PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA FACULTAD DE CIENCIAS CARRERA MICROBIOLOGIA INDUSTRIAL VALORACIÓN DE LA CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL PRODUCTO EN PROCESO EN UNA PLANTA PRODUCTORA DE BEBIDAS ALCOHÓLICAS MARIA PAULA TORRES TORRES PROYECTO DE TRABAJO DE GRADO Presentado como requisito parcial Para optar al titulo de Microbiólogo Industrial BOGOTA, D.C Julio 19 de 2007 1 VALORACIÓN DE LA CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL PRODUCTO EN PROCESO EN UNA PLANTA PRODUCTORA DE BEBIDAS ALCOHÓLICAS MARIA PAULA TORRES TORRES APROBADO ___________________________ Olga Lucía Mondragón Flórez Microbióloga DIRECTORA _____________________ ______________________ Jennifer Alejo Adriana Páez Microbióloga Microbióloga JURADO JURADO BOGOTÁ, D.C. Julio 19 de 2007 2 VALORACIÓN DE LA CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL PRODUCTO EN PROCESO EN UNA PLANTA PRODUCTORA DE BEBIDAS ALCOHÓLICAS MARIA PAULA TORRES TORRES ______________________________ _________________________ Dra. Ángela Umaña Muñoz. M.Phill Dr. Luís David Gómez. MSc. Decana académica Director de carrera BOGOTÁ, D.C. Julio 19 de 2007 3 NOTA DE ADVERTENCIA “La Universidad no se hace responsable por los conceptos emitidos por sus alumnos en sus trabajos de tesis. Solo velará por que no se publique nada contrario al dogma y a la moral católica y por que las tesis no contengan ataques personales contra persona alguna, antes bien se vea en ellas el anhelo de buscar la verdad y la justicia”. Artículo 23 de la Resolución N° 13 de Julio de 1946 4 DEDICATORIA Este trabajo está dedicado a Dios por poner en mi camino cada etapa de mi vida en el momento y en el lugar adecuado. A mis papás Guillermo y Patricia, por haberme brindado toda su sabiduría, su amor y sobre todo su apoyo incondicional en todo momento y en todas las decisiones que he tomado y por haber realizado grandes esfuerzos a lo largo de toda mi carrera para que pudiera ser una gran profesional; a mi hermana Catalina por su amor, consejos y apoyo brindado a tiempo; a mi familia en general por ser guías a lo largo de este recorrido; a Janeth Arias por su amistad y asesoría para la realización de este trabajo; a mis amigos por la paciencia y ayuda que me dieron en todo momento; a Olga Lucía por su apoyo y amistad incondicional para que terminará con éxito los últimos semestres de mi carrera y finalmente a cada una de las personas que de alguna manera llegaron a mi vida en diferentes circunstancias llenándome de alegría, amor y fortaleza para finalizar con éxito esta etapa de mi vida. 5 TABLA DE CONTENIDO Pág. 1. Introducción…………………………………………………………………..1 2. Marco Teórico………………………………………………………………..3 2.1. Levadura………………………………………………………………….3 2.1.1. Levadura cervecera……………………………………………………..3 2.1.1.2. Morfología (Forma) y composición celular………………………….3 2.1.1.3. Composición de la célula de la levadura……………………………4 2.1.1.3.1. Proteínas……………………………………………………………..5 2.1.1.3.2. Ácidos nucleicos……………………………………………………..5 2.1.1.3.3. Paredes celulares…………………………………………………...5 2.1.1.3.4. Membranas…………………………………………………………..6 2.2. Crecimiento y Multiplicación celular…………………………………...6 2.2.1. Curva de crecimiento microbiano……………………………………....6 2.2.1.1. Fase de adaptación……………………………………………………7 2.2.1.2. Fase logarítmica……………………………………………………….8 2.2.1.3. Fase estacionaria………………………………………………………9 2.2.1.4. Fase de muerte………………………………………………………...9 2.3. Reproducción de la levadura……………………………………………...9 2.3.1. Reproducción Sexual (Meiosis)………………………………………...9 2.3.2. Reproducción Asexual (Mitosis)………………………………………10 2.3.2.1. División celular………………………………………………………..10 2.3.2.2. Esporas vegetativas………………………………………………….10 2.3.2.3. Gemación……………………………………………………………..10 2.3.2.3.1. Reproducción por Gemación……………………………………..10 2.3.2. Factores que intervienen en la reproducción de la levadura………11 2.3.2.1. Oxígeno………………………………………………………………..11 6 2.3.2.2. Temperatura…………………………………………………………..11 2.3.2.3. Composición del mosto (sustrato nutritivo)………………………..11 2.4. Floculación de la levadura………………………………………………11 2.4.1. Hidrofobosidad………………………………………………………….12 2.4.2. Potencial Zeta…………………………………………………………..12 2.4.3. Interacción proteínas – azúcares……………………………………..12 2.4.4. Factores que influyen en la floculación………………………………12 2.5. Mutación de la levadura………………………………………………….13 2.5.1. Mutaciones más comunes en el proceso cervecero………………..13 2.5.1.1. Floculación…………………………………………………………….13 2.5.1.2. No asimilación de la maltotriosa…………………………………....13 2.5.1.3. Precipitación temprana………………………………………………13 2.5.1.4. Respiración deficiente……………………………………………….13 2.6. Levaduras salvajes……………………………………………………….14 2.7. Metabolismo de los carbohidratos………………………………………14 2.7.1. Glucólisis………………………………………………………………..15 2.7.2. Ciclo de Krebs………………………………………………………….18 2.8. Bacterias lácticas como contaminantes……………………………..20 2.8.1. Metabolismo Homofermentativo y Heterofermentativo…………….20 2.8.2. Requerimientos nutricionales de bacterias lácticas y subproductos. 2.8.2.1. Nitrógeno……………………………………………………………23 2.8.2.2. Oxígeno………………………………………………………………..23 2.8.2.3. Subproductos que pueden afectar la calidad del producto……...23 2.9. Factores que afectan el rendimiento del alcohol…………………...24 2.9.1. Cambios de pH durante la fermentación…………………………….24 2.9.1.2. Absorción de bases por la levadura………………………………..25 2.9.2. Producción de ácidos………………………………………………….25 2.9.3. Floculación de la levadura…………………………………………….26 2.10. Proceso de elaboración de la cerveza………………………………27 2.10.1. Molienda………………………………………………………………..27 2.10.2. Proceso en Pailas……………………………………………………..28 2.10.3. Filtración del Mosto……………………………………………….......28 7 2.10.4. Ebullición del Mosto………………………………………………......29 2.10.5. Enfriamiento del Mosto……………………………………………….30 2.10.6. Fermentación………………………………………………………….31 2.10.6.1. Principales transformaciones que tiene lugar durante la fermentación……………………………………………………………………33 2.10.6.1.2. Consumo de oxígeno…………………………………………….33 2.10.7. Maduración.……………………………………………………………35 2.10.7.1. Dos etapas………………………………………………………..…36 2.10.7.2. Fermentar hasta el extracto límite………………………………...36 2.10.8. Filtración………………………………………………………….…….38 2.10.9. Envasado………………………………………………………………39 3. Justificación………………………………………………………………40 4. Objetivos del proyecto…………………………………………………..41 4.1. Objetivo general…………………………………………………………..41 4.2. Objetivos específicos……………………………………………………..41 5. Materiales y Métodos…………………………………………………...42 5.1. Tipo de estudio……………………………………………………………42 5.2. Análisis Microbiológicos…………………………………………………44 5.3. pH, Tiempos, Temperaturas y Métodos de Incubación………………45 5.4. Técnicas Empleadas……………………………………………………..45 5.4.1. Siembra en Placa……………………………………………………….45 5.4.2. Filtración por membrana……………………………………………….46 5.4.3. Recuento en cámara de Neubauer…………………………………...47 5.4.3.1. Levadura en Proceso de Fermentación y Maduración…………..47 6. Resultados …………………………………........................................48 7. Discusión de Resultados……………………………………………….58 8. Conclusiones…………………………………………….......................72 9. Recomendaciones………………………………………………………73 10. Referencias Bibliográficas……………………………………………...74 11. Anexos……………………………………………………………………78 8 LISTA DE TABLAS Pág. Tabla 1. Porcentaje de la Materia seca remanente………………………….4 Tabla 2. Análisis Microbiológicos…………………………………………….44 Tabla 3. pH, Tiempos, Temperaturas y Métodos de Incubación…………45 Tabla 4. Agua acueducto de Cali…………………………………………….48 Tabla 5. Enjuagues Tanques (Fermentaciones y Maduraciones)………..49 Tabla 6. Agua de Empuje y Mosto…………………………………………...50 Tabla 7. Propagación de la Levadura………………………………………..51 Tabla 8. Fermentaciones y Maduraciones…………………………………..51 Tabla 9. % Petite Mutants (Respiración Deficiente)………………………..54 Tabla 10. Agua Desairada…………………………………………………….55 Tabla 11. Tierra Diatomácea………………………………………………….55 Tabla 12. BBT`s………………………………………………………………..56 Tabla 13. Sifón (Cerveza sin pasterizar)…………………………………….56 Tabla 14. Conteo celular Fermentaciones…………………………………..56 Tabla 15. Conteo celular Maduraciones…………………………………….57 9 LISTA DE FIGURAS Pág. Figura 1. Morfología Saccharomyces cerevisiae…………………………….3 Figura 2. Ruta Embden Meyerhof Parnas para la utilización de la glucosa………………………………………………………...16 Figura 3. Ciclo del ácido tricarboxílico (Ciclo de Krebs)…………………...19 Figura 4. Fermentación de glucosa por bacterias ácido lácticas…………21 Figura 5. Proceso Cervecero…………………………………………………42 Figura 6. Material para toma de muestras…………………………………..43 Figura 7. Enjuague Tanque 107……………………………………………...49 Figura 8. Medios Utilizados en (Propagación, Fermentación y Maduración)………………………………………………………52 10 RESUMEN Este trabajo se realizó con el objetivo de evaluar la calidad microbiológica del producto en proceso en una planta productora de bebidas alcohólicas. Como primera medida se hizo una revisión del proceso típico cervecero llevado a cabo en la planta con el fin de identificar los puntos críticos claves durante la producción y para llevar a cabo el cumplimiento de los objetivos planteados al inicio de esta valoración, se tomaron muestras en cada una de las etapas identificadas, donde el manejo de las muestras se realizó, utilizando material estéril (botellas biológicas) y su almacenamiento previo a la siembra se llevó a cabo bajo condiciones de refrigeración para evitar multiplicación de microorganismos presentes en éstas o proliferación de contaminantes por mal manejo de las mismas, para garantizar la trazabilidad de este estudio, los resultados obtenidos durante todo el proceso de investigación, fueron consignados en un formato que previamente fue establecido. Para el aislamiento e identificación de los diferentes microorganismos se llevaron a cabo las técnicas de siembra en superficie y profundidad, recuento en cámara de Neubauer y filtración por membrana, utilizando medios altamente selectivos que garantizaran el éxito de la siembra y a su vez se respetó pH, tiempos, temperatura y métodos de incubación que ya habían sido estandarizados. Los resultados encontrados en la mayor parte de las etapas de producción fueron consistentes a lo largo del estudio puesto que no se identificaron microorganismos ajenos o contaminantes del proceso cervecero, sin embargo donde se encontraron variantes de la levadura al observar los indicadores, las muestras no se salen de los parámetros establecidos para encontrar este tipo de mutación durante el proceso fermentativo, entrando dentro de especificaciones. Finalmente, se pudo concluir que la estandarización que se tiene actualmente del proceso es la adecuada y con la cual se puede garantizar una óptima calidad del producto terminado. 11 Palabras Claves: Valoración de la calidad, Producción de cerveza, Variantes de levadura ABSTRACT Present work had an objective to evaluate microbiological quality of product in process at alcoholic beverage industry plant. First was doing a review of typical process at plant goes to identify critical points during production and objectives since that validation started. All parts of process were sampling using sterile material (sample bottles) and there were package refrigerated. Results were consigned in a previously established format to have a guaranty of tradability of present study. To the isolation of microorganisms techniques used were: counting chamber Neubauer and membrane filtration using selective mediums under standardized conditions like pH, time, temperature and incubation methods. Results showed that in all time of present study, measures were consistent because didn´t find foreign microorganisms, however, where we found yeast variants, samples didn´t going out of established parameters. Finally, we can conclude that standardization of process is adequate to guaranty the quality of finished product. Keys words: evaluate microbiological microorganisms, yeast variants 12 quality, beer production, 1. INTRODUCCIÓN La premisa fundamental de una empresa productora de bebidas alcohólicas es que la calidad de sus productos surge como consecuencia de hacer las cosas bien desde el comienzo, en forma ordenada y metódica, es así como en el proceso de elaboración se ha observado que uno de los aspectos más importantes para esta empresa consiste en garantizar una excelente calidad de su producto, por medio de un riguroso control, la utilización de una buena y adecuada materia prima y la realización de un óptimo proceso de fabricación, logrando así el objetivo de la satisfacción de sus clientes, tanto externos como internos, en el marco de un proceso integrador de todas las áreas involucradas en el sistema de calidad. En la medida que se avanza en el proceso de elaboración de la cerveza, se evidencia que dentro de cada una de las etapas de elaboración existen muchos riesgos que pueden afectar el producto en proceso organoléptica, fisco- químico y microbiológicamente y de esta manera influir en la calidad del producto terminado. En el control de la calidad se encuentran involucrados no solo el control proceso, las especificaciones y el muestreo, sino también los procedimientos de organización, documentación y autorización que aseguran se lleven a cabo las pruebas pertinentes para verificar el cumplimiento de los estándares internacionales y de está manera asegurar que la calidad es satisfactoria. Es así como el objetivo de este trabajo de investigación es valorar la calidad microbiológica del producto en proceso empleado en cada una de las etapas de producción de bebidas alcohólicas, con el fin de identificar los microorganismos típicos o posibles contaminantes, que puedan 13 afectar la calidad del proceso de elaboración y de esta manera establecer por medio de los resultados obtenidos, si éstos afectan la calidad del producto terminado. 14 2. MARCO TEORICO 2.1. Levadura Las levaduras son hongos unicelulares que se reproducen principalmente por gemación, son organismos eucarióticos, es decir que tienen una membrana nuclear bien definida que envuelve el núcleo (Adams et al, 1998). Las levaduras son las causantes principales de la fermentación de los alimentos, lo cual puede ser perjudicial (deterioro) o favorable (producción de cervezas, vinos, pan, quesos, enzimas, etc) (Adams et al, 1998). 2.1.1. Levadura cervecera Saccharomyces cerevisiae tiene como característica que al final de la fermentación se va al fondo del tanque, se conoce como levaduras de profundidad y su temperatura óptima de fermentación es de 10 – 14 °C (Aguilar, 2003). 2.1.1.2. Morfología (Forma) y composición celular S. cerevisiae tiene forma esférica, elipsoide u ovoide. Su tamaño varía con la edad de la célula pero generalmente oscila entre 4 y 14 micras. Puede vivir aislada o formando colonias (Aguilar, 2003). Fuente: El cervecero en la práctica, 2002. Figura 1. Morfología de Saccharomyces cerevisiae. 15 La célula está constituida aproximadamente por: P-glucanos (polisacárido) 40% Mananos (polisacárido) 40% Proteínas 8% Lípidos (grasas) 7% Sustancias inorgánicas 3% Hexosamina y quitina 2% 2.1.1.3. Composición de la célula de la levadura Con el objeto de producir una nueva célula, todos los compuestos presentes en la célula se deben incrementar. La célula de levadura tiene alrededor del 75 – 80% de agua (Adams et al, 1998). El contenido de otros materiales es usualmente expresado como % de la materia seca remanente. % DE LA MATERIA SECA REMANENTE Minerales: 8% Carbohidratos: 40% Material nitrogenado: Proteínas 64%, peptonas 10%, aminoácidos 8%, ácidos nucleicos. Lípidos: 1% - 2% ( 5% P2O5 ; 3%K2O) (glucógenos, Betaglucanos, etc) Fuente. El cervecero en la práctica, 2002 Tabla 1. Porcentaje de la Materia Seca Remanente 16 2.1.1.3.1. Proteínas Alrededor del 50% del material celular (seco) puede ser material proteínico. Las proteínas presentes son principalmente enzimas y proteínas estructurales. Las proteínas se combinan con los ácidos nucleicos para formar los sitios para la síntesis de nuevas proteínas. Las proteínas son sintetizadas en la levadura a partir de los aminoácidos, la formación de los enlaces péptidos requieren energía, la cual es portada por el ATP (Klimovitz, 2002). Algunos aminoácidos de los requeridos están presentes en el mosto y son transportados dentro de la célula y concentrados allí por los aminoácidos-permeasas; la eficiencia de este transporte es diferente para cada aminoácido, así que los aminoácidos disponibles dentro de la célula para la síntesis de proteínas no están necesariamente en la misma proporción que en el mosto. Si un aminoácido no esta disponible dentro de la célula, la levadura puede sintetizarlo por sí misma (Klimovitz, 2002). 2.1.1.3.2. Ácidos nucleicos Constituyen alrededor del 18% del material celular nitrogenado. Dirigen la síntesis de proteínas, la secuencia de las cuatro bases en el ácido nucleico determina la secuencia de los aminoácidos en la proteína que se está sitentizando. Proporcionan la información genética necesaria para sintetizar las proteínas (Klimovitz, 2002). 2.1.1.3.3. Paredes celulares Compuestas principalmente de polisacáridos, entre ellos la manosa y la glucosa que forma los mananos y beta glucanos. Una considerable cantidad de proteínas también está presente con algunos componentes menores tales como fosfatos. Durante la fermentación la composición de la pared celular cambia (Aguilar, 2003). 17 2.1.1.3.4. Membranas Las membranas rodean el citoplasma y las mitocondrias de la célula de levadura. Están compuestas por mananos, proteínas y materiales grasos, estos últimos son principalmente esteroles y glicéridos. La membrana citoplasmática es semipermeable y regula el flujo de nutrientes hacia el interior de la célula y el de subproducto hacia el exterior (Aguilar, 2003). 2.2. Crecimiento y multiplicación celular El crecimiento celular es el incremento ordenado de todos los constituyentes de la célula viva, es el desarrollo individual, su estudio implica conocer los modelos que explican la generación y síntesis de macromoléculas, como se sintetiza la pared celular y que enzimas participan, etc; además de los aspectos bioquímicos interesa conocer también como se transportan y ensamblan las macromoléculas y de donde se ensamblan (Klimovitz, 2002). La multiplicación celular, por otra parte, se refiere al estudio del aumento del número de individuos en un población; su estudio implica conocer la cinética de la multiplicación, velocidad con que se sucede, relaciones que tiene con el medio ambiente, con los productos y con el consumo de sustratos, cambios fisiológicos y morfológicos que se suceden (Klimovitz, 2002). 2.2.1. Curva de crecimiento microbiano Cuando un microorganismo (bacteria, hongo o levadura) se le inocula en un medio de cultivo apropiado para su desarrollo y se le dan las condiciones óptimas para su crecimiento, este presenta una curva de crecimiento típica, donde fácilmente se podría graficar en función del tiempo la concentración celular (número de células por unidad de volumen 18 del cultivo) o concentración de biomasa microbiana (gramos de células microbianas en sustancia seca por unidad de volumen de cultivo) (Ingledew, 1996). 2.2.1.1. Fase de adaptación Esta fase recibe diversos nombres, se consideran de adaptación cuando la población inicial se localiza en un medio ambiente que les favorece para su desarrollo; en estas condiciones los individuos necesitan adaptarse a ese medio ambiente generando abundante actividad metabólica pero sin multiplicarse; se producen enzimas e incremento en los componentes estructurales especialmente los citoplasmáticos, las células adsorben gran cantidad de agua y hacia el final de esta fase presentan un tamaño mayor que el normal (se considera tamaño normal el que presentan durante la fase logarítmica). En esta fase hay mayor consumo de oxígeno por célula que en cualquier otra fase y se observa además incremento en la concentración del ARN mientras que el ADN permanece constante; el tiempo de duración depende de las condiciones del medio ambiente: prolongado si son desfavorables, corto si son favorables e inclusive puede ser cero en el caso de que se traslade una población en fase logarítmica a un medio similar si la dilución no es alta. En muchos casos la fase de adaptación se prolonga demasiado, siendo más correcto denominarla de latencia; en estos casos las condiciones para el desarrollo son muy desfavorables (pH, baja temperatura, falta de nutrientes, etc) y el organismo solamente esta subsistiendo (Ingledew, 1996). A la fase de adaptación se le denomina también fase LAG. El cambio de la fase LAG a la fase LOG se denomina de aceleración positiva; la reproducción celular comienza y poco a poco se va aumentando la velocidad de crecimiento (Adams el al, 1998). 19 2.2.1.2. Fase logarítmica En esta fase se representa también cambios citomorfológicos; la célula se vuelve fisiológicamente joven y se encuentra en su estado más normal; en el caso de las bacterias todas las células reaccionan al Gram en forma homogénea y es en esta fase en donde se describe si son Gram Positivas o Gram Negativas. La célula tiene composición normal constante, mientras que la composición del medio varía. El metabolismo es bastante activo y dirigido esencialmente a obtener energía y construir para multiplicarse, por eso es esta fase se producen los metabolismos primarios (Ingledew, 1996). La pared celular es más delgada que en otras fases y esto hace que la población sea más sensible a los agentes fisicoquímicos. El tiempo de duración depende del organismo y de las condiciones del medio, si estas son favorables el tiempo será menor, puesto que al ocurrir metabolismo se genera una mayor población y el material nutriente se agotara más rápidamente (Klis et al, 2002). A medida que se sucede el metabolismo van cambiando las condiciones del medio, por ejemplo el pH; en estas condiciones se reduce la velocidad del crecimiento, (fase de desaceleración), esta disminución también se ve afectada por el agotamiento de los nutrientes y porque el metabolismo produce sustancias tóxicas que se van acumulando, ejemplo, los alcoholes, aldehídos, etc; las cuales tienen efecto antimicrobiano (Ingledew, 1996). A medida que transcurre el tiempo, las condiciones se tornan más desfavorables hasta que se llega a un estado de equilibrio en el cual se produce ligera multiplicación pero también muerte; este estado se denomina fase estacionaria (Ingledew, 1996). 20 2.2.1.3. Fase estacionaria La población se equilibra; se presentan también cambios morfológicos: decrece el tamaño de la célula, aumenta el espesor de la pared celular como un mecanismo de resistencia para contrarrestar las condiciones adversas del medio ambiente; hay variación en la actividad metabólica y se sintetizan principalmente los metabolitos secundarios (Klis et al, 2002). A la cantidad de células que alcanzan esta fase se le denomina crecimiento total. 2.2.1.4. Fase de muerte Disminuye el número de células viables; al aumentar la mortalidad disminuye la concentración en biomasa a la autólisis; la población puede llegar a un punto tal de auto esterilización en el que los individuos mueren por las mismas condiciones que han generado (Klis et al, 2002). Esta fase es muy importante desde el punto de vista bioquímico ya que en ella se generan sustancias de mucho interés especialmente los antibióticos (Ingledew, 1996). 2.3. Reproducción de la levadura La levadura se puede reproducir de dos formas diferentes: sexual y asexual. 2.3.1. Reproducción sexual (Meiosis): En este proceso se realiza la fecundación uniéndose dos células sexuales. Los dos núcleos de las células se unen formando uno, mezclándose el material genético de los dos “padres”. 21 De este tipo de reproducción resultan cuatro células hijas, cada una con la mitad de los cromosomas iniciales (Klimovitz, 2002). 2.3.2. Reproducción asexual (Mitosis): Se caracteriza porque sin fecundación, un solo individuo puede producir una célula exacta (Klimovitz, 2002). Este tipo de reproducción puede ocurrir de tres maneras: 2.3.2.1. División celular: es una simple división de la célula formando un nuevo individuo a partir del que se esta dividiendo (bacterias y algunos tipos de levaduras) (Klimovitz, 2002). 2.3.2.2. Esporas vegetativas: la célula forma un cuerpo reproductor, que una vez afuera y en condiciones del medio adecuadas produce un nuevo organismo (bacterias y hongos) (Klimovitz, 2002). 2.3.2.3. Gemación: es la más importante en este caso porque es la principal forma en que se reproduce la levadura cervecera (Klimovitz, 2002). 2.3.2.3.1. Reproducción por Gemación La célula madre produce un pequeño “brote” en la pared celular, que aumenta gradualmente y se estructura poco a poco como una nueva célula de levadura (Klimovitz, 2002). Cuando la célula “hija” ha alcanzado el desarrollo adecuado, se separa de la célula “madre” por estrangulación dejando una cicatriz en la pared celular (Klimovitz, 2002). 22 Es posible llegar a tener “cadenas celulares” cuando una “madre” tiene varias formaciones de nuevas células al mismo tiempo y a su vez las células en crecimiento empiezan a ser “madres” de otras nuevas, sin haber terminado de separarse (Klimovitz, 2002). 2.3.2. Factores que intervienen en la reproducción de la levadura 2.3.2.1. Oxígeno: A mayor oxigeno, entonces mayor es la velocidad de reproducción 2.3.2.2. Temperatura: A mayor temperatura, mayor velocidad, teniendo en cuenta que la temperatura óptima de desarrollo se encuentra entre 25ºC y 30ºC 2.3.2.3. Composición del mosto (sustrato nutritivo): debe contener los nutrientes requeridos para la formación de la nueva célula 2.4. Floculación de la levadura La floculación es una propiedad física, donde las células de la levadura se adhieren unas con otras, formando grupos que rápidamente sedimentan (levaduras de fondo) o alcanzan la superficie del liquido (levaduras de superficie) (Klimovitz, 2002). Una levadura que flocule bien facilita la separación y recolección de la levadura, disminuye tiempos de proceso y evita que pase excesiva cantidad de levadura a maduración (riesgos de autolisis) (Klimovitz, 2002). Los mecanismos físicos por medio de los cuales la levadura flocula son: 23 2.4.1. Hidrofobosidad: la pared celular presenta características hidrófobas (repele el agua) lo que hace que se aglomeren. Esta propiedad esta asociada a la edad de la célula (Klimovitz, 2002). 2.4.2. Potencial Zeta: Es una medida de la carga eléctrica de la superficie celular. La reducción en esta carga favorece el acercamiento celular (y por ende la floculación). La carga superficial se afecta por el pH del medio y la presencia de sustancias “buffer” como los fosfatos (Klimovitz, 2002). 2.4.3. Interacción proteínas – azúcares: Existe una proteína llamada lectina que tiene la propiedad de “reconocer” (atraer) sacáridos como la manosa. Como la pared celular de la levadura es rica tanto en lectina como en manosa se considera factible que estos compuestos se atraigan entre si uniendo las células (Klimovitz, 2002). 2.4.4. Factores que influyen en la floculación Una levadura que carezca de los factores genéticos de la floculación no podrá flocular. A menor temperatura la levadura entra en un estado de “latencia” que activa el sistema de floculación. A menor pH se activa la floculación por la neutralización de cargas en la pared celular. Durante la fermentación hay una caída de pH por lo que la levadura tiende a flocular al final. El calcio favorece la formación de lectina en la pared celular y facilita la unión lectina-manosa entre las células de la levadura. 24 La presencia de azúcares (como la manosa) o de proteínas tipo lectina en el mosto puede bloquear los sitios de atracción de la pared de la célula e interrumpir la floculación (Klimovitz, 2002). 2.5. Mutación de la levadura Se conoce como mutación los cambios que ocurren en la información genética de la célula (DNA) inducido por factores externos y que pueden generar variaciones en el metabolismo o comportamiento celular, asociados a la fracción de DNA alterado (Heggart, 1999). En el proceso cervecero se pueden favorecer las mutaciones por malas prácticas de manejo almacenamiento, de tratamiento la levadura ácido, (condiciones contaminación externas con de levaduras diferentes, etc). Sin embargo nos es muy común que se presenten mutaciones a gran escala en el proceso típico cervecero (Heggart, 1999). 2.5.1. Mutaciones más comunes en el proceso cervecero 2.5.1.1. Floculación: La levadura no flocula adecuadamente (separación difícil) 2.5.1.2. No asimilación de la maltotriosa: genera fermentaciones frenadas 2.5.1.3. Precipitación temprana: la levadura se precipita al fondo del tanque antes de terminar de fermentar 2.5.1.4. Respiración deficiente: la levadura presenta deficiencias en su respiración generando malas fermentaciones y un perfil de subproductos totalmente diferente. Se conoce como “petite mutant” (Klimovitz, 2002). 25 2.6. Levaduras salvajes Se considera como “levadura salvaje” o “silvestre” cualquier espécimen que no corresponda al utilizado en el proceso y que aparece como contaminante del medio o equipos de trabajo (Heggart, 1999). No todas las levaduras salvajes originan defectos en el producto, pero son indeseables ya que pueden llegar a competir con la levadura del proceso. Algunos tipos de levadura salvaje, pueden producir velos (turbidez), malos olores, sabores anormales, floculación deficiente y fermentación diferente. Las levaduras salvajes se pueden identificar por diferentes formas: • Forma de las células (redondas, ovales, alargadas, etc) • Tamaño de la célula • Forma de agrupamiento de las células (aisladas, cadenas, etc). • Forma de reproducción • Metabolismo fermentativo. Algunas de las levaduras salvajes más comunes en cervecería son: Saccharomyces elipsoideus, S. turbidans, S. pastorianus, S. chevaliere. Cándida utilis, C. tropicales y C. mycodema (Heggart, 1999). 2.7. Metabolismo de los carbohidratos Las células de levadura necesitan una fuente de energía química libre para crecer, debido a que muchos de los componentes de la célula 26 requieren de ésta para ser sintetizados. Parte de esta energía es obtenida por el rompimiento de los azúcares simples, como la glucosa, pero esto no ocurre en una forma simple y rápida; en cambio las células obtienen la mayoría de sus requerimientos inmediatos de energía del rompimiento del ATP, en el cual los grupos fosfato pueden ser removidos por una enzima de la levadura, liberando gran cantidad de energía, ésta es entonces utilizada por las enzimas para el crecimiento de la levadura. El ATP es producido en la célula de la levadura por dos mecanismos de formación diferentes: La glucólisis y el ciclo de los ácidos tricarboxílicos (ciclo de Krebs), el segundo de los cuales es mucho más complejo y eficiente que el primero (Kandler, 1983). La glucólisis puede ser conducida aeróbica y anaeróbicamente; cuando es aeróbica el producto final es el ácido piruvíco que entra al ciclo de Krebs; cuando es anaeróbica el producto final es el alcohol (Kandler, 1983). 2.7.1. Glucólisis (Embden – Meyerhof – Parnas) La ruta glicolítica o también denominada Embden Meyerhof Parnas es la utilizada por Saccharomyces cerevisiae y consiste en la degradación de los azúcares presentes en un medio de cultivo para la obtención de energía y otros intermediarios necesarios para el crecimiento de la levadura. Durante el proceso son producidos cantidades sustanciales de etanol, CO2 y calor gracias a la acción de enzimas las cuales, al interior de la célula, catalizan diversas reacciones que resultan en la producción de dos moléculas de ácido pirúvico, estas a su vez por la acción de la enzima piruvato descarboxilasa en condiciones anaeróbicas, en dos moléculas de acetaldehído y dos de CO2 y finalmente dos moléculas de etanol a partir del acetaldehído por acción de la enzima alcohol deshidrogenasa y cuya reacción podría resumirse así: 27 Glucosa + 2ADP + 2Pi + 2NAD+ ------------ 2 Piruvato + 2ATP + 2NADH+ 2H++ Calor 2 piruvatos + 2NADH + 2H+ ------------------ 2 Etanol + 2CO2 + 2NAD Algo del ácido pirúvico producido y otros intermediarios pueden ser usados por la levadura en variedad de rutas metabólicas como sustrato para la generación de nuevas células, algo de glicerol es generado a partir de uno de los intermediarios de la ruta: la dihidroxiacetona, dependiendo de las condiciones, de manera que no puede desligarse el metabolismo respiratorio del fermentativo pues esta ruta metabólica opera tanto en condiciones de aerobiosis como de anaerobiosis generándose energía en forma de ATP y calor respectivamente. (Jacques et al, 1999). rd Fuente: The alcohol textbook 3 edition page 61. Figura 2. Ruta Embden Meyerhof Parnas para la utilización de la glucosa. 28 Los hechos principales de la fermentación son: 1. Activación de la glucosa con dos moléculas de ATP (reacciones 1 y 3). 2. Isomerización de la glucosa. 3. Rompimiento del azúcar de 6 carbonos en 2 de 3 carbonos cada uno. 4. Oxidación de los fragmentos con NAD coenzima. El NADH2 reducido es liberado dentro de la célula. La oxidación libera ATP es entonces regenerado (etapas 6 y 9) removiendo fosfatos de los compuestos de 3 carbonos por el ADP. 5. El NADH2 reducido que se libera es oxidado, reduciendo el acetaldehído (formado por al ácido pirúvico) a etanol. El NAD libre es liberado y puede ser aprovechado para la fermentación de otro azúcar. Parte del NADH2 también puede ser usado para formar ácido láctico. El ATP producido puede ser usado como fuente de energía por la levadura. Algunos de los compuestos intermedios también son usados para el crecimiento de la levadura, tales como el ácido pirúvico pueden ser liberados de la célula de levadura a la cerveza, nuevamente el ácido pirúvico es un ejemplo. Cuando esto pasa, la levadura queda con un exceso de NADH2 es usado para formar glicerol a partir de la dihidroxiacetona fosfato (Harper, 2004). Después del alcohol y CO2, el principal subproducto de la fermentación por levadura es el glicerol. El ácido pirúvico durante la fermentación es usado, en la parte, para la producción de aminoácidos y parte queda en la cerveza. 29 2.7.2. Ciclo de ácidos tricarboxílicos (Ciclo de Krebs) La fermentación vía glucólisis es muy poco eficiente en la liberación de energía y formación de ATP, ya que alrededor del 95% de las calorías utilizables de los azúcares del mosto permanece en el alcohol formado durante la fermentación. En presencia de oxígeno, mucha más energía aprovechable en la formación de ATP puede ser obtenida de la glucosa (Harper, 2004). Después de la glucólisis el ácido pirúvico formado pasa a través de una serie de reacciones conocidas como el ciclo del ácido cítrico. Las reacciones son mostradas en la gráfica, en donde se puede observar que forman un ciclo. Al comienzo el ácido oxalacético se combina con el ácido acético en la forma de acetil-coenzima A. Cuando el ciclo se completa, el resultado neto es la oxidación del ácido acético a CO2 y agua; el ácido oxalacético es liberado para comenzar otra vez el ciclo con otra molécula de ácido acético obtenida del ácido pirúvico. El hidrógeno removido en las fracciones intermedias del ciclo en la forma de coenzimas reductoras puede ser oxidado en presencia de oxígeno por una serie de reacciones que generan más ATP (Harper, 2004). Transferencia de hidrógeno o electrones del hidrógeno a través del sistema citocromo. El resultado final es producir alrededor de 38 ATP de una molécula de glucosa. La fermentación sin oxígeno produce sólo dos ATP a partir de una molécula de glucosa. 30 Fuente: Harper: Bioquímica ilustrada, 2004. Figura 3. Ciclo del Ácido Tricarboxílico (Krebs) Algunos compuestos intermedios del ciclo TCA son usados por la levadura para su crecimiento. Por ejemplo, acetil-CoA y a - cetoglucano. Pequeñas cantidades de algunos ácidos del ciclo son liberados por la célula de la levadura y contribuyen a la acidez de la cerveza. Por ejemplo al ácido succínico. Los ácidos unidos a la coenzima A son muy inestables y algunas veces reaccionan para formar ésteres, los cuales tienen una gran influencia en el aroma de la cerveza (Harper, 2004). Las reacciones de la glucólisis ocurren dentro de la célula, en el citoplasma. Las TCA también ocurren dentro de ella, pero sólo en una parte muy especializada en la célula, llamada mitocondria. La mitocondria puede ser formada solamente a partir de otra mitocondria algunas veces 31 durante la gemación de la levadura, una célula hija puede formarse sin mitocondrias. Cuando esto ocurre la célula hija y toda su descendencia no podrán nunca formar mitocondrias por lo tanto, crecen muy lentamente en los medios de cultivo de laboratorio, porque no pueden usar el oxigeno del aire para crecer más eficientemente; forman sólo pequeñas colonias en el agar; por esta razón estas levaduras son llamadas “petite verdant o respiratorias deficientes” (RD). (Heggart, 1999). Las levaduras RD producen fermentaciones pobres, con poca atenuación y tienden a liberar gran cantidad de diacetilo en la cerveza. Por esta razón las levaduras con cierto porcentaje de RD deben ser descartadas (Klimovitz, 2002). 2.8. Bacterias lácticas como contaminantes El grupo de bacterias lácticas está constituido por cocos y bacilos que comparten propiedades fisiológicas y bioquímicas y cuyo metabolismo generador de energía es fermentativo, los sustratos fermentables son azúcares que incluyen variedad de monosacáridos, disacáridos y polialcoholes y cuyo producto final principal es el ácido láctico y en algunos casos el único dependiendo de la ruta metabólica que utilicen para convertir los carbohidratos, de ahí que las bacterias lácticas pueden dividirse en dos grupos según los productos resultantes de la fermentación de glucosa (Jacques et al, 1999). 2.8.1. Metabolismo Homofermentativo y Heterofermentativo El grupo de bacterias lácticas denominado homofermentativo produce virtualmente un único producto de fermentación: el ácido láctico, mientras el grupo heterofermentativo produce etanol y CO2 además de ácido láctico. Dicha diferencia está determinada por la presencia o ausencia de la enzima aldolasa, una de las enzimas claves en la glicólisis; los 32 heterofermentadores, carentes de aldolasa, no pueden descomponer el difosfato hexosa a fosfato triosa, en lugar de ello, oxidan la glucosa 6fosfato a 6-fosfogluconato y entonces lo decarboxilan a pentosa fosfato, la cual se transforma en triosa fosfato y acetilfosfato por medio de la enzima fosfocetolasa (Jacques et al, 1999). Esta triosa fosfato se convierte finalmente en ácido láctico con la producción neta de 1 ATP, mientras el acetilfosfato acepta electrones del NADH generado durante la producción de pentosa fosfato y así se convierte en etanol sin producción de ATP (Jacques et al, 1999). Debido a esto, los heterofermentadores producen sólo un mol de ATP a partir de glucosa a diferencia de los homofermentadores que producen dos moles de ATP igualmente a partir de glucosa (Jacques et al, 1999). Fuente: modify of carbohydrate metabolism in lactic acid bacteria, 1983. Figura 4. Fermentación de glucosa por bacterias ácido lácticas. 33 Estas rutas para el metabolismo de carbohidratos llevadas a cabo por las bacterias acido lácticas pueden igualmente dividir este grupo en tres clases: homofermentativos obligados, heterfermentativos facultativos y heterofermentativos obligados, las especies de homofermentativos obligados el único producto final a partir de hexosas es el ácido láctico y la vía glicolítica es la única utilizada, las especies de este grupo producen la enzima aldolasa pero no producen la fosfocetolasa, lo cual las inhabilita para fermentar pentosas y gluconato (Jacques et al, 1999). Las especies de heterofermentativos facultativos poseen las dos enzimas aldolasa y fosfocetolasa “inducible”, pues logran fermentar pentosas y gluconato sólo bajo ciertas condiciones pues la ruta de a fosfocetolasa es inhibida en presencia de glucosa. (Jacques et al, 1999) y finalmente, las especies lácticas heterofermentativas obligadas generan una mezcla de productos finales bajo condiciones normales usando cualquiera de las vías metabólicas; estos productos finales incluyen ácido láctico, ácido acético, etanol y CO2 así como pequeñas cantidades de ácidos fórmico y succínico, estos organismos excepto algunas cepas específicas, pueden fermentar pentosas y gluconato (Jacques et al, 1999). 2.8.2. Requerimientos nutricionales de bacterias lácticas y subproductos Las necesidades nutricionales de las bacterias lácticas son muy similares a las de las levaduras convirtiéndose así en sus principales antagonistas por nutrientes esenciales y factores de crecimiento que algunas veces están presentes en cantidades limitadas en los sustratos de fermentación, así como que son capaces de metabolizar las mismas fuentes de carbono para realizar su tipo de fermentación (Jacques et al, 1999). 34 2.8.2.1. Nitrógeno: varios aminoácidos y vitaminas son necesarias para el crecimiento de ácido lácticas, algunas homofermentativas y heterofermentativas poseen enzimas proteasas y pueden degradar las proteínas en formas asimilables de nitrógeno, sin embargo esta característica no es general y la mayoría de ellas toman el nitrógeno necesario del medio de cultivo en el que se hallen, de manera que en este sentido son fuertemente competitivas frente a las levaduras en sistemas de fermentación (Bely et al, 2003). 2.8.2.2. Oxígeno: las bacterias lácticas se han descrito como anaerobias, sin embargo se ha demostrado que prefieren ambientes microaerofílicos y pueden sobrevivir en ambientes donde el oxígeno está completamente ausente, manejando una tasa de crecimiento baja (Oliveira, 1999). Este tipo bacteriano carece de las enzimas catalasa y superoxido dismutasa, las cuales son usadas por bacterias aeróbicas para convertir compuestos tóxicos: el peróxido de hidrógeno y el superóxido respectivamente, ambos formados durante sus procesos respiratorios (Jacques et al, 1999). Saccharomyces cerevisiae produce catalasa y crece adecuadamente bajo condiciones aeróbicas, con el oxigeno como requerimiento principal en los primeros estados de la fermentación por lo que se constituye en otra ventaja competitiva de las bacterias lácticas bajo condiciones anaerobias en la fermentación de la levadura. (Jacques et al, 1999). 2.8.2.3. Subproductos que pueden afectar la calidad del producto La producción de algunos compuestos por bacterias contaminantes contribuye a la disminución de la calidad del producto final de la fermentación así como el desarrollo mismo del proceso pues el microorganismo fermentador puede ver afectada su fisiología por la 35 presencia de sustancias extrañas y/o en altas cantidades (Jacques et al, 1999). Los ácidos láctico y acético son productos que afectan notablemente las características organolépticas del producto (etanol), pues se producen a partir de él, así como la acroleína y el diacetil, una cetona que puede producirse durante la fermentación cuando el piruvato es convertido a ácido láctico y algunas especies de Pediococcus y Lactobacillus son los responsables de dicha producción, no obstante, las levaduras producen diacetil durante los primeros estados de la fermentación pero este es removido por la acción de varias enzimas y por la presencia de algunos aminoácidos en el medio (Jacques et al, 1999). 2.9. Factores que afectan el rendimiento de alcohol Un gran número de factores pueden reducir el rendimiento de alcohol y disminuir la productividad de la planta, estos factores pueden ser reducidos o eliminados para minimizar las perdidas de sustrato y maximizar las ganancias en términos de producto (Oliveira, 1999). 2.9.1. Cambios de pH durante la fermentación El pH de la cerveza varía entre 3.9 – 4.5; en parte se debe a las diferencias en los mostos, pero también a las diferencias en la fermentación. Por ejemplo, un mosto dado produce una cerveza con pH 4.4 cuando se fermenta con levadura de producción normal y puede producir cervezas con pH 3.9 cuando se fermenta con levadura recién salida del propagador (Klimovitz, 2002). El pH cae rápidamente en las primeras etapas de la fermentación, lo que significa que se presenta incremento en la concentración de iones H+ o acidez. 36 2.9.1.2. Absorción de bases por la levadura La remoción de bases o álcalis del mosto puede hacer que esté se vuelva más ácido. Por muchos años, se asumió que la levadura usa los iones fosfato básicos H2PO4–2 como fuente de fosfatos para el crecimiento, y que la perdida de ésta base causa el descenso del pH durante la fermentación (Klimovitz, 2002). Sin embargo se ha demostrado que la levadura usa sólo el ion H2SO4- el cual es ligeramente básico. Por lo tanto, el uso de los fosfatos produce solamente alrededor del 10% del aumento de la acidez durante la fermentación (Klimovitz, 2002). Los aminoácidos básicos son usados por la levadura y la pérdida de éstos produce un 30% del cambio de acidez. 2.9.2. Producción de ácidos El CO2 producido durante la fermentación es débilmente ácido. Esto produce un 10% del cambio de acidez. Los ácidos orgánicos, especialmente el succínico, láctico, pirúvico y málico producidos por la levadura, producen otro porcentaje del cambio de acidez durante la fermentación. La levadura puede excretar algunos iones H+ directamente a la cerveza pero esto no ha sido demostrado aún (Klimovitz, 2002). Ya que la malta es la fuente de compuestos básicos como los iones fosfato y los aminoácidos, el contenido de malta también influye en el pH de la cerveza. A mayor cantidad de malta, mayor cantidad de compuestos 37 básicos presentes al comienzo de la fermentación y mayor el pH de la cerveza (Klimovitz, 2002). 2.9.3. Floculación de la levadura Al finalizar la fermentación, las células de levadura forman agrupaciones probablemente hasta de 100 células; la levadura S. cerevisiae atrapa burbujas de CO2 y flota. El que la levadura por sí misma, se remueva del mosto fermentado después de que ha cumplido a cabalidad su función metabólica, es una de las principales características deseables en la levadura cervecera; a esta característica se le designa con el nombre de floculación (Klimovitz, 2002). Existen muchas definiciones de floculación de la levadura pero una de las más aceptadas dice: Floculación es el fenómeno por medio del cual las células de levadura se adhieren en grumos y sedimentan rápidamente del medio en el cual se encuentran suspendidas (Klimovitz, 2002). Las características de floculación de un cultivo puro de levadura en particular, es una de las propiedades más importantes que se tiene en cuenta al seleccionar una cepa de lavadura para propósitos cerveceros (Klimovitz, 2002). Los factores que influyen en la floculación de la levadura son: 1. Características genéticas de la levadura. 2. La presencia de iones Ca++ en solución; la cantidad requerida varía de acuerdo con la cepa. Algunos investigadores han encontrado que otros iones divalentes tales como Mg y Mn pueden, aparentemente ejercer la acción del calcio. 3. La temperatura. 4. Cantidad de glucógeno almacenado en la célula. 38 5. El contenido de fósforo mananos, los cuales se han encontrado en la pared exterior de la célula de levadura al final de la fermentación, pero durante la fermentación no. Una teoría dice que existe atracción electrostática entre las cargas negativas del fosfato y las positivas del calcio, ocasionando la agrupación de las células (Hornsey, 2003) 2.10. Proceso de elaboración de la cerveza La cerveza, al igual que otras bebidas similares producidas con cereales, es sometida a fermentación pero no a destilación. Las materias primas que intervienen en el proceso son agua, lúpulo y cebada, suplida a veces por el maíz, el arroz o el azúcar (Hough, 1990). 2.10.1. Molienda Tanto la malta como los cereales sin maltear (trigo, avena, centeno, maíz, arroz), tienen que pasar por el molino que rompe el grano, dando lugar a la harina y otras partes fijas (Hornsey, 2003). La molienda consiste en destruir el grano, respetando la cáscara o envoltura y provocando la pulverización de la harina. La malta es comprimida entre dos cilindros pero evitando destruir la cáscara lo menos posible, pues ésta servirá de lecho filtrante en la operación de filtración del mosto; a su vez el interior del grano en una harina lo más fina posible. Estas dos condiciones, cáscara entera y harina fina no podrán respetarse si el grano no está seco (excepción molienda húmeda) y muy bien desagregado, una tercera exigencia es un buen calibrado de la malta. La molienda debe ser también regulada según el cocimiento posterior (Hornsey, 2003). 39 2.10.2. Proceso en Pailas En esta parte del proceso se extraen de la malta y eventualmente de los granos crudos la mayor cantidad de extracto y de la mejor calidad posible en función al tipo de cerveza que se busca fabricar. La extracción se logra principalmente por hidrólisis enzimática, solamente un 10% de la extracción es debida a una simple disolución química. Las amilasas desdoblan el almidón en dextrinas y maltosa, principalmente las enzimas proteolíticas desdoblan las proteínas complejas en materias nitrogenadas solubles, la fitasa desdobla la fitina en inositol y fosfato, etc. Estas transformaciones enzimáticas han sido ya empezadas durante el malteado a un ritmo menos intenso del que sucederá en el cocimiento; donde debido a la acción de las diferentes temperaturas y la gran cantidad de agua las reacciones suceden muchas veces en forma explosiva (Hough, 1990). Cuantitativamente el desdoblamiento del almidón en azúcares y dextrinas es el más importante. Las principales reacciones que ocurren durante el cocimiento por acción de las amilasas son formación de dextrinas, formación de maltosa y en menor proporción formación de glucosa (Hough, 1990). 2.10.3. Filtración del Mosto Una vez disueltas las materias solubles por el cocimiento es necesario separar el mosto de la parte insoluble llamada orujo o afrecho. La operación se realiza en dos fases: primero el flujo del mosto y luego la operación de lavado del extracto que contiene el afrecho (Verstrepen, 2003). El mosto y el agua de lavado deben ser claros pues si se aporta durante la operación demasiadas sustancias mal disueltas, la clarificación de la cerveza será demasiado difícil. La calidad de la cerveza puede ser también alterada por un lavado de afrecho con agua alcalina pues los polifenoles y sustancias amargas de la cáscara de la malta se disuelven 40 muy fácilmente en agua alcalina aún más si se tiene en cuenta que el lavado se hace en agua a una temperatura máxima de 75 ºC; ésta no puede exceder ese límite, pues se corre el riesgo de disolver almidón presente aún en el afrecho, lo que conllevaría a problemas de turbiedad y fermentación posteriores (Verstrepen, 2003). 2.10.4. Ebullición del Mosto La finalidad de la ebullición es estabilizar enzimática y microbiológicamente el mosto, buscar la coagulación de las proteínas. La destrucción de las enzimas es realizada para evitar que sigan desdoblando a lo largo de la fermentación, las amilasas podrían seguir desdoblando las dextrinas y éstas se transformarían enteramente en alcohol (Hornsey, 2003). La esterilización del mosto es obtenida por simple ebullición, pues su reacción es ligeramente ácida. La coagulación de las materias proteínicas debe hacerse lo mejor posible, pues si subsisten en el mosto ocasionarían problemas en la fermentación, provocando fácilmente turbiedad en la cerveza embotellada. La esterilización y la destrucción de las enzimas es fácil de realizar, un cuarto de hora de ebullición es generalmente suficiente (Hornsey, 2003). La coagulación de proteínas es mucho más difícil, se realiza por etapas, la primera es la desnaturalización que consiste en la ruptura de puentes de hidrógeno en la molécula de proteína, pasando del estado hidratado al deshidratado, manteniéndose en suspensión únicamente por su carga eléctrica; luego de la desnaturalización se produce la coagulación propiamente dicha por agrupación de micelios deshidratados; es aquí donde el pH juega un papel muy importante, pues la coagulación será eficiente si se realiza en el punto isoeléctrico; como existen muchas proteínas en el mosto se ha optado por el pH 5.3 como el más conveniente (Hornsey, 2003). Durante la ebullición, la coloración también aumenta sobre todo por la formación de melanoidinas, también 41 por oxidación de taninos, estas dos reacciones son favorecidas por el pH elevado. Por último a lo largo de la ebullición se forman productos reductores que contribuyen a la calidad y estabilidad de cerveza (Hornsey, 2003). El lupulado del mosto se realiza tradicionalmente durante esta operación, es decir, en la paila de ebullición. El amargor es obtenido por isomerización de los ácidos y del lúpulo; esta isomerización es incompleta debido principalmente al pH del mosto, el pH óptimo de isomerización es de 9. Existen muchas lupulonas y humulonas en el lúpulo; cada uno de estos compuestos donará su isómero respectivo; el conjunto es conocido como isohumulonas pues son esencialmente quienes donan el amargor deseado (Verstrepen, 2003). 2.10.5. Enfriamiento del Mosto El mosto obtenido por sacarificación de la malta o de los adjuntos y por proteólisis de las proteínas de la malta, es llevado a ebullición durante hora y media con el lúpulo para otorgarle el amargo, a lo largo de esta ebullición la esterilización completa es obtenida gracias al pH que oscila alrededor de 5.3 (Hough, 1990). Los precipitados proteicos son eliminados por sedimentación, filtración o centrifugación; el mosto es enseguida enfriado a la temperatura de inoculación de la levadura, esta temperatura depende del tipo de levadura empleada y del tipo de cerveza a fabricar entre 6 a 20ºC (Hough, 1990). Durante el enfriamiento un nuevo precipitado de polifenoles-proteínas se forma, por un lado por enlaces de hidrógeno y también por la falta de solubilidad de las prolaminas. La presencia de este nuevo precipitado juega un rol esencial sobre la formación de H2S por la levadura (Verstrepen, 2003). El mosto enfriado, en principio estéril, debe ser aireado antes del inicio de la fermentación, de no ser aireado la tasa de mortalidad de la levadura aumentaría a tal punto que ésta no podría ser reutilizada; la oxigenación 42 del mosto antes del inicio de la fermentación permite a la levadura sintetizar ácidos grasos insaturados (oleícos, linoleícos, y linolénicos), en ausencia de estos ácidos grasos la pared celular esta sujeta a alteraciones lo cual lo hace más permeable a los ésteres correspondientes a los alcoholes superiores que ella misma forma (Klimovitz, 2002). La composición del mosto es muy variable en función al tipo de cerveza fabricada, su densidad puede variar entre 2 a 20 grados Plato (ºP), es decir que puede contener de 2 a 20g de soluto por 100g de líquido; a su vez puede ser rico o no en aminoácidos y péptidos en función de la importancia de la proteólisis y de la proporción de adjuntos utilizados (Klimovitz, 2002). La relación maltosa/dextrinas es igualmente variable de acuerdo al método de cocimiento escogido. De manera general se puede decir que el mosto es un medio incompleto, normalmente carente de aminoácidos y ácidos grasos insaturados pues es imposible obtener un crecimiento rápido y completo de levadura; cosa que no sucede si se tratara de un medio sintético a base de extractos de levadura (Klimovitz, 2002). 2.10.6. Fermentación Hasta esta etapa se ha preparado un líquido complejo y se ha purificado cuidadosamente hasta el momento de agregar la levadura cervecera para producir su fermentación (Hornsey, 2003). Inicialmente, se agrega al mosto frío, levadura en una cantidad calculada, para que quede en el mosto de 8 a 10 millones de células por cc. Para la fermentación de mosto concentrado, se usa un millón de células por cc por cada grado plato del mosto (Hornsey, 2003). La cantidad de levadura previamente determinada se diluye en el mosto y luego se inyecta a la línea de mosto frío durante el enfriamiento. La cantidad total de levadura 43 que se inyecta se calcula teniendo el cuenta el volumen de mosto que va contener la tina de fermentación (Hornsey, 2003). La temperatura inicial de fermentación puede variar entre 6 a 10 ºC. Una vez que se inicia la fermentación se aprecian como cambios notorios, el descenso del extracto, la producción de gas carbónico y el desprendimiento de calor; durante la fermentación se controla el descenso de la densidad regulando la temperatura con atemperadores (serpentines o chaquetas), por los cuales circula agua fría o salmuera o agua glicolada a temperaturas que oscilan entre 1 a 2 ºC para el caso del agua y de -5 a -10 ºC para el caso de la salmuera o el agua glicolada (Xiao, 2004). Para recolectar el gas carbónico que se desprende de la fermentación, comúnmente el tanque está conectado por la parte superior con dos tuberías; una que va a la intemperie y la otra que va a la planta de purificación de gas carbónico. En la planta de gas carbónico, éste es purificado y licuado con el fin de inyectarlo posteriormente a la cerveza (Hornsey, 2003). Cuando se alcanza el extracto límite o sea hasta donde se le va a dejar fermentar se abre el frío para conseguir enfriar la cerveza y para que la levadura se alimente (Xiao, 2004). Se consigue enfriar la cerveza hasta 5 ºC y se suspende el envió de gas carbónico a la planta, luego se bombea la cerveza a los tanques de maduración y se recupera la levadura (Hornsey, 2003). A la cantidad de levadura obtenida en cada fermentación se le denomina cosecha de levadura, lo normal es obtener 4 veces la cantidad de levadura agregada (Hornsey, 2003). Al final de esta cuando los azucares han sido transformados hasta alcohol y gas carbónico se tendrá la cerveza. Después de la fermentación la 44 cerveza es separada de la levadura, la cual puede ser utilizada para fermentar más mosto, posteriormente. La fermentación juega un rol esencial en la calidad de la cerveza, en particular gracias a los productos secundarios como los alcoholes superiores y ésteres; es también la etapa de la fabricación más difícil de controlar (Xiao, 2004). La levadura que es reutilizada de una fermentación a otra no tiene un metabolismo estable; ésta se va degenerando. 2.10.6.1. Principales transformaciones que tiene lugar durante la fermentación 2.10.6.1.2. Consumo de oxígeno Durante la fermentación, se distinguen dos procesos muy diferentes en el metabolismo de la levadura. El primero de ellos es el proceso de crecimiento o multiplicación celular, el cual es caracterizado por un incremento en el número de células. El segundo es el proceso del extracto, es decir, consumo del extracto y formación de alcohol (Klimovitz, 2002). Después de que la célula se ha adaptado a la presión osmótica del mosto y los nutrientes han permeado hacia el interior de ella, comienza el proceso de crecimiento. La multiplicación requiere energía, está es proporcionada por los azúcares que son metabolizados por una larga cadena de reacciones enzimáticas. Primero que todo, la energía producida por estas reacciones es usada para el principal propósito de la vida; la multiplicación (Klimovitz, 2002). Para obtener una buena multiplicación celular, el mosto debe ser aireado. Es bien sabido que el oxígeno juega un papel muy importante en el crecimiento celular o mejor, en la formación de la membrana celular. La membrana celular está compuesta fundamentalmente por proteínas, carbohidratos y materiales grasos, de los cuales los más importantes son 45 los esteroles y los glicéridos; los glicéridos son compuestos en los que el glicerol está unido a ácidos grasos, algunos de ellos insaturados (Klimovitz, 2002). La síntesis de los esteroles y de los ácidos grasos insaturados son dos de las pocas reacciones en el metabolismo de la levadura, que requieren oxígeno molecular (Klimovitz, 2002). La energía producida a partir de los carbohidratos es acumulada en forma de ATP; éste puede ser utilizado en la formación de acetil-CoA (Coenzima A) la cual reacciona de muchas formas diferentes. Durante la etapa de crecimiento la célula de levadura utiliza este compuesto activo para la síntesis de esteroles y de ácidos grasos insaturados, consumiendo el oxígeno; consecuentemente, la cantidad de oxígeno proporcionado al mosto con la aireación es decisiva para la multiplicación celular. Cuando el oxígeno ha sido consumido, cesa la síntesis de esteroles y ácidos grasos y por lo tanto la acetil-CoA puede ser utilizada en otras reacciones (Klimovitz, 2002). Muchos investigadores han asociado con el metabolismo de los lípidos en la levadura, la formación durante la fermentación, de los ésteres encontrados en la cerveza, los cuales constituyen un grupo importante entre los compuestos volátiles de la cerveza debido a su fuerte y penetrante aroma a frutas (Heggart, 1999). Los ésteres son formados por la combinación de un ácido orgánico y un alcohol con la pérdida de agua. Los ésteres encontrados en cerveza son normalmente ésteres del ácido acético. La formación de ésteres requiere energía, no es una reacción espontánea. El acetato activo o acetil-CoA, que es formado en la levadura por el ácido pirúvico, es un compuesto de alta energía (Verstrepen, 2003). 46 El ácido acético unido a la coenzima es inestable y puede fácilmente separarse a ácido acético libre, que en presencia del alcohol puede formar el correspondiente acetato, utilizando la energía del acetil-CoA (Harper, 2004). Otros ácidos como el pirúvico, que también son formados durante la fermentación, no forman ésteres muy fácilmente debido a que no se encuentran unidos a coenzimas en enlaces de alta energía (Harper, 2004). El ácido succínico se encuentra unido a la coenzima A y los ácidos son elaborados por la levadura a partir de sus enlaces con la coenzima A, así que los ésteres de estos ácidos se encuentran en la cerveza pero a muy bajas concentraciones. La mayor parte del aroma de la cerveza se debe a acetatos (Verstrepen, 2003). La acetil—Coenzima A participa en una variedad de reacciones metabólicas, entre las cuales se destacan su oxidación cíclica por la vía del TCA y su papel en la formación de las unidades fundamentales para la síntesis de los ácidos grasos (Harper, 2004). La producción de ésteres está influenciado por cualquier factor que afecte tanto la biosíntesis como el consumo de acetil Coenzima A. 2.10.7. Maduración Es la etapa siguiente a la fermentación y comprende todo el tiempo que dure la cerveza en los tanques a baja temperatura antes de ser filtrada. Comúnmente se divide en dos etapas que son reposo y acabado, entre el reposo y el acabado puede haber una prefiltración, pre-enfriamiento y precarbonatación (Klimovitz, 2002). 47 La maduración se puede hacer: 2.10.7.1. Dos etapas Reposo y acabado y durante el reposo hacer una segunda fermentación, en el paso de reposo a acabado la temperatura es de 2 a 3 ºC y en acabado se puede enfriar a -1 ºC (Klimovitz, 2002). 2.10.7.2. Fermentar hasta el extracto límite Este sistema es americano y en el paso de fermentación a reposo se efectúa el enfriamiento y entre reposo y acabado, pre-carbonatación, prefiltración y pre-enfriamiento y durante la filtración final se hace también enfriamiento (Klimovitz, 2002). Los objetivos de la maduración consisten en acumular o almacenar cerveza, dejar sedimentar en forma natural la materia amorfa y la levadura que aún tiene la cerveza, refinación del sabor por eliminación de las sustancias volátiles que causan el sabor verde, separación por precipitación de los compuestos que se forman al ser enfriada la cerveza, es muy importante considerar que la cerveza se enturbia al ser enfriada después de haber sido filtrada, otro de los objetivos es completar la atenuación límite que no ha sido alcanzada en la fermentación y también se busca carbonatar la cerveza (Klimovitz, 2002). Al recibir la cerveza en un tanque de maduración es necesario contrapresionar para evitar la salida de gas y la formación de espuma. Es un factor que puede contribuir a la deficiencia de espuma. Durante la maduración la cerveza debe mantenerse bajo presión de 0.3 a 0.5 atmósferas para evitar la oxidación y facilitar la clarificación (la levadura con presión tiende a sedimentarse y más con frío) y se evita el exceso de 48 purga. Al recibo la contrapresión puede ser con aire o con gas carbónico. Después se deja bajar la presión con el objeto de efectuar purga y eliminar aire en la parte vacía del tanque. Luego se cierra y se sostiene algo de presión porque de lo contrario, se daría una eliminación de muchas sustancias volátiles y se afecta el aroma de la cerveza. El tanque no se llena completamente (Klimovitz, 2002). Si la maduración es muy larga o prolongada el sabor se suaviza demasiado, pierde cuerpo, pierde amargo y queda muy simple. Con respecto a la temperatura de cerveza en maduración se especifica entre -2 y 0 ºC si se hace segunda maduración se pasa a la etapa de reposo de 2 a 3ºC y cuando se pasa al acabado se enfría a -2ºC. Si es mayor de 0ºC puede presentarse autólisis de la levadura que pasa a maduración afectando el sabor, se presentan coagulaciones de las sustancias que precipitan en frío (proteosas o peptonas - taninos) y por tanto se obtienen cervezas químicamente inestables, también por esta temperatura alta no se obtiene una buena clarificación y por lo tanto cervezas muy turbias al final de la maduración que causan problemas en la filtración. Al subir la temperatura se puede aumentar el efecto de la oxidación (Heggart, 1999). En referencia al tiempo de la maduración cuando se hace en una sola etapa se deja de 2 a 3 semanas. Cuando es en dos etapas el tiempo de la primera etapa dura comúnmente 2 semanas y el tiempo de acabado o segunda etapa dura aproximadamente una semana. La producción debe ser programada de tal manera que la cerveza tenga una maduración uniforme (Klimovitz, 2002). Si el tiempo es corto menos de 15 días es posible que se obtenga un mal sabor, no precipiten las sustancias que causan estabilidad química deficiente, no se clarifique bien la cerveza originando problemas de filtración (Klimovitz, 2002). 49 Al final de la maduración como se va a llevar a cabo una filtración y por lo tanto una eliminación de la levadura se tendrá que proteger la cerveza agregándole antioxidantes para que se combinen con el oxígeno y evitar que se combine con la cerveza pudiéndose emplear ácido ascórbico o bisulfito de sodio o potasio y para mejorar la clarificación de la cerveza se emplean clarificantes que pueden ser gelatina, viruta y una mezcla de bentonita con ácido tánico (Heggart, 1999). La clarificación normal de la cerveza en maduración es afectada por maltas muy frescas sin el debido tiempo de reposo, temperaturas altas en maduración, alto extracto fermentable residual, poco tiempo de maduración, falta de presión positiva en los tanques de maduración y también por maltas mal modificadas o con un alto contenido de beta glucanos (Heggart, 1999). 2.10.8. Filtración Después de la maduración y antes del embotellamiento, la cerveza pasa de nuevo por una filtración con tierra diatomácea que elimina los últimos restos que puedan quedar de la fermentación y también los restos de nitrógeno que durante la maduración han formado una especie de mucosa, lo que podría provocar más adelante que la cerveza saliera turbia (Hornsey, 2003). 2.10.9. Envasado Antes de llevar la cerveza a la máquina de llenado se inyecta CO2 en los tanques hasta conseguir la saturación deseada, para que la cerveza salga de su recipiente con una buena capa de espuma (Hornsey, 2003). Para alargar el tiempo de conservación de una cerveza, sin que cambie de aspecto, se esteriliza por medio de la pasteurización después del envasado (las botellas pasan por un túnel con agua a 70ºC), o con una 50 pasteurización flash antes de envasar (durante el recorrido del tanque a la cadena de envasado la cerveza se calienta hasta 65º C) (Hornsey, 2003). 51 3. JUSTIFICACIÓN La calidad de la cerveza en el sentido más amplio, es la suma de todas aquellas características que le permiten a un producto llenar los requisitos del mercado y atraer a los consumidores para quienes está dirigido; la calidad también es usada para denotar la ausencia de defectos y, mientras que el término se aplica tanto al empaque como al proceso de elaboración del producto, sólo este último aspecto será evaluado en este proyecto. Las cervecerías generan y recolectan grandes cantidades de información con respecto a características específicas de la producción de la cerveza tanto en producto en proceso como en el producto terminado, la cual requiere ser analizada de una manera confiable para que se constituya en una herramienta básica para el control de su proceso. Considerando esto, se hace importante la necesidad de conocer el comportamiento microbiológico de la cerveza, en cada una de sus etapas de producción, para que al obtener los datos, dicha información contribuya a mejorar la calidad, consistencia del producto y confiabilidad del proceso que se lleva a cabo, para establecer finalmente que los análisis realizados son precisos y repetibles, que están utilizando los controles proceso adecuados, para que los cerveceros puedan centrar su atención en la administración y mejora continua del proceso. 52 4. OBJETIVOS DEL PROYECTO 4.1. Objetivo general Evaluar la calidad microbiológica del producto en proceso en una planta productora de bebidas alcohólicas. 4.2. Objetivos específicos • Determinar el número de células de levadura en los tanques de fermentación y maduración durante el proceso de elaboración del producto mediante el recuento en cámara de Neubauer • Determinar la presencia de levaduras tipo Saccharomyces y tipo no Saccharomyces en los procesos de fermentación y maduración. • Evaluar la presencia de mutantes de levaduras del proceso (Respiración Deficiente (RD) y Variants) • Determinar la presencia de bacterias contaminantes del proceso: coliformes y ácido lácticas. 53 5. MATERIALES Y MÉTODOS 5.1. Tipo de estudio Esta investigación se realizó de manera experimental y se valoró la calidad microbiológica del producto en proceso, para esto se realizó la toma de muestras en cada una de las etapas de producción de la cerveza Figura 5. Se determinó que aunque existen puntos del proceso donde se pueda presentar contaminación por factores externos a los de la producción propiamente dicha, estos no afectan la calidad del producto terminado. Figura 5. Proceso Cervecero 54 El manejo de las muestras se realizó, utilizando material estéril (botellas biológicas y Frascos Shoot) y su almacenamiento previo a la siembra se llevó a cabo bajo condiciones de refrigeración para evitar cualquier foco de contaminación ajeno al proceso de las muestras que fueron evaluadas. Figura 6. Material para toma de muestras 55 Los resultados obtenidos durante todo el proceso de investigación, fueron consignados en el formato previamente establecido por la Empresa (Anexo 1). 5.2. Análisis Microbiológicos del proceso MUESTRAS Chase Water PCA (Agua de Empuje) 1ml Mosto 1ml ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS MAC RAKA MYGP CONKEY WLN WLD RAY SDM LISINA TTC FRECUENCIA 0.2ml Diario 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml v 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml X Diario 0.2ml 0.2ml v 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml X Diario 0.2ml 0.2ml v 0.2ml 0.2ml 0.2ml 0.2ml X C/Propagac. 0.2ml 20ml 250ml Diario 0.2ml 20ml 250ml Semanal Diario Fermentaciones 24 – 96 H Maduraciones 4 – 6 días Propagación en cada etapa 1ml BBT Sifón Agua Desairada Tanques y Torres 1ml 100ml Semanal Acueducto 1ml 100ml Semanal Tierra Diatomácea 0.2ml 0.2ml Tabla 2. Análisis Microbiológicos 56 Semanal 5.3. pH de medios de cultivo, Tiempos, Temperaturas y Métodos de Incubación Medio WLN pH 5.5 - 5.8 Tº Incubación Tiempo Incubación 25ºC 5 días Comentario Leer a los 3 días y si esta negativo incubar 2 días más Método de Incubación Microorganismo Levaduras/hongos Aerobio /bacterias Leer a los 3 días y si esta WLD 5.5 - 5.8 Raka Ray 5.4 ± 0.2 25ºC 5 días negativo incubar 2 días más Aerobio Bacterias 25ºC 7 días -------------------- Anaerobio Mic.Ácido lácticos Leer a los 5 días y si esta Lisina 4.8 ± 0.2 * 25ºC 7 días negativo incubar 2 días más Lev Salvaje no Aerobio Saccharomyces Aerobio Levadura salvaje Aerobio Bacterias Leer a los 5 días y si esta SDM ----- 25ºC 7 días negativo incubar 2 días más Leer a las 48 Horas y si esta PCA 7.0 ± 0.2 30ºC 4 días negativo incubar 2 días más Bacterias PCA 7.0 ± 0.2 44ºC 48 Horas - - - - - - - - - -- - - - - - - - Aerobio Termotolerantes 7.1 ± 0.2 30ºC 48 Horas ------------------- Aerobio Coliformes Agar Mac Conkey Agar Mac Coliformes Conkey** 7.1 ± 0.2 44ºC 48 Horas ------------------ Aerobio Termotolerantes MYGP 5.0 - 6.0 25ºC 4 días ------------------ Aerobio RD (petite mutans) WLN 5.5 - 5.8 25ºC 5 días ------------------- Aerobio Variants (verdants) Tabla 3. pH, Tiempos, Temperaturas y Métodos de Incubación * pH después de adicionar el ácido láctico ** El manual de Oxoid recomienda no incubar más de 48 Horas el agar Mac Conkey ya que puede dar resultados confusos. (Sept. 27 de 2006) 5.4. Técnicas Empleadas 5.4.1. Siembra en Placa Para el aislamiento e identificación de los diferentes microorganismos que pueden crecer en los medios de cultivo mencionados anteriormente, se 57 utiliza la técnica de siembra en superficie, donde se inocula 0,2 ml de la muestra a evaluar y se lleva a cabo la homogenización de ésta utilizando la espátula de Digralski. Para llevar a cabo la siembra en el medio Plate count agar, se utiliza la siembra en profundidad, donde se inocula 1 ml de la muestra y posteriormente se adiciona el medio de cultivo líquido a una temperatura adecuada para evitar la muerte de los microorganismos o inhibición de los microorganismos, la homogenización se realiza de manera manual haciendo suaves movimientos giratorios de la caja de petri. Una vez transcurrido el tiempo de incubación adecuado para cada medio de cultivo, se realiza el recuento de unidades formadoras de colonias (UFC); Estos recuentos dan la pauta de la cantidad de microorganismos presentes en una muestra, como también el grado de contaminación o concentración de microorganismos, en productos industriales (Escobar, 2002). 5.4.2. Filtración por membrana La filtración por membrana se ha convertido en una parte importante de la tecnología de la separación en los últimos decenios. Su importancia radica en el hecho de que trabaja sin la adición de productos químicos y conducciones de proceso fáciles y bien dispuestas. La membrana funciona como una pared de separación selectiva. Ciertas sustancias pueden atravesar la membrana, mientras que otras quedan atrapadas en ella. Es un proceso de bajo coste energético. La mayor parte de la energía requerida es la necesaria para bombear los líquidos a través de la membrana. Al llevar a cabo el recuento de las UFC sólo deben ser contadas las colonias que se han formado en la membrana y dicho número se divide por el volumen filtrado. 58 5.4.3. Recuento en cámara de Neubauer 5.4.3.1. Levadura en Proceso de Fermentación y Maduración 1. Mezclar vigorosamente la muestra a analizar. 2. Tomar 1 ml de muestra utilizando una pipeta graduada y verter en tubo falcon de 10 ml. 3. Adicionar 9 ml de ácido acético al 10% (únicamente para las muestras de fermentación) 4. Se mezcla nuevamente la muestra utilizando el vortex. 5. Montar la muestra en la cámara y realizar el recuento en el cuadrante del centro 6. El recuento de células obtenidas se multiplica por los 5 cuadrantes donde se llevó a cabo el conteo, por el factor de la cámara 104 y por el factor de dilución utilizado 101. 59 6. RESULTADOS Los datos utilizados para la construcción de las tablas que aparecen en este capítulo, salvo que se indique lo contrario en el texto, son los datos promedio de la totalidad de los resultados obtenidos durante el tiempo en el cual se evaluó la calidad microbiológica de cada una de las etapas de producción. Parámetro Nº Muestras analizadas 5 Acueducto (Enero) Acueducto (Febrero) Acueducto (Marzo) Acueducto (Abril) Acueducto (Mayo) PCA % DE UFC/ml Mac Conkey UFC/100cm3 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% Tabla 4. Agua Acueducto de Cali Parámetro Enjuague tanque 101 Enjuague tanque 102 Enjuague tanque 103 Enjuague tanque 104 Enjuague tanque 105 Enjuague tanque 106 Enjuague tanque 107 Enjuague tanque 108 Enjuague Nº Muestras analizadas PCA WLN WLD UFC/ml UFC/ml UFC/ml 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 (1) 20 0 0 40 0 0 80% 0 100% 0 95% % DE 0 20 (1) 20 0 0 5 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 60 tanque 109 Enjuague tanque 110 Enjuague tanque 401 Enjuague tanque 402 Enjuague tanque 403 Enjuague tanque 404 Enjuague tanque 408 Enjuague tanque 409 Enjuague tanque 410 Enjuague tanque 411 Enjuague tanque 412 Enjuague tanque 1 Enjuague tanque 2 Enjuague tanque 3 Enjuague tanque 4 Enjuague tanque 5 20 (1) 20 0 0 90% 0 0 10 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% 20 0 0 0 100% Tabla 5. Enjuagues de Tanques [fermentación (101 – 110), Maduración (401 – 412) y Filtración (1 - 5)] Figura 7. Enjuague Tanque 103 61 Parámetro Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Agua de empuje Mosto Nº Cocimiento Nº Muestras analizadas PCA UFC/ml WLN UFC/ml WLD UFC/ml Mac Conkey UFC/ml % DE 1-5 3 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 8 - 12 9 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 16 - 20 19 5 1 0 0 0 0 0 NA NA 100% 100% 24 - 28 25 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 32 - 36 34 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 40 – 44 42 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 48 – 52 50 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 56 – 60 60 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 64 - 68 66 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 72 – 76 73 5 1 0 0 0 0 0 NA 0 NA 100% 100% 80 - 84 5 0 0 0 0 100% Tabla 6. Agua de Empuje y Mosto 62 Parámetro Propagación A Hls 80 Propagación A Mac Conkey UFC/ml Raka Medio Ray Lisina WLN WLD SDM UFC/ml UFC/ml UFC/ml UFC/ml UFC/ml 0 0 0 0 0 0 % DE 100% 120 0 0 0 0 0 0 100% Propagación B 80 0 0 0 0 0 0 100% Propagación B 120 0 0 0 0 0 0 100% Propagación C 80 0 0 0 0 0 0 100% Propagación C 120 0 0 0 0 0 0 100% Propagación D 80 0 0 0 0 0 0 100% Propagación D 120 0 0 0 0 0 0 100% Propagación E 80 0 0 0 0 0 0 100% Propagación E 120 0 0 0 0 0 0 100% Tabla 7. Propagación de Levadura Parámetro Fermentación 24 Horas Nº Muestras Analizadas Mac Conkey UFC/ml Raka Medio Ray Lisina WLN WLD SDM UFC/ml UFC/ml UFC/ml UFC/ml UFC/ml 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 100% 80 0 0 0 0 0 0 % DE Fermentación 48 Horas Fermentación 72 Horas Fermentación 96 Horas Maduración 4 Días Maduración 5 Días Maduración 6 Días Tabla 8. Fermentaciones y Maduraciones 63 100% Figura 8. Medios de Cultivo Utilizados para el análisis de muestras (Propagación, Fermentaciones y Maduraciones) 64 Clase de Levadura /Generación A A A A A A1 A1 A1 A1 A2 A2 A2 A3 A3 A3 A3 B B B B B1 B1 B1 B1 B2 B2 B2 B2 B3 B3 B3 C C C C C1 C1 C1 C1 C2 C2 C2 C2 C3 Tanque N° 102 107 104 103 108 106 109 105 101 110 107 104 103 102 108 106 109 105 101 110 107 104 103 102 108 106 109 105 101 110 107 102 108 106 109 105 107 101 110 102 103 108 106 105 65 % Petite mutants 0% 0% 0% 0% 0,71% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0,75% 0% 0% 0% 0,65% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0,69% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0,59% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% C3 C3 C4 C4 C4 D D D D D D1 D1 D1 D1 D2 D2 D2 D2 D2 D3 D3 D3 D3 D3 E E E E E E1 E1 E1 E1 E2 E2 E2 E2 E3 E3 E3 E3 103 107 101 110 102 103 104 109 106 105 107 110 101 108 102 103 104 109 106 107 105 103 101 110 102 103 104 107 102 101 103 107 108 106 101 109 102 103 104 110 106 Tabla 9. Respiración Deficiente 66 0% 0% 0% 0% 0,81% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0,59% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% 0% Nº Muestras analizadas Parámetro Agua desairada Tanque 1 Agua desairada Tanque 2 Agua desairada Entrada Torre Agua desairada Salida Torre Agua desireada Salida Torre PCA Mac Conkey UFC/ml UFC/100cm3 22 0 0 100% 22 0 0 100% 22 0 0 100% 22 0 0 100% 22 0 0 100% Tabla 10. Agua Desairada Parámetro Tierra Diatomácea (Enero) Tierra Diatomácea (Enero) Tierra Diatomácea (Febrero) Tierra Diatomácea (Febrero) Tierra Diatomácea (Marzo) Tierra Diatomácea (Marzo) Tierra Diatomácea (Abril) Tierra Diatomácea (Abril) Tierra Diatomácea (Mayo) Tierra Diatomácea (Mayo) Nº Muestras analizadas WLN WLD UFC/ml UFC/ml 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% 5 0 0 100% % DE Tabla 11. Tierra Diatomácea 67 % DE Parámetro BBT Tanque 1 Nº Muestras Analizadas Mac Raka Conkey WLN Ray UFC/ml UFC/ml UFC/ml PCA UFC/ml 80 0 0 9.8 0 100% 80 0 0 9.8 0 100% 80 0 0 9.4 0 100% 80 0 0 7 0 100% 80 0 0 9.2 0 100% % DE BBT Tanque 2 BBT Tanque 3 BBT Tanque 4 BBT Tanque 5 Tabla 12. Tanques Análisis BBT`s Parámetro Sifón Poker Nº Mac Raka Muestras Conkey WLN Ray Analizadas UFC/ml UFC/ml UFC/ml Sifón Costeña 30 0 9.8 0 % DE 100% 30 0 9.4 0 100% Tabla 13. Sifón (Cerveza sin pasterizar) Recuentos Celulares Fermentaciones UFC/ml Promedio Tanque Enero 101 102 103 104 105 106 107 108 109 110 1,2E+06 1,7E+06 1,4E+06 1,4E+06 1,3E+06 1,4E+06 1,9E+06 1,3E+06 1,7E+06 2,3E+06 Febrero 1,3E+06 2,2E+06 1,1E+06 1,7E+06 1,6E+06 1,2E+06 1,2E+06 1,8E+06 2,0E+06 1,4E+06 Marzo Abril Mayo 2,0E+06 1,8E+06 1,3E+06 2,1E+06 1,5E+06 2,3E+06 1,6E+06 1,3E+06 1,4E+06 1,9E+06 1,8E+06 1,5E+06 2,3E+06 2,6E+06 1,8E+06 2,1E+06 1,5E+06 1,8E+06 2,1E+06 1,7E+06 1,7E+06 1,1E+06 1,2E+06 1,9E+06 2,1E+06 1,1E+06 1,8E+06 1,5E+06 2,2E+06 1,3E+06 Tabla 14. Conteos Celulares Fermentaciones 68 Recuentos Celulares Maduraciones UFC/ml Promedio Tanque Enero Febrero Marzo Abril 401 1,2E+04 1,4E+04 1,3E+04 1,9E+04 402 1,7E+04 1,4E+04 1,4E+04 1,3E+04 403 2,0E+04 1,3E+04 1,5E+04 1,6E+04 404 1,8E+04 2,1E+04 2,3E+04 1,3E+04 408 1,3E+04 1,1E+04 1,6E+04 1,2E+04 409 2,2E+04 1,7E+04 1,2E+04 1,8E+04 410 1,7E+04 1,2E+04 2,1E+04 1,8E+04 411 1,1E+04 1,9E+04 1,1E+04 1,5E+04 412 1,8E+04 1,5E+04 2,3E+04 2,1E+04 Tabla 15. Conteos Celulares Maduraciones 69 Mayo 1,7E+04 2,3E+04 1,4E+04 1,9E+04 2,0E+04 1,4E+04 2,2E+04 1,3E+04 1,8E+04 7. DISCUSIÓN DE RESULTADOS Tradicionalmente la calidad se ha definido como el nivel de conformidad de un producto a su diseño o especificaciones. Esta calidad es la que se puede generar y controlar dentro de la fábrica, logrando de esta manera acreditar una marca cuya personalidad se caracteriza por una serie de parámetros, unos de orden legal, otros típicos del proceso tales como controles físico-químicos, organolépticos y microbiológicos y unos más frutos del diseño de imagen del producto, por esto, para cada una de las cervezas que elabora, está establecida una norma o parámetro que define exactamente la calidad que se debe alcanzar; sin embargo, aunque pueden existir variaciones en las materias primas, mano de obra y el proceso propiamente dicho, se deben evitar al máximo diferencias entre los distintos lotes durante el proceso de fabricación, esto con el fin de obtener un producto homogéneo, lo que implica una estandarización del proceso de producción; por esto se desarrolló un sistema de control en cada una de las fases del proceso para limitar la presencia de contaminantes, que terminan afectando finalmente a los consumidores; para asegurar esto, se hace imprescindible impedir, entre otros, la presencia de patógenos y de contaminantes indeseables. Ambos aspectos, en especial el primero, se consiguen mediante la pasterización y otros sistemas de eliminación (García, 2007). Pero para certificar la inocuidad de la producción, se requieren distintos procesos de verificación y es precisamente en este punto donde se evaluó la calidad microbiológica del producto identificando algunas de las desviaciones que se pueden presentar y de esta manera con los resultados obtenidos brindar un apoyo durante el proceso de elaboración, para que una vez finalizada la producción se asegure que el producto cuando sale al mercado cumple con las especificaciones establecidas. Un plan de control incluye la periódica toma de muestras a lo largo de todo el proceso para su análisis directo al microscopio y a través de 70 medios de cultivo adecuados para obtener crecimiento de colonias y realizar una verificación más especializada de las mismas, características que no son posibles de identificar en una muestra en fresco (Hornsey, 2003). El control microbiológico se ocupa del estudio y determinación de los microorganismos diferentes a la levadura cervecera cultivada, que pueden contaminar el producto influyendo en la calidad del producto terminado (Hornsey, 2003). Para garantizar que el proceso inicia libre de microorganismos contaminantes, se evaluó la calidad del agua potable suministrada por el acueducto municipal de Cali, ésta se tuvo en cuenta debido a que algunas de las tuberías de la cervecería se encuentran deterioradas y podrían convertirse en una fuente de contaminación importante puesto que pueden aportar una carga microbiana que podría terminar en una alteración de todos los procesos llevados a cabo en la cervecería; se realizaron análisis microbiológicos para identificación de mesófilos y coliformes los cuales usualmente indican la presencia de otros contaminantes microbiológicos. El límite máximo de coliformes totales es de 0 UFC/100 cm3 y ninguna muestra debe contener E. coli o coliformes fecales en 100 cm3 de de agua (Decreto 475), durante todo el transcurso de esta evaluación se obtuvo un recuento de cero unidades formadoras de colonias (UFC/100cm3); estos resultados garantizaban, que el agua utilizada en la cervecería en los diferentes procesos como enjuagues de tanques o como agua de dilución, se mantenían libre de contaminación microbiológica. Partiendo de este hecho, se evaluaron los enjuagues realizados a los diferentes tanques que se encuentran en la planta (fermentación, maduración y filtración) y que son utilizados para almacenamiento de materia prima y producto, puesto que durante el proceso de elaboración de cerveza se producen precipitados, tanto de sales inorgánicas como de productos orgánicos y adherencias de los mismos a las superficies de los depósitos, las tuberías y otras piezas del equipo con las que entra en 71 contacto el mosto y la cerveza , el no mantener una adecuada rutina de limpieza le estaría agregando esta contaminación al producto en proceso y por consiguiente contaminaría tuberías, mangueras y demás (Klimovitz et al, 2002). Estos precipitados están constituidos fundamentalmente por sales de calcio, magnesio, proteína desnaturalizada y levadura que en caso de no ser eliminados durante el enjuague realizado, estarían proporcionando nutrientes y protección a los microorganismos contaminantes (Klimovitz et al, 2002). La rutina de limpieza, supone primero un lavado con agua, que va seguido por rociado a alta velocidad de un fluido germicida como Soda cáustica a concentraciones del 3%, a una temperatura de 80^85°C, se realiza un segundo enjuague y se adiciona posteriormente ácido nítrico a una concentración que oscila entre 2 – 2.5%, después se somete a un último enjuague utilizando una presión aproximada de 80 – 150 con una ducha (Khatcher) de agua potable fría, finalmente se realiza un último enjuague utilizando dióxido de cloro, el cual supera varias de las limitaciones asociadas con residuales libres y asociados del cloro (Klimovitz et al, 2002). El dióxido de cloro es un oxidante más estable y fuerte que el cloro y más efectivo, no sólo para desinfectar más rápidamente a niveles residuales más bajos que el cloro, sino para oxidar muchos materiales y remover olores. No forma trihalometanos o clorofenoles, y no reacciona con amoníaco. Con el dióxido de cloro, dosificaciones más bajas son requeridas para mantener un residual de desinfección de 0.3mg/L (Hornsey, 2003), por lo tanto éste no solo esteriliza, si no que a su vez facilita la limpieza. Es en este punto donde de una manera aséptica y con la botella estéril que contiene una cantidad adecuada de tiosulfato de sodio a una concentración previamente establecida, el operario tomaba la muestra y la llevaba al laboratorio, donde era almacenada en la nevera a una temperatura promedio de 4ºC, posteriormente, al analizar los resultados 72 obtenidos se encontró que del total de muestras analizadas 3 tuvieron crecimiento, al hacer el análisis de causas se encontró que debido a fallas operacionales la concentración utilizada en los sanitizantes empleados para llevar a cabo el aseo se había realizado de manera incorrecta, causando este tipo de contaminación, sin embargo, en las demás muestras no se evidenció crecimiento de ningún microorganismo típico o ajeno del proceso cervecero en los diferentes medios de cultivo utilizados WLN y WLD, indicando de esta manera que el inicio de los procesos llevados a cabo en dichos tanques se podían llevar a cabo de manera adecuada y que si durante una etapa posterior del proceso se llegará a encontrar algún tipo de contaminación, ésta fuera una variable para descartar. El proceso de producción inicia con el cocimiento del mosto, cuya composición determina las propiedades de la cerveza como producto terminado. Antes de iniciar con el enfriamiento del mosto se pasa por el tanque agua caliente o agua de empuje, esta operación se realiza debido a que el punto letal de algunos microorganismos varía con las especies y al hacerla pasar a una temperatura promedio de 70ºC se garantiza la eliminación de la mayoría de los microorganismos que no pueden sobrevivir bajo esas condiciones de calor (Hough, 1990); para esta muestra fueron evaluadas la presencia de mesófilos, bacterias termorresistentes y ácido lácticas, descartando cualquier posibilidad de contaminación y garantizando que el enfriamiento del mosto se iniciara de una manera adecuada. El mosto tiene que contener la cantidad correcta de azúcares fermentables y nutrientes para la levadura y precursores de sabor, éste es microbiológicamente inestable ya que constituye un medio ideal para la mayoría de las bacterias Gram negativas y algunas Gram positivas tolerantes a los antisépticos del lúpulo, además contiene carbohidratos simples, amino nitrógeno, minerales y micro nutrientes como vitaminas, por esto nunca se almacena a temperaturas por debajo de 55 0C por breve que sea el tiempo antes de añadirle el inóculo de cultivo (Hough, 1992). Bacterias como Lactobacillus delbrueckii, y otras 73 formadoras de endosporas, como son termófilas, pueden contaminar el mosto, multiplicarse rápidamente a temperaturas entre 50 - 650C y provocar acidez. Otras bacterias, que conforman la familia Enterobacteriaceae, al desarrollarse en el mosto producen derivados sulfurados y fenólicos que afectan el sabor final de la cerveza (Verstrepen, 2003). El mejor momento para hacer el muestreo es usualmente en el tanque de mosto caliente, puesto que es ahí donde se mezcla el cocimiento completo y se determina su volumen (Klimovitz et al, 2002). El mosto terminado fue analizado para asegurarse que la cerveza tendrá el extracto deseado, el color, el sabor, la espuma y la calidad microbiológica requerida para dar inicio al proceso de fermentación. Al mosto se le evaluó la presencia de mesófilos, coliformes y bacterias ácido lácticas, obteniendo 0 UFC/ml en todos los cocimientos evaluados, indicando de esta manera que la filtración, tiempos y temperaturas que se tienen ya estandarizados, son adecuados para evitar la proliferación de microorganismos ajenos al proceso; sin embargo si se hubiera presentado algún tipo de contaminación microbiana, ésta podría ser suprimida durante las etapas siguientes, fermentación y maduración (Klimovitz et al, 2002). La inoculación de la levadura se lleva a cabo inmediatamente después del enfriamiento del mosto, ya que éste puede contaminarse microbiológicamente con facilidad (Hornsey, 2003). Es importante notar que para poder producir una cosecha de levadura en un estado óptimo fisiológico para inoculación, deben tomarse una serie de pasos incrementales (Aguilar, 2003). Estos incrementos reintroducen a las células en crecimiento activo a una nueva fuente de nutrientes, de manera que el cultivo nunca se detenga a consecuencia de una privación de nutrientes (Hornsey, 2003). Igualmente, el mantener una concentración mínima inicial de por lo menos 106 células/ml por ºP, tiende a reducir el 74 riesgo de una contaminación microbiana por varias razones; en primer lugar porque no se queda un exceso de nutrientes sin asimilar por mucho tiempo y en segundo lugar porque el metabolismo de las levaduras tiende a bajar rápidamente el pH del mosto a niveles subóptimos para muchos microorganismos que dañan el mosto, tales como coliformes y otras bacterias entéricas mencionadas anteriormente (Hornsey, 2003). Durante los procedimientos de incremento, deben llevarse a cabo pruebas para asegurarse que la levadura que está siendo propagada este libre de contaminación especialmente con bacterias y levaduras salvajes (Heggart et al, 1999), por esto se evaluó la presencia de levaduras tipo Saccharomyces y tipo no Saccharomyces en medios de cultivo adecuados para evidenciar el crecimiento de este tipo de microorganismos como lo son el SDM y el medio lisina. La mayoría de las levaduras salvajes o tipo no Saccharomyces pueden amenazar el éxito de una operación cervecera, ya que pueden competir de manera efectiva (aeróbica, anaeróbicamente, o ambos) por los nutrientes del mosto utilizados por las levaduras cerveceras y producir una variedad de sabores y aromas indeseables similares a los producidos por bacterias contaminantes (Verstrepen et al, 2003). Algunas levaduras salvajes excretan amilasas y/o proteasas, y como resultado pueden reducir los componentes deseados en el producto final tales como las dextrinas o proteínas, dejando la cerveza opaca, característica indeseada. El crecimiento de número significativo de células de levaduras silvestres tiene el potencial de alterar las características de floculación del cultivo de producción, lo que a su vez puede resultar en una fermentación suspendida (Aguilar, 2005); al observar los resultados que se obtuvieron se ve claramente que este tipo de microorganismos no afectó ninguna de las propagaciones que se llevaron a cabo durante este tiempo. Así mismo, se evaluó para las fermentaciones, la presencia de bacterias contaminantes del proceso tales como coliformes y ácido lácticas, 75 encontrando en todos los casos un crecimiento nulo, y para garantizar el éxito de la fermentación se analizó también la presencia de mutantes de levaduras del proceso; aspecto muy importante a tener en cuenta puesto que al ser definida la mutación de la levadura como el cambio estable, heredable, en el DNA, que típicamente resulta en la generación de una forma nueva, alternada de gen, y un nuevo fenotipo (característica observable), podría afectar de manera considerable el proceso de fermentación (Philiph, 1985). Las mutaciones son usualmente detectadas mediante la pérdida o alteración observable de una función particular, tal como la asimilación de una fuente de nitrógeno o de carbono. De las muchas mutaciones que pueden ocurrir y tienen un efecto significativo en la fermentación, sólo tres son usualmente observadas. Estas son: pérdida de la habilidad de fermentar maltotriosa, pérdida de floculencia y deficiencia respiratoria; las dos primeras son a menudo el resultado de un daño al DNA cromosomal encontrado en el núcleo de la célula, mientras que la tercera es a menudo el resultado de un daño genético al DNA localizado en la mitocondria celular (Ha et al, 2002). Los cultivos que pierden la habilidad de fermentar maltriosa, atenúan al mosto incompletamente, ya que la maltriosa es un carbohidrato abundante en el mosto; por otro lado los cultivos que pierden su habilidad de floculación tienden a sobreatenuar al mosto, y, a menos de que sean removidos mediante centrifugación, pueden resultar en sabores indeseados de autólisis (Ha et al, 2002). Mutantes cromosomales espontáneos, o variantes, ocurren en promedio en aproximadamente una en un millón de células (Adams, 1998). Como resultado, estás células no producen rápidamente diferencias notables a una fermentación. El resultado para estos análisis fue negativo lo que indicó que la propagación comenzaba de una manera adecuada, dando paso a la fermentación, la cual iniciaba su contaminantes. 76 proceso sin ningún tipo de La fermentación es uno de los procesos más importantes y complejos en las operaciones de una cervecería. Frecuentemente, el maestro cervecero enfrenta los retos de cambios en el aroma y sabor a consecuencia de un inexplicable comportamiento y desempeño de la levadura durante la fermentación (Verstrepen, 2003). Tradicionalmente la fermentación cervecera es descrita como el proceso en donde los carbohidratos fermentables son transformados en etanol y numerosos subproductos y por medio de las interacciones con otros constituyentes del mosto, muchos de los compuestos de sabor en la cerveza se desarrollan (Oliveira, 1999). A pesar de su complejidad, la fermentación es dependiente en gran medida de tres parámetros básicos: la composición del mosto (nutrientes para la levadura); la levadura; y las condiciones de proceso (como tiempo, temperatura, volumen, presión, forma y tamaño del tanque, agitación y corrientes en el mosto en fermentación (Kelsall, 1995). Durante la fermentación debe hacerse cumplir un estricto control de calidad para asegurar que ésta procede normalmente y que la levadura está sana, libre de contaminación y que actúa como se espera tanto en suspensión como en floculación (Kelsall, 1995). Los contaminantes típicos en un proceso de fermentación de este tipo crecen en los primeros estadíos de la fermentación hasta que los descensos de pH y la elevación en la concentración de etanol le resultan adversos (Heggart at al, 1999). Pediococcos y Lactobacilos, pueden proliferar en esta etapa, ya que al ser los Lactobacilos generalmente insensibles a los amargos del lúpulo, sobreviven en un 5% de etanol, y son capaces de crecer en un rango de temperatura de 5 - 50ºC (Funahashi, 1998). Los Lactobacilos son 77 heterofermentativos, y producen ácido láctico, ácido acético, dióxido de carbono, etanol y glicerol como productos finales (Funahashi, 1998). Algunos hasta pueden producir diacetilo; mientras que los Pediococcos son los únicos cocos que se conocen pueden crecer en cerveza; crecen bien en ambientes anaeróbicos o microaerofílicos a temperaturas que van de 9 – 25ºC (Jacques et al, 1999). Al igual que los Lactobacilos, los Pediococos crecen bajo las condiciones ácidas encontradas durante la fermentación. Los Pediococos son fermentadores homolácticos, produciendo ácido láctico como producto final. También pueden producir suficiente diacetilo para alterar seriamente el sabor y el aroma de la cerveza (Jacques et al, 1999). Pediococos también pueden causar viscosidad en la cerveza a consecuencia de la producción de cápsulas de polisacáridos formados por azúcares, proteínas y ácidos nucleicos (Jacques et al, 1999). Las muestras tomadas en los diferentes puntos críticos de control a lo largo de este proceso, se inocularon en un medio que inhibe selectivamente el crecimiento de las levaduras de cerveza, pero permiten el crecimiento de contaminantes (WLD), el cual está suplementado con el antibiótico ciclohexamida, las levaduras de cerveza tradicionales son sensibles al ciclohexamida, mientras que muchos de los microorganismos de cervecería son resistentes y por ende forman colonias en un medio diferencial. Otro medio de cultivo utilizado fue Raka Ray, al cual se le añade Tween 80 (mono-oleato de polioxietileno sorbitan), puesto que este compuesto es un conocido estimulante para el crecimiento de bacterias lácticas tales como Lactobacilos y Pediococos (Klimovitz et al, 2002), sin embargo y pese a que se utilizaron medios altamente selectivos, dichos microorganismos no fueron identificados en todas las muestra analizadas, garantizando una óptima calidad del proceso fermentativo que se llevó a cabo. 78 Las levaduras cerveceras son anaerobias facultativas, eso es, pueden cambiar de fermentación a respiración y viceversa. También son de los pocos selectos organismos eucarióticos que pueden sobrevivir (mientras haya una fuente de carbono fermentable disponible) la pérdida total o grandes alteraciones del DNA mitocondrial asociado con en primer lugar componentes de transporte de electrones requeridos para la respiración, y en segundo lugar con la síntesis de proteína mitocondrial, y crecer indefinidamente como un mutante de deficiencia respiratoria (Heggart, 1999). Esto puede significar una pérdida muy significativa de información genética para una célula de levadura, ya que el genoma mitocondrial cuenta con aproximadamente el 15% (rango 5 – 25%) del DNA total de una levadura. Esta forma de mutación es irreversible, y significa que el número de estos mutantes puede incrementarse rápidamente si ocurre una alta tasa de mutación y si estos mutantes sobreviven y se reproducen (Ha et al, 2002). Combinando la naturaleza irreversible de la mutación y el hecho que la observación de las colonias con respiración deficiente son menores en tamaño que las colonias silvestres cuando son vistas de manera macroscópica en placas de medio sólido MYGP, tales levaduras son llamadas como “positivas - petit” o variants, porque los mutantes estables de deficiencia respiratoria pueden ser aislados. Bajo condiciones aeróbicas, los mutantes de deficiencia respiratoria crecen más lentamente que las células de tipo silvestre porque no pueden respirar (Klimovitz et al, 2002). También son incapaces de metabolizar fuentes de carbono no fermentables, tales como lactato, glicerol y etanol. Bajo condiciones anaeróbicas, los mutantes de deficiencia respiratoria pueden crecer a la misma tasa lenta como las células de tipo silvestre, ya que ambas usan sendas fermentativas (Ha et al, 2002). Efectivamente, los mutantes de deficiencia respiratoria pueden demostrar tasas normales, reducidas, o aumentadas de glicólisis; estos mutantes de deficiencia respiratoria cuando son recubiertos con 1% de 2,3,5 – cloruro de trifeniltetrazolium 79 (TTC), pueden ser fácilmente identificadas como colonias blancas a consecuencia de su inhabilidad de reducir la sal de tetrazolium de incolora a roja, colonias con suficiencia respiratoria adquieren un color rojo mientras que las mutantes con deficiencia respiratoria permanecen blancas (Hornsey, 2003) , al evaluar este parámetro se encontró que esta característica se presenta en la fermentación puesto que de las 85 muestras analizadas, sólo en 7 se evidenció respiración deficiente, sin embargo al observar los indicadores, las muestras no se salen de los rangos establecidos los cuales permiten hasta un 5% para encontrar este tipo de mutación durante el proceso fermentativo. Otro tipo de contaminantes que se pueden presentar corresponde al grupo de los coliformes, los cuales pueden crecer en un rango de pH de 4 a 8 (con un óptimo de 6.7), pero no pueden tolerar mucho alcohol, y por eso sólo crecen en las primeras fases de una fermentación (Heggart, 1999), por este motivo se analizaron muestras que estuvieran dentro de las 24 – 48 horas de fermentación en el medio de cultivo Mac Conkey el cual arroja resultados 48 horas después, encontrando 0 UFC/ml y asegurando que la fermentación arrancaba sin ningún alterante microbiano de esta clase, éstos a su vez pueden ser utilizados para decidir si se resiembra la levadura del fermentador, o se descarta. Se conoce también que en los fermentadores, los coliformes pueden producir etanol, dióxido de carbono, ácido acético, ácido láctico, fenoles, acetaldehído, dimetil sulfuro, y otros compuestos que llevan a sabores extraños en el producto final (Hornsey, 2003), luego el muestreo se extendió durante todo el proceso que dure la etapa de fermentación, analizando de esta manera también muestras que se encontraban dentro de las 72 y 96 horas de fermentación, antes de que iniciaran su paso a los tanques de maduración donde se analizaron muestras que llevaran de 4 a 6 días en este proceso, encontrando finalmente en ambos casos que los resultados obtenidos correspondían a los que se esperaba inicialmente y 80 que al finalizar dichos procesos se garantizará la satisfacción de los estándares de calidad establecidos, puesto que el crecimiento de microorganismos no cerveceros puede resultar en una cerveza fuera de estándar, además de provocar alteraciones organolépticas, dependiendo del contaminante, que pueden incluir acidificación, producción de diacetilo, sabores fenólicos extraños, olores estercolares, y otros off flavours (Verstrepen at al, 2003). Sin duda alguna, la contaminación microbiana de la levadura de cultivo puede resultar en muy serias alteraciones en la calidad y características esperadas del producto final. Aunque en este trabajo solo se evaluó la calidad microbiológica, también se realizan pruebas físico-químicas que incluyen el chequeo de parámetros tales como tiempo, temperatura, pH, oxígeno, contenidos de extracto y alcohol, análisis de sabor y la concentración de células de levadura, procedimiento que si se tuvo en cuenta en este estudio debido a que los conteos celulares durante el transcurso y al final de la fermentación deben encontrarse alrededor de 106 células/ml, parámetro que se cumplió en los conteos realizados, esta información se puede utilizar para determinar que la levadura pueda flocular correctamente y a su vez de paso a una fermentación secundaria que se lleva a cabo en la etapa de maduración (Hough, 1990), donde también se llevaron a cabo conteos, los cuales oscilaban en el rango de 104 células/ml por tratarse del período de maduración, en este punto dichos recuentos son importantes para determinar que el número de células en suspensión presentes antes de la estabilización y filtración, son los ideales y cumplen con el estándar, ayudando de esta manera a la eficiencia del proceso de filtración. Después de la maduración y antes del envasado, la cerveza pasa de nuevo por una filtración con tierra diatomácea que elimina los últimos restos que puedan quedar de la fermentación y también los restos de nitrógeno que durante la maduración han formado una especie de 81 mucosa, lo que podría provocar más adelante que la cerveza saliera turbia (Klimovitz et a, 2002), se tomaron muestras de esta tierra encontrando 0UFC/ml en ambos medios WLN y WLD, garantizando de esta manera que esta no interfiere en la calidad de la cerveza que llega a BBT (tanques de cerveza brillante), sino que por el contrario es un excelente medio filtrante, al analizar las muestras de los BBT por medio de filtración por membrana se obtiene crecimiento de levadura en el medio WLN donde aunque se observa crecimiento en el medio pese a que ya ha pasado por un filtro anteriormente esta muestra, sin embargo este crecimiento es permitido porque se trata de levadura cervecera y no de un contaminante microbiano, no obstante se tienen especificaciones los cuales indican que para entrar en el rango, el recuento no debe sobrepasar las 10 UFC/ml y al interpretar estos resultados se encontró que todos las muestras analizadas alcanzaban a entrar en dicha especificación. Las pruebas para determinar la presencia de otros microorganismos fueron negativas en todos los casos. Antes de llevar la cerveza a las envasadoras, se inyecta CO2 en los tanques hasta conseguir la saturación deseada, para que la cerveza salga de su recipiente con una buena capa de espuma y no se oxide fácilmente (Hornsey, 2003). Para alargar el tiempo de conservación de una cerveza, sin que cambie de aspecto, la cerveza pasa por una pasteurización después del envasado (las botellas pasan por un túnel con agua a 70ºC), o con una pasteurización flash antes de envasar (Klimovitz, 2002). Una botella antes de pasar por este proceso se conoce con el nombre de sifón y en este caso también se analizaron muestras para descartar presencia de bacterias acido lácticas, coliformes o esporulados que hayan podido proliferar en algún momento del proceso entre la filtración y el embotellado, pero los resultados únicamente muestran presencia de levadura en cantidades permisibles o dentro de especificación. 82 Finalmente es importante recordar que un control de calidad microbiológico rutinario no resolverá necesariamente los problemas de contaminación. Sin embargo, ayudará a identificar el problema, cuando éste surja, para que puedan tomarse las medidas apropiadas para eliminar tal problema (Klimovitz, 2002). Un control de calidad microbiológico también revelará los problemas que ocasionalmente surgen en un producto terminado que no sea resultado de una contaminación microbiana, permitiendo que se pueda orientar un análisis de causas. 83 8. CONCLUSIONES • Se determinó por medio del recuento en cámara de Neubauer que el número de células viables de levadura durante el transcurso y al final de la fermentación son los adecuados para que la levadura pueda flocular correctamente. . • En la etapa de maduración, se determinó que el número de células en suspensión presentes antes de la estabilización y filtración, son los ideales, cumplen con el estándar, ayudando de esta manera a la eficiencia del proceso de filtración. • No se evidenció presencia de levaduras tipo Saccharomyces y tipo no Saccharomyces durante las etapas de propagación, fermentación y maduración, que pudieran afectar la calidad del proceso y del producto. • Se evaluó la presencia de mutantes de levaduras de proceso (Variants y Respiración Deficiente (RD), este último tipo de microorganismos se encontró en fermentaciones, sin embargo, los resultados de los análisis cumplen los rangos o parámetros establecidos. • Se evaluó en el proceso la presencia de microorganismos mesófilos, coliformes y bacterias ácido lácticas, obteniendo 0 UFC/ml en todos las fases evaluadas, indicando de esta manera que tiempos y temperaturas de los procesos de cocción, la filtración y los controles proceso que se tienen ya estandarizados, son adecuados para evitar la proliferación de microorganismos contaminantes. 84 9. RECOMENDACIONES • Durante los meses en que se valoró la calidad microbiológica del producto en proceso, los resultados encontrados fueron consistentes debido a que no se evidenció presencia de microorganismos contaminantes, sin embargo hubo presencia de mutantes de levadura (respiración deficiente) que a pesar especificaciones, es recomendable de estar dentro de llevar a acabo un estudio de la levadura utilizada en el proceso, realizando diferentes ensayos para verificar su variabilidad a través del tiempo, así como su capacidad fermentativa o posible deformación del genotipo de la cepa utilizada. • Se sugiere evaluar la técnica de filtración por membrana realizando un estudio que incluya diferentes volúmenes en el momento de filtrar con el fin de recuperar un mayor número de contaminantes, lo que llevaría a analizar un mayor número de muestras, esto debido a que posiblemente la cantidad filtrada no es suficiente para identificar el crecimiento de microorganismos que podrían causar un inadecuado perfil sensorial al causar off – flavours. • Se aconseja realizar un estudio comparativo con diferentes marcas de cervezas tanto nacionales como internacionales, para evaluar la influencia que tiene los diferentes tipos de levadura utilizada y que finalmente influyen en el perfil sensorial de cada una de las marcas. 85 10. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Adams, A; Gottschling, D; Kaiser, C & Stearn, T. 1998. Methods in yeast genetics: a Cold Spring Harbor Laboratory course manual. New York: The Laboratory. Chapter 1. Aguilar, B & FranYios, J. 2003. A study of the yeast cell wall composition and structure in response to growth conditions and mode of cultivation. Letter in Applied microbiology, 37: 268 – 274 pp. Aguilar, B. Solis, J. FranYois, J. 2005. Estudio de la variación de la composición de los polisacáridos contenidos en la pared celular de la levadura Saccharomyces cervisiae. Universidad de Guadalajara. México. Revista digital científica y tecnológica. www.e-gnosis.udg.mx [Consulta en línea: Abril 20 de 2007] Bely, M; Rinaldi, A & Dubourdieu, D. 2003. Influence of assimilable Nitrogen on Voletiles Acidity production by Saccharomyces cerevisiae during high sugar fermentation. Journal of Bioscience and Bioengineering. Vol 96 Nº 6. 507-512 pp. Decreto 475. 1998. Normas técnicas de calidad del agua potable. Ministerio de Salud Pública. 13 - 14 pp. Escobar, M. 2002. Fundamentos de Microbiología. Ed. Ceja. Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá. 268 – 272 pp. Funahashi, W. Suzuki, K. Ohtake, Y. & Yamashita, H. 1998. Two novel beer spoilage Lactobacillus species isolated from breweries. J Am Soc Brew Chem 56, 64–69 pp. 86 Garcia, J. & Francesc, X. Aplicaciones industriales y control de calidad sensorial en un grupo cervecero multifactoría. Escuela Universitaria de Ingeniería Industrial de Terrassa. [Consulta en línea: Mayo 19 de 2007]. Ha, C.H. Lim, K.H. & Chang, H.I. 2002. Análisis of alkali – soluble glucan produced by Saccharomyces cerevisiae wild – type mutants. Appl Microbiol Biotechnol. 58: 370 – 377 pp. Harper, H; et al. 2004. Harper: bioquímica ilustrada. Ed. El Manual Moderno. 16a ed. México. Capítulos 3, 4 y 5. Heggart, H; et al. 1999. Factors Affecting Yeast Viability and Vitality Characteristics: A review. Technical Quarterly. Vol. 36 Nº 4. 383 – 406 pp. Hough, J.S. & Burgos, G. 1990. Biotecnología de la cerveza y la malta. Ed. Acribia. Zaragoza, España. 55 – 70 pp. Hough, J.S. Briggs, D.S. Stevens, R & Young, T.W. 1992. Malting and Brewing. Science. Vol I and II. New Cork. 4-16 pp. Hornsey, I. 2003. Elaboración de cerveza: microbiología, bioquímica y tecnología. Ed. Acribia. Zaragoza, España. Capítulos: 2,4, 6. Ingledew,W; Sosulski, F & Magnus, C. 1996. An assessment of yeast foods and their utility in brewing and enology. Journal of American Society of Brewing Chemistry. Vol 44. 166-170 pp. Jacques, K; Lyons, T & Kelsall, D. 1999. The Alcohol Textbook. 3rd Edition. Nottingham University press. Chapters 1, 3, 5, 6, 20 y 21. 386 pp. Kandler, O. 1983. Carbohydrate metabolism in lactic acid bacteria. Antonie Van Leeuwenhoek. Chapter 49. 209-224 pp. 87 Kelsall, D. 1995. The management of fermentations in the production of alcohol. In: The alcohol textbook Nottingham University Press. Nottingham UK. 89-101 pp. Klimovitz, R; et al. 2002. El Cervecero en la Práctica. Masters Brewers Association of the Americas. St. Paul, Minnesota. Capítulos 3, 5, 6, 9, 10, 15 y 17 Klis, F; Hellingwerf, K & Brul, S. 2002. Dynamics of the cell wall structure Saccharomyces cerevisiae Microbiol. Mol. Biol. Rev 239 – 256 pp. Oliveira, S; Paiva, T; Visconti, A & Giudici, R. 1999. Continuous alcoholic fermentation process: model considering loss of cell viability. Bioprocess Engineering. Vol 20. 157-160 pp. Philiph, S. 1985. Genetic analysis of petite mutants of Saccharomyces cerevisiae: transmissional types. Department of Genetics, The Ohio State University, Columbus, Ohio 43210 [Consulta en línea: Junio 03 de 2007] Sendra, J. & Carbonell, J. 1999. Evaluación de las propiedades nutritivas, funcionales y sanitarias de la cerveza, en comparación con otras bebidas. Instituto de agroquímica y Tecnología de los alimentos – Consejo superior de investigaciones científicas. 18, 26, 33, 44 – 49 pp. Verstrepen, K; et al. 2003. Flavor – Active Esters: Adding Fruitiness to beer. Journal of Bioscience and Bioengineering. Vol 96 Nº 2. 110 – 118 pp. 88 Xiao, J; Zhou, Z. & Zhang, G. 2004. Ant colony system algorithm for the optimization of beer fermentation control. Journal of Zhejiang University Science. 5(12):1597-1603 pp. 89 11. ANEXOS 11.1. Medios de cultivo 11.1.1. Wallerstein Laboratories Nutrient Médium (WLN y WLD) WLN: Medio de cultivo utilizado para la diferenciación de levaduras, levaduras salvajes y bacterias. WLD: Este medio es más selectivo puesto que lleva cicloheximida para inhibir el crecimiento de levaduras Fórmula g/L WLN Wallersteins medium (Oxiod) nutrient 80,0 WLD (Medio diferencial) 80.0 Cicloheximida 0.133 pH = 5,5 –5,8 (Si es necesario ajustar el pH utilizando ácido clorhídrico) Autoclavar a 121°C por 15 minutes. Atemperar el medio a 50°C antes de servirlo en las cajas de petri 11.1.1.2. Interpretación Saccharomyces cerevisiae puede crecer como una colonia blanca, verde pálido o azul verdosas, la interpretación se realiza de una manera sencilla, si el crecimiento de las colonias es espaciado y poco abundante. Otras especies de Saccharomyces y otros géneros de levaduras salvajes generalmente se distinguen fácilmente del típico crecimiento que tiene la levadura en WLN, porque la morfología de las otras colonias es notablemente diferente (arrugadas, levantadas, ásperas, polvorolientas), y su color generalmente difiere también, pasando de blanco por sombras de azul, a verde. 90 11.1.1.3. Estimación de Variants La levadura típica crece con un aspecto cremoso, verdes con un pequeño centro amarillo o pequeñas colonias verde oscuro. Las colonias son de 2 - 3 mm, levantados y las orillas son enteras. Todas las colonias que difieren de esta descripción (por ejemplo, orillas no enteras, el tamaño de la colonia más pequeño, el color, las colonias brillantes, blancas y más oscuras), puede ser considerada para ser variantes de la levadura típica. Estas variaciones (mutaciones), a diferencia de la deficiencia respiratoria, son desconocidas, y por lo tanto, los efectos en la calidad de cerveza son también desconocidos. Sin embargo, asumiendo que pueden ser perjudiciales en la calidad de la cerveza, una especificación de <5% de variantes es permitida dentro del proceso. 11.1.1.4. Cálculo Contar el número total de colonias Contar el número total de colonias variantes (variants) Número total de colonias variantes x 100 Número total de colonias = % variants. 11.1.2. Raka Ray Medio selectivo para el aislamiento y de bacterias ácido lácticas que pueden crecer en el proceso. Lactobacillus y Pediococous se discernirán en este medio. 91 Varios de los componentes de este medio (extracto de hígado, extracto de levadura y N-acetilglucosamina) se han incluido para que se de una mejor recuperación de bacterias ácido lácticas. Sorbitan mono-oleato es incluido como un estimulante para bacterias ácido lácticas en general. La fructosa presente le sirve como la fuente esencial de carbohidrato para Lactobacillus fructivorous mientras que la maltosa presente es tomada por Lactobacillus que no puede utilizar la glucosa, la cual puede ser utilizada por Pediococous La selectividad incrementada por la adición de 3 g/L de de 2 phenylethanol para inhibir el crecimiento de microorganismos Gramnegativos y 7 mg de cycloheximide para inhibir levaduras. Fórmula g/L Raka-Ray Agar (Oxoid code: CM 777) 77,1 Suplemento por Litro Sorbitan mono-oleato 10,0ml Cicloheximida 0,007 g 2 – Phenylethanol 3,0 g pH 5,4 ± 0,2 Autoclavar a 121°C por 15 minutes. Atemperar el medio a 50-55°C y asépticamente adicionar 3ml de phenylethanol por litro y posteriormente distribuir en las cajas de petri. 11.1.2.1. Incubación Una vez realizada la siembra, incubar las cajas en jarras de anaerobiosis a 25°C por 4 días, verificar la formación de colonias, si no se observa crecimiento se dejan 3 días más. 92 11.1.2.2. Interpretación Las bacterias ácido lácticas crecen como colonias brillantes, cremosas. La confirmación positiva de bacterias ácidas lácticas se debe realizar utilizando la coloración de Gram (positivo) y la prueba de Catalasa (negativo). 11.1.3. Agar Mac Conkey Medio para la detección y numeración de Enterobacterias. Este medio es diferencial para la detección de coliformes Este medio contiene además de otros componentes, lactosa, sales biliares, cristal violeta y rojo neutro como indicador. El cristal violeta presente en el medio sirve para inhibir el crecimiento de microorganismos Gram-positivos Las propiedades diferenciales del medio, se lleva a cabo por acción de los ácidos producidos por la fermentación de la lactosa, reacción evidenciada gracias a la presencia del indicador rojo neutro y la absorción de éste por las colonias para ocasionar las colonias color rojo ladrillo. Fórmula g/L Mac Conkey Agar No. 3 (Oxoid) 51.1 11.1.3.1. Interpretación Los coliformes se desarrollarán en este medio con colonias que van desde rosadas oscuras a colonias rojas. Las bacterias Gram-positivos bacteria son inhibidas en este medio y por lo tanto no pueden crecer. Otras especies de Gram-negativos pueden crecer pero su color es casi translúcido. 93 Streptococcus faecalis y algunas otras levaduras salvajes pueden crecer sobre este medio. 11.1.4. Plate Count Agar (PCA) Este es un medio de cultivo útil para la enumeración de una gran variedad de bacterias, ya que no es ni selectivo ni diferencial y general es utilizado para recuperar una gran gama de microorganismos que puedan estar presentes en una muestra para propósitos de enumeración. En este medio pueden crecer un alto rango de bacterias y levaduras salvajes. Fórmula g/L Plate Count Agar (Oxoid) 17,5 pH = 7,0 11.1.5. Malt Extract, Yeast Extract, Glucose, Peptone Broth (MYGP) Medio utilizado para el crecimiento de levaduras y levaduras salvajes y en cervecería para realizar el test de respiración deficiente. Fórmula g/L Extracto de malta 3 Extracto de levadura 3 Glucosa 10 Peptona 5 Bacto-Agar 30 Las células de levadura con respiración deficiente a menudo aparecen como pequeñas colonias en este medio, estas levaduras carecen ciertas enzimas respiratorias y han sido asociadas con el crecimiento pobre y la producción desfavorable del sabor durante la etapa de fermentación, así como viabilidades más bajas de levadura. 94 Para ser utilizado en el test de respiración deficiente en levaduras, es necesario adicionar el medio Triphenyl Tetrazolium Cloride Agar (TTC), utilizando la técnica doble capa de agar. La prueba realizada en este medio depende del hecho si esas enzimas respiratorias estuvieron presentes, es decir si la levadura tuvo una respiración adecuada, entonces al adicionar el medio TTC, la sal sin color que contiene el tetrazolium es reducida a la forma insoluble (trifenil) y forma un pigmento rojo. 11.1.6. Triphenyl Tetrazolium Cloride Agar (TTC) Fórmula g/L Triphenyl chloride tetrazolium 0,5 Glucosa 5,0 Bacto-Agar 15,0 11.1.6.1. Interpretación Respiración Normal o suficiente las colonias se tornan de rosado a rojo. Respiración deficiente, las colonias (petites) permanecen blancas. 11.1.6.1.2. Cálculo: N = Número total de UFC (Rosadas o Rojas) Nv = Número total de UFC con Respiración deficiente (Blancas) N x 100 = X N + Nv 100 – X = % RD 95 11.1.7. Schwarz Differential Medium (SDM) Medio para la diferenciación de levaduras típicas del proceso cervecero de levaduras salvajes. El complejo Silfito-fucsina inhibe las levaduras de cervecería si se utiliza en una concentración de 0.3 - 0.35%. El medio es, por lo tanto, selectivo para el crecimiento de la mayoría de las levaduras salvajes, y la apariencia de las colonias de levaduras salvajes puede es fácilmente detectable. Fórmula g/L Extracto de malta 3,0 Extracto de levadura 3,0 Glucosa 10,0 Peptona 5,0 Fucsina Básica 0,47 Sulfito de sodio 2.92 Dextrina 0,11 Bacto-Agar 20,0 No se Autoclava porque puede ser inhibida la acción del complejo sulfitofucsina, pero se debe calentar y una vez empiece a hervir se debe dejar por 15 minutos para garantizar la adecuada esterilización. Incubar las cajas de petri una vez servidas durante toda la noche a 30ºC antes de ser utilizado para realizar algún análisis. 11.1.7.1. Interpretación El medio cambia su color inicial durante el período de incubación, tornándose rojo oscuro. 96 La presencia de colonias rosadas fácilmente discernibles de cualquier descripción (por ejemplo, suaves, mucoides, arrugadas), indica la presencia de levaduras salvajes. 11.1.8. Medio Lisina Este medio contiene lisina como la única fuente de nitrógeno, lo cual lo hace ideal para la diferenciación Saccharomyces sp, de levaduras tipo no Saccharomyces sp Al sembrar las muestras en este medio es importante que todo el nitrógeno que pueda venir de otra parte sea eliminado, por esto es importante realizar previamente las diluciones con solución salina. Algunas bacterias pueden crecer sobre el medio lisina, por eso es importante confirmar la morfología típica de las levaduras salvajes a través del microscopio. Fórmula g/L Lisina medio 65 Lactato de potasio 50% 10 ml Ácido Láctico 10% 1 ml 11.1.8.1. Interpretación La apariencia típica de una levadura salvaje se diferencia de otras colonias por la presencia de una especie de neblina en el fondo del medio, diferenciándolas de otras levaduras que no se han desarrollado. Esto indicaría la presencia de levaduras de tipo no Saccharomyces. 97 11.2. Muestra de Cálculo 11.2.1. Muestra de cálculo para obtener resultados en el medio WLN en las muestras de BBT y Sifón. N = Número de UFC X = Número de cuadrantes en los que se dividió la caja para realizar conteo 20 = Volumen de muestra filtrado. N x (X) = UFC/ml 20 Ejemplo: Resultado Promedio Tanque 1 BBT N = 49 X= 4 20 = Volumen de muestra filtrado. 49 x 4 = 9.8 UFC/ml 20 Especificación: b 10 UFC/ml 11.2.2. Muestra de cálculo para obtener Porcentaje de Petite mutants (Respiración Deficiente) N = Número total de UFC (Rosadas o Rojas) Nv = Número total de UFC con Respiración deficiente (Blancas) N x 100 = X N + Nv 98 100 – X = % RD Ejemplo: Tanque 102 Generación de Levadura C4 N = 123 Nv = 1 123 x 100 = 99.19% 123 + 1 100 – 99.19 = 0.81 % RD Especificación: 5% de RD 11.2.1. Muestra de cálculo para resultados siembra en superficie N = UFC/ml x 5 Multiplico por 5 debido a que el volumen sembrado corresponde a 0.2ml Ejemplo: Enjuague tanque 103 N = 4 UFC/ml x 5 UFC/ml = 20 99 11.3. Formato para la recolección de Resultados Obtenidos ANÁLISIS MICROBIOLOGICO DEL PRODUCTO EN PROCESO - CERVEZAS CÓDIGO FECHA MUESTRA HORA TANQUE Nº COCIMIENTO EDAD VOL. DE MUESTRA PCA (UFC/ml) Mac Conkey (ufc/ml) 100 WLN (UFC/ml) WLD (UFC/ml) Raka Ray (UFC/ml) ID SDM (UFC/ ml) Lisina (UFC/ ml) WLN Varia nts MYGP RD D.E/F.D.E. OBSERVACIONES 101