Técnicas de necropsia en cerdos

Técnicas de necropsia en cerdos
Laboratorios Virbac México, presenta su evento Virbactual 2008, dirigido a profesionales
especializados y responsables de la producción en empresas porcinas.
Técnicas de Necropsias en cerdos, impartido para la identificación de las causas que
provocan baja productividad de los animales y apoyo para determinar su tratamiento.
MSc. Edgardo Patricio Ortiz Muñoz
Patología Animal, Universidad Austral de Chile
Profesor coordinador de carrera, Medicina Veterinaria y Zootecnia
Universidad de Guadalajara, CU Altos, Tepatitlan, Jalisco
El diagnóstico preciso y rápido de las enfermedades que
afecten a los animales en un plantel porcícola, adquiere cada vez más
importancia dentro del campo de trabajo del Médico Veterinario.
Por lo tanto, la necropsia es la disección anatómica, ordenada y sistemática
de un cadáver. Está constituida por una serie de pasos a seguir con el
objetivo de determinar la, o las causas involucradas en el proceso patológico
que originó la muerte del animal.
...continúa en el interior
MVZ. Jorge Galaz González
Asesor técnico
División Porcinos
Laboratorios Virbac México S.A. de C.V.
Técnicas de necropsia en cerdos
..viene de portada
Se debe realizar lo más pronto posible para evitar la presentación de
cambios post mortem que impedirán un diagnóstico adecuado según las
lesiones de la enfermedad que causó la muerte.
En gran número de explotaciones porcícolas, los animales que mueren
son eliminados sin que se les practique un estudio post-mortem, que
busque conocer la posible causa de muerte. Animales con baja eficiencia
productiva son generalmente eliminados de la piara y enviados al rastro,
sin realizarles estudios o toma de muestras con el objetivo de demostrar
o determinar el motivo de su baja eficiencia productiva.
La mayoría de las enfermedades tienen un comportamiento subclínico,
teniendo como principales causas: Fallas en el manejo, deficiencias
nutricionales, medidas de higiene y de prevención de enfermedades
inadecuadas. Éstas permanecerán ocultas, hasta que se estudien los efectos
que producen en los animales.
Antes de iniciar la necropsia, se deben obtener datos acerca de la Historia
Clínica del caso a estudiar; Incorporar datos recientes y remotos, referente
al caso en cuestión, además de los problemas que se han presentado con
anterioridad. Obtener información de situaciones similares, tratamientos
o medidas para la solución del problema, resultado de diagnóstico de
muestras enviadas al laboratorio, etc.
La necropsia se lleva a cabo lo más cercano a la muerte y/o sacrificio del
animal, para que las alteraciones post mortem como la putrefacción y la
autolisis, entre otros, no interfieran con la interpretación de los cambios
macroscópicos y microscópicos. Se debe tener en cuenta la presencia de
estos cambios post-mortem que nos pueden indicar el tiempo que lleva
muerto el animal. Entre éstos se destacan:
Rigidez (rigor mortis).
Temperatura.
Opacidad corneal.
Pérdida de la turgencia ocular
Presencia y magnitud de signos de descomposición
(Manchas abdominales verdes, por ejemplo).
Publicación Trimestral de Actualización Científica y Tecnológica
No. 15 Guadalajara Jal., Méx. Realiza LABORATORIOS VIRBAC MÉXICO S.A. de C.V.
División Cerdos y Aves
La necropsia no es la única forma de llegar a un diagnóstico definitivo, por lo
que se hace necesario tomar muestras para realizar examen histopatológico,
microbiológico, virológico, parasitológico, toxicológico, etc., las cuales deben
ser obtenidas de manera correcta.
Para llevar a cabo la necropsia, se requiere
instrumental mínimo:
Cuchillos
Pinzas de disección anatómica y otra con
dientes de ratón.
Tijeras rectas y curvas.
Hacha.
Chaira .
Costótomo o pinzas para podar .
Protocolo de necropsia
La colocación del animal puede variar. Generalmente en cerdos se utiliza la
posición decúbito dorsal para animales jóvenes (lactantes o de transición)
o de lado derecho cuando son de pesos mayores a 50 kilos (optativo).
Una vez colocado el cadáver en la posición elegida, se realiza el examen
externo, que incluye:
1 Examinar la piel para identificar presencia de parásitos externos o lesiones,
estado de hidratación, condición corporal, coloraciones anormales, etc.
2 Examinar orificios naturales (color e integridad de las mucosas, presencia
de secreciones anormales).
3 Hacer incisión por la línea media, desde el extremo anterior de la mandíbula hasta el ano.
4 Retirar la piel cortando el plexo axilar y de región inguinal del lado
izquierdo. En el miembro posterior se desarticula la unión coxofemoral y
se coloca el miembro en posición vertical al cuerpo. Se repite en el lado
derecho, si fuese necesario.
5 Se deben observar 7 tipos diferentes de tejidos:
1. Sangre
2. Tejido subcutáneo
3. Músculo
4. Nódulos linfáticos
5. Articulaciones
6. Huesos y médula ósea.
El examen de cada uno de ellos, nos podrá revelar o indicar las posibles
causas de muerte.
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6. Abertura de la cavidad abdominal.
Se corta la pared abdominal en la parte más dorsal
de la última costilla o cerca de la apófisis xifoidea del
esternón y se continúa el corte con dirección dorso
caudal hasta la sínfisis púbica.
7 Observar la posición de las vísceras y características de
los líquidos presentes.
8. Abertura de la cavidad torácica. Remover la pared
costal izquierda realizando una incisión a nivel de las
articulaciones costocondrales y parte más dorsal de
las costillas y se retira todo el flanco.
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Observar la lengua dorsal, lateral y ventralmente.
12 Cortar el esófago en toda su longitud y desprender
del conjunto de órganos.
13. Cortar de la misma forma la laringe, tráquea,
bronquios hasta llegar a los bronquíolos.
14 Cortar y desprender el pericardio.
15 Examinar el corazón. Desprender el corazón de las
demás vísceras. Cortar el ventrículo derecho a lo
largo del tabique cardíaco desde el ápice y pasar a la
aurícula derecha hasta la vena cava.
16.El ventrículo izquierdo se abre en igual forma,
continuando el corte hacia la arteria Aorta.
9. Desprender la lengua, tráquea, esófago y vísceras
torácicas. Previamente se deben cortan las inserciones
musculares a nivel mandibular de la lengua, desarticular
el hueso hioides e ir cortando y traccionando caudalmente 17 Examinar el epicardio, endocardio, válvulas y
la lengua.
vasos sanguíneos.
Cortar las inserciones del cuello y torácica, extrayendo
finalmente todo el conjunto de vísceras (incluye pulmones 18 Examen de los órganos de la cavidad abdominal.
y corazón).
19. En el caso de los cerdos el aparato digestivo se
10. Examen de los órganos de la cavidad torácica.
extrae “in toto” e “in situ”. Se realiza una ligadura en
el esófago a su llegada al estómago y la otra a nivel
del recto.
Posteriormente, se desprenden de sus inserciones con
la parte dorsal de la cavidad, permitiendo retirar el
estómago y las asas intestinales en forma conjunta.
imagenes en la siguiente página
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imagenes del punto 19.
26.Desprender los riñones de la fascia retroperitoneal y
descapsularlos. Hacer un corte longitudinal y examinar
la corteza, médula, pelvis y uréteres.
20 Cortar el estómago a lo largo de la curvatura mayor.
Lavar con agua y examinar la mucosa.
21. Desprender el bazo y examinar la superficie.
Hacer cortes y observar consistencia de la pulpa roja y
tamaño de folículos linfoides.
22. Desprender el hígado. Determinar la viabilidad del
conducto colédoco haciendo presión sobre la vesícula
biliar y observar la salida libre de bilis en la primera
porción del duodeno.
Cortar longitudinalmente la vesícula biliar, los conductos
biliares y los vasos sanguíneos hepáticos. Además,
realizar varios cortes en el hígado.
23 Desprender totalmente los intestinos delgado y grueso
de sus mesenterios, dejándolos rectos y extendidos para
abrirlos longitudinalmente.
Observar la presencia de parásitos y lesiones.
27 Extraer las vísceras pélvicas, que incluyen urogenitales y digestivas. Para esto, se corta la pelvis por
debajo del acetábulo y sínfisis púbica.
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Examen de los órganos de la cavidad pélvica.
29 Abertura de la cabeza. Desprender la piel y desarticular la unión atlanto-occipital. Hacer tres incisiones
en la cavidad craneana utilizando como referencia el
foramen magnum.
Hacer dos incisiones en dirección anterior, las cuales se
unirán por detrás de las cavidades orbitarias, para extraer posteriormente la porción ósea seccionada.
24.Abertura de la cavidad pélvica.
25 Examinar las glándulas adrenales previo a extraer
los riñones.
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30. Examen del cerebro.
31 Si se sospechan de problemas nerviosos y/o neurológicos. Se debe remover la médula espinal, por lo que
es necesario poner al animal en decúbito ventral.
32 Cortar con sierra el cuerpo de las vértebras hasta
descubrir la médula espinal.
33 Cortar las raíces de los nervios espinales y extraer
la médula espinal.
Envío de Muestras
El envío de las muestras para su análisis en el laboratorio es un paso fundamental para llegar a un diagnóstico
certero. La toma de muestras se debe realizar durante
la necropsia. Este hecho toma mayor relevancia cuando
se solicita realizar estudios microbiológicos.
Se debe incluir un documento con la historia clínica de
la granja y las sospechas del problema. También debe
incluir los exámenes a realizar en el laboratorio de diagnóstico, teléfono y dirección de contacto del Médico
Veterinario o persona que realiza el envío, y listado de
las muestras remitidas. La toma de muestras se debe
iniciar con el aparato respiratorio.
En general, se recomienda tomar muestras de aparato
digestivo después de haber tomado muestras (para
el estudio microbiológico) de otros órganos o tejidos,
para evitar su contaminación. Una vez realizada esto, se
recomienda seleccionar las muestras para los estudios
que se consideren necesarios para llegar al diagnóstico
definitivo.
I. Estudio Bacteriológico:
Tomar muestras antes de 3 a 6 horas de la muerte.
5
Deben ser tomadas asépticamente con el uso de material
estéril o desinfectarlo al momento de tomar la muestra.
De preferencia antes de cualquier tratamiento.
Alternativamente se pueden utilizar hisopos para la
toma de muestras. Refrigerarla de inmediato (es ideal
la utilización de neveras portátiles cuando se realizan
necropsias). Usar bolsas plásticas. Enviar dentro de las
2-24 horas de colectadas. No congelar ya que esto ocasiona la muerte de las bacterias.
II.- Estudio Histopatológico:
El grosor de la muestra no debe ser mayor a 0.5 cm y
debe incluir zona normal y zona afectada.
Se debe fijar en formol al 10% por 24 horas (1 parte
de formol por 9 partes de agua destilada). La muestra
debe estar inmersa en el frasco totalmente. Utilizar
contenedores de plástico con cierre hermético.
Mantener una proporción tejido: formol aprox. de 1:510. No necesita refrigeración para el envío al laboratorio correspondiente. No congelar bajo ningún concepto
(generación de artefactos que no permitirán un estudio
microscópico adecuado).
III.- Estudio Virológico:
La muestra dependerá del tipo de lesión que se observe
y de la enfermedad que se pretende diagnosticar. No es
necesario tomarlo asépticamente. Usar bolsas plásticas
y congelar.
IV.- Estudio Parasitológico:
Para análisis coprológico. No precisa refrigeración ni
congelación. Emplear un recipiente hermético. Tomar al
10% de los animales por categoría o edad.
Para cultivos bacteriológicos, las muestras deben refrigerarse lo más pronto posible desde el momento de su
obtención, no congelar y considerar el mínimo tiempo de
transporte. Recoger directamente del recto con guante o
bolsa de plástico.
V.- Estudio Toxicológico:
Alimentos, contenido gástrico u órganos (estómago,
intestino, hígado). Deben ser colocadas en bolsas de
papel o frascos. Refrigerar o congelar para su envío
al laboratorio.
V.- Estudio de Raspados cutáneos:
Permiten el diagnóstico de ectoparásitos (sarnas), infecciones bacterianas e
infecciones fúngicas por dermatofitos (tiñas). En el caso de áreas depiladas,
costrosas o escamosas, la muestra debe tomarse raspando suavemente con la
hoja de un bisturí estéril en los bordes del área, tomando pelo, raspado de piel
y profundizando hasta que sangre.
Para tomar muestras de un absceso cutáneo es necesario abrir y obtener parte
del contenido purulento con un hisopo estéril de la pared interna del absceso.
Previo a la toma de muestras cutáneas se debe limpiar la piel y desinfectarla
eliminando posteriormente los restos de desinfectante. Se pueden enviar al
laboratorio en un contenedor estéril y cerrado.
VI.- Estudios de sangre:
La sangre entera se emplea para realizar cultivos bacterianos o análisis bioquímicos y el suero para realizar análisis serológicos (detección de anticuerpos) y químicos. La sangre debe conservarse refrigerada a 4º, y debe ser
llevada al laboratorio preferiblemente en las 24 h siguientes a su extracción.
Nunca congelarse. Para la obtención de suero, debe permitirse que la sangre
coagule.
Para maximizar el volumen de suero recogido, o para conservar la muestra un
tiempo antes de enviarla al laboratorio, dejar el tubo inclinado o invertido a
temperatura ambiente un mínimo de 30 minutos y luego se retira el coágulo
pasando el suero a un tubo limpio.
BIBLIOGRAFÍA
1.- Carrasco, Librado. 2008. La necropsia en cerdos. Revista SUIS N° 1, abril-junio, págs. 70-87.
2.- Comité Estatal para el Fomento y Protección Pecuaria del Estado S.C. Laboratorio de Patología
Animal. 2007. Manual de Toma y Envío de Muestras
3.- EXOPOL. Toma de muestras en Porcinos. www.exopol.com
4.- Joaquím Segalés y Mariano Domingo. 2003. La necropsia en el ganado porcino: Diagnóstico
anatomopatológico y toma de muestras.
5.- Pig Respiratory diseases diagnosis: an integral approach. Laboratorio Virbac.
6.- Streptococcus suis Monografía. Guy-Pierre Martineau. Laboratorio Virbac.
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Lote 30, Manzana I
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