MIA FORA NGS v2.0Software Quick Guide

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Guía rápida de referencia del software
Para usar con el kit de tipaje MIA FORA NGS HLA de
IMMUCOR®
Para diagnóstico in vitro
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Este manual se ha elaborado para el software MIA FORA NGS
SR-790-00017
Para cualquier pregunta, comentario o solicitud de ejemplares adicionales, diríjase a la dirección
indicada a continuación.
Representante autorizado:
Immucor Medizinische Diagnostik GmbH
Adam-Opel-Strasse 26A
Rodermark 63322 (Alemania)
Tel: (+49) 6074-84 20 -0
Servicio técnico europeo: +32/3 385 47 91
IMMUCOR® es una marca registrada de Immucor, Inc.
MIA FORA™ es una marca registrada de Sirona Genomics, Inc.
illumina® es una marca registrada de Illumina, Inc.
MiSeq® es una marca registrada de Illumina, Inc.
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Uso Previsto
El kit de tipaje MIA FORATM NGS HLA está diseñado para la amplificación y secuenciación
de los genes HLA: HLA -A, -B, -C, -DRB-1/3/4/5, -DQA1, -DQB1, -DPA1, y -DPB1 en la
plataforma de secuenciación Illumina NGS. El software MIA FORA está pensado como guía
para la determinación del genotipo HLA a partir de los datos generados por el kit de
biblioteca MIA FORA NGS HLA. La prueba está concebida para laboratorios solventes en la
manipulación de ADN para su amplificación y secuenciación.
Acerca de esta guía
Esta guía proporciona las instrucciones básicas para utilizar el software MIA FORA NGS
SR-790-00017 en combinación con los siguientes kits:
Kit de tipaje MIA FORA™ NGS HLA
SR-800-10377 (marcado CE
para utilizar solamente para diagnóstico in vitro en la Unión Europea)
Para más información consúltese el manual de usuario del software MIA FORA NGS. Esta
guía no ha sido creada para sustituir al manual del usuario.
Documentación relacionada
Los siguientes documentos contienen información adicional relacionada con la presente
guía, o a la cual se hace referencia en esta.
Manual de usuario del software MIA FORA NGS (LC1619)
Documento adjunto al kit de tipaje MIA FORA NGS HLA (LC1618CE):
Limitaciones
Consúltese la documentación relacionada para conocer las limitaciones.
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Crear un proyecto y analizar una muestra
1. Cree un archivo de códigos de barras de las muestras (un archivo Windows de valores
separados por comas, CSV) con los nombres de muestra y los códigos de barras asignados.
Introduzca el nombre del proyecto y las posiciones de los pocillos. Este archivo se utilizará
en el análisis de secuenciación.
a. Abra el software MIA FORA y navegue hasta la pestaña Projects (Proyectos). Haga
clic en el botón New Project (Nuevo proyecto) en la esquina inferior derecha de la
página principal.
b. Introduzca el nombre del proyecto, el número de lote del kit MIA FORA NGS, la
fecha de recepción y el nombre del operario. Haga clic en Browse (Examinar) para
cargar el archivo de códigos de barras de las muestras (CSV).
Nota: El nombre del proyecto no debe exceder de 30 caracteres. Se pueden usar el
guión y el guión bajo pero los caracteres especiales no deben utilizarse y se eliminarán.
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c. Haga clic en Next (Siguiente) para navegar hasta la hoja de códigos de barras de
las muestras y haga clic en Yes para confirmar que los nombres de muestra son
correctos.
d. Haga clic en Finish (Finalizar) para crear el nuevo proyecto.
2. Véase el Apéndice A para configurar la sesión MiSeq y asignar el nombre de los archivos
FASTQ mediante Illumina Experiment Manager.
3. El nuevo proyecto estará listo para cargar los archivos FASTQ cuando la primera flecha
esté en color ámbar.
Haga clic en el botón Play verde, bajo Next Step, para iniciar el asistente para archivos FASTQ.
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a. Haga clic en Browse (Examinar) para cargar los archivos FASTQ. Mantenga
presionada la tecla CTRL antes de seleccionar ambos archivos.
NOTA: Los nombres de archivos FASTQ deben empezar por el nombre del
proyecto para que el software pueda reconocerlos.
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b. Haga clic en Finish (Finalizar) para iniciar la carga de los archivos FASTQ.
4. Haga clic en Project name (Nombre del proyecto) y seleccione el proyecto para el análisis
y revisión de los datos.
Nota: La lista de proyectos presenta primero los más recientes.
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5. Haga clic en la pestaña Statistics (Datos estadísticos) para chequear la calidad de la sesión.
a. Revise el gráfico Piechart (Gráfico circular)
i. Los reads (lecturas) válidos deben ser >85%. Los reads (lecturas) no válidos
deben ser <10%.
b. Seleccione Insert Distribution (Distribución de insertos)
i. El tamaño de inserto debe situarse dentro del intervalo 150-400.
c. Revise Read Distribution Among Samples/Barcode (Distribución de reads en las
muestras/códigos de barras)
d. Revise Nucleotide Distribution Along Each Position (Distribución de nucleótidos
en cada posición)
i.
A partir de la posición 20, el gráfico debe mostrar porcentajes similares
para cada base.
e. Revise Quality Score Distribution Along Each Position (Distribución de la
puntuación de calidad en cada posición)
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6. Haga clic en la pestaña Review para revisar los datos.
FIG 1. Ventana de revisión. (A) Menú desplegable de muestras y locus (B) Genotipos
seleccionados para la muestra (C) Tablas de SNP (polimorfismo de nucleótido único) y de
sugerencia de LD (desequilibrio de ligamiento) (D) Tabla de alelos candidato computados
(E) Gráficos de cobertura y buscadores para alineación (F) Buscador para alineación para
contigs de novo.
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a. Inspeccione todos los datos usando Smart Flagging System (sistema de etiquetas
inteligente) para detectar anomalías, insuficiencia de datos e interrogantes.
b. Use los menús desplegables de Sample (Muestra) y Locus (Locus) para revisar los
datos (FIG 1 (A)).
c. Revise los alelos en la tabla Candidate (Candidatos)(FIG 1 (D)),
i. Evalúe la columna de cobertura mínima de cDNA (ADN complementario)
(quinta columna) y la columna de cobertura mínima de central reads
(lecturas centrales) de cDNA (sexta columna).
d. En el caso de las llamadas homocigóticas (aparece un único alelo por locus en la
lista), revise la información de LD suggestion (Sugerencia de desequilibrio de
ligamiento), la zona de sombreado gris en el gráfico de cobertura, y la pestaña
Candidate Pairs (Pares candidato) para analizar los indicios sobre los alelos que no
aparecen (FIG 1 (C)).
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e. Para visualizar los Coverage Plots (Gráficos de cobertura) seleccione los alelos
candidato en la tabla de candidatos y haga clic en Coverage (cobertura) (FIG 1 (E)).
f.
El panel de la izquierda muestra la cobertura a lo largo de las secuencias de
referencia del cDNA (ADN complementario); el panel de la derecha muestra la
cobertura a lo largo de las secuencias de referencia genómicas. Las barras rojas
(hash marks) sobre las curvas de cobertura indican posiciones que son diferentes
entre los alelos de referencia seleccionados. La región sombreada en gris indica la
diferencia entre la cobertura total para el gen subyacente y la suma de las
coberturas de los alelos seleccionados.
g. Para confirmar/revisar la llamada asignada de forma automática, seleccione el
alelo llamado y el alelo que usted elija. Haga clic en el botón Consensus Alignment
(Alineamiento de consenso) y compare con el contig con mayor grado de
coincidencia.
h. Navegue por las diferentes opciones de alineamiento para comparar alelos y
confirmar o modificar la llamada asignada automáticamente.
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i.
Haga uso de las herramientas SNP (polimorfismo de nucleótido único) y LD
Suggestion (sugerencia de desequilibrio de ligamiento) para lograr las mejores
llamadas.
i. La tabla SNP muestra la lista de sitios polimorfos de los contigs
ensamblados de novo, los bloques de fase y la frecuencia de los
nucleótidos en cada sitio polimorfo. Si la proporción de las frecuencias de
los nucleótidos entre Contig1 y Contig2 es distinta de la proporción
promedio, las celdas correspondientes aparecerán destacadas en ámbar.
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ii. La tabla LD Suggestion muestra entradas de la base de datos de
desequilibrio de ligamiento que contienen alelos listados en la tabla de
genotipo de la muestra. Cada fila representa alelos que se ha observado
que están asociados entre ellos. La tabla LD Suggestion es solo
informativa; los datos de LD no se usan para el calcular los genotipos
computados de las muestras.
j.
Si se ha modificado alguna llamada, haga clic en el botón Refresh (Actualizar),
situado sobre la tabla de genotipo. Si todas las llamadas son correctas, haga clic en
el botón aprobar y vaya a la siguiente muestra. Solo los revisores con categoría de
técnico o de director de laboratorio pueden anular la llamada computada.
k.
Después de que la muestra haya sido aprobada, únicamente un usuario con
categoría de director puede modificar el resultado, mediante el botón ReAnalysis
(Reanálisis).
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7. Haga clic en la pestaña Summary (Resumen) para revisar el genotipo de todas las
muestras antes de generar el informe.
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8. Haga clic en el botón Report (Informe) y elija el formato de salida (PDF, PDF sin
comentarios, XML).
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APÉNDICE A
Nota: Es necesario crear una hoja de muestras para realizar una sesión con MiSeq®
1. Descargue Illumina® Experiment Manager mediante el siguiente enlace.
https://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/experiment_manager/do
wnloads.html
2. Inicie el software y haga clic en Create Sample Sheet (Crear hoja de muestras)
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3. Seleccione MiSeq Instrument y haga clic en Next (Siguiente).
4. Dentro de Select Category (Seleccionar categoría) seleccione Other (Otros) y dentro de
Select Application (Seleccionar aplicación) seleccione FASTQ Only (Solo FASTQ) y haga clic
en Next (Siguiente).
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5. Configure los parámetros del flujo de trabajo en Workflow Parameters y haga clic en Next
(Siguiente).
a. Reagent Cartidge barcode field (Campo del código de barras del cartucho de
reactivo): Introduzca el número del código de barras del cartucho de reactivo MiSeq,
que se encuentra en la etiqueta del dispositivo.
b. Sample Prep Kit (Kit de preparación de muestras): Seleccione TruSeq HT
c. Index Reads (Lecturas de índice): Seleccione 0
d. Experiment name (Nombre del experimento): Debe empezar con el nombre del
proyecto que acaba de crear en el software MIA FORA (por ejemplo:
Training_06Jan16_QUAIL) Nota: Copie el nombre del experimento y péguelo en el
campo “Sample ID” (ID de muestra) en el paso 6.
e. Investigator Name (Nombre del investigador): Nombre de la persona que realiza el
experimento
f.
Description (Descripción): Cualquier información adicional
g. Date (Fecha): Fecha de la sesión
h. Read Type (Tipo de lectura): Seleccionar “Paired End”
i.
Cycles Read 1/2 (Ciclos lecturas 1/2): Ambos deben ser 151
j.
FASTQ Only Workflow-Specific Settings (Configuración específica de flujo de trabajo
sólo FASTQ): Desactive todas las casillas
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6. En la pantalla Sample Sheet (Hoja de muestras) únicamente se requiere 1 fila. Pegue el
nombre del experimento que introdujo en el paso 5 en el campo Sample ID (ID muestra).
Seleccione Finish (Finalizar). Se nombrará el archivo FASTQ a partir de la entrada del
campo Sample ID (es decir: Training_06Jan16_QUAIL).
7. Guarde el archivo CSV con el nombre del proyecto y consérvelo en una ubicación
apropiada para usarlo con MiSeq.
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