Inseminación Artificial en Aves

Inseminación Artificial en Aves
Departamento de Industria Pecuaria
Recinto Universitario de Mayaguez
Héctor L. Santiago, Ph.D.
Investigador Auxiliar
Historia
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1677 - Leeuwenhook
z Observó espermatozoides por primera vez
bajo el microscopio
1780 - Spallenzani
z Perros
z Semen podia fertilizar
z Espermatozoides
z Efecto de temperatura en
espermatozoides
z Efecto del enfriamiento y calentamiento
sobre metabolismo
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1900 - Ivanov
z Rusia
z Desarrolló un programa de IA en caballos
1933
z Desarrolló métodos de colección de semen e
inseminación en caballos, ganado vacuno,
ovejas y cerdos.
1933 - Sorenson
Dinamarca
z Estableció la primera cooperativa de IA
1937 - USA
z Comienzo de IA comercial en USA
1937 -USA
z Primera cooperativa de IA
1939 - USA
z 7 cooperativas de IA
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1960 - Presente
z Consolidación de cooperativas
z Grandes empresas de IA
z Select Sires
z American Breeders Service Goal
1960 – Presente
z IA en pavos
1990
z Aumento en el uso de IA en caballos y
cerdos
Uso actual de IA en USA
Ganado de
Leche
Ganado de
Carne
7 millones
50 %
1.3 millones
3%
Cerdos
20 – 30 %
Pavos
100%
Inseminación Artificial
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Herramienta
Accelerar el mejoramiento genético
Aumentando el diferencial de selección
Un macho altamente seleccionado es
apareado con miles de hembras
Aves
z 10 % superior de ♂
z 40 % superior de ♀
Ventajas del uso de IA
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Ç en el número de ♀/♂ servidas bajo IA cuando
se compara con monta natural
Mantener ♂ de alta calidad
Aumento en presión de selección para razgos
de importancia económica
Rápido mejoramiento genético
Ahorro indirecto en costos de alimentación
z Menor cantidad de ♂
z Confinamiento en jaulas
z Concepto de “Stud Farms” utilizado en pavos
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Mejor garantía de fertilidad en ♀
Siempre habrá un descenso en fertilidad
debido a edad pero la inseminación de todas
las ♀ está asegurada
Se asegura que todas las ♀ están en postura
Capacidad de transportar semen a otras
localidades
Disminuir enfermedades transmitidas
sexualmente
Desventajas
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Costo de labor adicional requerida para la IA de
♀ es mas alto
Necesidad de tener empleados qualificados
manejando los galpones de IA
Labor intesiva, repetitiva, además de ser un
trabajo tedioso y aburrido
Posibilidad de alterar el comportamiento de
apareamiento y anidado de parentales en piso
Percepción pública negativa
En la industria de pollos parrilleros solo se utiliza
en algunas compañias genéticas a nivel de
pedigree
Sistema Reproductor Femenino
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El tracto reproductivo de la gallina es
diferente al de los mamíferos y cada
segmento del tracto reproductivo tiene una
función particular
Compuesto por:
z Ovario
z Oviducto
z Solo el lado izquierdo es funcional
Sistema Reproductor Femenino
Ovario
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Hacinamiento de folículos (1000 - 3000) en
forma de racimo
Folículos inmaduros y maduros
Diámetro fluctúa de 1 - 35 mm
Crecimiento folicular es debido a la
acumulación de ácidos grasos
Orden jerárquico de folículos
FSH – controla el crecimiento folicular
LH – controla la ovulación
Ovario
Jerárquía Folicular
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Oviducto
z Tubo largo y convoluto
z Ocupa gran parte del lado izquierdo de
la cavidad abdominal
z Su extremo anterior se encuentra cerca
del ovario y su extremo posterior
desemboca en la cloaca
z Longitud:
z Gallina: 70 - 80 cm
z Pava: 90 - 115 cm
z Ancho: 1 - 5 cm
Esta compuesto por 5 regiones
z Anatomía: específicas y bien definidas
z Fisiología: función específica
Oviducto
I – Infundíbulo
M – Magno
Is – Istmo
U – Utero
UVA – Unión Uterovaginal
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Infundíbulo
z Atrapar la yema después de la ovulación
z Aproximadamente 15 min
z Lugar donde ocurre la fecundación
Magno
z Mide aproximadamente 13” de largo
z La yema permanece casi 3 h en el
magno
z Lugar donde se secreta la clara y se
deposita alrededor de la yema
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Istmo
z Mide aproximadamente 4” de largo
z La yema con la clara permanece
aproximadamente 1 ¼ de h
z Ocurre la formación de las membranas del
huevo (interna y externa)
Útero
z Mide aproximadamente de 4 a 5” de largo
z La yema, clara y membranas permanecen
aproximadamente de 16 a 21 h
z Lugar donde se produce o se deposita el
cascarón, pigmentos, y cutícula
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Vagina
z El huevo pasa aquí de 0 a 4 horas
z Al momento de la oviposición útero se
revierte a través de la vagina, cloaca y
ano para expulsar el huevo.
Cloaca
Ano
El intérvalo de ovulación entre 2 huevos
sucesivos es de 24 a 26 h
Fotoperíodo y Regulación Hormonal del
Proceso de Ovulación en Aves
Luz
Hipotálamo
(GnRH)
Pituitaria Anterior
LH
FSH
Ovario
Folículos
Ovulación
Progesterona
Nidos de Espermatozoides
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Nidos de espermatozoides
z Sperm nests
z Sperm Storage Tubules
Función
z Almacenamiento de espermatozoides en el
tracto reproductivo femenino
Localización
z Unión útero-vaginal
z Infundíbulo
Capacidad de mantener espermatozoides
viables por 30 d luego de IA o monta natural
Nidos de Espermatozoides
Carácteristicas Sexuales
Secundarias
Sistema Reproductor Masculino
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Consiste de 2 testículos
Localizados en el área dorsal de la cavidad
abdominal, justo alfrente de los riñones
Testículos en aves son grandes, relativos al
peso corporal, comparados a los mamiferos
Como consequencia de su localización intraabdominal, estos funcionan a la temperatura
corporal cerca de 41 a 42 C en especies
domésticas
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Regulación de temperatura
Enfriamiento de los testículos:
Flujo de aire de los sacos aéreos
Plexo panpiniforme
z Red de vasos sanguineos que circula
alrededor de los testiculos
No poseen vesícula seminal, glandulas
bulbouretrales o prostata
El órgano copulador (phallus) es pequeño y
no funciona como órgano intromisor
Proceso de Eyaculación
Vista Lateral de la Cloaca y la
Parte Interna del Ducto Deferente
Región Copuladora
(Gallo)
Phallus Palmipedos
(Patos y Gansos)
Colección de Semen y IA
Consideraciones ♂
Recorte de plumaje alrededor de la
cloaca
z Deben ser entrenados
z Masajeados de 7-10 d para facilitar la
eyaculación
z Alimentar después de la colección de
semen para reducir la contaminación
fecal
z Control peso corporal
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Consideraciones ♀
75% ♀ en 75% producción
z Inseminar en la tarde para minimizar el
número de h con huevos en el tracto
reproductivo
z Obstruye el paso de semen (reflujo)
z Semen debe ser colectado en la tarde
z Comúnmente utilizado en 45 min para
maximizar su viabilidad
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Preservación de Semen
Uso de semen congelado
z Problemas para mantener calidad
z Logrado grandes avances en
cryoprteservación
z En pollos se ha obtenido niveles de
fertilidad ≥ 90% inseminando con
semen congelado en nitrógeno líquido
z Sin embargo, en pavos raramente son
obtenidos niveles ≥ 10%
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Diluyentes o Extensores de semen
Utilizados comúnmente en aves
z El mas común es una solución de 1%
NaCl
z La mayoría son mezclas de
amortiguadores de diferentes sales
z Razón de dilución comúnmente
utilizada es de 1:4 (semen:diluyente)
z Inseminar de 30 a 45 min luego de
colectar el semen
z
Permiten almacenar semen hasta por
24 h sin ningún effecto en fertilidad
z Fertilidad excelente ha sido obtenida
con semen almacenado por 6, 12, 18 y
24 h
z La dilución de semen aumenta la razón
de ♂:♀
z Monta natural 1:10 (♂:♀)
z IA con semen diluido 1:20 (♂:♀)
z
Evaluación de Fertilidad
z
Evaluación de semen
z Tinte
de vivos y muertos “Live & Dead”
z Tintes de Eosina y Nigrosina
z Vivos – N0 tinte
z Muertos – Color rosado
Contaje de espermatozoides
z Hemacitómetro
z Hematocríto
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z Cell
Pack Volume
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Mobilidad
z Procedimiento
“Accudenz”
z Solución viscosa
z Spectrofotómetro
z Mide paso de luz
z
Interacción de espermatozoide:óvulo
z Contaje
de espermatozoides entre el
espacio de las membranas vitelinas
z Contaje de orificios en la membrana
vitelina
Membrana Vitelina
Pollos: 50 / mm2
Pavos: 100/ mm2
Contaje de Espermatozolides
Atrapados Entre las Membranas
Vitelinas
Determinación de Fertilidad en
Huevos Frescos
Determinación de Fertilidad en
Huevos Incubados
Preguntas ?????