TUCURAS 2009 - Protocolo metodológico

Protocolo Metodológico para el Monitoreo de Tucuras
Guía Orientativa
Para productores, profesionales y técnicos vinculados con
la actividad agropecuaria.
Dichroplus elongatus
María Laura de Wysiecki1 y Sandra Torrusio2
1
Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores (CEPAVE), (CCT-La PlataCONICET- UNLP), Calle 2 n° 584, 1900 La Plata. Tel.: 0221 4233471, int. 16. Email: [email protected].
2
Fac. Cs. Ns. y Museo (UNLP) y Comisión Nacional de Actividades Espaciales
(CONAE), Avda. Paseo Colón 751, 1063 Buenos Aires. Tel.: 011 4331 0074, int 288.
E-mail: [email protected]
1. CONDICIONES DE MUESTREO.
Las condiciones ideales (tanto ambientales como logísticas) para la realización del
muestreo son:
• Ser realizados en días de sol y sin viento, durante la época estival
principalmente, pudiendo comenzar el monitoreo a mediados de la primavera.
El horario ideal es entre las 9:30 y 18:30 horas siempre que la temperatura
sea superior a los 23°C
• Ser realizados por las mismas personas.
• Los sitios de muestreo deben estar distribuídos a lo largo de distintas
coberturas vegetales (principalmente campos naturales, pasturas implantadas
con distintos grados de disturbios y cultivos) y esa distribución debe ser
homogénea en el partido a monitorear, abarcando varios sitios con coberturas
similares y ubicados en sectores diferentes (por ej. 4 pasturas distribuídas al
norte, sur, este y oeste, lo mismo para 4 cultivos de soja, 4 campos naturales,
etc.).
• Para un adecuado diseño de muestreo será de utilidad contar con imágenes
satelitales actuales para identificar las diferentes coberturas vegetales e
identificar el hábitat de los acridios en cuestión. Una vez acordado los puntos
a muestrear ubicarlos sobre un mapa (catastral por ejemplo) y/o tomar sus
coordenadas con un GPS. Esta localización, además, resultará importante
para proceder a delimitar las áreas a controlar y/o tratar llegado el momento.
2. ESTIMACIÓN DE LA DENSIDAD DE TUCURAS (individuos/m2).
Método de los aros basado en el de Onsager y Henry (1977).
Cada muestra o sitio de muestreo de 1 m2 consiste en el promedio de tucuras
observadas a lo largo de 3 (o 4) transectas de 10 aros cada una, ubicados
cada 5-8 metros. Cada aro tiene una superficie de 1/10 m2 o 0,1 m2 (35,68 cm
de diámetro).
Elementos necesarios: aros de metal de 35,68cm de diámetro (mínimo 30),
puntero de madera de 1,20m de largo, estaca pintada o con señalador, planillas de
campo.
2.a Pasos para proceder a la estimación de densidad:
1) Distribuir las transectas en el campo, lo suficientemente separadas una de otra
(más de 10 metros), a fin de registrar la heterogeneidad del sitio.
2) Número ideal de transectas por sitio: 3 (30 aros) o 4 (40 aros).
3) Los aros deben colocarse en el campo el día anterior.
4) Señalar los aros con estacas para facilitar la ubicación en el campo. Fig.1a.
2
5) Una vez ubicados, el monitoreador se debe colocar frente al inicio de la hilera de
aros donde se van a hacer los conteos, y avanzar hasta ubicarse a 1,5 m de
distancia del aro a contar. Fig.1b.
6) Remover con un puntero (1,20m de largo) la vegetación incluída en cada aro y
contar las tucuras que saltan desde el mismo. Fig. 1c.
7) Anotar el número de insectos que saltaron por aro en la planilla correspondiente
(Ver planilla de muestra). Hacer el conteo de todos los aros.
8) Finalmente, calcular el promedio de tucuras por aro, y estimar la densidad
(número de individuos /m2).
Si el conteo lo hacen dos personas, mientras una cuenta en cada aro, la otra puede
anotar, pero siempre esta última debe caminar atrás del que cuenta para no
espantar las tucuras previamente.
b
c
Fuente: Collection Acridologie Opérationnelle n° 4
a
Fig. 1: a) Aro de metal con varilla o
estaca sobre la vegetación. b) y c)
Monitoreador en el campo enfrentado
al aro, contando con el puntero y en
la planilla las tucuras que saltan del
mismo.
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Modelo de Planilla de Campo para la estimación de densidad de tucuras.
Partido:
Campaña: Octubre 2009.
Punto N°:
Fecha:
Establecimiento:
Propietario:
Cobertura:
Foto N°:
ARO 1
ARO 11
ARO 21
ARO 2
ARO 12
ARO 22
ARO 3
ARO 13
ARO 23
ARO 4
ARO 14
ARO24
ARO 5
ARO 15
ARO 25
ARO 6
ARO 16
ARO 26
ARO 7
ARO 17
ARO 27
ARO 8
ARO 18
ARO 28
ARO 9
ARO 19
ARO 29
ARO 10
ARO 20
ARO 30
Densidad promedio por aro:
Densidad de individuos/m2:
Observaciones:
4
3. ESTIMACIÓN DE LA RIQUEZA ESPECÍFICA Y ABUNDANCIA
RELATIVA DE LAS TUCURAS. Muestreo con red entomológica.
Elementos necesarios: Red entomológica: aro de acero de 5,5 mm, de 42 cm de
diámetro y 75 cm de profundidad, mango de 1,20 m (Fig.2 a) y b)); bolsas plásticas
(20cm x 35cm aprox.); marcador indeleble; conservador tipo heladera de campo.
3.a. Pasos a seguir para el proceso de estimación de riqueza y
abundancia específica:
1) El monitoreador se ubica en una zona aledaña a la de los aros y delimita
visualmente 2 transectas en diferentes direcciones, a fin de registrar la
heterogeneidad del sitio de muestreo.
2) A lo largo de cada una de las transectas, se dan 100 golpes de red y se colectan
las tucuras y se guardan en bolsas de nylon previamente etiquetadas (número
del sitio, fecha). Cada golpe de red consiste en un arco de 180º a través de la
vegetación. Fig. 3. a, b y c.
3) Si hay muchas tucuras, a fin de no maltratar a los individuos, se dan 50 golpes y
se guardan en las bolsas plásticas (Fig. 2d) y luego se hacen nuevamente 50
golpes y se guardan y asi sucesivamente. Las tucuras se guardan en la misma
bolsa o en bolsas diferentes etiquetadas, de acuerdo a la cantidad que se
colecte.
4) Hay que tratar que la bolsa no quede con aire (inflada).
5) Una vez finalizado el muestreo, se guardan en una caja a oscuras o en frío, si es
posible. Las muestras serán analizadas en laboratorio (determinación de especie
y estado fenológico).
Fig.2: Detalles de la red entomológica:
aro de acero 5,5mm, diámetro del aro
42cm, profundidad 75cm, mango 1,20m.
5
* En total se hacen 2 transectas de 100 golpes cada una, en cada sitio de
muestreo (200 golpes por sitio).
* Es importante identificar en cada bolsa plástica el sitio de muestreo, la fecha
y la transecta, se si utilizara más de una bolsa.
* Hay que mantener las bolsas en freezer, hasta su análisis en el laboratorio.
a
b
Fuente: Collection Acridologie Opérationnelle n° 4
c
d
Fig. 3: a), b) y c) Pasada de red en vegetación baja. d) Extracción de insectos
de la red y colocación en bolsas plásticas rotuladas.
6
4. TABLA ORIENTATIVA PARA EL SEGUIMIENTO ACAMPO DE LOS
DISTINTOS ESTADOS DE DESARROLLO DE TUCURAS.
Esta tabla es a modo de guía, para estimar cronológicamente los distintos estadíos
ninfales de las tucuras. Se consideran solo los estadíos que se hacen visibles a
simple vista en el campo (mosquita, saltona y adulto). El pasaje de un estado al
siguiente es estimativo (7 a 10 días), dependiendo principalmente de las condiciones
climáticas, de la disponibilidad de alimentos y del ciclo de vida de las especies
presentes, entre otros factores.
Cada simbología se corresponde con el avance de estado de desarrollo.
Por ej. si el Día 1 fueron detectadas mayoritariamente Mosquitas III representadas
por:
, entre los Días 8-11, alcanzarán el estado de Saltona IV (igual
símbolo para esa fecha, en la fila siguiente).
Estados
ninfales
reconocibles
fácilmente a
campo
M
II
O
S
Q
U
III
I
T
A
S
IV
A
L
T
V
O
N
A
Dia 1
Dia 8-11
Día 15-18
Día 24-27
Día 31-34
Adulto
Elaborado por: Sandra Torrusio y M. Laura de Wysiecki.
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Bibliografía
CARBONELL, C. S., M.M. CIGLIANO & C.E. LANGE. 2006. Especies de
Acridomorfos (Orthoptera) de Argentina y Uruguay / Acridomorph (Orthoptera)
Species of Argentina and Uruguay. CD ROM. Publications on Orthopteran Diversity.
The Orthopterists’ Society at the “Museo de La Plata”, Argentina. ISBN 987-05-05465.
Collection Acridologie Opérationnelle n° 4. Ministere des Affaires Etrangeres des
Pays-Bas et CIRAD/PRIFAS (France). 1989.
ONSAGER, J.A. & J. E. HENRY. 1977. A method for estimating the density of
rangeland grasshoppers (Orthoptera, Acrididae) in experimental plots. Acrida 6:
231-237.
LANGE, C.E., M. M. CIGLIANO & M. L. DE WYSIECKI. 2005.
Los acridoideos (Orthoptera: Acridoidea) de importancia económica en la Argentina.
En: Barrientos Lozano, L. y P. Almaguer Sierra (Eds.), Manejo integrado de la
langostacentroamericana (Schistocerca piceifrons piceifrons, Walker) y acridoideos
plaga en América Latina. Instituto Tecnológico de Ciudad Victoria, Tamaulipas,
México: 93-135.
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