada de cloro, el cloro residual, el período de
contacto y la temperatura a la que se conservó la muestra de agua durante el período de
contacto.
DEMANDA DE CLORO
Código
PFQ-DEMANDACLORO
Tomar un volumen de muestra
de agua a analizar y dividirlo en
3 partes iguales.
Emplear frascos con tapón
y ámbar.
Se agregan a las muestras la
cantidad de gotas de solución
diluida para la dosificación de
cloro como se indica en la tabla
N° 6
Se debe dejar las muestras en
reposo por un periodo de 1 a 2
horas, garantizar mezclado.
Titule las soluciones después del
periodo de reposo, con solución de
Na2S2O3 0.025 N hasta que el
amarillo del yodo haya casi
desaparecido.
Adicione 1 ml de solución
indicadora de almidón y continúe la
titulación hasta la desaparición del
color azul. Repita el procedimiento
con el blanco.
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DETERMINACIÓN DE CLORO RESIDUAL
Código
PFQ-CLORORESIDUAL
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1
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1. OBJETIVO
Determinar el cloro residual en la muestra de agua analizada.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos








Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100 ml
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Erlenmeyer de 250 ml.
Vidrio de reloj
Bureta
Balanza analítica
Placa de agitación
Conductímetro medidor de pH
2.2. Reactivos
2.2.1. Ácido Acético concentrado 96%
2.2.2. Yoduro de Potasio 99.5%
2.2.3. Almidón
2.2.4. Solución de Tiosulfato de Sodio 0.1N: Disolver 25 g Na2S2O3 * 5 H2O en agua
destilada recién hervida y fría y dilúyase a 1 L.
2.2.5. Solución Tiosulfato de Sodio 0.025N: Disolver 125 ml de Solución de Tiosulfato de
Sodio 0.1 N en agua destilada y diluir a 500 ml.
2.2.6. Solución de indicadora de almidón: Pesar 0,5 g de almidón, añadir a 5 mL de agua,
mezclar hasta la formación de una pasta uniforme, posteriormente adicionar en 45 mL
de agua hirviendo y agitar de manera continua.
2.2.7. Solución Blanco: Tomar un volumen de agua destilada igual al volumen de la muestra
usada y añadir 5 ml de ácido acético, 1 g de KI y 1 ml de solución de almidón.
Nota: se debe empezar la determinación de cloro inmediatamente después de tomar la
muestra, evitando el exceso de luz o agitación. No almacenar las muestras destinadas al
análisis de cloro.
DETERMINACIÓN DE CLORO RESIDUAL
Código
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1
PFQ-CLORORESIDUAL
2.3.
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Desarrollo de la prueba
2.3.1. Tratamiento de la muestra: Tomar una alícuota de 25 mL de muestra, agregar 5 ml
de ácido acético, o la cantidad suficiente para reducir el pH hasta un valor entre 3 y 4
en un Erlenmeyer, añadir alrededor de 1 g de KI. Trasvasar la muestra a otro
Erlenmeyer y mezclar con una varilla de agitación. Tapar y dejar en la oscuridad
durante 5 minutos.
Nota: Si al desarrollar la titulación posterior el volumen de titulante es muy pequeño, se debe
variar el volumen de la alícuota.
2.3.2. Titulación de la muestra: Titular fuera de la luz solar directa. Añadir Na2S2O3 0.01 N
o 0.025 N con bureta, hasta que casi desaparezca el color amarillo del yodo libre.
Añádase 1 ml de solución de almidón y valórese hasta la desaparición del color azul.
2.3.3. Titulación del blanco: Si al agregar el almidón aparece un color azul, titular con
Na2S2O3 0.01 N o 0.025 N, hasta desaparición del color azul y regístrese el resultado.
Si no aparece color azul, titular con solución de yodo 0.0282 N hasta aparición del color
azul. Titular por retroceso con Na2S2O3 0.01 N o 0.025 N y registrar la diferencia.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Calcular el contenido de cloro residual en la muestra original como sigue:
𝒎𝒈 𝑪𝒍 𝒄𝒐𝒎𝒐 𝑪𝒍𝟐 /𝑳 =
Dónde:
A = Vol. de titulante gasta o para la muestra
B = Vol. de titulante gasta o para el blanco
N = Normalidad del Na2S2O3
(𝑨 ± 𝑩) ∗ 𝑵 ∗ 𝟑𝟓, 𝟒𝟓
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
DETERMINACIÓN DE CLORO RESIDUAL
Código
PFQ-CLORORESIDUAL
Tomar 25 mL de muestra de
agua.
Adicionar 5 ml de ácido acético,
para reducir el pH entre 3-4
Adicionar 1 kg de KI, mezclar y
poner durante 5 min a oscuridad
Titular la muestra con Na2S2O3
0.01 N o 0,025 N, hasta
desaparición de color amarillo.
Añádase 1 ml de solución de
almidón y valórese hasta la
desaparición del color azul
Repetir el proceso con el blanco
y registrar el volumen gastado en
cada titulación
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PRUEBAS DE JARRAS
(coagulación, floculación y decantación)
Código
PFQ-JARRAS
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1. OBJETIVO
Determinar la cantidad de coagulante, floculante que se debe emplear para el tratamiento
a microescala del agua, con el fin de cumplir con los parámetros y disminuir los sólidos
suspendidos.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos
 Seis vasos de precipitados de 1000 mililitros.
 Pipetas graduadas de 5, 10 y 25 mililitros.
 Equipo para pruebas de jarras que consiste de un set de agitadores mecánicos
controlados por un aparato que regula su velocidad y una lámpara de iluminación.
2.2. Reactivos
2.2.1. Solución del coagulante a emplear (Sulfato de aluminio): Las dosificaciones se
estiman a partir de los valores de turbidez y pH, entre 5 y 150 ppm de alumbre.
2.2.2. Reactivos para el análisis de pH, turbidez, color, demandad de cloro, alcalinidad y
dureza.
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Se le debe determinar a la muestra de agua bien homogenizada los siguientes
parámetros: color, turbiedad, pH, alcalinidad y dureza, antes del desarrollo de la
prueba de jarras. Asegúrese de que el pH de la muestra se halle comprendido entre
6.0 y 7.0, en caso contrario, se debe ajustar con una solución de hidróxido de sodio 0.1
N.
2.3.2. Tomar porciones de un litro de muestra, en 6 vasos de precipitado, llevar al equipo de
Jarras.
2.3.3. Encender la lámpara y los agitadores y estabilice su rotación a 100 rpm, dosificar el
coagulante (Sulfato de aluminio) a los primeros 5 vasos, en proporción creciente y
simultáneamente a todos los vasos, (pe: 4, 8, 12, 16 y 20 ml de Stock 1000 ppm de
alumbre, Al2 (SO4)3.).
PRUEBAS DE JARRAS
(coagulación, floculación y decantación)
Código
PFQ-JARRAS
Versión
1
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2.3.4. Mantenga la agitación de las aspas a 100 rpm durante un minuto, (mezcla rápida o
coagulación) y luego baje la velocidad de agitación a 40 rpm y manténgala durante 15
minutos más, (mezcla lenta o floculación).
2.3.5. Una vez transcurridos los 15 minutos de agitación lenta, suspenda la agitación, retire
los agitadores de los vasos y deje el sistema en reposo por 30 minutos durante los
cuales deberá observar la apariencia y consistencia del floc y su velocidad de
decantación.
2.3.6. Finalmente, determine la dosis óptima seleccionando aquella en donde los valores de
color y la turbidez sean los más bajos y en donde la velocidad de decantación y la
consistencia del floc sean los mejores. Utilice el Vaso número seis a manera de
blanco, para facilitar las comparaciones.
Nota: Después de seleccionar el vaso con mejor rendimiento, realizar las siguientes
pruebas: pH, alcalinidad, dureza, turbidez, cloro residual, conductividad y color.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
El pH desempeña un papel muy importante en los procesos de “Coagulación—Floculación”
debido a que los iones hidronio e hidroxilo aportan o destruyen la carga eléctrica de las
partículas coloidales. Idealmente, se debe propender porque el pH quede dentro de la zona
de mínima solubilidad del catión metálico utilizado, que para el caso del aluminio, queda
comprendida entre 6.0 y 7,4.
Se debe tener en cuenta que la dosis óptima es “la más baja que presente las anteriores
características”, sin exceder la dosificación necesaria debido a que dosificaciones superiores
a la óptima, pueden resuspender nuevamente los coloides.
La forma más exacta de establecer la dosis óptima de coagulante para una determinada
masa de agua, es mediante la determinación de sus Potencial Zeta o potencial cero, en una
curva de Mililitros de Coagulante Adicionado “vs” Potencial Eléctrico.
PRUEBAS DE JARRAS
(coagulación, floculación y decantación)
Código
PFQ-JARRAS
Versión
1
Tomar 6 porciones de muestra
de agua en igual proporción
Llevar al equipo de jarras y estabilizar la
rotación a 100 rpm, se debe adicionar el
coagulante de manera ascendente a los 5
primeros vasos.
Mantener la agitación de las aspas a 100
rpm por 15 min, posteriormente se baja la
rotación a 40 rpm durante 15 min.
Suspenda la agitación y dejar reposar por
30 min donde se observa la apariencia y
consistencia del floc y su velocidad de
decantación
Determine la dosis óptima donde los
valores de color y turbidez sean más
bajos.
Utilice el vaso sexto como el blanco y al vaso elegido en
el paso anterior desarróllele las pruebas de pH,
alcalinidad, dureza, turbidez, cloro residual,
conductividad y color
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DETERMINACIÓN DEL COLOR
(Colorímetro)
Código
PFQ-COLOR
Versión
1
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1. OBJETIVO
Determinar el color en la muestra de agua a analizar antes y después del tratamiento
fisicoquímico.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos
 Frascos de vidrio o polietileno de 250 mL.
 Filtro de carbón activado
 Colorímetro
2.2. Reactivos


Muestra de agua analizar.
Carbón activado
2.3 Desarrollo de la prueba
Se toma la muestra de agua recolectada, se hace pasar una cantidad establecida de la
muestra por un filtro de carbón activado, recolectando el filtrado para posteriormente medir el
parámetro de color por medio de un colorímetro.
3. REPORTE
El valor reportado por el equipo para la determinación de color, colorímetro, expresado en
NTU.
DETERMINACIÓN DELA TURBIDEZ
(Turbidimétrico)
Código
PFQ-TURBIDEZ
Versión
1
Página
1 de 3
1. OBJETIVO
Determinar la turbidez en la muestra de agua a analizar.
2. INTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos




Turbidímetro.
Matraces de aforo de 1000, y 100 mL.
Pipeta volumétrica de 10 mL.
Probeta de 100 mL.
2.2. Reactivos
2.2.1. Suspensión Patrón de Formacina:
2.2.1.1. Solución 1: disolver 1 gramo de sulfato de hidracina (MUY PELIGROSO) en agua
destilada y dilúyase hasta 100 ml.
2.2.1.2. Solución 2: Disolver 10 gramos de hexametilenotatraamina en agua destilada y
dilúyase hasta 100 ml.
Mezclar 5 ml de solución 1 y 5 ml de solución 2 en un matraz de 100 ml y mantener a
temperatura ambiente durante 24 horas. Pasado ese tiempo se habrá formado un
precipitado blanco. Enrasar a 100 ml. y agitar.
A ésta solución se le asigna un valor de 400 UNT (Unidades Nefelométricas de Turbidez).
2.2.2. Suspensión de Turbidez Estándar: Dilúyanse 10 ml de suspensión de Formacina
hasta 100 ml con agua destilada. La turbidez de esta suspensión se considera de 40
UNT.
2.2.3. Estándares Diluidos de Turbidez: Dilúyanse porciones de suspensión de turbidez
estándar en agua destilada según se requiera, en un rango de 0 a 40 UNT.
DETERMINACIÓN DE LA TURBIDEZ
(Turbidimétrico)
Código
PFQ-TURBIDEZ
Versión
1
Página
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2.2.4. Soluciones curva de calibrado: Con los estándares diluidos, homogeneizarlos antes
con una agitación suave.
Patrón
1
2
3
4
5
2.3.
Concentración de
Volumen de suspensión
Volumen de
estándares diluidos
de turbidez estándar (40
aforo
NTU
UNT)
0
0
50
10
12,5
50
20
25
50
30
37,5
50
40
0
50
Tabla N°8. Preparación de curva de calibración estándares diluidos.
Desarrollo de la prueba
2.3.1. Se debe procurar que en la cubeta de medida del espectrofotómetro no queden
burbujas. Medir a 400 nm. Empleando como blanco agua destilada.
2.3.2. Medir la turbidez de la muestra a partir de la recta de calibrado. Si la turbidez es
superior a 40 UNT diluir convenientemente con agua destilada.
Tomar 50 mL de la muestra
de agua
Adicionar la muestra a la cubeta
de medida del espectrofotómetro
con precaución de no dejar
burbujas
Medir la turbidez de la muestra
a 400 nm, emplear agua
destilado como blanco
Si la turbidez es superior a 40
UNT diluir convenientemente con
agua destilada.
DETERMINACIÓN DE LA TURBIDEZ
(Turbidimétrico)
Código
PFQ-TURBIDEZ
Versión
1
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
𝑼𝑵𝑻 = (𝑨 ∗ (𝑩 + 𝑪))/𝑪
Dónde:
A= UNT encontradas en muestra diluida.
B= volumen (ml) de agua de dilución.
C= volumen (ml) de la muestra tomada para dilución.
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DETERMINACION DE pH
Código
PFQ-pH
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1
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1 de 2
1. OBJETIVO
Determinar el pH de la muestra de agua analizar.
2. INTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos
 Beacker de 250 y 500 ml.
 Probeta.
 Medidor de pH de laboratorio.
2.2. Reactivos
2.2.1. Solución amortiguadora de pH 4,00 a 25 °C: Disolver 10,12 g de biftalato de potasio
(KHC8H4O4) en agua destilada diluya a un litro.
2.2.2. Solución amortiguadora de pH 6.86 a 25 ° C: Disolver 3.39 g de Fosfato mono
potásico (KH2PO4) y 3.53 g de Fosfato disódico anhidro (Na2HPO4) en agua destilada y
diluir a un litro.
2.3. Desarrollo de la prueba
Medir la temperatura de la muestra y ajustar el medidor con el botón de Temperatura.
Insertar los electrodos en la muestra y leer el pH correspondiente. Elevar y enjuagar los
electrodos con agua destilada.
Nota: Almacenar los electrodos en solución amortiguadora de pH 7 o menor.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Permita que el equipo se estabilice y reporte el pH marcado, especificando la temperatura
a la cual se realizó la lectura.
DETERMINACION DE pH
Código
PFQ-pH
Tomar 100 mL de la
muestra de agua
Introducir el electrodo del equipo
y leer el pH correspondiente
Lavar el electrodo con agua
destilada y registrar el valor
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1
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DETERMINACION DE LA ALCALINIDAD
Código
PFQ-ALCALINIDAD
Versión
1
Página
1 de 3
1. OBJETIVO
Determinar la alcalinidad pertinente a la muestra de agua a analizar.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos
 Bureta.
 Pipeta volumétrica de la capacidad necesaria
seleccionado, 100, 50, 25 o 10 ml.
 Erlenmeyer de 250 ml.
 Probeta de 25 ml
 Soporte.
 Pinza.
 Desecador.
 Medidor de pH.
 Balanza Analítica.
 Estufa de secado: para ser operada a 250 °C.
 Placa de Agitación Magnética.
para
el volumen de
muestra
2.2. Reactivos
2.2.1. Ácido Sulfúrico Estándar 0.1 N: Añadir aproximadamente 2.8 ml de ácido sulfúrico
concentrado (96 %) a un matraz volumétrico de 1L que contenga alrededor de 800 ml
de agua destilada, aforar utilizando agua destilada.
2.2.2. Ácido Sulfúrico Estándar, 0.02 N: Diluir 200 ml de solución de ácido sulfúrico 0.1 N
a 1000 ml con agua destilada.
2.2.3. Fenolftaleína: Pesar 0,1 g de colorante y disolver en etanol al 95% hasta un volumen
de 20 mL.
2.3. Desarrollo de la prueba
Se recomienda que se usen volúmenes de muestra que necesiten menos de 50 mL de la
solución tituladora, pues se obtiene un punto final más preciso. Para muestras de
alcalinidad menor a 20 mg/L titular con el ácido sulfúrico estándar de 0.02 N.
DETERMINACION DE LA ALCALINIDAD
Código
Versión
1
PFQ-ALCALINIDAD
Página
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2.3.1. Alcalinidad a la fenolftaleína: Se agrega dos gotas del indicador de fenolftaleína a
una muestra de volumen adecuado (50, 100 mL) contenida en un matraz Erlenmeyer
de 250 mL. Titular con solución de ácido sulfúrico valorado 0.1 N hasta desaparición de
color.
2.3.2. Alcalinidad total: Se agrega 3 gotas de indicador anaranjado de metilo a una muestra
adecuada (50, 100 mL) contenida en un matraz Erlenmeyer de 250 mL. Titular con
solución de ácido sulfúrico valorado 0.1 N hasta el viraje a color naranja salmón.
3.
PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
3.1. Titulación potenciométrica a un punto final de pH seleccionado:
𝑨𝒍𝒄𝒂𝒍𝒊𝒏𝒊𝒅𝒂𝒅 𝒎𝒈 𝑪𝒂𝑪𝑶𝟑 /𝑳 =
𝑨 ∗ 𝑵 ∗ 𝟓𝟎𝟎𝟎𝟎
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
Dónde:
A = mL de solución estándar de ácido usada y
N = normalidad del ácido estándar.
3.2. Titulación potenciométrica de muestras con baja alcalinidad
𝑨𝒍𝒄𝒂𝒍𝒊𝒏𝒊𝒅𝒂𝒅 𝒕𝒐𝒕𝒂𝒍 𝒎𝒈 𝑪𝒂𝑪𝑶𝟑 /𝑳 =
(𝟐𝑩 − 𝑪) ∗ 𝑵 ∗ 𝟓𝟎𝟎𝟎𝟎
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
Dónde:
B = ml de solución estándar de ácido para el primer pH.
C = ml totales de solución estándar de ácido para alcanzar un pH menor en 0.3
unidades
N = normalidad del ácido estándar.
DETERMINACION DE LA ALCALINIDAD
Código
Versión
1
PFQ-ALCALINIDAD
Tomar 50 mL de la muestra
de agua
Adicionar 3 gotas de indicador de
fenolftaleína
Aparece
color
rosado
Titule con ácido sulfúrico
hasta desaparición del
color rosado
Registre el volumen
gastado
Adiciones 3 gotas de
indicador anaranjado de
metilo
Titule con ácido sulfúrico
hasta aparición del color
rosado
Registre el volumen total
gastado
No aparece
color
rosado
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DETERMINACIÓN DE CONDUCTIVIDAD ELECTRICA
(Conductimetro)
Código
Versión
1
PFQ-CONDUCTIVIDAD
Página
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1. OBJETIVO
Determinar la conductividad de la muestra de agua a analizar.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos





Medidor de conductividad.
Celda de conductividad.
Termómetro.
Matraz aforado de 1 L.
Vasos de bohemia.
2.2. Reactivos
2.2.1. Solución estándar de KCl 0.01 M: Disolver 0.7456 g de cloruro de potasio (KCl)
secado previamente 2 horas a 105ºC en agua destilada y diluir a 1 L en matraz aforado
a 25ºC. Esta solución estándar de referencia tiene, a 25ºC, una conductividad de 1412
ohms/cm.
2.2.2. Determinación de la constante de la celda: Enjuagar la celda de conductividad con
al menos tres porciones de la solución de KCl 0.01 M. Ajustar la temperatura de la
cuarta porción a 25.0 ± 0.1ºC o realizar las correcciones necesarias para que el valor
quede determinado a 25ºC y medir.
Si el medidor de conductividad lee resistencia (R) en ohms, medir la resistencia de esta
cuarta porción y la temperatura. Calcular la constante de la celda, C, como:
C, cm-1 = 0.001412 RKCl [1 + 0.019(T-25)]
Dónde:
R KCl = resistencia medida en ohm.
T = temperatura en ºC.
2.2.3. Medida de la conductividad: Enjuagar la celda de conductividad con una o más
porciones de la muestra a medir. Ubicar la celda en la muestra de tal manera que no
queden retenidas burbujas de aire. Ajustar la temperatura de la muestra a 25.0 ± 0.1ºC
o realizar las correcciones necesarias para que el valor quede determinado a 25ºC.
Medir la resistencia o la conductividad de la muestra.
DETERMINACIÓN DE CONDUCTIVIDAD ELECTRICA
(Conductimetro)
Código
PFQ-CONDUCTIVIDAD
Versión
1
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Tomar 50 mL de la muestra
de agua
Ubicar la celda en la muestra de
tal manera que no queden
retenidas burbujas de aire
Ajustar la temperatura de la
muestra a 25.0 ± 0.1ºC
Medir la resistencia o la
conductividad de la muestra.
Registrar el valor obtenido
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
𝑪𝒐𝒏𝒅𝒖𝒄𝒕𝒊𝒗𝒊𝒅𝒂𝒅 = 𝑪𝒐𝒏𝒅𝒖𝒄𝒕𝒂𝒏𝒄𝒊𝒂 𝒅𝒆 𝒍𝒂 𝒎𝒆𝒖𝒔𝒕𝒓𝒂 ∗ 𝒌
𝒌 = 𝒅/𝑨k
Dónde:
k: Constante de la celda.
d: distancia de la separación de los electrodos
A: Área de los electrodos
Así, un electrodo de 1 cm de separación y con área de 1 cm, tendrá una k = 1
DETERMINACION DE LA ACIDEZ
(Método de titulación)
Código
PFQ-ACIDEZ
Versión
1
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1. OBJETIVO
Determinar la acidez perteneciente a la muestra de agua a analizar.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos











Pipetas volumétricas de 2, 5, 10 y 25 mL.
Pipetas graduadas de 5 y 10 mL.
Bureta de 50 mL.
Matraces volumétricos de 50 y 100 mL.
Erlenmeyer de 250 mL.
Vidrio de reloj.
Embudos en V.
Varilla de agitación.
Balanza analítica.
pH-metro.
Placa de agitación.
2.2. Reactivos
2.2.1.
2.2.2.
2.2.3.
2.2.4.
Hidróxido de sodio 0.02 N
Fenolftaleína
Agua destilada
Muestra de agua
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Determinación de la acidez: colocar 100 ml de agua en un matraz de 250 ml junto
con tres gotas de fenolftaleína como indicador. La muestra permanece incolora. A
continuación se valora con la disolución de NaOH 0.02 N hasta adquirir una coloración
rosa, anotando el volumen de NaOH consumido. Repita la valoración al menos dos
veces y obtenga la acidez de la muestra a partir de un valor medio.
DETERMINACION DE LA ACIDEZ
Código
Versión
1
PFQ-ACIDEZ
Página
2 de 2
Tomar 100 mL de la
muestra de agua
Adicionar 3 gotas de indicador de
fenolftaleína
Titular con la disolución de NaOH
0.02 N hasta adquirir una
coloración rosa
Medir la resistencia o la
conductividad de la muestra.
Registrar el volumen de NaOH
consumido. Repita la valoración al
menos dos veces y obtenga la
acidez de la muestra a partir de un
valor medio.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Determinar la acidez total del agua utilizada, expresada en mg/L de CaCO3
𝑨𝒄𝒊𝒅𝒆𝒛 =
𝑨∗𝑩
∗ 𝟓𝟎𝟎𝟎𝟎
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
Dónde:
A: volumen gastado de NaOH
B: concentración de NaOH
Comparar el valor obtenido con los valores estándar de calidad para un agua potable.
DETERMINACION DE LA DUREZA
(Determinación de Ca y Mg)
Código
PFQ-DUREZA
Versión
1
Página
1 de 3
1. OBJETIVO
Determinar la dureza pertinente a la muestra de agua a analizar.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos





Matraz erlenmeyer de 250 mL
Buretas de 25 mL
Pipetas aforadas de 10 mL
Pipetas graduadas de 1 mL
Matraz aforado de 1000 mL
2.2. Reactivos
2.2.1. Solución Buffer: disolver 1.179 g de etilendiaminotetra-acetato disódico dihidratado y
780 mg de MgSO4.7H2O o 644 mg de MgCl2.6H2O en 50 mL de agua destilada.
Agregar a esta solución16.9 g de cloruro de amonio (NH4Cl) y 143 mL de hidróxido de
amonio (NH4OH) concentrado. Mezclar y diluir a 250 mL con agua destilada.
Almacenar en botella de plástico.
2.2.2. Indicador Negro de Eriocromo-T (NET): mezclar 0.5 g de NET con 100 g de NaCl.
Pulverizar en mortero.
2.2.3. Solución titulante de EDTA 0.01M: disolver 3.723 g de etilendiaminotetra-acetato
disódico dihidratado en agua destilada y diluir a 1000 mL. Guardar en botella de
plástico. Titular contra solución patrón de calcio.
2.2.4. Solución estándar de calcio, 1 g CaCO3/L: pesar 1.000 g de CaCO3 anhidro seco en
un matraz Erlenmeyer de 500 mL. Colocar un embudo en el cuello del matraz y añadir
poco a poco, HCl 1:1 hasta la disolución total del CaCO3. Añadir 200 ml de agua
destilada y hacer hervir durante unos minutos para expeler el CO2. Enfríese,
posteriormente añada unas gotas de indicador rojo de metilo y ajustar al color naranja
intermedio por adición de NH4OH 3N o HCl 1:1, según se requiera. Transvásese
cuantitativamente y dilúyase hasta 1000 ml con agua destilada.
DETERMINACION DE LA DUREZA
(Determinación de Ca y Mg)
Código
PFQ-DUREZA
Versión
1
Página
2 de 3
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Titulación de la solución de EDTA: Tomar 10.0 mL de solución estándar de calcio y
diluir a 50 mL en un matraz erlenmeyer. Agregar 1.0 mL de solución buffer. El pH
deberá estar entre 10.0 y 10.1, en caso contrario descartar la solución buffer.
Agregar una punta de espátula de reactivo indicador. Titular con solución de EDTA
lentamente y agitando continuamente hasta viraje del color de la solución de rosado a
azul. Completar la titulación dentro de los cinco minutos siguientes al agregado de la
solución buffer.
2.3.2. Titulación de la muestra: Seleccionar un volumen de muestra que requiera un gasto
de EDTA menor a 15 mL. Diluir la muestra a 50 mL con agua destilada. Agregar 1 o 2
mL de solución buffer. El pH deberá ser 10.0 ± 0.1, en caso contrario descartar la
solución buffer.
Agregar una punta de espátula de reactivo indicador. Titular con solución de EDTA
lentamente y agitando continuamente hasta viraje de color de la solución de rosado a
azul. Completar la titulación dentro de los cinco minutos siguiente al agregado de la
solución buffer.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Calcúlese la dureza como mg de CaCO3/L como sigue:
𝒎𝒈 𝑪𝒂𝑪𝑶𝟑 /𝑳 =
Dónde:
A= ml de EDTA gastados
B= molaridad del EDTA
𝑨 ∗ 𝑩 ∗ 𝟏𝟎𝟎𝟎𝟗𝟎
𝒎𝒍 𝒅𝒆 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
DETERMINACION DE LA DUREZA
(Determinación de Ca y Mg)
Código
PFQ-DUREZA
Tomar 50 mL de la muestra
de agua
Diluir con 50 mL de agua
destilada y agregar 1 a 2 gotas de
solución Buffer
Adicionar con la punta de la
espátula reactivo indicador negro
de eriocromo. Reposar 5 min
Titular con solución EDTA
lentamente y observar viraje de
rosa a azul
Registrar el volumen consumido.
Versión
1
Página
3 de 3
SÓLIDOS TOTALES SECADOS A 103-105
Código
Versión
1
PFQ-SOLIDOS
Página
1 de 2
1. OBJETIVO
Determinar la cantidad de materia disuelta y en suspensión que lleva el agua mediante el
método de sólidos totales.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos




Cápsulas de porcelana.
Estufa de secado (103-105 ºC).
Desecador.
Balanza de analítica.
2.2. Desarrollo de la prueba
2.2.1. Se introduce la cápsula a la estufa y se secan durante 30 minutos aproximadamente,
posteriormente se pasa al desecador hasta que se enfríe.
2.2.2. Se pesa la cápsula.
2.2.3. Se añade una determinada cantidad de agua en la cápsula (20 ml), y se introducen en
la estufa. Dejar en la estufa durante 24 horas.
2.2.4. Transcurrido ese tiempo, se pasan las cápsulas la desecador y de dejan enfriar.
2.2.5. Se pesa la capsula y se registra el valor.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
𝒎𝒈/𝑳 = [(𝑩 − 𝑨) ∗ 𝟏𝟎𝟑]/𝑽
Dónde:
A = peso de residuo seco + placa (mg)
B = peso de la placa (mg)
V = volumen de muestra (ml)
SÓLIDOS TOTALES SECADOS A 103-105
Código
PFQ-SOLIDOS
Se introduce la cápsula a la
estufa y se secan durante 30
minutos
Se pesa la cápsula, se añade 20
mL de agua en la cápsula
Se introducen en la estufa. Dejar
en la estufa durante 24 horas.
Transcurrido ese tiempo, se
pasan las cápsulas la desecador y
de dejan enfriar.
Se pesa la capsula y se registra el
valor
Versión
1
Página
2 de 2
CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL AGUA
(Filtración por membrana y nmp)
Código
PMB-FILTRACIÓN
Versión
1
Página
1 de 3
1. OBJETIVO
Determinar la calidad microbiológica del agua por medio de la técnica de filtración por
membrana y número más probable, con el fin de establecer la diferencia entre bacterias
Coliformes Totales y Coliformes fecales.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos







Filtro de membrana.
Membranas.
Incubadora.
Cajas de Petri.
Tubos de ensayo.
Asa bacteriológica.
Luz UV.
2.2. Reactivos
2.2.1. Cultivo Cromocult.
2.2.2. Medio FLUOROCULT LMX.
2.2.3. Agua peptonada estéril.
2.3. Desarrollo de la prueba
2.3.1. Filtración por membrana
2.3.1.1.
Mezclar el agua por inversión unas 10 veces.
2.3.1.2.
Pasar 100 ml de agua por el filtro de membrana.
2.3.1.3.
Poner el filtro en el medio de Cultivo Cromocult.
2.3.1.4.
Incubar de 35- 37º C por 48 horas.
2.3.1.5.
Leer directamente en el filtro.
CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL AGUA
(Filtración por membrana y nmp)
Código
PMB-FILTRACIÓN
Versión
1
Página
2 de 3
2.3.2. Técnica de número más probable
2.3.2.1.
Se mezcla bien el agua por inversión 10 veces.
2.3.2.2.
Se hace dilución de la muestra 1/10 y 1/100 con APE. (Agua peptonada estéril)
2.3.2.3.
Se siembra 1ml de la solución madre y 1 mL de cada dilución en el medio
FLUOROCULT LMX.
2.3.2.4.
Se incuba a 35-37º C por 48 horas.
2.3.3.
Lectura
2.3.3.1.
Tubos positivos para coliformes totales los que presenta turbidez.
2.3.3.2.
Tubos positivos para coliformes fecales:

Los que al llevarlos a la Luz UV, presenten fluorescencia.

Para hacer la prueba de confirmación de E. Coli se adiciona directamente sobre el
tubo el reactivo de indol con reactivo de Kovacs, la prueba seria positiva si aprece
un anillo de color rojo, y negativa si aparece un anillo de color amarillo.

Positivo: presencia de Coliformes fecales (Esterichia coli)
Nota: Si el agua para analizar contiene cloro, se dee tomar la muestra en frasco de vidrio
estéril que contenga 0,25 mL de tiosulfato de sodio por cada 100 mL de agua.
3. PROCESAMIENTO DE DATOS Y CÁLCULO DE RESULTADOS
Resultado El resultado se informa en UFC/100 mL (Unidades formadoras de colonias) por
100 mL. Los Coliformes totales incluyen todas las colonias tanto las de color rojo salmón
(coliformes totales) más las de color violeta o azul (E.coli) y se multiplica por el inverso de
la dilución analizada.
Para E.coli, se cuentan solamente las colonias de color violeta o azul, se multiplica por el
inverso de la dilución analizada.
CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL AGUA
(Filtración por membrana y nmp)
Código
PMB-FILTRACIÓN
Filtración por membrana
Mezclar el agua por
inversión unas 10 veces.
Pasar 100 ml de agua por el filtro
de membrana.
Poner el filtro en el medio de
Cultivo Cromocult.
Incubar de 35- 37º C por 48
horas.
Leer directamente en el filtro.
Técnica de número más probable
Se mezcla bien el agua por
inversión 10 veces.
Se hace dilución de la muestra
1/10 y 1/100 con APE. (Agua
peptonada esteril)
Se siembra 1ml de la solución
madre y 1 mL de cada dilución en
el medio FLUOROCULT LMX
Se incuba a 35-37º C por 48 horas
Versión
1
Página
3 de 3
FILTRACIÓN POR CARBÓN ACTIVADO
Código
PMB-FILTRACIÓN
Versión
1
Página
1 de 2
1. OBJETIVO
Determinar el grado de contaminantes en el agua a analizar, separando las partículas
sólidas de un líquido y empleando un material en este caso carbón activado.
2. INSTRUCTIVO
2.1. Materiales y Equipos





Beaker de 250 mL.
Probeta.
Filtro vertical.
Carbón activado.
Recipiente plástico.
2.2. Desarrollo de la prueba
Se debe elegir un volumen adecuado de la muestra (50 mL), posteriormente se hace pasar a
través del filtro de carbón activado, teniendo la precaución de no derramar la muestra a
analizar.
Nota: Se deben medir parámetros como el color del agua a analizar para ver la variación del
parámetro empleando la técnica de filtración.
Tomar 50 mL de muestra
Pasar el agua por el filtro de
carbón activado
Recoger en frasco plástico
para la determinación del color.
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Unit 1
Serial #: 622
1
Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
Comments: Carbon activado granular
Summary Report
Surface Area
Single point surface area at P/Po = 0.300679774: 0.4189 m²/g
BET Surface Area: 0.4256 m²/g
Langmuir Surface Area: 0.6285 m²/g
Pore Volume
Single point adsorption total pore volume of pores
less than 0.000 Å diameter at P/Po = 1.000187019: 0.003395 cm³/g
Pore Size
Adsorption average pore width (4V/A by BET): 319.0236 Å
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Page 1
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Unit 1
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Serial #: 622
1
Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Comments: Carbon activado granular
BET Surface Area Report
BET Surface Area: 0.4256 ± 0.0617 m²/g
Slope: 10.558967 ± 1.453747 g/cm³
STP
Y-Intercept: -0.331531 ± 0.286559 g/cm³ STP
C: -30.849102
Qm: 0.0978 cm³/g STP
Correlation Coefficient: 0.9727247
Molecular Cross-Sectional Area: 0.1620 nm²
Relative
Pressure
(P/Po)
0.058256762
0.112997360
0.175691705
0.238408827
0.300679774
Quantity
Adsorbed
(cm³/g STP)
0.1209
0.1596
0.1672
0.1574
0.1376
1/[Q(Po/P - 1)]
0.511770
0.798178
1.274544
1.988592
3.124869
Page 2
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Unit 1
Serial #: 622
Page 3
1
Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Comments: Carbon activado granular
BET Surface Area Plot
1
3.0
2.5
1/[Q(Po/P - 1)]
2.0
1.5
1.0
0.5
0.0
0.00
0.05
0.10
0.15
Relative Pressure (P/Po)
0.20
0.25
0.30
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Unit 1
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Serial #: 622
1
Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Comments: Carbon activado granular
Langmuir Surface Area Report
Langmuir Surface Area: 0.6285 ± 0.0670 m²/g
Slope: 6.926867 ± 0.738096 g/cm³ STP
Y-Intercept: -23.543609 ± 86.892714 mmHg·g/cm³ STP
b: -0.294214 1/mmHg
Qm: 0.1444 cm³/g STP
Correlation Coefficient: 0.983392
Molecular Cross-Sectional Area: 0.1620 nm²
Pressure
(mmHg)
34.792973
67.485970
104.929222
142.386078
179.576462
Quantity
Adsorbed
(cm³/g STP)
0.1209
0.1596
0.1672
0.1574
0.1376
P/Q
(mmHg·g/cm³
STP)
287.841
422.834
627.465
904.509
1305.128
Page 4
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Unit 1
Serial #: 622
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1
Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Comments: Carbon activado granular
Langmuir Surface Area Plot
1
1,200
P/Q (mmHg·g/cm³ STP)
1,000
800
600
400
200
0
0
20
40
60
80
100
Pressure (mmHg)
120
140
160
180
Lab.Materiales Nanoestructurados y Funcionales
ASAP 2020 V3.01 H
Unit 1
Sample:
Operator:
Submitter:
File:
Started:
Completed:
Report Time:
Sample Mass:
Cold Free Space:
Low Pressure Dose:
Serial #: 622
Page 6
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Nayda P. Arias
BET
C:\...\MARIAF~1\1.SMP
26/02/2012 3:41:45p.m.
26/02/2012 6:10:16p.m.
26/02/2012 6:10:13p.m.
0.1061 g
49.6317 cm³
None
Analysis Adsorptive:
Analysis Bath Temp.:
Thermal Correction:
Warm Free Space:
Equilibration Interval:
Automatic Degas:
N2
-197.750 °C
No
16.2311 cm³ Measured
10 s
Yes
Comments: Carbon activado granular
Options Report
Sample Tube
Warm freespace: 1.0000 cm³
Cold freespace: 1.0000 cm³
Non-ideality factor: 0.0000620
Use Isothermal Jacket: Yes
Use Filler Rod: Yes
Vacuum seal type: Seal Frit
Analysis Conditions
Preparation
Fast evacuation: No
Unrestricted evacuation from: 10.0 mmHg
Vacuum setpoint: 10 µmHg
Evacuation time: 0.10 h
Leak test: No
Use TransSeal: No
Free Space
Free-space type: Measured
Lower dewar for evacuation: Yes
Evacuation time: 0.50 h
Outgas test: No
Po and Temperature
Po and T type: Measure Po at intervals during analysis. Calculate the
Analysis Bath Temperature from these values.
Measurement interval: 120 min
Dosing
Use first pressure fixed dose: No
Use maximum volume increment: No
Target tolerance: 5.0% or 5.000 mmHg
Low pressure dosing: No
Equilibration
Equilibration time (P/Po = 1.000000000): 10 s
Minimum equilibration delay at P/Po >= 0.995: 600 s
Sample Backfill
Backfill at start of analysis: Yes
Backfill at end of analysis: Yes
Backfill gas: N2
Adsorptive Properties
Adsorptive: Nitrogen
Maximum manifold pressure: 925.00 mmHg
Non-ideality factor: 0.0000620
Density conversion factor: 0.0015468
Therm. tran. hard-sphere diameter: 3.860 Å
Molecular cross-sectional area: 0.162 nm²
Inside diameter of sample tube: 9.53 mm
Sample ID:
Sample Scans:
Method Name: Pathlength_ATR
yeca
User: FTIR
64
Background Scans: 64
Resolution:
4 cm-1
System Status:
Bueno
File Location:
05/07/2015
Date/Time: 5/7/2015 4:15:46PM
Range: 4,000.00 - 650.00
Apodization: Happ-Genzel
C:\Program Files\Agilent\MicroLab PC\Results\yeca_2015-05-07T16-19-49.a2r
16:20:14
Printed by:FTIR
yeca_2015-05-07T16-19-49.a2r
Page 1 of 1
DEPARTAMENTO
MUNICIPIO
DESDE
HASTA
EDAD
SERVICIO
Nº
COD CIE10
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
N771
J00X
R104
N390
I10X
R509
A09X
J029
R51X
K297
M545
R42X
E039
H103
Z300
M255
J069
J039
Z001
RISARALDA
GUATICA
01/01/2013
31/12/2013
TOTAL POBLACIÓN (Diagnósticos Confirmado Nuevo)
CONSULTA EXTERNA MORBILIDAD
PORCEN
TAJE
VAGINITIS, VULVITIS Y VULVOVAGINITIS EN ENFERMEDADES INFECCIOSAS
234
Y
PARASITARIAS CLASIFICADAS EN OTRA PARTE
2,92%
RINOFARINGITIS AGUDA (RESFRIADO COMUN)
219
2,74%
OTROS DOLORES ABDOMINALES Y LOS NO ESPECIFICADOS
215
2,69%
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
215
2,69%
HIPERTENSION ESENCIAL (PRIMARIA)
208
2,60%
FIEBRE, NO ESPECIFICADA
147
1,84%
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
142
1,77%
FARINGITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
124
1,55%
CEFALEA
122
1,52%
GASTRITIS, NO ESPECIFICADA
107
1,34%
LUMBAGO NO ESPECIFICADO
103
1,29%
MAREO Y DESVANECIMIENTO
77
0,96%
HIPOTIROIDISMO, NO ESPECIFICADO
66
0,82%
CONJUNTIVITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
60
0,75%
CONSEJO Y ASESORAMIENTO GENERAL SOBRE LA ANTICONCEPCION
60
0,75%
DOLOR EN ARTICULACION
55
0,69%
INFECCION AGUDA DE LAS VIAS RESPIRATORIAS SUPERIORES, NO
54 ESPECIFICADA
0,67%
AMIGDALITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
52
0,65%
CONTROL DE SALUD DE RUTINA DEL NIÑO
51
0,64%
5692 71,12%
OTRAS CAUSAS
TOTAL
8003
DIAGNOSTICO
Nº DE CASOS
DEPARTAMENTO
MUNICIPIO
DESDE
HASTA
EDAD
SERVICIO
Nº
COD CIE10
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
R104
R509
A09X
R51X
N390
I10X
R11X
J00X
S610
K297
J46X
M545
R072
J039
J189
J209
R074
L039
R42X
RISARALDA
GUATICA
01/01/2013
31/12/2013
TOTAL POBLACIÓN
CONSULTA URGENCIAS
DIAGNOSTICO
OTROS DOLORES ABDOMINALES Y LOS NO ESPECIFICADOS
FIEBRE, NO ESPECIFICADA
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
CEFALEA
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
HIPERTENSION ESENCIAL (PRIMARIA)
NAUSEA Y VOMITO
RINOFARINGITIS AGUDA (RESFRIADO COMUN)
HERIDA DE DEDO(S) DE LA MANO, SIN DAÑO DE LA(S) UÑA(S)
GASTRITIS, NO ESPECIFICADA
ESTADO ASMATICO
LUMBAGO NO ESPECIFICADO
DOLOR PRECORDIAL
AMIGDALITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
NEUMONIA, NO ESPECIFICADA
BRONQUITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
DOLOR EN EL PECHO, NO ESPECIFICADO
CELULITIS DE SITIO NO ESPECIFICADO
MAREO Y DESVANECIMIENTO
OTRAS CAUSAS
TOTAL
Nº DE CASOS PORCENTAJE
249
241
157
137
127
121
79
76
65
63
58
53
50
48
43
42
41
36
36
2537
4259
5,85%
5,66%
3,69%
3,22%
2,98%
2,84%
1,85%
1,78%
1,53%
1,48%
1,36%
1,24%
1,17%
1,13%
1,01%
0,99%
0,96%
0,85%
0,85%
59,57%
DEPARTAMENTO
MUNICIPIO
DESDE
HASTA
EDAD
SERVICIO
Nº
COD CIE10
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
N390
O809
J189
L039
L031
J449
J159
O800
R509
I10X
L038
H660
L028
J441
R104
L032
L024
K047
A09X
RISARALDA
GUATICA
01/01/2013
31/12/2013
TOTAL POBLACIÓN
EGRESOS HOSPITALARIOS
DIAGNOSTICO
Nº DE CASOS PORCENTAJE
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
69
15,07%
PARTO UNICO ESPONTANEO, SIN OTRA ESPECIFICACION
41
8,95%
NEUMONIA, NO ESPECIFICADA
30
6,55%
CELULITIS DE SITIO NO ESPECIFICADO
24
5,24%
CELULITIS DE OTRAS PARTES DE LOS MIEMBROS
15
3,28%
ENFERMEDAD PULMONAR OBSTRUCTIVA CRONICA, NO ESPECIFICADA14
3,06%
NEUMONIA BACTERIANA, NO ESPECIFICADA
14
3,06%
PARTO UNICO ESPONTANEO, PRESENTACION CEFALICA DE VERTICE 11
2,40%
FIEBRE, NO ESPECIFICADA
11
2,40%
HIPERTENSION ESENCIAL (PRIMARIA)
9
1,97%
CELULITIS DE OTROS SITIOS
9
1,97%
OTITIS MEDIA SUPURATIVA AGUDA
8
1,75%
ABSCESO CUTANEO, FURUNCULO Y ANTRAX DE OTROS SITIOS
7
1,53%
ENFERMEDAD PULMONAR OBSTRUCTIVA CRONICA CON EXACERBACION
7 AGUDA, NO1,53%
ESPECIFICADA
OTROS DOLORES ABDOMINALES Y LOS NO ESPECIFICADOS
7
1,53%
CELULITIS DE LA CARA
7
1,53%
ABSCESO CUTANEO, FURUNCULO Y ANTRAX DE MIEMBRO
6
1,31%
ABSCESO PERIAPICAL SIN FISTULA
5
1,09%
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
5
1,09%
159
OTRAS CAUSAS
34,72%
TOTAL
458
CONSULTA EXTERNA MORBILIDAD
Nº
COD CIE10
1
4
7
14
17
N771
N390
A09X
H103
J069
DIAGNOSTICO
VAGINITIS, VULVITIS Y VULVOVAGINITIS EN ENFERMEDADES INFECCIOSAS Y PARASITARIAS CLASIFICADAS EN OTRA PARTE
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
CONJUNTIVITIS AGUDA, NO ESPECIFICADA
INFECCION AGUDA DE LAS VIAS RESPIRATORIAS SUPERIORES, NO ESPECIFICADA
Nº DE
CASOS
234
215
142
60
54
PORCENTA
JE
2,92%
2,69%
1,77%
0,75%
0,67%
CONSULTA URGENCIAS
3
A09X
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
5
N390
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
7
R11X
NAUSEA Y VOMITO
157
127
79
3,69%
2,98%
1,85%
EGRESOS HOSPITALARIOS
1
N390
INFECCION DE VIAS URINARIAS, SITIO NO ESPECIFICADO
9
R509
FIEBRE, NO ESPECIFICADA
12
H660
OTITIS MEDIA SUPURATIVA AGUDA
19
A09X
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
69
11
8
5
15,07%
2,40%
1,75%
1,09%
DIARREA Y GASTROENTERITIS DE PRESUNTO ORIGEN INFECCIOSO
ANAEXO E
EQUIPOS Y MATERIALES UTILIZADOS
Los equipos y materiales de laboratorio usados para el seguimiento de la calidad del agua
se encuentran denotados en la siguiente tabla:
PARÁMETROS
Nitratos
Nitritos
Nitritos
Sulfatos
Fosfatos
-
EQUIPOS Y MATERIALES UTILIZADOS
Espectrofotómetro
Equipo de filtración al vacío
Balanza analítica
Bureta de 25 mL
Embudo en v
Matraces volumétricos 1 L y 25 Ml
Pipeta graduado 1 mL, 10 mL
Pipeta volumétrica 2 mL, 5 mL y 10 mL
Vidrio reloj
Celdas de cuarzo
Espectrofotómetro, con celdas de 1 cm de
vidrio
Balanza Analítica
Placa de calentamiento – Agitador Magnético
Beaker de 250 ml
Bureta de 50 ml
Crisol Gooch
Embudos en V
Erlenmeyer de 125 y 250 ml
Erlenmeyer de 250 ml con tapón
Matraces volumétricos de 50, 100, 250, 500 y
1000 ml
Pipetas graduadas de 5 y 10 ml
Pipetas volumétricas de 2, 5, 10 y 25 ml
Varilla de agitación
Vidrio de reloj
Papel filtro
Espectrofotómetro
Equipo de filtración al vacío
Balanza analítica
Bureta de 25 mL
Embudo en v
Matraces volumétricos 1 L y 25 Ml
Pipeta graduado 1 mL, 10 mL
Pipeta volumétrica 2 mL, 5 mL y 10 mL
Vidrio reloj
Celdas de cuarzo
Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100 ml
y 25 ml.
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Beaker de 250 ml.
-
Vidrio de reloj.
Embudos en V.
Balanza analítica (precisión 0,1 mg).
Espectrofotómetro.
Plancha de calentamiento.
- Espectrofotómetro de absorción atómica
Determinación de metales
cd, fe, cu, pb, cr, zn
-
-
Demanda de cloro
Cloro residual
-
Pruebas de jarras
Color
Turbidez
pH
-
Plancha calefactora.
Balanza analítica
Pipetas aforadas de 5 - 100 mL.
Erlenmeyer de 100 - 250 mL.
Papel de filtro libre de ceniza.
Matraces aforados de 25 - 1000 mL
Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100
ml.
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Erlenmeyer de 250 ml.
Vidrio de reloj.
Varilla de agitación.
Embudos en V.
Bureta.
Balanza analítica.
Placa de agitación.
Conductímetro medidor de pH.
Matraces volumétricos de 1 L, 500 ml, 100
ml
Pipetas volumétricas de 10 ml, 5 ml y 2 ml.
Erlenmeyer de 250 ml.
Vidrio de reloj
Bureta
Balanza analítica
Placa de agitación
Conductímetro medidor de pH
Seis vasos de precipitados de 1000 mililitros.
Pipetas graduadas de 5, 10 y 25 mililitros.
Equipo para pruebas de jarras que consiste
de un set de agitadores mecánicos
controlados por un aparato que regula su
velocidad y una lámpara de iluminación.
Frascos de vidrio o polietileno de 250 mL.
Colorimetro.
Turbidímetro.
Matraces de aforo de 1000, y 100 mL.
Pipeta volumétrica de 10 mL.
Probeta de 100 mL.
Beacker de 250 y 500 ml.
Probeta.
Medidor de pH de laboratorio.
Bureta.
Pipeta
volumétrica de la capacidad
necesaria para el volumen de muestra
seleccionado, 100, 50, 25 o 10 ml.
Erlenmeyer de 250 ml.
Probeta de 25 ml
Soporte.
Alcalinidad
Pinza.
Desecador.
Medidor de pH.
Balanza Analítica.
Estufa de secado: para ser operada a 250
°C.
- Placa de Agitación Magnética.
- Medidor de conductividad.
- Celda de conductividad.
Conductividad electrica
- Termómetro.
- Matraz aforado de 1 L.
- Vasos de bohemia.
- Pipetas volumétricas de 2, 5, 10 y 25 mL.
- Pipetas graduadas de 5 y 10 mL.
Acidez
- Bureta de 50 mL.
- Matraces volumétricos de 50 y 100 mL.
- Erlenmeyer de 250 mL.
- Vidrio de reloj.
- Embudos en V.
- Varilla de agitación.
Acidez
- Balanza analítica.
- pH-metro.
- Placa de agitación.
- Matraz erlenmeyer de 250 mL
- Buretas de 25 mL
Dureza
- Pipetas aforadas de 10 mL
- Pipetas graduadas de 1 mL
- Matraz aforado de 1000 mL
- Cápsulas de porcelana.
Sólidos totales secados a 103-105
- Estufa de secado (103-105 ºC).
- Desecador.
- Balanza de analítica.
- Filtro de membrana.
- Membranas.
- Incubadora.
Calidad microbiológica del agua
- Cajas de Petri.
- Tubos de ensayo.
- Asa bacteriológica.
- Luz UV.
- Beaker de 250 mL.
Filtración por carbón activado
- Probeta.
- Filtro vertical.
- Carbón activado.
- Recipiente plástico.
Tabla N°1. Equipos, materiales y Parámetros de Laboratorio.
-
ANEXO F
REACTIVOS
Los Reactivos empleados para el seguimiento de la calidad del agua se encuentran
denotados en la siguiente tabla:
Reactivos
Sulfato de hidracina
Biftalato de potasio
Hexametilenotatraamina
Fosfato monopotasico
Fosfato disódico anhidro
Hexacloroplatino de potasio
Cloruro de cobalto hexahidratado
Ácido clorhídrico concentrado
Platino metálico
Cloruro de cobalto hexahidratado
Cobalto metálico
Cloruro de potasio
Cloruro de potasio anhidro
Carbonato de sodio
Ácido sulfúrico
Hidróxido de sodio
Fenolftaleína
Cloruro de amoniaco
Hidróxido de amonio
Sal disodica de EDTA hidratado
Sal de magnesio de EDTA
Sulfato de magnesio heptahidratado
Sulfuro sódico noanhidrido
Cianuro sódico
Negro de eriocromo
EDTA
Sulfuro sódico pentahidratado
Carbonato de calcio anhidro
Sal magnésica del ácido EDTA
Rojo de metilo
Sulfato de aluminio
Carbón activado
Cloroformo
Nitrato de potasio
Ácido fosfórico
Diclorhidrato de N-(1-naftil)-etilendiamina
Nitrito de sodio
Oxalato de sodio
Permanganato de potasio
Sulfanilamida
Cloruro de magnesio hexahidratado
CAS
10034-93-2.
877-24-7
100-97-0
7778-77-0
7558-79-4
16921-30-5
7791-13-1
7647-01-0
7440-06-4
7791-13-1
7440-48-4
7447-40-7
7447-40-7
497-19-8
7664-93-9
1310-73-2
77-09-8
12125-02-9
1336-21-6
6381-92-6
14402-88-1
10034-99-8
1313-82-2
143-33-9
1787-61-7
60-00-4
7758-98-7
471-34-1
----493-52-7
10043-01-3
7440-44-0
67-66-3
7757-79-1
7664-38-2
1465-25-4
7632-00-0
62-76-0
7722-64-7
63-74-1
7791-18-6
Acetato de sodio trihidratado
6131-90-4
Ácido acético glacial
64-19-7
Cloruro de bario
10361-37-2
Sulfato de sodio anhidro
7757-82-6
Ácido nítrico
7697-37-2
Tartrato de antimonio y potasio
28300-74-5
Heptamolibdato de amonio tetrahidratado
012054-85-2
Ácido ascórbico
50-81-7
Fosfato diacido de potasio
7778-77-0
Fosfato acido anhidro de potasio
7758-11-4
Acetileno
74-86-2
Peróxido de nitrógeno
----Cadmio metálico
7440-43-9
Cinc metálico
7440-43-9
Cobre metálico
7440-50-8
Oxido de cromo
1308-38-9
Nitrato de plomo
10099-74-8
Agua Peptonada esteril a pH neutro
----Etanol
64-17-5
Medio de cultivo liquido M-FC
----Hipoclorito de sodio
7681-52-9
Medio de cultivo liquido M-ENDO
----Sulfato ferroso y amonio hexahidratado
7783-85-9
Tabla N°1. Reactivos empleados para la etapa experimental.
TABLA NMP
La siguiente tabla hace referencia a la técnica microbiológica de número más
probable para análisis de aguas:
Tres tubos 10-1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
2
2
2
TABLA DE NMP USANDO TRES TUBOS DE DILUCION
NUMERO DE TUBOS POSITIVOS
Tres tubos 10-2
Tres tubos 10-3
0
0
0
1
0
2
0
3
1
0
1
1
1
2
1
3
2
0
2
1
2
2
2
3
3
0
3
1
3
2
3
3
0
0
0
1
0
2
0
3
1
0
1
1
1
2
1
3
2
0
2
1
2
2
2
3
3
0
3
1
3
2
3
3
0
0
0
1
0
2
NMP/g o Ml
<3
3
6
9
3
6
9
12
6
9
12
16
9
13
16
19
4
7
11
15
7
11
15
19
11
15
20
24
16
20
24
29
9
14
20
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
0
1
1
1
1
2
2
2
2
3
3
3
3
0
0
0
0
1
1
1
1
2
2
2
2
3
3
3
3
3
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
0
1
2
3
26
15
20
27
34
21
28
35
42
29
36
44
53
23
39
64
95
43
75
120
160
93
150
210
290
240
460
1100
> 1100
ANEXO H
CURVAS DE CALIBRACIÓN PARA LA DETERMIANCIÓN DE
PARAMETROS FISÍCO-QUÍMICOS Y METALES
1. Curva de calibración de nitratos (Absorbancia 220 - 275 nm)
PATRON
1
2
3
4
5
6
CONCENTRACION
5,9488
11,8977
17,8465
23,7954
35,693
41,6419
ABSORBANCIA
0,354
0,686
1,027
1,343
1,85
2,045
Tabla 1. Curva de calibración nitratos a 220 nm.
CURVA DE CALIBRACIÓN NITRATOS
Absorbancia
2
1,5
1
y = 0,0476x + 0,133
R² = 0,992
0,5
0
0
10
20
30
40
Concentración (ppm)
Gráfica N° 1. Curva de calibración para nitratos.
1.1. Linealidad de la gráfica
𝐘 = 𝟎, 𝟎𝟒𝟕𝟔𝐱 + 𝟎, 𝟏𝟑𝟑
R² = 0,992
Con la ecuación de la recta determinada por la curva de calibración de los
patrones para nitratos, se determinan las concentraciones para las muestras
problemas establecida en la tabla N°21 por medio de la absorbancia medida, de la
siguiente manera:
Obtención de concentración para la muestra perteneciente al 2 de junio del 2015,
clima lluvioso:
A=1,02
Se reemplaza el valor de la absorbancia obtenida en el valor Y de la ecuación de
la recta quedando así:
(1,02) = 0,0476x + 0,133
Despejando X como la variable perteneciente a la concentración obtenemos:
𝑥=
1,02 − 0,133
= 18,613 𝑚𝑔/𝐿
0,0476
2. Curva de calibración de nitritos (Absorbancia 543 nm)
PATRON
1
2
3
4
5
CONCENTRACION (μg/L)
20
40
60
80
100
ABSORBANCIA
0,008
0,022
0,041
0,061
0,08
Tabla 2. Curva de calibración nitritos.
CURVA DE CALIBRACIÓN NITRITOS
0,1
Absorbancia
0,08
0,06
0,04
y = 0,0009x - 0,0125
R² = 0,9963
0,02
0
0
-0,02
20
40
60
80
Concentracion (μg/L)
Gráfica N° 2. Curva de calibración para nitritos.
100
2.1. Linealidad de la gráfica
y = 0,0009x - 0,0125
R² = 0,9963
Con la ecuación de la recta determinada por la curva de calibración de los
patrones para nitritos, se determina el límite de correlación con un valor de 0,9963
el cual corresponde a un coeficiente positivo debido a su proximidad a la unidad,
indicando que los datos tienden a la linealidad, por medio de la ecuación de la
recta se determina la concentración de las muestras problema analizadas.
Obtención de concentración para la muestra perteneciente al 7 de abril del 2015,
clima lluvioso: A=0,07
Se reemplaza el valor de la absorbancia obtenida en el valor Y de la ecuación de
la recta quedando así: 0,07 = 0,0009x - 0,0125
Despejando X como la variable perteneciente a la concentración obtenemos:
𝑥=
0,07 + 0,0125
= 96,111 𝛍𝐠/𝐋
0,0009
3. Curva de calibración de fosfatos (Absorbancia 880 nm)
PATRON
1
2
3
4
5
6
7
8
9
CONCENTRACION
0,05
0,1
0,5
1
2
4
5
8
10
ABSORBANCIA
0,18
0,19
0,21
0,23
0,26
0,31
0,33
0,38
0,4
Tabla 3. Curva de calibración fosfatos.
CURVA DE CALIBRACIÓN FOSFATOS
0,4
Absorbancia
0,35
0,3
0,25
y = 0,022x + 0,2016
R² = 0,9592
0,2
0,15
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
Concentración (ppm)
Gráfica N° 3. Curva de calibración para fosfatos.
3.1. Linealidad de la gráfica
y = 0,022x + 0,2016
R² = 0,9592
Con la ecuación de la recta determinada por la curva de calibración de los
patrones para fosfatos, se determina el límite de correlación con un valor de
0,9592 el cual corresponde a un coeficiente positivo debido a su proximidad a la
unidad, indicando que los datos tienden a la linealidad.
Obtención de concentración para la muestra perteneciente al 7 de abril del 2015,
clima lluvioso:
A=0,056
Se reemplaza el valor de la absorbancia obtenida en el valor Y de la ecuación de
la recta quedando así:
0,056 = 0,022x + 0,2016
Despejando X como la variable perteneciente a la concentración obtenemos:
𝑥=
0,056−0,2016
0,022
= −6,61 𝑚g/L ≈ 0,05 mg/L
4. Determinación de Cadmio
PATRON
BLANCO
1
2
3
4
CONCENTRACION mg/L
0,00
0,40
0,60
0,80
1,00
ABSORBANCIA ABS
0,0097
0,0640
0,0930
0,1213
0,1453
Tabla 1. Resultados curva de calibración de cadmio.
CURVA DE CALIBRACIÓN DE CADMIO
0,1600
0,1400
Absorbancia
0,1200
0,1000
0,0800
y = 0,137x + 0,01
R² = 0,9994
0,0600
0,0400
0,0200
0,0000
0,00
0,20
0,40
0,60
0,80
1,00
1,20
Concentracion mg/L
Gráfica N° 4. Curva de calibración de cadmio.
5. Determinación Plomo
PATRON
BLANCO
1
2
3
CONCENTRACION mg/L
0,0000
0,2000
0,6000
0,8000
ABSORBANCIA ABS
0,0010
0,0500
0,1270
0,1560
Tabla 52. Resultados curva de calibración de Plomo.
Absorbancia
CURVA DE CALIBRACIÓN DE PLOMO
0,1800
0,1600
0,1400
0,1200
0,1000
0,0800
0,0600
0,0400
0,0200
0,0000
0,0000
y = 0,1935x + 0,0061
R² = 0,9934
0,2000
0,4000
0,6000
0,8000
1,0000
Concentracion mg/L
Gráfica N° 5. Curva de calibración de plomo.
6. Determinación de Cobre
PATRON
BLANCO
1
2
3
4
CONCENTRACION mg/L
0,00
0,40
0,60
0,80
1,00
ABSORBANCIA ABS
0,0003
0,0213
0,0347
0,0473
0,0620
Tabla 6. Resultados curva de calibración de cobre.
CURVA DE CALIBRACIÓN DE COBRE
0,0700
0,0600
Absorbancia
0,0500
0,0400
0,0300
y = 0,0616x - 0,0014
R² = 0,9951
0,0200
0,0100
0,0000
-0,0100
0,00
0,20
0,40
0,60
0,80
Concentracion mg/L
Gráfica N° 6. Curva de calibración de cobre.
1,00
1,20
7. Determinación Magnesio
PATRON
BLANCO
1
2
3
4
5
6
CONCENTRACION mg/L
0,00
0,10
0,20
0,30
0,40
0,50
1,00
ABSORBANCIA ABS
0,0063
0,0417
0,0937
0,1367
0,1773
0,2157
0,4460
Tabla 7. Resultados curva de calibración de Magnesio.
Absorbancia
CURVA DE CALIBRACIÓN DE MAGNESIO
0,5000
0,4500
0,4000
0,3500
0,3000
0,2500
0,2000
0,1500
0,1000
0,0500
0,0000
y = 0,4407x + 0,0022
R² = 0,9991
0,00
0,20
0,40
0,60
0,80
1,00
1,20
Concentracion mg/L
Gráfica N° 7. Curva de calibración de magnesio.
8. Determinación Zinc
PATRON
BLANCO
1
2
3
4
CONCENTRACION mg/L
0,00
0,40
0,60
0,80
1,00
ABSORBANCIA ABS
0,0027
0,0551
0,1093
0,1380
0,1647
Tabla 8. Resultados curva de calibración de Zinc.
Absorbancia
CURVA DE CALIBRACIÓN DE ZINC
0,1800
0,1600
0,1400
0,1200
0,1000
0,0800
0,0600
0,0400
0,0200
0,0000
y = 0,1683x - 0,0003
R² = 0,9853
0,00
0,20
0,40
0,60
0,80
1,00
1,20
Concentracion mg/L
Gráfica N° 8. Curva de calibración de zinc.
9. Determinación Hierro
PATRON
BLANCO
1
2
3
4
CONCENTRACION mg/L
0,0000
0,3000
0,5000
2,0000
2,5000
ABSORBANCIA ABS
0,0010
0,0040
0,0070
0,0280
0,0320
Tabla 9. Resultados curva de calibración de Hierro.
CURVA DE CALIBRACIÓN DE HIERRO
0,0350
Absorbancia
0,0300
0,0250
0,0200
0,0150
y = 0,0129x + 0,0007
R² = 0,9957
0,0100
0,0050
0,0000
0,0000
0,5000
1,0000
1,5000
2,0000
Concentracion mg/L
2,5000
3,0000
Gráfica N° 9. Curva de calibración de hierro.
10.
Determinación Cromo
PATRON
CONCENTRACIÓN (mg/L)
BLANCO
0,0000
ABSORBANCIA (Abs)
0,0116
1
0,0200
0,0903
2
0,0400
0,1813
3
0,0600
0,2739
0,0800
0,359
4
Tabla 10. Resultados curva de calibración de cromo.
CURVA DE CALIBRACIÓN DE CROMO
0,4
Absorbancia
0,3
0,2
y = 4,392x + 0,0075
R² = 0,9993
0,1
0
0,0000
0,0200
0,0400
0,0600
0,0800
Concentración mg/L
Gráfica N° 10. Curva de calibración de cromo.
11.
Determinación de sulfatos.
PATRON
1
2
3
4
5
6
7
CONCENTRACION (ppm)
10
15
20
25
30
35
40
Tabla 3. Curva de calibración sulfatos.
NTU
1,5
5
10,4
15,8
20,9
25,1
30,3
0,1000
NTU
CURVA DE CALIBRACIÓN SULFATOS
40
35
30
25
20
15
10
5
0
y = 1,0191x + 9,1317
R² = 0,998
0
5
10
15
20
25
30
Concentración (ppm)
Gráfica N°11. Curva de calibración para sulfatos.
11.1. Linealidad de la gráfica
𝐘 = 𝟏, 𝟎𝟏𝟗𝟏𝐱 + 𝟗, 𝟏𝟑𝟏𝟕
R² = 0,998
Con la ecuación de la recta determinada por la curva de calibración de los
patrones para sulfatos, se determinan las concentraciones para las muestras
problemas establecida en la tabla N° 47 por medio de la turbidez medida, de la
siguiente manera:
Obtención de concentración para la muestra perteneciente al 7 de abril del 2015,
clima lluvioso:
T=2,35
Se reemplaza el valor de la turbidez obtenida en el valor Y de la ecuación de la
recta quedando así:
(2,35) = 1,0191x + 9,1317
Despejando X como la variable perteneciente a la concentración obtenemos:
𝑥=
2,35 − 9,1317
= −6,65 𝑚𝑔/𝐿
1,0191
ANEXO I
ANALISIS DEL IRCA POR MUESTRA PARA EL AGUA ANALIZADA.
Análisis del IRCA para el 7 de Abril de 2015.
FECHA: 7 DE ABRIL DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,48
1,5
15
6
1,96
0
70
0
310,28
1
0,050
0
0,1922
3
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,0050
0,0050
Fosfatos
mg/L P
1
Hierro
mg/L Fe
1,5
0,1496
Zinc
mg/L Zn
1
0,0410
Magnesio
mg/L Mg
1
0,3620
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
0,1034
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
240
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
240
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 1. Análisis IRCA 7 de Abril de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
51,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟏 + 𝟏, 𝟓 + 𝟑 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟏, 𝟏𝟐%
Análisis del IRCA para el 20 de Abril de 2015.
FECHA: 20 DE ABRIL DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6.53
0
15
6
2,80
15
127
0
330,30
1
0,005
0
0,3589
3
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,005
Fosfatos
mg/L P
1
0,005
0,0030
Hierro
mg/L Fe
1,5
0,0410
Zinc
mg/L Zn
1
0,3620
Magnesio
mg/L Mg
1
0,1309
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
240
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
240
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 2. Análisis IRCA 20 de Abril de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
65
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟔 + 𝟏𝟓 + 𝟏 + 𝟑 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟕𝟑, 𝟎𝟑%
Análisis del IRCA para el 27 de Abril de 2015.
FECHA: 27 DE ABRIL DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6.38
1,5
15
6
1,14
0
65
0
240,22
0
0,005
0
0,1722
3
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,005
Fosfatos
mg/L P
1
0,005
Hierro
mg/L Fe
1,5
0,0030
0,0410
Zinc
mg/L Zn
1
0,3620
Magnesio
mg/L Mg
1
0,1344
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
460
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
460
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 3. Análisis IRCA 27 de Abril de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
50,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟏, 𝟓 + 𝟔 + 𝟑 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟔, 𝟕𝟒%
Análisis del IRCA para el 04 de mayo de 2015.
FECHA: 04 DE MAYO DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6.35
1,5
15
6
1,31
0
72
0
260,23
0
0,050
0
0,0856
0
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,005
Fosfatos
mg/L P
1
0,005
0,0070
Hierro
mg/L Fe
1,5
Zinc
mg/L Zn
1
0
0,3120
Magnesio
mg/L Mg
1
0,1378
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
460
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
460
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 4. Análisis IRCA 04 de Mayo de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
47,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟏, 𝟓 + 𝟔 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟑, 𝟑𝟕%
Análisis del IRCA para el 11 de mayo de 2015.
FECHA: 11 DE MAYO DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,43
1,5
15
6
1,97
0
76
0
330,30
1
23,908
1
0,2678
3
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,005
Fosfatos
mg/L P
1
0,005
0,007
Hierro
mg/L Fe
1,5
Zinc
mg/L Zn
1
0
0,3120
Magnesio
mg/L Mg
1
0,1447
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
460
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
460
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 5. Análisis IRCA 11 de Mayo de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
52,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟏, 𝟓 + 𝟔 + 𝟏 + 𝟏 + 𝟑 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟖, 𝟗𝟖%
Análisis del IRCA para el 18 de mayo de 2015.
FECHA: 18 DE MAYO DE 2016
PUNTAJE DE
PARAMETROS
UNIDADES
RIESGO
pH
Unidades de pH
1,5
Color
UPC
6
Turbidez
UNT
15
Alcalinidad total
mg/L CaCO3
1
Dureza total
mg/L CaCO3
1
Nitratos
mg/L NO3
1
Nitritos
mg/L NO23
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,6900
0
15,0000
6
1,2700
0
124,0000
0
270,2400
0
9,5800
0
0,1944
3
Sulfatos
mg/L SO4-2
1
0,0050
Fosfatos
mg/L P
1
0,0050
Hierro
mg/L Fe
1,5
0,2513
Zinc
mg/L Zn
1
0,0000
Magnesio
mg/L Mg
1
0,0000
Cloro residual libre
mg/L Cl
15
0,3307
Coliformes totales
UFC/100 cm3
15
43
Escherichia coli
UFC/100 cm3
25
23
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 6. Análisis IRCA 18 de mayo de 2016
0
0
0
0
0
0
15
25
49
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟔 + 𝟑 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟓, 𝟎𝟔%
Análisis del IRCA para el 25 de mayo de 2015.
FECHA: 25 DE MAYO DE 2016
PARAMETROS
pH
Color
Turbidez
Alcalinidad total
Dureza total
Nitratos
Nitritos
UNIDADES
UPC
UNT
mg/L CaCO3
mg/L CaCO3
mg/L NO3
mg/L NO2-
PUNTAJE DE RIESGO
1,5
6
15
1
1
1
3
CLIMA CALIDO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,8300
0
15,0000
6
1,3300
0
134,0000
0
210,1900
0
16,9960
1
0,1767
3
mg/L SO4-2
1
0,0050
mg/L P
1
0,0050
mg/L Fe
1,5
0,3774
mg/L Zn
1
0,0739
mg/L Mg
1
0,6876
mg/L Cl
15
0,3307
UFC/100
Coliformes totales
cm3
15
43
UFC/100
Escherichia coli
cm3
25
23
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 7. Análisis IRCA 25 de mayo de 2016
Sulfatos
Fosfatos
Hierro
Zinc
Magnesio
Cloro residual libre
0
0
1,5
0
0
0
15
25
51,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟔 + 𝟏 + 𝟑 + 𝟏, 𝟓 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟕, 𝟖𝟔%
Análisis del IRCA para el 02 de junio de 2015.
FECHA: 02 DE JUNIO DE 2016
PARAMETROS
pH
Color
Turbidez
Alcalinidad total
Dureza total
Nitratos
Nitritos
UNIDADES
UPC
UNT
mg/L CaCO3
mg/L CaCO3
mg/L NO3
mg/L NO2-
PUNTAJE DE RIESGO
1,5
6
15
1
1
1
3
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,7000
0
15,0000
6
1,4300
0
68,0000
0
240,2200
0
18,6130
1
0,2967
3
mg/L SO4-2
1
0,0050
mg/L P
1
0,0050
mg/L Fe
1,5
0,3433
mg/L Zn
1
0,0000
mg/L Mg
1
0,7450
mg/L Cl
15
0,3307
UFC/100
Coliformes totales
cm3
15
1100
UFC/100
Escherichia coli
cm3
25
1100
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 8. Análisis IRCA 02 de junio de 2016
Sulfatos
Fosfatos
Hierro
Zinc
Magnesio
Cloro residual libre
0
0
1,5
0
0
0
15
25
51,5
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟔 + 𝟏 + 𝟑 + 𝟏, 𝟓 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟕, 𝟖𝟔%
Análisis del IRCA para el 08 de junio de 2015.
FECHA: 08 DE JUNIO DE 2016
PARAMETROS
pH
Color
Turbidez
Alcalinidad total
Dureza total
Nitratos
Nitritos
UNIDADES
UPC
UNT
mg/L CaCO3
mg/L CaCO3
mg/L NO3
mg/L NO2-
PUNTAJE DE RIESGO
1,5
6
15
1
1
1
3
CLIMA LLUVIOSO
VALOR
APORTE AL
OBTENIDO
IRCA
6,3000
1,5
15,0000
6
1,2900
0
78,0000
0
280,2500
0
18,5920
1
0,2922
3
mg/L SO4-2
1
0,0050
mg/L P
1
0,0050
mg/L Fe
1,5
0,3405
mg/L Zn
1
0,0000
mg/L Mg
1
0,5120
mg/L Cl
15
0,3307
UFC/100
Coliformes totales
cm3
15
1100
UFC/100
Escherichia coli
cm3
25
1100
SUMATORIA DE PUNTAJES ASIGNADOS
Tabla 9. Análisis IRCA 08 de junio de 2016
Sulfatos
Fosfatos
Hierro
Zinc
Magnesio
Cloro residual libre
0
0
1,5
0
0
0
15
25
53
EL IRCA POR MUESTRA.
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
∑ puntajes de riesgo asignado a las características no aceptables
∗ 𝟏𝟎𝟎
∑ puntajes de riesgo asignados a todas las características analizadas
%𝑰𝑹𝑪𝑨 =
(𝟏, 𝟓 + 𝟔 + 𝟏 + 𝟑 + 𝟏, 𝟓 + 𝟏𝟓 + 𝟐𝟓)
∗ 𝟏𝟎𝟎
(𝟖𝟗)
%𝑰𝑹𝑪𝑨 = 𝟓𝟗, 𝟓𝟓%