Rejuvenecimiento cutaneo facial

Rejuvenecimiento
cutáneo facial
con materiales autólogos
Universidad Autónoma de Barcelona
Tesis para optar por el título de Máster en
Medicina Cirugía-Cosmética y del Envejecimiento
2009-2011
1
Rejuvenecimiento
cutáneo facial
con materiales autólogos
Autor:
Iliana Acosta
Licenciada en Medicina
Especialista en Medicina Familiar y Comunitaria
Diplomado en Bases Clínicas en Medicina y Cirugía Cosmética
Diplomado en Medicina del Envejecimiento
Didie Potdevin
Licenciada en Medicina
Licenciado en Dermatología - Cosmética
Diplomado en Bases Clínicas en Medicina y Cirugía Cosmética
Diplomado en Medicina del Envejecimiento
2009-2011
2
Exergo
El espiral de vida,
Distensión y fluidez, búsqueda de verticalidad, misterio de la vida.
La arquitectura de nuestro citoesqueleto, se debe en particular a un doble espiral, pero
también a fuerzas extrañas que nos mantienen en un estado de
equilibrio y coherencia en un punto medio entre la
teoría de la relatividad y la física cuántica.
El misterio de la vida se encuentra quizá en el espacio que separa la materia, como los
espacios blancos entre las palabras, y la vida resuena entre las notas del universo.
Dr: Didier Potdevin
2009-2011
3
Iliana Acosta
Didie Potdevin
Rejuvenecimiento cutáneo facial con materiales autólogos
2009-2011
4
Colaboradores
Plinio R. Hurtado MD, PhD. Renal Unit. Royal Adelaida Hospital. Australia.
Equipo de Ingeniería Química. Departamento de Biofísica. Laboratorio ISDIN.
Barcelona. España.
Equipo Técnico del Instituto de Foto-Medicina Clínica Teknon. Barcelona. España.
Alejandra Pérez Bonilla, PhD. Universidad Politécnica de Cataluña. Departamento de
Estadística e Investigación Operativa. Barcelona. España.
Agradecimientos
Agradecemos infinitamente a “los pacientes” ya que sin ellos no hubiera sido posible
realizar la investigación.
A la Licenciada Samia Moussa, por dedicar parte de su tiempo libre a nuestra
investigación.
2009-2011
5
Iliana Acosta
Didie Potdevin
Rejuvenecimiento cutáneo facial con materiales autólogos
Con 13 figuras, 22 imágenes fotográficas, 64 imágenes ultrasónicas, 70 tablas de
frecuencia, 48 gráficos, 7 histogramas, 3 boxplot.
2009- 2011
6
Abreviaturas
AH
APP
APF
ATP
Ca
EGF
FGF
HGF
HTA
IGF
IFN
IL
KGF
MM
PRP
PMN
RMN
SNG
SPSS
TAC
TNF
TGF
TIMP
VLDL
VEGF
ácido hialurónico
antecedentes patológicos personales
antecedentes patológicos familiares
trifosfato de adenosina
calcio
factor de crecimiento epidérmico
factor de crecimiento del fibroblasto
factor de crecimiento hepatocitario
hipertensión arterial
factor de crecimiento tipo insulina
interferón
interluquinas
factor de crecimiento queratinocitico
milímetros
plasma rico en plaquetas
polimorfonucleares
resonancia magnética nuclear
surco naso geniano
stantistical package for the social science
tomografia axial computarizada
factor de necrosis tumoral
factor de crecimiento transformador
inhibidor tisular de metaloproteínas de la matriz
lipoproteínas de baja densidad
factor de crecimiento del endotelio vascular
2009- 2011
7
Índice
1-Resumen………………………………………………………………………………9
2-Introducción…………………………………………………………………………10
3-Sustancias autólogas utilizadas: semisólida, liquida, gel………………………....12
4-Impacto del trasplante de tejido adiposo en la medicina estética-cosmética……21
5-Plaquetas y reparación tisular……………………………………………………..22
6-Polivalencia de los factores de crecimiento autólogos…………………………….24
7-Liberacion y mecanismo de acción de los factores de crecimiento………………25
8-Factores de crecimiento implicados en los procesos tisulares……………………26
9-Trombina, cinética de liberación de los factores de crecimiento…………….......33
10-Materiales autólogos, carcinogénesis…………………………………………….34
11-Técnicas para obtener material autólogo (PRP, tejido adiposo, trombina)…...35
12-Objetivos de la investigación……………………………………………………..38
13-Material y método………………………………………………………………....39
14-Analisis estadísticos……………………………………………………………….64
15-Resultados…………….………………………………………………………….146
16-Discusión…………………………………………………………………………163
17-Conclusiones……………………………………………………………………..171
18-Recomendaciones………………………………………………………………..172
19-Bibliografia………………………………………………………………………173
20-Anexos……………………………………………………………………………179
2009- 2011
8
RESUMEN
Introducción: El hombre como fuente de obtención de materia curativa para el propio
hombre, cada día se desarrolla con más ímpetu; constituyen una fuente de materia prima
para la realización autotrasplante o trasplante de células para curar enfermedades, y su uso
se ha extendido a ramas más allá de la medicina convencional. En nuestro trabajo hemos
utilizado como materia prima sustancias autólogas, como es el caso del plasma rico en
plaquetas (PRP), la trombina autóloga y el tejido adiposo. En desventaja se encuentran los
materiales sintéticos utilizados en diferentes ramas de la medicina, a pesar de los logros
obtenidos con su utilización, aún su uso no está exento de riesgos.
Objetivo: Evaluar la efectividad terapéutica del uso de los materiales autólogos a nivel
de la piel con fines cosméticos.
Material y Método: En el procedimiento utilizamos tres sustancias autólogas: tejido
adiposo, plasma rico en plaquetas (PRP) y trombina autóloga. En este estudio hacemos la
reproducción del seguimiento de 32 pacientes durante dos años, para valorar efectividad
y posibles efectos indeseables de los materiales autólogos. Los parámetros de la piel, tales
como, extensibilidad, elasticidad e hidratación, fueron mensurados antes y después del
tratamiento, mediante el uso de DermaLab Combo® dispositivo que aúna el Dermascan C
(ecógrafo de ultrasonidos de alta resolución) y un cutómetro en una misma interfaz. La
medición de la hidratación de la piel se llevo a cabo con el corneómetro MPA 580.Con la
ultrasonografía de alta resolución obtuvimos mayor información a cambio de una menor
penetración de la señal. Para este estudio se utilizó la sonda de 25MHz, por ser un estándar
de facto y por poseer una penetración de entre 6 y 12 mm. Los datos cuantitativos se
obtuvieron a través de una estadística descriptiva de variables, test de hipótesis mediante
prueba no paramétrica de normalidad y de variables de diferenciación, test de Student y
correlación de Person. Los datos fueron procesados mediante el sistema Statistical Package
for the Social Science (S.P.S.S) versión 15.
Resultados: La extensibilidad de la piel varia a partir de 0,4931 mm a 0,4187mm,
elasticidad de la piel a partir de 0,3699 ad a 0,4500 ad y la hidratación de la piel varía a
partir de 68,0281 ua a 71,8531ua, alcanzando diferencia estadística.
Conclusiones: Los materiales autólogos son una alternativa posible y segura si lo
comparamos con los materiales sintéticos, ya que se obtienen mejores resultados, y se
evita el riesgo de rechazo
PALABRAS CLAVE: Plasma rico en plaquetas (PRP), Trombina autóloga, Tejido
Adiposo, Rejuvenecimiento cutáneo facial.
9
INTRODUCCION
El hombre como fuente de obtención de materia curativa para el propio hombre, cada
día se desarrolla con más ímpetu. Su obtención es diversa, entre las que destaca la
alogénica, autóloga y los alotrasplantes. Entre estas fuentes de materia podemos
mencionar el trasplante de médula ósea, hemoderivados, trasplante de células de cordón
umbilical, trasplante de órganos, trasplante de tejido adiposo, entre otros. Desde el año
1989 se utiliza con gran éxito, células obtenidas de la sangre con diferentes fines
terapéuticos,
dada su capacidad
para regenerar tejido hematopoyético, epitelial,
endotelial y nervios; existiendo evidencia científica “in vitro” y en “in vivo” (1) (2). El
tejido sanguíneo, constituye una fuente para autotrasplante o trasplante de células para
curar enfermedades graves, tratar anemias severas, tumores cerebrales, tumor de Ewing,
leucemias, entre otras. El uso de materiales obtenidos del propio hombre, ya sea en
cualquiera de sus formas antes mencionadas, constituyen una potente modalidad de
tratamiento curativo en diversos desordenes genéticos, hematológicos, oncológicos e
inmunológicos. Las células obtenidas a partir de la sangre, son candidatas a ser
utilizadas en el futuro para el tratamiento de una gran diversidad de enfermedades,
incluyendo cardiovasculares, oftalmológicos, ortopédicas, neurológicas y endocrinas (3)
(4) (5). Dada su insustituible fuente de beneficios para el hombre,
su uso se ha
extendido a ramas más allá de la medicina curativa, como es el uso del plasma rico en
plaquetas (PRP) en la medicina estética cosmética, donde el donante y el receptor es el
mismo paciente, constituyendo un material autólogo. El PRP es una fuente fiable de
obtención de células para regenerar tejidos, con una fácil disponibilidad a corto plazo;
es un material inocuo, bio-compatible 100%, con mínima posibilidad de rechazo. Actúa
como bio-estimulador y mediador biológico contra el envejecimiento celular, restaura y
repara tejidos con propiedades indistinguibles al tejido original, es de fácil aplicación a
10
través de métodos terapéuticos mínimamente invasivo, además permiten conservar la
armonía y fisiología de la estructura tisular propia del paciente, lo cual nunca podrá ser
superado por sustancias sintéticas, ni métodos quirúrgicos invasivos. En desventaja se
encuentran los materiales sintéticos utilizados en diferentes ramas de la medicina. En la
medicina estética-cosmética son utilizados como sustancias de relleno. A pesar de los
logros obtenidos en la utilización de los materiales sintéticos, su uso aun no es un
procedimiento libre de riesgo (6) (7).
Nuestro trabajo tiene dos propósitos fundamentales, el primero es demostrar que el
hombre puede ser una fuente de obtención de materia prima y la importancia de su
utilización en la medicina; el segundo es presentar nuestra experiencia a lo largo de dos
años, con un seguimiento de resultados antes y después del procedimiento médico,
incluyendo estudios cuantitativos, cualitativos y de observación, así como el grado de
satisfacción del paciente. Hemos aplicado técnicas propias. En el caso del tejido adiposo
no se realizo purificación, centrifugación ni decantación. Utilizamos exclusivamente
materiales autólogos, en forma tejido celular subcutáneo superficial y profundo con todo
su estroma vascular; además hemos utilizado plasma rico en plaquetas (PRP)
y
trombina autóloga. Las células de tejido adiposo autólogo para el implante, se
obtuvieron
del tejido celular subcutánea de la zona infraumbilical, trocanterica y
rodillas, ya que en estas zonas se localizan las células madres del tejido adiposo. En
nuestro estudio preferimos la zona trocanterica para el sexo femenino y la infraumbilical
para el sexo masculino, el plasma rico en plaquetas (PRP)
fueron obtenidos
de la sangre
y la trombina autóloga,
del propio paciente, no
considerándose un
hemoderivado, ya que se extraen de la sangre células vivas, que serán inyectadas
espontáneamente después de una centrifugación.
11
SUSTANCIAS AUTOLOGAS UTILIZADAS
-Tejido adiposo (sustancia semisólida)
-Plasma rico en plaquetas (PRP) (sustancia liquida)
-Trombina autóloga (gel)
1-Tejido adiposo
El tejido adiposo es un tejido conectivo, formado por células del propio tejido
(adipocitos) especializados en el acumulo de grasas y un estroma de tejido conjuntivo
reticular. Aunque el origen del tejido adiposo no es totalmente conocido, sabemos que
el mesodermo (lámina intermedia del disco embrionario) da origen a las células
mesenquimáticas y estas al tejido adiposo.
Su origen embrionario las define en células pluripotentes, con capacidad para
diferenciarse en células omnipotentes de varios tipos celulares, tales como adipocitos,
condorcitos, osteoblastos y miocitos. Los procesos celulares que llevan a la conversión
de las células pluripotentes en adipocitos omnipotentes aun están en estudio.
Figura 1: Adipogénesis
12
El tejido adiposo se encuentra distribuido en distintas localizaciones del organismo,
encontrándose principalmente a escala dérmica, subcutánea, mediastínica, mesentérica,
peri gonadal, perirrenal y retroperitoneal.
En los vertebrados se distinguen dos grandes tipos de tejido adiposo, el blanco y el
pardo o marrón. Ambos no presentan diferencias únicas y exclusivas en cuanto a
coloración, sino también en cuanto a su morfología, distribución, genes y función.
Tejido adiposo plurilocular (pardo): Este tipo de tejido es el menos estudiado de los
tejidos adiposos. Su elevada cantidad de citocromos le dan el color pardo, está
especializado en la producción de calor y juega un importante papel fisiológico en los
animales que hibernan. En la especie humana este tejido sólo es significativo en recién
nacidos, en el que ejerce una función termorreguladora. Aparentemente no se visualiza
neo formación de este tejido adiposo después del nacimiento, ni tampoco
transformación de un tipo adiposo en otro. Las células mesenquimatosas que van a
formar el tejido pardo, se vuelven epiteloides, tomando aspecto de glándula endocrina
cordonal antes de acumular grasa. Su distribución corporal es restringida, se localiza
fundamentalmente subscapular, axilar, nuca, a lo largo de los grandes vasos y en
pequeños paquetes intercostales. Está
formado por adipocitos pluriloculares con
abundantes mitocondrias que expresan altas cantidades de proteína desacoplante, la cual
es responsable de la actividad termo-génica de este tejido. Almacena la grasa en forma
de múltiples y pequeñas gotas distribuidas por todo el citoplasma en las células del
tejido adiposo (adipocitos).A pesar de existir escasamente en nuestro cuerpo, estudios
recientes señalan que alteraciones en la capacidad termo génica del tejido adiposo trae
desordenes endocrinos metabólicos relevantes, cambios en el gen que codifica los
receptores adrenérgicos ß, encargados de activar la “termogenina”, sustancia que
13
provoca que la energía producida a nivel mitocondrial no se acumule en forma de ATP
y se disipe en forma de calor (8) (9).
Figura 2: Características histológicas del tejido adiposo pardo. Tomado de
Junqueira, Luis y José Carneiro. Histología Básica: Texto y atlas color.6 ta Ed.
Barcelona. España. Editorial Elsevier, 2006.
El tejido adiposo pardo está constituido por células poligonales de tamaño mediano (3060 µm).
- con citoplasma abundante y granuloso, contiene pequeñas gotas de grasas de diferentes
tamaños, existen abundantes mitocondrias que expresan proteínas desacoplante
“termogenina” ”, retículo endoplásmico rugoso y liso, Golgi, glucógeno; el citocromo
presente en la mitocondria le confiere el color pardo-marrón al tejido.
- núcleo redondeado con ubicación excéntrica y contiene gránulos de cromatina grumosa.
- numerosos inclusiones (gotas) lipídicas pequeñas.
-lámina basal (peri celular).
-estroma de tejido conjuntivo reticular.
-muy vascularizado: 1 adipocito / 2 capilares sanguíneos.
-inervación del sistema nervioso autónomo simpática directa a cada adipocito.
14
Composición química del tejido adiposo pardo
.Triglicéridos en poca cantidad.
Tejido adiposo pardo como órgano regulador de temperatura
-Termogénesis
.la termogénesis depende de una proteína mitocondrial.
.termoprotección de los neonatos en mamíferos.
.hibernación.
.eliminación de energía “sobrante”.
-Termogenina
.la termogenina una proteína desacoplante de origen mitocondrial.
.canal de protones de la membrana interna mitocondrial (desacoplante de la fosforilación
oxidativa.
Tejido adiposo unílocular (blanco): La formación de tejido adiposo blanco comienza
antes del nacimiento, aunque la cronología de aparición varía de unas especies a otras. La
mayor expansión del mismo tiene lugar rápidamente tras el nacimiento. Pero el desarrollo
es un proceso continuo a lo largo de toda la vida. Una vez que el tejido adiposo está
completamente formado, los adipocitos representan uno y dos tercios del mismo. El resto
del tejido adiposo está constituido por células endoteliales, perioditos y precursores de
adipocitos con distintos grados de diferenciación, fundamentalmente fibroblastos, aunque
también aparecen preadipocitos (células intersticiales o vacías de lípidos), células
mesenquimales pobremente diferenciadas (poseen gotas de lípidos) y células grasas muy
pequeñas (10).Esta formado por adipocitos uniloculares;
funciona como almacén
energético y regulación de la energía disponible para el organismo (liposíntesis y
lipólisis), regula el apetito, protección mecánica (almohadillas plantares, grasa
retroperitoneal), aislamiento térmico (panículo adiposo) y morfología corporal carácter
15
sexual secundario. Almacena la grasa en el adipocito, en forma de una gran gota que
llena el citoplasma casi en su totalidad, desplazando al núcleo hacia la periferia de la
célula (8).
Figura 3: Características histológicas del tejido adiposo blanco Tomado de Junqueira,
Luis y José Carneiro. Histología Básica: Texto y atlas color.6 ta Ed. Barcelona.
España.Editorial Elsevier, 2006.
-adipocitos grandes (50-200 µm)
-núcleo marginado, poco visible.
-pocas y grandes inclusiones (gotas) lípidicas.
-lámina basal (pericelular).
-escaso citoplasma con retículo endoplásmico rugoso y liso, Golgi, glucógeno.
-estroma de tejido conjuntivo reticular
.muy vascularizado: 1 adipocito / 1 capilar sanguíneo.
.innervación perivascular simpático.
Composición química del tejido adiposo blanco
-Triglicéridos (90%)
16
-Ácidos grasos libres
-Colesterol
-Fosfolípidos
-Lipocromos (carotenos, xantinas…)
Tejido adiposo blanco como órgano de almacenamiento de energía
-Lipogénesis: El tejido adiposo blanco es el mayor reservorio energético del organismo, la
energía es almacenada en las células grasas en forma de triglicéridos. La principal fuente
de triglicéridos de los adipocitos procede de los quilomicrones y las lipoproteínas de muy
baja densidad (VLDL) circulantes. Los triglicéridos de estas lipoproteínas son
hidrolizados hasta ácidos grasos libres. El termino lipogénesis designa la formación de
ácidos grasos a partir de algún precursor derivado del adipocito, por ejemplo la glucosa
(11).
-Lipólisis: Durante la lipólisis los triglicéridos almacenados en el tejido adiposo son
hidrolizados hasta ácidos grasos y glicerol (12).
El tejido adiposo blanco como órgano secretor
El tejido adiposo blanco es un productor de ciertas sustancias con acción endocrina,
paracrina y autocrina. En este grupo de sustancias secretadas se encuentran moléculas
implicadas en la regulación del peso corporal (leptina), sustancias relacionadas con el
sistema inmune (TNFa, IL-1, IL-6), la función vascular (angiotensina e inhibidores del
activador del plasminógeno tipo 1), el desarrollo de resistencia a la insulina (resistina) y la
función reproductora (estrógenos), entre otras.
-Leptina: Es una hormona segregada principalmente por los
adipocitos, juega un
importante papel en la regulación del peso corporal a través de sus efectos sobre el
sistema nervioso central
inhibiendo el apetito y periféricos sobre el gasto energético
(13).
17
-Citoquinas (TNFa, IL-1, IL-6): Estas moléculas multifuncionales son producidas por
muchos tipos celulares incluidos los adipocitos. Respecto a la función que lleva a cabo
estas citoquinas secretadas por el tejido adiposo, se ha sugerido una acción paracrina o
autocrina en el propio tejido adiposo. Los niveles del TNFa en el tejido adiposo están
correlacionados positivamente con el tamaño de los depósitos adiposos. Los niveles altos
de TNFa en el tejido adiposo podrían estar implicados en el desarrollo de algunas
alteraciones metabólicas tales como resistencia a la insulina. En este sentido, se ha
demostrado que el TNFa inhibe la captación de glucosa dependiente de insulina ya que
interfiere con la ruta de señalización de la misma. El papel en el ámbito fisiológico
general que pudieran tener estas citoquinas secretadas por el tejido adiposo no está claro
(14).
-Resistina: Es secretada por adipocitos maduros y que se ha postulado podría ser el enlace
entre la obesidad y el desarrollo de resistencia a la insulina, sin embargo otros estudios
revelan que la expresión de resistencia en tejido adiposo está severamente disminuido en
la obesidad (15).
-Adipsina/ASP: (Acylation Stimulating Protein) es una proteína sérica relativamente
pequeña, que interviene en la regulación de los ácidos grasos procedentes de la acción de
la lipoproteína lipasa, son aceptados por los adipocitos y posteriormente convertidos en
triglicéridos. La ASP se genera a través de la interacción de un complejo de proteínas
entre las cuales se incluye la Adipsina, de ahí que el sistema se denomine Adipsina/ASP
(15).
-Acrp 30/Adipo Q/ Adiponectina (Adipocyte Complement Related Protein), es una
proteína expresada exclusivamente para adipocitos diferenciados. Se ha observado que
sus niveles de ARNm están disminuidos en humanos obesos (15).
18
-Sistema renina-angiotensina: El angiotensinógeno puede jugar un papel importante en la
regulación del aporte sanguíneo al tejido adiposo y el flujo de ácidos grasos desde el
mismo. Además se ha observado que la expresión génica de angiotensinógeno está
aumentada en humanos obesos. La angiotensina II posee un efecto estimulante sobre la
diferenciación del tejido adiposo y parece estar implicado en la regulación de la
adiposidad debido a su acción lipogénica (16).
Además debemos señalar que el tejido adiposo blanco produce una gran cantidad de
moléculas multifuncionales, denominadas “adipocinas”, están modulan la inflamación
crónica, bajo el grado que acompaña la obesidad, entre las que podemos mencionar la
adiponectina, apelina, chemerina, factor tisular, hepcidina, factor de crecimiento de
hepatocitos, Il-6, leptina, lipocalina-2, proteínas quimio atrayentes de monocitos,
omentina, osteopontina, inhibidor del activador de plasminogeno, retinol binding protein,
amiloide sérico, factor transformador de crecimiento β, factor de necrosis tumoral α,
trombospondina 1, vaspina, visfatina (12).
El tejido adiposo tiene la capacidad de expandirse o contraerse según los parámetros
nutritivos, para ello requiere del estroma vascular o tejido conjuntivo reticular, que le da
soporte, vascularización e inervación. La fracción de tejido adiposo correspondiente a
estroma vascular contiene el “nicho” de células madre tisular, capaz de crear un tipo
especial de células o pericitos que rodean los vasos capilares más pequeños (17).
2-Plasma rico en plaquetas (PRP)
En línea general cuando hablamos bioquímicamente de un plasma, estamos en presencia de
suero, leucocitos, plaquetas y factores de crecimiento. El sistema para la obtención de
proteínas plaquetarias y plasmáticas, no es más que proteínas autólogas, que se obtienen de
la sangre del propio paciente momentos antes de su utilización terapéutica, mediante aféresis
y centrifugación; se prepara a partir de un determinado volumen de (PRP). Según el criterio
19
de los hematólogos un plasma rico en plaquetas (PRP) es aquel que contiene más de 300 000
-350 000 plaquetas/uL, pudiera hablarse de una concentración de plaquetas
ocho veces
más, en comparación con la concentración de plaquetas en sangre total. La técnica para la
obtención del PRP hace que este contenga la menor cantidad posible de leucocitos. El PRP
contiene factores de crecimiento tanto de origen plaquetarios como plasmáticos; implicados
en los mecanismos de reparación y regeneración tisular, también contiene proteínas
plasmáticas adhesivas como la fibrina, fibronectina, vitronectina, entre otras (18) (19).
3-Trombina humana. La trombina
es una glicoproteína, formada por dos cadenas
polipeptídicas de 36 y 259 aminoácidos, unidas por un puente disulfuro.
Figura 4: Diagrama de cascada de la trombina:
Rev Cubana Hematol Inmunol Hemoter, 2001.17 (2):p.77-89.
20
La trombina no es un constituyente de la sangre, sino que se genera a partir del precursor
protrombina. Para que este proceso ocurra, interviene el calcio en las distintas etapas de la
cascada de la coagulación; en la última etapa el complejo activado Xa/Va transforma la
protrombina en trombina a través de una reacción catalizada por la enzima tromboplastina
en presencia de iones de calcio (Ca2+).
La trombina es la iniciadora de la formación de coágulo; es responsable de la formación
de la red de fibrina en cuyos nudos se encuentran las plaquetas, leucocitos y macrófagos
(18).
IMPACTO DEL TRASPLANTE DE TEJIDO ADIPOSO EN LA
MEDICINA ESTÉTICA-COSMÉTICA
Cuando hablamos de tejido adiposo no podemos pasar por alto la existencia de su estroma
vascular, en que se encuentra el “nicho de células madres” o también llamadas células
tróncales; estas son un tipo especial de células indiferenciadas que tienen la capacidad de
dividirse indefinidamente, sin perder sus propiedades
y llegar a producir células
especializadas. Existe una clasificación de células madres, estas pueden ser residentes,
embrionarias o adultas. Se ha descrito la existencia de células madres adultas en diferentes
tejidos
(hematopoyético, neuronal, epidérmico, gastrointestinal, músculo esquelético,
músculo cardíaco, hígado, páncreas, pulmón, tejido adiposo) (20).La primera propuesta de
usar tejido adiposo autólogo como injerto fue expuesta por Neuber en 1893.La idea gano
rápidamente entusiasmo. Posteriormente las primeras experiencias de trabajar con trasplante
de tejido graso autólogo fue decepcionante, pero se albergaba la esperanza de que en un
futuro se podría transferir con éxito. Muchos científicos han dedicado su tiempo a trabajar
con el tejido graso, entre estos podemos mencionar a Guerrerosantos, Coleman y otros,
demostrando que es posible con un cuidadoso procedimiento preservar la supervivencia del
tejido graso. Actualmente este, se utiliza en la cirugía plástica y medicina estética-cosmética,
en el remodelado de curvas y volúmenes, restauración mamaria, radio dermitis, cicatrices,
21
esclerodermia, síndrome Parry-Romberg, etcétera. Llegándose a obtener resultados muy
alentadores tanto para el médico, como para los pacientes, ya que en algunos casos
el
trasplante de tejido graso autólogo ha logrado una supervivencia entre 4 y 8 años. En el caso
de la medicina estética-cosmética se emplean técnicas que ofrecen múltiples ventajas, por la
simplicidad del procedimiento, reproducibilidad, seguridad, eficacia, poco riesgo para el
paciente, brindando soluciones paliativas interesantes. En la literatura se recogen múltiples
ensayos realizados para tratar el tejido adiposo, los cuales describimos más adelante (21)
(22) (23) (24) (25).
PLAQUETAS Y REPARACIÓN TISULAR
Las plaquetas han sido muy estudiadas por su papel en la hemostasia, donde desempeñan una
función fisiológica muy importante, hoy sabemos que también son portadoras de proteínas
con un papel importante en la reparación y regeneración tisular. Las plaquetas o trombocitos
no son más que partículas ovoides, irregulares sin núcleo ni otros orgánulos, de superficie
lisa, de unos 3 µm de diámetro; algunos autores las denominan células anucleadas y tienen
una vida media de 7 a 10 días. Después de los eritrocitos son el elemento más abundante de
la sangre, son propias de los mamíferos. Estas partículas tienen su origen en el tejido
hematopoyético de la medula ósea, específicamente
proceden de la fragmentación del
citoplasma de los megacariocitos medulares circulantes en la sangre. Las plaquetas
circulantes se encuentran en una interacción dinámica con los componentes del plasma, los
demás elementos formes de la sangre y con el endotelio vascular, a través de las
glicoproteínas de la membrana plaquetaria y diferentes mediadores químicos. Constan de una
ultra estructura que le es propia, constituida por varias aberturas semejantes a una esponja,
los cuales son conductos membranosos que se prolongan hacia el interior de la partícula.
Después de una lesión se producen cambios que afectan su morfología y bioquímica
activándolas. Una vez activadas se van destruyendo, y durante este proceso liberan
22
importantes sustancias coagulantes que conducen a la formación un tapón hemostático
primario, hemostático
secundario en cualquier solución de continuidad del endotelio
vascular, siendo este el primer paso de la cicatrización, además de estar implicadas en la
hemostasias por su función pro-coagulante,
son fuente natural de varios factores de
crecimiento involucrados en vigilar la continuidad de los vasos sanguíneos y en la reparación
de tejidos. Actúan como vehículo de estos factores de crecimiento y los liberan en las zonas
donde hay daño tisular. Todas estas funciones las pueden realizar, por la compleja estructura
que poseen, la que consta de cuatro zonas (19) (26).
-Zona periférica: glucocálix, membrana.
-Zona estructural: micro túbulos, cito esqueleto submembranoso, actina, miosina.
-Zona de organelas: cuerpo denso, lisosoma, gránulos alfa, mitocondrias.
-Sistema de membrana: sistema canalicular abierto, sistema tubular denso.
De la superestructura plaquetaria, en nuestro estudio centramos la atención la zona de
organelas ya que en su interior se encuentran unos
gránulos secretores especializados
llamados gránulos alfa, que almacenan en su interior gran variedad de factores de
crecimiento.
Gránulos alfa: Son organelos esféricos de 140-400 nm, sintetizados por el aparato de Golgi,
ricos en macro-moléculas con una porción de alta densidad en electrones. Constituyen un
15% del volumen total de las células. Sus membranas contienen glicoproteínas, factor de
crecimiento derivado de plaquetas, fibrinógeno, trombospondín, P selectina, colagenasa,
elastasa, inhibidores de la proteasa. Después de un estimulo fuerte los gránulos α se alargan
y emiten seudópodos, se aproximan a la membrana plasmática (lo que es posible debido a la
disolución del sistema canalicular abierto), se funden con la membrana, aumentan el volumen
debido a la entrada de agua y esto propicia la liberación de su contenido al medio exterior en
forma de factores de crecimiento. Entre otros se almacenan factor de crecimiento derivado
23
de plaquetas, factor de crecimiento transformador α (TGFα), factor de crecimiento
hepatocitario/factor dispersador (HGF),factor de crecimiento de la célula endotelial vascular
(isoformas A, B, C, D) (VEGF), factor de crecimiento del fibroblasto-1(acidito)-2(básico) y
familia (FGF), factor de crecimiento queratinocítico (también denominado FGF-7) (KGF),
factor de crecimiento de tipo insulina-1 (IGF-1), factor de necrosis tumoral (TNF),
interluquinas (IL-1), interferones (IFN-α), factor de crecimiento epidérmico (EGF).Estas
sustancias fueron sintetizadas por los megacariocito, ya que la plaqueta no contiene núcleo,
ni lo elementos necesarios para la síntesis de proteínas. Por otra parte, durante su recorrido
por el torrente sanguíneo la plaqueta capta proteínas plasmáticas que también almacena en el
interior de sus gránulos. Contiene por tanto una compleja
mezcla de proteínas, unas
procedentes de su célula precursora, el megacariocito, y otras capturadas por endocitosis del
torrente sanguíneo. Queda claro que cuando hablamos de plaquetas, estamos en presencia de
una compleja estructura, sujeta a la influencia de una gran diversidad de factores, y saltan a
la vista sus gránulos secretores α, y la liberación de una gran variedad de factores de
crecimiento contenidos en su interior; siendo estos últimos los mediadores biológicos
universales de nuestras células. Hace más de una década se habla sobre la utilización de
proteínas plaquetarias autólogas en la cirugía oral y maxilofacial. Actualmente se han ido
introduciendo en el mercado distintos sistemas de obtención y preparación de concentrados
plaquetarios con fines terapéuticos en otras ramas de la medicina (18) (19) (27).
POLIVALENCIA DE LOS FACTORES DE CRECIMIENTO
Como fue mencionado anteriormente, en nuestro estudio además del tejido adiposo,
utilizamos factores de crecimiento autólogos de origen plaquetario; estos pueden ser
producidos y almacenados por diferentes células y tejidos, entre estos podemos mencionar
plaquetas, fibroblastos, macrófagos, células endoteliales, monocitos, matriz ósea, riñón,
glándulas salivares glándulas lagrimales, músculo liso, diversas células tumorales
24
etcétera; algunos de los cuales actúan en varios tipos celulares, y otros tienen dianas
celulares restringidas. En el caso de las plaquetas, estas actúan como almacén de factores
de crecimiento, concentrados en los gránulos secretores α. Los factores de crecimiento
son proteínas con un papel clave
dentro del complejo proceso bioestimulación,
reparación y regeneración tisular. Su aplicación terapéutica estimula e inhiben los
procesos biológicos de migración celular dirigida (quimio taxis), diferenciación y
proliferación celular, inducción e inhibición de la angiogénesis. Cabe destacar la
influencia de los factores de crecimiento sobre las células más comunes del tejido
conectivo, ya que estos inducen a la proliferación de los “fibroblasto”. Estas células
derivan de células primitivas mesenquimales y pluripotenciales, proporcionando una
estructura entramada a múltiples tejidos, jugando un papel importante en la reparación y
regeneración tisular ya que interviene en la síntesis de todas las fibras del tejido conectivo
(reticulares, colágenos y elastina) y mantenimiento de la matriz extracelular del tejido de
muchos animales (19) (25) (28) (29).
LIBERACIÓN Y MECANISMO DE ACCIÓN DE LOS FACTORES
DE CRECIMIENTO
Cuando las plaquetas se activan, se inicia una cascada de señalizaciones que conduce a la
reorganización del cito esqueleto de la plaqueta, la centralización de sus gránulos
secretores y la exocitosis de moléculas pequeñas y proteínas procedentes de tres tipo de
gránulos: gránulos densos, gránulos α y lisosomas. Los gránulos densos contienen
moléculas pequeñas con adenosin trifosfato (ADP) y serotonina, factores protrombinicos,
los lisosomas contienen enzimas de degradación, los gránulos α representan el lugar de
almacenamiento de diversas proteínas y su liberación está dirigida por mecanismos
moleculares precisos. La presencia de gránulos densos y gránulos α es la clave para
pasar de la hemostasis a la fase de regeneración celular. Se ha observado que cuando se
utiliza Ca2+ para inducir la activación de las plaquetas, la cinética de liberación de los
25
factores de crecimiento contenidos en los gránulos α es lenta, desarrollándose una
cascada filológica(18) (19) (27).
1-Primera semana: se desarrolla el proceso de angiogénesis a nivel de los capilares,
mediante la inducción de la mitosis en las células endoteliales. La continua secreción de
TGF- ß favorece la proliferación del fibroblasto. Entre el quinto y séptimo día el PRP atrae
los macrófagos y a partir de aquí los procesos regenerativos serán estimulados por los
factores de crecimiento derivados de macrófagos.
2-Segunda y tercera semana: La actuación directa de los factores de crecimiento permite
la mitogénesis celular y la angiogénesis.
3-Cuarta a sexta semana: Revascularización y regeneración celular. Desaparecen los
macrófagos, iniciándose un proceso restitutivo, que pretende llevar a la normalidad el
metabolismo y funcionamiento cutáneo.
FACTORES DE CRECIMIENTO IMPLICADOS EN LOS PROCESOS
TISULARES
Figura 5: Agregado de plaquetas y gránulos α dentro de la estructura plaquetaria,
degranulación plaquetaria. Tomado de PA Everts et al: Reviewing the structural features
of autologous platelet-leukocyte gel and suggestions for use in surgery. Eur Surg Res 2007,
39:199-207.
26
A) Microscopia electrónica de un agregado de plaquetas y los gránulos alfa dentro de
la estructura de las plaquetas. Magnificación X 7,000.
B) Microscopia electrónica de plaquetas que han sido inducida a degranular. Las
plaquetas dentro del círculo han perdido los gránulos y solo en algunas fuera del círculo
aun se pueden observar los gránulos α.
Figura 6: Microscopia electrónica de alta resolución. Agregado de plaquetas y
gránulos α dentro de la estructura plaquetaria. Tomado por Acosta I, Hurtado P,
2010.
27
Figura 7: Microscopia electrónica a alta resolución de una plaqueta, donde se
puede ver los gránulos α antes de inducir su activación. Tomado por Acosta I,
Hurtado P, 2010.
28
Figura 8: Microscopia electrónica a alta resolución, que muestra plaquetas
durante el proceso de activación como se describe en el material y método, donde
se puede observar una plaqueta después de su degranulación, sin gránulos α.
Tomado por Acosta I, Hurtado P, 2010.
Existen factores de crecimiento propiamente dichos y factores de transformación.
I) Factores de crecimiento de transformación (estimulador/inhibidor)
a-Factor de crecimiento transformador α (TGF α). Es un factor positivo que estimula la
replicación celular.
.fuente: macrófagos, linfocitos T, queratinocitos y diversos tejidos.
29
.funciones: similares al factor de crecimiento epidérmico (EGF), estimula la replicación de
hepatocitos y ciertas células epiteliales.
b- Factor de crecimiento transformador ß (isoformas 1, 2, 3); otros miembros de la familia
son proteínas morfogénicas de la medula (BMP) (TGF-ß). Es un factor negativo que inhibe
de la mayoría de las células y leucocitos.
.fuente: plaquetas, fibroblastos, linfocitos T, macrófagos, células endoteliales, queratinocitos,
células musculares lisas.
.funciones: quimiotáctico para los leucocitos polimorfonucleares (PMN), macrófagos,
linfocitos, fibroblastos y células musculares lisas, estimula la síntesis de inhibidor tisular de
la metaloproteínas de matriz ( TIMP), la migración de queratinocitos, la angiogénesis y la
fibroplasia, inhibe la producción de metaloproteínas de matriz (MMP) y proliferación de
queratinocitos; regula la expresión de integrina y otras citocinas; induce la producción de
factor de crecimiento transformador ß (TGF-ß), está implicado en la regulación, reparación y
regeneración tisular
II) Factores de crecimiento propiamente dichos (tejido donde actúan)
a-Factor de crecimiento hepatocitario /factor dispersador (HGF).
.fuente: células mesenquimales.
.funciones: aumenta la proliferación de células epiteliales y endoteliales y de hepatocito
incrementando la motilidad celular.
b- Factor de crecimiento de la célula endotelial vascular (isoformas A, B, C, D) (VEGF).
.fuente: células mesenquimales.
.funciones: aumenta la permeabilidad vascular; mitógeno para células endoteliales.
c-Factor de crecimiento del fibroblasto-1(acidito)-2(básico) y familia (FGF).
.fuente: macrófagos, mastocitos, linfocitos T, células endoteliales, fibroblastos y diversos
tejidos.
30
.funciones: quimio táctico para fibroblastos; mitógeno para fibroblastos y queratinocitos;
estimula la migración de queratinocitos, angiogénesis, contracción de la herida y depósitos de
matriz.
d- Factor de crecimiento queratinocitico (también denominado FGF-7) (KGF).
.fuente: fibroblastos.
.función: estimula la migración de queratinocitos, proliferación y diferenciación.
e-Factor de crecimiento de tipo insulina-1 (IGF-1).
.fuente: macrófagos, fibroblastos y otras células.
.función: estimula la síntesis de proteoglicanos sulfatados, colágenos, migración de
queratinocitos y proliferación de fibroblastos; efectos endocrinos similares a la hormona del
crecimiento.
f- Factor de necrosis tumoral (TNF).
.fuente: macrófagos, mastocitos, linfocitos T.
.funciones: activa los macrófagos; regula otras citoquinas; funciones múltiples.
g- Interluquinas (IL-1 etc).
.fuente: macrófagos, mastocitos, queratinocitos, linfocitos y diversos tejidos.
.funciones: muchas funciones, algunos ejemplos: quimio táctico para
leucocitos
polimorfonucleados (PMN) (IL-1) y fibroblastos (IL-4), estimulación de la síntesis de
metaloproteinasas-1(MMP-1) (IL-1), angiogénesis (IL-8), síntesis de inhibidor tisular de la
metaloproteínas de matriz (TIMP) (IL-6); regulación de otras citoquinas.
h- Interferones (IFN-α etc).
.fuente: linfocitos y fibroblastos
.funciones: activan los macrófagos, inhiben la proliferación de fibroblastos y la síntesis de
metaloproteínas de matiz (MMP), regulan otras citoquinas.
i- Factor de crecimiento epidérmico (EGF).
31
.fuente: plaquetas, macrófagos, saliva, sudor, orina, leche, plasma, contenidos intestinales
.funciones: mitógeno para queratinocitos y fibroblastos, estimula la migración de
queratinocitos, formación de tejido de granulación y estimula la angiogénesis, estimula la
quimio taxis del fibroblasto, activa la formación de matriz provisional, es sintetizado como
precursor de aminoácidos, tiene efecto proapoptótico, intervienen en la síntesis de colágeno
total .
j- Factor de crecimiento derivado de plaquetas (isoformas A, B, C, D).
El factor de crecimiento derivado de plaquetas se les denomino de esta forma por
encontrarse por primera vez en las plaquetas, almacenados dentro de los gránulos α.
Constituye una familia de proteínas estrechamente relacionadas, cada una de ellas con dos
cadenas denominadas A y B. Las tres isoformas del (AA, AB, BB) son secretadas y
biológicamente activas.
.fuente: plaquetas, macrófagos, células endoteliales, queratinocitos, células de músculo liso.
.función: quimio táctico para leucocitos polimorfonucleares (PMN), macrófagos, fibroblastos
y células musculares lisas; activa (PMN) y fibroblastos; mitógeno para fibroblastos, células
endoteliales, células mesenquimales y células musculares lisas; estimula la producción de
metaloproteínas de matriz (MMP), fibronectina y acido hialurónico(AH); la quimio taxis de
sus macrófagos estimula la angiogénesis; contracción y cicatrización de la herida;
remodelado; inhibe la agregación plaquetaria; regula la expresión de la integrina, también
participa en la activación de las células estrelladas hepáticas en los pasos iníciales de la
fibrosis hepática, induce la producción de la matriz extracelular e inhiben la degradación de
esta, facilitando la síntesis
de colágeno tipo I. Siendo la matriz extracelular el elemento
esencial para el medio de integración fisiológica de los tejidos, de naturaleza bioquímica de
alta complejidad , en la que están inmersas las células del sistema del medio intersticial
(intercelular), cumpliendo funciones vitales, como la de rellenar los intersticios, confiere
32
resistencia mecánica a los tejidos, constituye el medio homeostático, nutrición y metabolismo
celular, y promueve la fijación para el anclaje celular; constituyendo el medio táctico para
el transito celular, e interviene en la comunicación celular (endocrina, paracrina. autocrina,
yuxtacrina, nerviosa), e interviene en la síntesis de colágeno, elastina y ácido hialurónico.
Los factores de crecimiento de origen plaquetario son los iniciadores universales de casi
todos los procesos de regeneración y restauración celular en la zona receptora, permitiéndole
una dimensión suplementaria a los trasplantes, en este caso al de tejido graso, garantizando
una mejor aceptación y supervivencia de estas, además mejorando la calidad de la piel,
permitiendo una mayor estimulación y regeneración tisular (19) (30) (31) (32).
TROMBINA, CINETICA DE LIBERACIÓN DE LOS FACTORES DE
CRECIMIENTO
La trombina además de ser la iniciadora de la formación de coágulo y responsable de la
formación de la red de fibrina en cuyos nudos se encuentran las plaquetas, leucocitos y
macrófagos, desempeña otras múltiples funciones, entre estas está la de estimular a los
gránulos secretores α contenidos en el interior de la plaqueta; intervenir
en la síntesis,
expresión y liberación de proteínas de las células endoteliales especialmente los factores de
crecimiento derivados de plaquetas, el factor XIII, factor VIII, y el factor activante de
plaquetas, todos ellos capaces de modificar las interacciones entre las células endoteliales y las
células subyacentes; aumenta la expresión de glicoproteínas de adhesión de la membrana
celular endotelial lo que favorece a la fijación de factores de la inflamación al endotelio;
induce la quimio taxis en los neutrófilos; además la trombina es un potente quimiotáxico para
los macrófagos en los que altera la producción de citoquinas y metabolitos del ácido
araquidónico. Cuando queremos lograr una secreción rápida e instantánea (1-2 minutos) de
los factores de crecimiento de origen plaquetario utilizamos trombina endógena; por el
contrario la activación con calcio provoca una liberación lenta de los factores de crecimiento,
33
la cual ocurre después de haber transcurrido una hora después de la activación en el 90-95%
de los casos (18) (19) (27) (33).
MATERIALES AUTOLOGOS /CARCINOGÉNESIS
Hay que tener presente que las células normales solo son capaces de proliferar un número
determinado de veces, hasta llegar a un límite máximo (limite Hayflick) a partir del cual la
célula sufre una serie de cambios bioquímicos entrando en senescencia. La célula que adquiere
la habilidad de proliferar ilimitadamente se denomina “inmortalidad celular” y esto se
considerado un proceso importante hacia la transformación maligna de las células normales.
Los mecanismos de control celular (genes supresores y proapoptoticos) van a evitar que la
célula sobrepase ese límite y entre
en dos posibles
etapas, apoptosis o senescencia/
diferenciación terminal. Teniendo presente esta base científica,
sobreexpresión de
se ha relacionado la
los factores de crecimiento y sus receptores en tejidos tumorales y
displasias; es decir la existencia de una posible relación de estos con la carcinogénesis y la vía
mitogena que utilizan los factores de crecimiento. Sin embargo los autores que han empleado
ampliamente el plasma rico en plaquetas (PRP) en diferentes ramas de la medicina, aseguran
que no existe riesgo de infecciones o transmisiones de enfermedades, niegan la existencia de
efectos indeseables; y hasta la fecha de hoy no existe evidencia científica que demuestre
transformación carcinomatosa de tejido normal o displásico. Pero no pasamos por alto las
hipótesis, sospechas, e indicios que establecen la posible relación de la aplicación del plasma
rico en plaquetas (PRP)
y la carcinogénesis y teniendo en cuenta cierta semejanza en
mecanismo bioquímicas, consideramos tomar como apropiado determinadas precauciones.
-Realizar técnica de obtención de plasma rico en plaquetas (PRP) de una sola centrifugación,
para obtener la mínima dosis efectiva, ya que se ha observado similares resultados
terapéuticos con respecto a la doble centrifugación.
34
-Evitar la utilización de plasma rico en plaquetas (PRP) en pacientes con condiciones
precancerosas (tejido con displasia, leucoplasias, queilosis solar, o neoplasia a cualquier
nivel).
-Evitar la aplicación de plasma rico en plaquetas (PRP) en el “campo de cancerificación” de
pacientes con exposición previa
a carcinógenos. En este sentido se considera poco
recomendado utilizar plasma rico en plaquetas (PRP) en fumadores y/o bebedores, ya que
están expuestos a potentes agentes mutágenos y tienen por tanto una mayor probabilidad de
que existan células iniciadoras en el proceso de carcinogénesis (19) (34).
Acerca del trasplante de tejido graso, existe evidencia científica, en la que resalta esta técnica
por su buena reputación y resultados reproducibles, basados en la terapia regenerativa, además
de considerarse un material totalmente inocuo (35) (36).
TÉCNICAS PARA OBTENER (PRP, tejido adiposo blanco, trombina
autóloga)
-El plasma rico en plaquetas (PRP) se puede obtener de forma manual con “técnica
abierta” o mediante kits desechables “técnica cerrada”, describiéndose
Sistema
Harvest Smart PReP
diversas técnicas.
de doble centrifugación; Técnica manual de Anitua y
colaboradores con una sola centrifugación; Sistema BTI PRGF, Curasan PRP kit AG,
Friadent-Schultze PRP KIT, Symphony Platelet Concentrate-Sustem, Secuestra 5000
centrifygation, entre otros. Dependiendo del sistema empleado las concentraciones
de
plaquetas y leucocitos pueden variar. En la técnica de doble centrifugación, se procesa la
sangre que pueden ser 280g a (1400 rpm) durante 7 minutos, o 160g a (1200rpm) durante
10 minutos, el sobrenadante se vuelve a centrifugar a 400g (200rpm) obteniéndose un PRP
concentrado. Habitualmente la concentración de plaquetas es de un 33-40%, tras este proceso
aumenta hasta un 330%.Existen otros estudios en los que la primera centrifugación 200g
durante 10 minutos y la segunda centrifugación 700g durante 15 minutos (34) .Eduardo
35
Anitua y colaboradores, describieron la técnica de obtener plasma rico en plaquetas (PRP)
mediante centrifugado lento (Sistema BTI PRGF),en el que se procesan pequeñas cantidades
de sangre de 40ml aproximadamente, obteniendo un plasma rico en plaquetas (PRP) con todas
las proteínas y factores de la coagulación plasmática. Otros protocolos realizan una doble
centrifugación, a mayor velocidad para obtener un superconcentrado de plaquetas; otros
procesan 400-500mL de sangre. El coagulo se obtiene al agregar cloruro de calcio, sin
necesidad de utilizar trombina, evitando la aparición de enfermedades desencadenadas por
esta sustancia, otros protocolos utilizan trombina bovina. Entendemos que la técnica de
obtención de plasma rico en plaquetas (PRP) utilizada por Anitua, nos permite utilizar las
plaquetas como vehículo portador de factores de crecimiento, se puede controlar la liberación
y concentración de estas proteínas, ofrece mayor seguridad biológica ya que evita la
sobreexpresión de factores de crecimiento, nos permite utilizar los factores de crecimiento en
la zona receptora que deseamos, favoreciendo y acelerando el proceso de regeneración y
reparación tisular (19) (37).
-El tejido adiposo blanco. La primera transferencia de grasa se hace en el año 1893 por el
Dr F. Nueber. Posteriormente se describen diferentes técnicas, fundamentalmente mediante
purificación a través lavado con Ringer Lactato, filtrado, decantación y centrifugación. La
restauración de volúmenes o lipoestructura se describe en 1994 por Sydney Coleman, esta
incluye sedación y anestesia local de las zonas donantes o receptora y/o anestesia general,
dependiendo de las características de cada paciente. Obtienen la grasa de forma manual
mediante aspiración con cánula Coleman de extremo romo, unida a una jeringa a presión
negativa, suficiente para aspirar y no causar daño al tejido adiposo. El material obtenido no
se somete a maniobras de lavado o colado para evitar dañar los adipocitos, pero si se realiza
purificación del tejido adiposo mediante centrifugación a 3000 rpm durante 3 minutos, para
separa la grasa pura de la sangre, detritos, anestesia y aceites. Otros autores el material
36
aspirado lo depositan de forma vertical para realizar un decantado obteniendo un estrato
superior (grasa pura), un estrato intermedio (lisis por el proceso de aspiración) y un estrato
inferior (presencia de eritrocitos), utilizando en el tratamiento solo el estrato superior.
Existen publicaciones que plantean que estos mecanismos de depuración pueden crear un
daño osmótico
modificar
o traumatismos de tipo mecánico sobre los adipocitos, lo que puede
la supervivencia de estos. Al margen de la técnica utilizada para obtener el
tejido adiposo, su posterior aplicación está basada en la modificación tridimensional de la
anatomía, mediante el relleno de las zonas en desarmonía con el propio tejido graso del
paciente, permitiendo que la sangre revascularice las zonas receptoras de tejido adiposo y el
cuerpo las incorpore permanentemente como tejido propio, ofreciendo resultados
predecibles, permanentes y seguros (21) (22) (23) (24) (25).Tomando como premisa todas
las cualidades del tejido adiposo y la experiencia de múltiples científicos, hemos dedicado
una parte de nuestro estudio a la utilización de este como material de relleno. Según nuestra
experiencia, hoy sabemos que un trasplante material autólogo es “inocuo” y tiene mayor
éxito si se lleva a cabo de forma instantánea, transfiriendo de la zona donante a la receptora,
sin ningún tipo de manipulación, estas células vivas, van a crear tejido vivo. Teniendo
presente las leyes naturales de la física y la química, en esta situación, sería más razonable
hablar de un trasplante de tejido sub-cutáneo y no de un lipo-filling, a pesar de estar
constituido en su mayoría por células de tejido adiposo. Los implantes de tejido adiposo
autólogo por sí mismo, estimulan una neovascularización y le donan a la piel una mayor
consistencia y textura (38) (39) (40).
-La trombina autóloga, se obtiene mediante métodos de fraccionamiento y purificación de
plasma.
1-Método de precipitación
a. método físico mediante crio precipitación
37
b. método fisicoquímico, entre éstos los procedimientos de precipitación con etanol,
derivados del método clásico de Cohn, siendo los más utilizados para la obtención de
albumina e inmunoglobulinas.
2- Método cromatográfico
a. filtración en gel
b. cromatografía de intercambio de iones
c. cromatografía de afinidad
En nuestro estudio se utilizo el método de precipitación fisicoquímica de Cohn, siendo este
el método de fraccionamiento de plasma más utilizado, el cual se basa en la propiedad de las
diferentes proteínas de precipitar a diferentes concentraciones de etanol y temperatura de
acuerdo a su punto isoeléctrico. Esta materia prima autóloga constituida por fibrinógeno y
fibrina al unirla con PRP y factores de la coagulación, activa nuevamente el proceso de
coagulación, obteniendo una trombina autóloga humana que pasa rápidamente de estado
liquido a gel (41) (42) (43) (44) .
Este método para la purificación de trombina autóloga fue elegido por ser practico y eficaz,
según ha sido demostrado por varios autores (45) (46) (47) (48) (49), el cual hemos
modificado y describimos en el método.
OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN
I-General:
a) Evaluación de la efectividad terapéutica del uso de los materiales autólogos con fines
cosméticos.
II-Específicos:
a) Establecimiento de parámetros estéticos a evaluar y selección de la muestra.
b) Generación de soporte tisular bilógico activo, basado en componentes autólogos.
38
c) Evaluación
de la respuesta restauradora del material autólogo en los pacientes
tratados.
MATERIAL Y MÉTODO
1-Diseño de estudio: Prospectivo, observacional.
2-Escenario: El trabajo investigativo se llevo a cabo en el Centro de Atención Primaria
“Santa Perpetua de la Mogoda”, Valles Occidental, Barcelona, España y en el Centro
Médico de Prévention de la Sénescence Cutanée, Ohaín, Bélgica.
3-Periodo de tiempo analizado: Nuestro estudio se inició en enero 2009 y finalizó en
junio 2011.
4-Universo: La muestra de estudio está constituida por un total de 32 individuos, 5 del
sexo masculino y 27 del sexo femenino. Con una edad máxima de 60 años, una edad
mínima de 40 años, para una media de 50 años.
5- Definición y criterios utilizados
a)- Criterios de inclusión
-todos aquellos pacientes que fueron caracterizados por la encuesta epidemiológica
-ambos sexos
-edad mínima 40 años
-edad máxima 60 años
-que todos los pacientes firmaran el Consentimiento Informado I: Acerca del
procedimiento, quedando plasmado su conformidad de formar parte de la investigación,
con relación al Consentimiento Informado II: Acerca de la publicación de fotos con fines
científicos, no fue obligatorio en nuestra investigación, por la existencia de diferentes
criterios por parte de los pacientes.
b)-Criterios de exclusión
-fumadores
39
-bebedores habituales de alcohol
-mayores de 60 años
-menores de 40 años
-enfermedades autoinmunes
-enfermedades infecciosas
-discrasias sanguíneas
-enfermedades crónicas no controladas
-pacientes que consumen anticoagulantes
-pacientes que consuman inmunosupresores
-paciente que no haya firmado consentimiento informado
-paciente no haya llenado encuesta epidemiológica
c) Determinación de analítica preoperatorio
A los 32 pacientes de la muestra seleccionada se les realizó analítica sérica de rutina
(glicemia, urea, creatinina, perfil lipidico, coagulación y sangramiento, perfil hepático,
parámetros endocrinos). Lo valores utilizados, según criterios del Sistema Internacional
de Unidades para Laboratorio Clínico del Ministerio de Salud Publica.
d) Encuesta
Se confeccionaron dos modelos de encuesta:
.Encuesta epidemiológica I (preoperatoria), recoge datos generales de los pacientes, así
como sus antecedentes patológicos familiares y personales (Anexo I), confeccionada de
forma simple y entendible. Consta de 27 preguntas con incisos.
.Encuesta epidemiológica II (post-operatoria), recoge las características inmediatas,
mediatas y tardías del proceso medico cosmético-estético (Anexo II), confeccionada de
forma simple y entendible. Consta de 16 preguntas con incisos.
-Aplicación de la encuesta:
40
.el personal médico entrego personalmente a cada paciente la encuesta epidemiológica I,
antes de la primera fase del tratamiento médico cosmético-estético. Todos los pacientes
entregaron el cuestionario un mes antes de iniciar la primera fase del tratamiento médico
cosmético-estético.
.el personal médico entrego personalmente a cada paciente una encuesta epidemiológica
II post-operatoria, el mismo día en que se realiza el primer procedimiento de tratamiento
médico cosmético-estético. Se continúa el control periódico de las variables de la
encuesta, ya que estas, están confeccionadas para ser evaluadas en el transcurso del
tiempo, de forma prospectiva, finalizando la encuesta al año de la primera fase del
tratamiento médico cosmético-estético.
e) Registro de imágenes fotográficas para valorar la morfología facial
Se obtienen imágenes digitales, con cámara Sony α 100 DSLR-A100 Lente 3.5-6.3/18200,Malasia.Estas imágenes fueron tomadas posicionando los pacientes de la siguiente
manera: Colocados en una silla fija del suelo y a 1 ½ metro de la cámara frontal. La
altura de la cámara fue regulada según la altura de paciente, tomando como referencia el
mentón a 1,20 cm del suelo. Se tomaron fotos con flash convencional acoplado a la
cámara. Las fotos fueron llevadas a cabo antes del tratamiento y 10 semanas después de la
segunda etapa de tratamiento. Se intentó reproducir las mismas condiciones iniciales de
cada paciente a fin de obtener una mejor comparativa. Se consulto a cada paciente el uso
de sus fotos para publicaciones científicas, algunos de ellos no consintieron su uso, por lo
que sus fotografías no constan en esta publicación respetando su derecho de privacidad.
f) Obtención de imágenes cutáneas faciales mediante
estudio ecográfico
(Ultrasónico)
Las mensuraciones de cambio de densidad de la dermis y elasticidad de la piel se llevaron
a cabo mediante el uso de
DermaLab Combo® (Cortex Technology, Denamark).
41
Dispositivo que aúna el Dermascan C (ecógrafo de ultrasonidos de alta resolución) y un
cutómetro en una misma interfaz. La medición de la hidratación de la piel se llevo a cabo
con el corneómetro MPA 580 (Courage-Khazaka, Germany).
La ultrasonografía de alta resolución se basa en los mismos principios que la ecografía
tradicional para la obtención de imágenes, pero usando frecuencias mucho más elevadas.
El resultado es una mayor cantidad de información a cambio de una menor penetración de
la señal, lo que redunda en imágenes mejor definidas pero más superficiales. Para este
estudio se utilizó la sonda de 25MHz, por ser un estándar de facto y por poseer una
penetración de entre 6 y 12 mm, más que suficiente para poder observar toda la dermis.
Los cambios del grosor y de densidad son fácilmente observables en la dermis, ya que el
colágeno como estructura altamente organizada, posee una elevada ecogenicidad, lo que
se traduce en una mayor señal cuyas diferencias son directamente mensurables. Las
capturas se realizaron antes del tratamiento y 10 semanas después de la segunda etapa de
tratamiento.Se elige un ambiente estable con temperatura de 25ºC e iluminación
fluorescente. El personal médico les informa a los pacientes que deben acudir
desmaquillados a la prueba diagnóstica.
-Para todos los pacientes la zona elegida para determinar mensuraciones ecográficas
(elasticidad y extensibilidad de la piel a nivel facial) así como determinación del estado de
hidratación de la piel antes y después del tratamiento, fue en hemicara derecha, a nivel
del pómulo derecho, trazando una línea imaginaria que se extiendo desde el centro de la
pupila y otra línea que va desde el ángulo externo del ojo derecho hasta el canto del ala
nasal derecha, justo en el punto donde se cortan ambas líneas fueron realizadas las
mensuraciones, como podemos observar a continuación.
42
Figura 9: Representación anatómica de la zona donde se determinaron las
mensuraciones ecográficas así como el estado de hidratación de la piel.
-Secuencia de realización de las ecografías: El tratamiento médico estético se realiza en
dos etapas, existiendo 8 semanas entre estos. Por tanto las ecografías también son
realizadas en dos etapas, la primera antes del tratamiento médico estético, la segunda
etapa se realiza a las 10 semanas del segundo tratamiento. Facilitándonos
determinación de
parámetros
la
cuantitativos cutáneos (extensibilidad-milímetros,
elasticidad-adimensional). En las dos ocasiones el estudio fue realizado por los mismo
profesionales, ambiente de climatización, iluminación y con los mismos equipos.
-Secuencia de determinación del estado de hidratación de la piel: El estudio se realiza
simultáneamente, el mismo día en que fueron realizadas las capturas ecografías, en el
mismo ambiente de climatización, iluminación, y por los mismos profesionales y con los
mismo equipos. Facilitándonos la determinación de parámetros cuantitativos cutáneos
(hidratación-unidades arbitrarias).
6-Hoja de procedimiento operatorio
43
En este documento se hace un registro del procedimiento empleado, así como otras
observaciones, quedando constancia de parámetros cuantitativos y cualitativos para cada
paciente.
7-Limitaciones del estudio
-No fue posible realizar estudios mediante métodos precisos (estudio volumétrico de
tejido adiposo facial por (TAC, RMN, Tomografia óptica coherente), ya que estos son de
alto coste.
- Las imágenes fotográficas fueron tomadas por los autores, sin poder aplicar método de
triangulación mediante proyección en franjas.
-Falta de control sobre otros factores que pudieran influir en los resultados como edad,
dieta, factores bio-psico-sociales, etc.
-Estas limitaciones hicieron que nuestro trabajo no fuera objetivo al 100%.
DESCRIPCIÓN DE MÉTODO
1) Agenda de programación:
Los pacientes que formaron parte de nuestra muestra, fueron programados en la agenda
de procedimientos terapéuticos mínimamente invasivos de forma ambulatoria.
a. Programación del número de sesiones de tratamiento.
El procedimiento terapéutico medico estético-cosmético se realizo en diferentes fases,
programándose dos sesiones de tratamiento y en caso necesario una tercera sesión en
pacientes que así lo requirieron. Entre una fase de tratamiento y la siguiente, existió una
pausa de 8 semanas.
b. Programación de los test cutáneos para descartar alergia a anestésicos
Lidocaína/Epinefrina.
Se programan los test cutáneos para detectar alergias e intolerancia a anestésicos, tres
semanas antes del tratamiento médico estético-cosmético.
44
c. Programación de ecografías cutáneas antes y después del tratamiento médico
estético-cosmético.
Las ecografías son programadas una semana
antes del tratamiento médico estético-
cosmético y 10 semanas después de la última sesión de tratamiento.
d. Programación para determinar el estado de hidratación de la piel antes y después
del tratamiento médico estético-cosmético.
La determinación del estado de hidratación de la piel es programada una semana antes del
procedimiento medico estético-cosmético y 10 semanas después de la última sesión de
tratamiento.
e. Programación de encuetas epidemiológica I y II.
Programa de una encuesta epidemiológica I preoperatoria (Anexo I) un mes antes del
tratamiento médico estético-cosmético.
Programación de encuesta epidemiológica II peri-operatoria y post-operatoria (Anexo II),
recogiendo datos en el transcurso de dos años.
2) Todos los pacientes deben haber firmado el consentimiento informado para el
procedimiento medico así como para publicar sus fotos:
3) Valoración pre-operatoria:
a. Examen físico por aparatos y sistemas
b. Analítica general previa
c. Electrocardiograma previo
d. Detección de reacciones adversas a anestésicos locales
Las reacciones adversas a anestésicos locales son relativamente frecuentes, si bien las
verdaderas reacciones alérgicas son excepcionales. En nuestro protocolo de trabajo, de
forma habitual descartamos posibles reacciones adversas a anestésicos locales;1)
reacciones toxicas:2) reacciones no relacionadas con el fármaco
45
(reacciones
psicomotoras, vágales, estimulación simpática, toxicas locales: 3) reacciones adversas
alérgicas, siendo la más frecuente la dermatitis de contacto. Realizamos pruebas cutáneas
para detectar alergia anestésicos locales, y en caso de sospecha de positividad, los
pacientes son derivados al alergista para estudio alergológico determinando anestésicos
locales seguros. La prueba cutánea combinada con la prueba de provocación, ofrece un
valor predictivo excelente, seguro y eficaz.
A todos los pacientes se les realizo prueba cutánea intradérmica con Lidocaína (1:100)
0,1ml en cara interna de antebrazo izquierdo, en la línea media interna a 5 cm del
pliegue anterior del codo. La prueba se considero positiva si los habones eran 3mm más
grande que el control negativo, lectura inmediata y pasada 24h (según criterios de la
American College of Allergy 2008). En nuestro estudio no utilizamos anestésicos locales
del grupo Esteres del Ácido Para-amino benzoico. Realizamos
test cutáneos para
anestésicos locales del grupo Amida (Lidocaína), siendo esta la única sustancia utilizada
en nuestro protocolo, que puede implicar un riesgo para el paciente. En todos los
pacientes aplicamos Lidocaína como anestésico local, excepto una paciente que
presentaba historia previa de alergia a múltiples fármacos, entre estos anestésicos del
grupo Amida, estudiada por alergología mediante prueba cutánea de provocación,
recomendándose como anestésico seguro el ultracain del grupo Amida.
4) Valoración peri-operatoria:
a. Examen físico por aparatos y sistemas
b. Ayunas de 8 horas, permitiéndole beber solo agua
c. Marcaje de las zonas sobres las que se va a trabajar
Antes de comenzar la intervención, después de palpar y observar detalladamente las zonas
sobre las que trabajamos, tanto la donante como la receptora, realizamos un marcaje con
46
Surgical Skin Marker (Deroyal ®) Hospiteria, Bruselas, Bélgica, lo cual facilita el trabajo
y lo hace más preciso.
d. Premedicación
Recomendamos control del stress, ansiedad, vómitos y bronco aspiración. Pautando por
vía oral a las 23:00h la noche antes de la intervención:
-Ansiolíticos
Lorazepam 1mg, vida media de este es de 12-14 horas.
-Antagonistas H2 (profilaxis del bronco espasmo)
Domperidona (aceleran el vaciamiento gástrico, no atraviesa B.H.E) o Metoclopramida
10mg (estimula la motilidad gástrica, sin olvidar que puede provocar reacción extra
piramidal)
-Inhibidores de la bomba de protones
Omeprazol 40mg
En caso necesario, podemos repetimos la pauta de (ansiolítico, antagonista H2, inhibidor
de la bomba de protones) 2 horas antes de la intervención, contando con que su acción se
inicia a partir de los 15-45 minutos de haber sido ingerido.
5) Sala de procedimientos:
a. Extracción de sangre
-se realiza en el área pre-quirúrgica.
-utilización de guantes.
-material de desinfección cutánea con Cristalmina Plus Spray Laboratorio Salvat, España,
(clohexidina 1% y alantoína 0,4%).
-compresor Esmarch.
-punción venosa periférica de la región antero cubital del brazo derecho para todos los
pacientes, unos minutos antes del procedimiento.
47
-utilizamos
trocar
Vacuette
®
(Greiner
bio-one.
Ref
450085)
23G
¾
(0,64mmx19mm).Inex Puiseux-le-Hauberger, France.
-se extraen 45mL de sangre (5 muestras de 9ml) tubos Vacuette® (Greiner bio-one) MLS
n.v. Holland, de cristal, estériles de sistema serrado. De estos 5 tubos utilizados, 4
contienen coagulation sodium citrate 3,2%(Ref.455322) y 1 tubo no contiene aditivos
(Ref.455001) MLS n.v. Holland.
-los tubos son etiquetados con el nombre de cada paciente.
-esparadrapo como sistema de fijación cutánea para evitar el sangrado una vez retirado el
trocar.
-colector de agujas usadas.
b. Centrifugación
La fase de separación celular se realiza mediante centrifugación digitalizada, garantizando
parámetros de tiempo y velocidad adecuados a nuestro protocolo, a temperatura ambiente.
Este proceso debe ser realizado por un profesional con experiencia, para permitir la
obtención de la máxima concentración de plaquetas por unidad de volumen de sangre
procesada, con este proceso obtenemos el plasma rico en plaquetas (PRP). Todo el
procedimiento es realizado en un laboratorio situado anexo a la sala blanca. La separación
de los elementos de la sangre después de la centrifugación, se da en función de la
densidad, de mayor a menor, la serie roja va hacia el fondo del tubo, los leucocitos se
sedimentan en una capa (buffy coat) inmediatamente por encima de los hematíes; esto
permite recoger un plasma con la menor cantidad posible de
células blancas,
consiguiendo concentrar las plaquetas en centímetros cúbicos de plasma situado por
encima de la serie roja. Para la obtención de la trombina autóloga existe una fase del
proceso en que también interviene la centrifugación con parámetros de tiempo y
velocidad establecidos en el protocolo.
48
c. Obtención de las fracciones del plasma rico en plaquetas (PRP)
El plasma rico en plaquetas (PRP) se obtiene mediante un método fácil y sencillo, con
pequeñas extracciones de sangre del propio paciente, de una vena periférica, una mínima
instrumentación, en poco tiempo, en el propio centro médico.
En nuestro trabajo para determinar la fracción de plasma a utilizar según el número de
plaquetas, se realizo un conteo en 10mL de sangre, que se centrifugo a 200Xg durante 8
minutos, sin freno en la centrifuga, quedando 3mL de plasma. Se muestra el mililitro
superior, medio e inferior cerca de buffycoat y la serie roja. El conteo de plaquetas se
realizo con un contador automático Sysmex, modelo XE-2100, Japan;
y la centrifuga
utilizada fue modelo H-19F® Regen Lab-Switzerland. Según estos resultados, se decidió
trabajar con el plasma rico en plaquetas (PRP) según sus fracciones de concentración
como se muestra en la figura 10.
Figura 10: Fracciones de plasma rico en plaquetas
A los pacientes se les extrajo 4 tubos de 9mL de sangre periférica, los tubos contienen
citrato de sodio 3,2% (Ref.455322) como anticoagulante, se colocan en la Centrifuga
49
modelo H-19F® Regen Lab-Switzerland, 800Xg,
durante 8 minutos a temperatura
ambiente 22ºC, con el cual se separan las células del plasma, quedando las plaquetas
suspendidas en el plasma. La concentración de las plaquetas es diversa en el plasma, no es
uniforme, aumentando su concentración hacia las capas más bajas del plasma, de donde
viene el nombre de plasma rico en plaquetas (PRP), el cual constituye aproximadamente
2/3 del volumen de plasma.
El uso de anticoagulantes puede modificar la estructura de las plaquetas haciendo que
estas se hinchen, tomando forma esférica, perdiendo su forma discoidea. Para la obtención
de PRP se utiliza el citrato de sodio como anticoagulante, con el fin de no dañar ni
alterar las propiedades de las plaquetas (50).
El PRP se colecta con una pipeta de 100 µl evitando aspirar buffycoat o la serie roja. La
presencia de leucocitos y neutrófilos puede repercutir negativamente en la formación de la
fibrina autóloga, además de interferir en la agregación plaquetaria. Es conocido que las
células de la serie blanca y en especial los leucocitos contienen citoquinas proinflamatorias y expresan metaloproteínas (MMP-8 y -9) capaces de degradar la matriz
extracelular (51) (52).
El aislamiento se hace en condiciones de total esterilidad, bajo flujo laminar. Se debe
tener en cuenta que el volumen de plasma varía entre pacientes, y como resultado, el
volumen de PRP que se obtiene de 40mL de sangre también varía entre pacientes. El
volumen obtenido se debe medir con precisión ya que este parámetro se necesitara cuando
se induce la activación plaquetaria.
La activación de las plaquetas presente en el PRP se induce de forma fisiológica a través
de Ca2+. El calcio se proporciona a través de una solución de cloruro de calcio
concentrada (100 mg/mL), que se le añade al PRP para lograr una concentración final de
50
10 mg/mL, o sea el volumen a añadir representa el 10% del volumen de PRP obtenido e
inmediatamente se inicia su aplicación.
d. Obtención de trombina autóloga mediante precipitación fisicoquímica
- 1 tubo que contiene 9mL de sangre de sangre venosa periférica sin aditivos
(Ref.455001)®MLS n.v, Holland, se aspira 1 mL de aire, posteriormente se mezcla con
un 1mL de ethanol 96º , y posteriormente se añade 0,4mL de cloruro de calcio a una
concentración de 100mg/mL. Se deja reposar a temperatura ambiente durante 30 minutos.
Posteriormente se centrifuga a 800Xg durante 5 minutos a 22ºC (Centrifuga modelo H19F ®, Regen Lab Switzerland), lo cual facilita la precipitación del fibrinógeno y fibrina.
Se aspira 0,1mL del precipitado que se encuentra en la profundidad del tubo, con pipeta
(Research ® Plus Monocanal Eppendorf (Ref.3120000089), evitando aspirar la fase
liquida, y se coloca en un tubo de ensayo estéril al cual le añadiremos 0,9mL de plasma
rico en plaquetas (PRP), obtenido anteriormente. Se homogeniza la mezcla agitando
ligeramente de forma manual, activando así la coagulación, transformándose en gel. La
cantidad de trombina a utilizar puede variar para cada paciente, no obstante para este
trabajo generamos 5mL de trombina autóloga por paciente (41) (42) (43) (44) (45) (46)
(47) (48) (49).
Todo el procedimiento fue realizado en condiciones estériles, bajo flujo laminar.
e. Obtención del tejido adiposo blanco de la zona donante
Obtención el tejido adiposo que se encuentra a nivel subcutáneo en la zona del trocánter
mayor de ambas caderas. Realizamos un micro-túnel de acceso de 2,5mm con bisturí
Swan-Marton® Sheffield, England, carbón estéril, número 11, estéril descartable, para
facilitar la entrada de la cánula de extremo romo® Euromi Verviers, Bélgica, con dos
agujeros, 15cm de longitud y 2,5mm de diámetro para evitar fricción del tejido adiposo
contra las paredes de la cánula, minimizando el daño que puedan sufrir las células
51
adiposas. Esta cánula está conectada a una jeringa de 10mL. Realizamos micro
aspiraciones manuales, lentas en forma de abanico (sin utilización de aspirador) evitando
la exposición de las células adiposas a traumatismos, aire y factores químicos, aspiramos
10 mL de tejido graso de cada lado, para un total de total 20 mL, para todos los pacientes.
f. Aporte de sustancias anabolizantes para mejorar supervivencia de los adipocitos
Instantáneamente que obtenemos el tejido adiposo, por cada 10 mL de este le añadimos 2
mL de PRP, y realizamos su aplicación inmediatamente en la zona receptora para evitar
contaminación y garantizar su supervivencia.
g. Anestesia
Cuando realizamos una anestesio loco-regional, estamos realizando un bloque reversible
de la conducción nerviosa. Con pérdida de la sensibilidad en una zona circunscrita del
cuerpo. Utilizando concentraciones mínimas inhibitorias del anestésico local. Cuando
utilizamos un anestésico local debemos conocer su mecanismo de acción, ya que estos
ocupan el receptor interno del canal de Na+ y producen una expansión de la membrana,
que cierra los canales por compresión, no entra Na+ y la célula se mantiene polarizada,
de este modo, al no despolarizarse la célula, no hay transmisiones del estimulo doloroso.
Siendo estrictamente necesario conocer la inervación sensitiva, así como los receptores
especializados de la piel. La inervación sensitiva a través de terminaciones nerviosas
corresponden a nervios del sistema nerviosos periférico encargados de inervar glándulas,
músculos, folículos pilosos y control del calibre de los vasos sanguíneos. La inervación a
través de los receptores especializados,
están rodeados por una cápsula de tejido
conjuntivo y suelen denominarse corpúsculos.
-corpúsculo de Meissner (táctil)
-corpúsculo de Valer-Pacini (presión y vibración)
-corpúsculo de Ruffini (calor)
52
-corpúsculo de Krause (frío)
Con la anestesia loco-regional logramos una decorticación del sistema nervioso periférico
así como de los receptores especializados.
-Anestesia superficial loco regional en la zona donante de tejido adiposo
Habitualmente realizamos bloqueo de campo con Lidocaína 2% sin adrenalina en la
zona donante de tejido adiposo, para evitar vasoconstricción del tejido adiposo y
garantizar la vascularización de este. La anestesia es aplicada de forma tangencial
superficial en abanico, obteniendo una decorticación del sistema nervioso periférico.
Inyectamos justamente la cantidad necesaria de anestesia, suprimiendo los excesos,
evitando que se contamine la zona donante de tejido adiposo que se encuentra a una
profundidad aproximada de 1cm. La extracción del tejido adiposo debe realizarse
inmediatamente, antes que la anestesia invada las profundidades donde se encuentran las
células adiposas. Su extracción se realiza con cánula de extremo romo con movimientos
lentos y constante en forma de abanico. En el caso del paciente alérgico trabajos con
anestésico seguro recomendado por alergista “ultracain”
-Anestesia loco regional en la zona receptora de tejido adiposo, PRGF, trombina
Para las zonas receptoras habitualmente utilizamos Lidocaína 1% + Epinefrina
20mg/0,0125-1,8mL.
-Botones dérmicos: Esto se realiza con aguja corta, paralela a la piel con el bisel hacia
abajo, la inyección se aplica de forma lenta, con la punta que avanza hacia la dermis,
tomando la apariencia de piel de naranja. Esta técnica anestésica la utilizamos para
anestesiar la región lateral del rostro, realizando los botones dérmicos en la zona supraciliar donde comienza la frontera entre la piel y el implante capilar, aplicando 0,4 mL por
botón, dependiendo de la zona a tratar. El efecto de la anestesia es muy rápido porque los
53
receptores especializados “corpúsculos”, se encuentran inmediatamente debajo de la
epidermis.
-Bloqueo troncular de
nervios periféricos: Para la región medial del rostro, se realiza
bloqueo sensitivo de la zona inervante que se va a tratar, con el fin de no comprometer la
vascularización de la zona receptora del trasplante,
garantizando la aceptación.
Utilizamos 0,25mL por bloqueo.
Fundamentalmente basamos el bloque troncular en el nervio trigémino (V par craneal) y
sus tres ramas. Teniendo presente su recorrido anatómico, ya que este consta de un corto
recorrido intracraneal, con su ganglio aferente Gasser, que se encuentra sobre la punta del
peñasco temporal, de este ganglio parten las tres ramas del trigémino, cuales abandonan
la duramadre por diferentes orificios del suelo de la fosa craneal media.
-Hendidura esfenoidal/fisura supra-orbitaria (Nervio oftálmico primera rama del V
par)
Este una vez que sale del ganglio de Gasser se divide en tres ramas: nasal, lagrimal y
frontal. Inerva piel de la frente, piel de la nariz, y parte posterior de la mucosa nasal,
entre otras como globo ocular y glándula lagrimal.
-Agujero redondo mayor/fisura infraorbitaria (Nervio maxilar superior segunda
rama del V par)
Este nervio conduce la sensibilidad de la piel adyacente de la mejilla, parpado inferior,
parte de las sienes; también de la mucosa palpebral inferior, mucosa del labio superior,
dientes superiores, paladar óseo, úvula y amígdalas, nasofaringe, oído medio y la parte
inferior de la mucosa nasal.
-Agujero oval (Nervio maxilar inferior tercera rama del V par)
Es un nervio mixto, con su rama lingual y nervio dentario inferior. Sus fibras motoras
inervan músculos masticadores, y sus fibras sensitivas reciben y conduce la sensibilidad
54
de la piel de la parte posterior de las sienes, mejillas, labio inferior, mentón, entre otros
dientes inferiores, suelo de la boca, etc.
Estos puntos de acceso nos permiten anestesiar un área extensa, con un mínimo de
solución anestésica, no provocando modificaciones locales ya que el producto se inyecta a
distancia.
Con estas técnicas de anestesia en forma de bloqueo de campos, botones dérmicos y
bloqueo troncular de nervios sensitivos, y conociendo las estructuras anatómicas,
evitamos riesgo de introducir anestesia en la luz del vaso lo cual puede conllevar a
accidentes tóxicos graves. Además nos permite trabajar sobre grande volúmenes de piel a
baja concentración y no sigue recorridos de nervios. Siempre teniendo presente que la
anestesia local puede conllevar a complicaciones entre estas:1) equimosis, hematomas; 2)
absceso; 3) lesión del nervio; 4) hipersensibilidad local.
Recomendando un conocimiento exhaustivo de las zonas anatómicas a tratar.
Figura 11: Músculos de la cara. Gilroy S, MacPherson S, Ross S.Cabeza y cuello.Atlas of
anatomy. 2008 by Thieme Medical Publishers. Inc. Madrid. España. Panamericana, 2009:p.462.
55
Figura 12: Vasos y nervios de la cara. Gilroy S, MacPherson S, Ross S.Cabeza y cuello.
Atlas of anatomy. 2008 by Thieme Medical Publishers. Inc. Madrid. España. Panamericana,
2009:p.498.
h.Aplicación
obtenidos
mediante técnica mínimamente invasivo con los tres elementos
-tejido adiposo aplicado con cánula romo en posición tangencial
Una vez obtenido el tejido adiposo de la zona donante, aproximadamente 20 mL para
cada paciente, no realizamos
ningún procedimiento de depuración (lavado, filtrado,
decantación, centrifugación). Preservando el tejido con todo su entorno natural (estroma
vascular o tejido conjuntivo reticular, donde se encuentra el “nicho” de células madre).A
los 20mL de tejido adiposo le añadimos 4 mL PRP como sustancia anabolizante. En
todos los pacientes empleamos la normocorrección, con dos sesiones de tratamiento, y en
caso necesario una tercera sesión. Entre las sesiones de tratamiento, hubo una de pausa de
8 semanas para todos los pacientes. Contando con que solo el 50% de las células
sobreviven, trasplantamos 10mL de tejido adiposo más 2mL de PRP por hemicara;
aplicado en posición tangencial respecto al plano horizontal, pero de forma vertical a los
56
pliegues cutáneos, según vectores de fuerza, particularizando en la función de las zonas
de fusión anatómica y la gravedad. Por tanto, la cantidad de tejido adiposo trasplantado
es mínima con relación a la superficie a tratar; en efecto, mientras más pequeña sea la
cantidad a revascularizar, mayor supervivencia y menos riesgo de rechazo. Por tanto, los
planos de inyección escogidos son numerosos y todos terminan cuadriculando totalmente
el rostro. Se realizan pequeños túneles en la zona receptora, para facilitar la entrada de
cánula de extremo romo® con un agujero, 7cm longitud y 1,25mm de diámetro, Euromi
Verviers, Bélgica, especifica para tejido adiposo, conectada a una jeringa de 10mL.Se
realizan múltiples microinfiltraciones en forma de granos de arroz, a nivel subdérmico,
intradérmico, e infra muscular, en diferentes pases, previniendo el paso al torrente
sanguíneo.
-plasma rico en plaquetas (PRP) aplicado con aguja en posición tangencial
El (PRP) fue aplicado en la cara de los paciente en plano tangencial con aguja 27 G 1
¼® Inex Puiseux-le-Hauberger, France; a nivel subcutáneo superficial, fundamentalmente
en la zona malar, infra-orbitaria, en la cola de las cejas, y zona peri oral.
-trombina autóloga aplicado con aguja en posición horizontal
La trombina autóloga debe ser aplicada con gran rapidez, destreza y habilidad, ya que la
aplicamos con aguja corriendo el riesgo de aparición de hematomas y equimosis, lo que
requiere que se inyecte en posición horizontal a nivel subcutáneo, con aguja 27 G 1 ¼®
Inex Puiseux-le-Hauberger, France. Dentro de sus particularidades está la de
transformarse rápidamente, de su estado líquido a gel, en un tiempo aproximado de 30
segundos. Con esta materia prima autóloga logramos suavizar el contorno de los huesos
que con el transcurso de los años se hacen más prominentes. La aplicamos en zona
infraorbitaria, entrecejo, labios y surco nasogeniano, actuando como soporte tisular
biológico y su vez nos permite generar volúmenes. En nuestro protocolo solo es aplicable
57
en su estado líquido, ya que en estado gel es imposible su paso por la aguja, lo que exige
una rápida aplicación de esta en la cara de los pacientes. Aplicamos 5 jeringas de 1mL
de trombina en su forma líquida, lo que hace un total de 5mL de trombina autóloga para
cada paciente.
i. Combinación de otras técnicas
-Durante las diferentes etapas de tratamiento, la fisonomía de los pacientes fue valorada
de forma evolutiva e integral. Complementando los resultados con la combinación de
otras técnicas alternativas mínimamente invasivas, como es en el caso de exceso de piel
el parpado superior, en los que se realizo blefaroplastia mediante radiocirugía de alta
frecuencia, con Ellman Surgitrom® F.F.P.F EMC, USA.
j. Crioterapia
Inmediatamente terminado el proceso de rejuvenecimiento facial, se realiza una
Crioterapia Dermoline® Sophysa Benelux,Braine-L alleud, Bélgica, a una temperatura
de -5ºC, durante 5 minutos en las zonas receptoras, con el objetivo prevenir equimosis,
remodelar curvas y disminuir la inflamación.
k. hoja de procedimiento operatorio
-tejido adiposo (mL) /PRP (mL)/ calcium clorure (mL)/ trombina autóloga (mL)
-zona donante/zona receptora/número de sesiones/otros procedimientos/kilaje/anestesia
Figura 13: Hoja de procedimiento operatorio
CASO
TEJIDO
ADIPOSO
(ml)
PRP
(ml)
CALCIUM
CLORURE
(ml)
TROMBINA
AUTOLOGA
(ml)
ZONA DONANTE
DE TEJIDO
ADIPOSO
1
20ml
9ml
0,9ml
5ml
Trocanterica de
cadera
2
20ml
8ml
0,8ml
5ml
3
20ml
10ml
1ml
5ml
4
20ml
7ml
0,7ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Infraumbilical
5
20ml
9ml
0,9ml
5ml
6
20ml
8ml
0,8ml
5ml
7
20ml
10ml
1ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
58
ZONA RECEPTOR TEJIDO
ADIPOSO,PRP,TROMBINA
NUMERO DE
SESIONES
OTROS
PROCEDIMIENTOS
PESO
(kg)
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, cola de las cejas,
pómulos
s.n.g, peri orbitaria
2
NO
50
2
NO
72
2
NO
63
2
NO
81
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, pómulos, arco
mandibular, entrecejo, cola
de las cejas,
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
2
NO
75
3
Blefaroplastia
60
2
NO
51
8
20ml
8ml
0,8ml
5ml
9
20ml
10ml
1ml
5ml
10
20ml
6ml
0,6ml
5ml
Trocanterica de
cadera
11
20ml
10ml
1ml
5ml
12
20ml
7ml
0,7ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
13
20ml
10ml
1ml
5ml
Trocanterica de
cadera
14
20ml
8ml
0,8ml
5ml
15
20ml
7ml
0,7ml
5ml
16
20ml
9ml
0,9ml
5ml
17
20ml
9ml
0,9ml
5ml
18
20ml
8ml
0,8ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
19
20ml
10ml
1ml
5ml
20
20ml
9ml
0,9ml
5ml
Infraumbilical
21
20ml
7ml
0,7ml
5ml
22
20ml
10ml
1ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
23
20ml
10ml
1ml
5ml
Infraumbilical
24
20ml
9ml
0,9ml
5ml
Trocanterica de
cadera
25
20ml
8ml
0,8ml
5ml
26
20ml
10ml
1ml
5ml
27
20ml
10ml
1ml
5ml
28
20ml
9ml
0,9ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
29
20ml
7ml
0,7ml
5ml
30
20ml
10ml
1ml
5ml
31
20ml
8ml
0,8ml
5ml
32
20ml
10ml
1ml
5ml
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Trocanterica de
cadera
Infraumbilical
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
2
NO
56
2
NO
70
2
NO
68
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
2
NO
71
2
NO
69
2
NO
53
2
NO
57
2
NO
61
2
NO
50
2
NO
53
2
NO
49
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, peri orbitaria, peri
bucal, labios
s.n.g, arco mandibular
,entrecejo, cola de las cejas,
peri orbitaria
s.n.g, cola de las cejas, peri
orbitaria
2
NO
58
2
NO
70
2
NO
57
2
NO
50
2
NO
57
2
NO
64
2
NO
67
2
NO
63
2
NO
59
2
NO
65
2
NO
68
2
NO
70
2
NO
71
2
NO
58
CASO
ZONA DONANTE DE
TEJIDO ADIPOSO
1
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
Propofol
2
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Hidrocloruro Articaina
40,0mg/ml
+ Epinefrina 0,005mg/ml
Dosis máxima 7mg/kg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3
4
5
6
7
DOSIS MÍNIMA
ADMINISTRADA
Trocanterica de
cadera
Infraumbilical
2ml
3ml
ZONA RECEPTORA DE TEJIDO ADIPOSO, PRP,
TROMBINA AUTÓLOGA
Hidrocloruro Articaina 40,0mg/ml
+ Epinefrina 0,005mg/ml
Dosis máxima 7mg/kg
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
59
DOSIS MÍNIMA
ADMINISTRADA
2ml
1,8ml
ALERGIA ANESTÉSICOS
Lidocaína
NO
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
Lidocaína 1%-10ml
Dosis máxima 2ml
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1.8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
1,8ml
NO
3ml
Lidocaína 2%+epinefrina
1,8ml
NO
60
(10ml-200mg)
7mg/kg/dosis
Dosis máxima 500mg
(20mg/0,0125-1,8ml)
Dosis máxima 2ml
6) Post-operatorio
a. Sala de recuperación
-consta de un ambiente acogedor, climatización estable 25ºC.
-cámara infrarrojos: se coloca al paciente en una camilla acoplado a una cámara
infrarrojos biocompatibles Done Professionnel Visage Nivel® Inovo Irl Techologies
Montpellier, France, durante 20 minutos hasta llegar a una temperatura de 37ºC,
aumentando flujo sanguíneo y linfático, mejorando las reacciones fisiológicas de las
células.
7) Recomendaciones post-operatoria
-no esfuerzo físicos durante una semana.
-no realizar masajes sobre la zona trasplante durante una semana, para facilitar la fijación
y revitalización del tejido adiposo en la zona receptora.
-no exponerse a altas temperaturas.
-no exponerse a radiaciones solares durante un mes.
-analgésicos en caso de dolor.
-buena hidratación.
8) Seguridad
a. Carro de paro
b. Desfibrilador externo automatizado Datas Cope Passeport
Permitiendo mantener monitorizado el paciente en todo momento.
c. Cámara Flujo laminar
-utilización de una cámara flujo laminar H500® Hotte a filtration Suivant La Norme
NX15-211.Classe 2.Dimensions externa 980x800x620mm (HLP),Poste de sécurité
61
microbiologique, Type BIO II 9-12, ADS Laminaire, Bélgica, en todo el proceso de
separación celular posterior al centrifugado de la sangre obtenida.
d. Medidas y medios de protección
-uso de guantes, gorros, mascarillas, paños hendidos, gasas, compresas estériles
descartables.
- medidas asepsia-antisepsia correspondientes.
.asepsia de las zonas a tratar con Cristalmina Plus Spray® Laboratorio Salvat, España,
(clohexidina 1% y alantoína 0,4%).
.aislamiento de campos con paño hendido estéril descartable, para la zona donante y
receptora.
e. Valoración y seguimiento
-se realiza un control estricto sobre la posibilidad de las reacciones adversas o efectos
secundarios durante y después del procedimiento medico estético-cosmético.
f. Tiempo de duración del procedimiento
-el procedimiento desde su inicio de la extracción de la sangre, obtención del tejido
adiposo de la zona donante y su trasplante a la zona receptora,
aplicación del PRP y
trombina, transcurre en un tiempo máximo de 2 horas.
-si existe algún percance inesperado y nos retrasamos en el proceso de aplicación de la
trombina autóloga, corremos el riesgo que esta se convierta en gel, en caso que esto
suceda la descartamos, y obtenemos una nueva muestra.
-el plasma se aspira desde la fracción más profunda sin causar turbulencias con Pipeta
Research® Plus variable Monocanal Eppendorf, si se remueve la serio roja, se descarta el
tubo contaminado debido a que se ha producido una hemolización del plasma.
g. Fiabilidad del material utilizado
62
Todo el material utilizado es de alto nivel de seguridad, estéril descartable, poseen el
marcado CEE, sobre productos sanitarios, para uso especifico para la obtención de
plasma rico en plaquetas (PRP) y trasplante de tejido adiposo.
-Centrifuga modelo H-19F®
Max. Speed (base on rotor type) rpm 4000
Max. Capacity (based on material density ml 240
Kinetic energy (nm) 25506
Total power consumption (w) 130
Electrical Supply (v/h2) 220/50
Input fuses (A) 3
Gigas 800
Regen Lab Switzerland
-Cámara flujo laminar H500® Hotte a filtration Suivant La Norme NX15-211.Classe
2.D.Poste de Sécurité Microbilogique Type BIO II 9-12 ADS Laminare, Bélgica.
- Trocar Vacuette ® (Greiner bio-one. Ref. 450085) 23G ¾ (0,64x19mm).Inex Puiseuxle-Hauberger, France.
-Tubos de cristal, estériles, sistema serrado, citratados Vacuette® (Greiner bio-one.
Ref.455322).MLS n.v. Holland.
- Tubos de cristal, estériles, sistema serrado, sin aditivos Vacuette® (Greiner bio-one.
Ref.455001). MLS n.v. Holland.
- Bisturí Swan-Marton® Sheffield, England,
carbón estéril, número 11, estéril
descartable.
- Cánula de extremo romo con dos agujeros, 15cm de longitud y 2,5mm de diámetro
(Ref.1311LLMEI-2.5*100)®.Euromi, Verviers, Bélgica.
63
-Cánula de extremo romo con un agujero, 7cm longitud y 1,25mm de diámetro (Ref.
CF12790)®. Euromi, Verviers, Bélgica
-Aguja 30G ½ 0,3x13mm (Ref. 304000)®Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Aguja 18G 1½ 1,2x40mm (Ref.304622)® Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Aguja 21 G X2 0,8X50mm (Ref.301155)® Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Aguja 27 G 1¼ (Ref.305136)® Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Jeringas descartables de 1mL (Ref.302188)® Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Jeringas descartables de 10mL (Ref. BSO1T2613)® Inex Puiseux-le-Hauberger , France.
-Contador automático Systmex, Modelo XE-2100, Japan.
-Pipeta Research® variable Plus Monocanal Eppendorf (0,5mL-5mL) (1mL-10mL)
(Ref.3120000089).
ANALISIS ESTADISTICO
-Estadística descriptiva (gráficos de sectores/histogramas/contingencia con coeficiente de
correlación/gráficos de barra).
-Estadística cuantitativa descriptiva (tablas de frecuencia/histogramas/boxplot).
-Test de hipótesis (prueba no paramétrica de normalidad/prueba no paramétrica de
normalidad de la variable de diferenciación/prueba T/correlación de Pearson).
1) S.P.S.S
Para obtener nuestros resultados estadísticos hemos creado una base de datos mediante el
Statistical Package for the Social Science (S.P.S.S) versión 15.Este programa estadístico
se utiliza para trabajar con bases de datos de gran tamaño, permitiendo recodificar
variables y registros según las necesidades del usuario. El programa consiste en un
modelo de base y módulos anexos, que se han actualizado constantemente con nuevos
procedimientos estadísticos.
64
65
66
67
68
69
70
2) ESTADISTICA DESCRIPTIVOS DE LAS VARIABLES CUANTITATIVAS
6 TABLAS DE FRECUENCIA / 6 HISTOGRAMAS / 3 BOXPLOT
Estadísticos
Extensibilidad de la piel
Hidratación de la piel
facial (milímetros) -
Hidratación de la piel
facial (unidades
Extensibilidad de la piel
Ecografía cutánea
Elasticidad de la piel
Elasticidad de la piel
facial (unidades
arbitrarias) -
facial (milímetros) -
(Dermascan C) - 10
facial (adimensional)
facial (adimensional)
arbitrarias) -
Corneometer MPA 580
Ecografía cutánea
semanas después de la
- Ecografía cutánea
- Ecografía cutánea
Corneometer MPA 580
(Courage
(Dermascan C) - antes
segunda etapa de
(Dermascan C)- antes
(Dermascan C)- 10
(Courage
Khazaka,Germany) - 10
tratamiento
tratamiento
tratamiento
semanas después de la
Khazaka,Germany) -
semanas después de la
segunda etapa de
antes tratamiento
segunda etapa de
tratamiento
N
tratamiento
Válidos
32
32
32
32
32
32
Perdidos
0
0
0
0
0
0
,49313
,41866
,36990
,45002
68,02813
71,85313
Desv. típ.
,059538
,065657
,041645
,065045
10,736198
10,394570
Varianza
,004
,004
,002
,004
115,266
108,047
Asimetría
,790
,125
-,044
,265
-,120
-,104
Error típ. de asimetría
,414
,414
,414
,414
,414
,414
-,861
-,686
-,999
,223
-1,566
-1,284
Error típ. de curtosis
,809
,809
,809
,809
,809
,809
Mínimo
,422
,310
,300
,307
51,000
52,300
Máximo
,598
,540
,443
,593
82,800
89,100
Media
Curtosis
Extensibilidad de la piel facial mediante ecografía cutánea (milímetros)
antes tratamiento:
Media: 0,4931 milímetros (mm)
 El promedio de la extensibilidad de la piel facial en los 32 pacientes fue de 0,4931
(mm) antes del tratamiento.
Desviación Estándar: 0,05954 milímetros (mm)
 La distribución de la extensibilidad de la piel facial en los 32 pacientes con respecto
a su media se desvía en 0,059 (mm) antes del tratamiento.
Mínimo: 0,42 milímetros (mm)
 La extensibilidad de la piel facial mínima en 32 pacientes fue de 0,42 (mm) antes
del tratamiento.
71
Máximo: 0,60 milímetros (mm)
 La extensibilidad de la piel facial máxima en 32 pacientes fue de 0,60 (mm) antes
del tratamiento.
Extensibilidad de la piel facial mediante ecografía cutánea (milímetros)
10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento:
Media: 0,4187 milímetros (mm)
 El promedio de la extensibilidad de la piel facial en los 32 pacientes fue de 0,4187
(mm) después de la segunda etapa del tratamiento.
Desviación Estándar: 0,06566 milímetros (mm)
 La distribución de la extensibilidad de la piel facial en los 32 pacientes con respecto
a su media se desvía en 0,06566 (mm) después de la segunda etapa del tratamiento.
Mínimo: 0,31 milímetros (mm)
 La extensibilidad de la piel facial mínima en 32 pacientes fue de 0,31 (mm) después
de la segunda etapa del tratamiento.
Máximo: 0,54 milímetros (mm)
 La extensibilidad de la piel facial máxima en 32 pacientes fue de 0,54 (mm)
después de la segunda etapa del tratamiento.
Elasticidad de la piel facial mediante ecografía cutánea (adimensional)
antes tratamiento:
Media: 0,3699 adimensional (ad)
 El promedio de la elasticidad de la piel facial (ad) en los 32 pacientes fue de 0,3699
(ad) antes del tratamiento.
Desviación Estándar: 0,04164 adimensional (ad)
 La distribución de la elasticidad de la piel facial (ad) en los 32 pacientes con
respecto a su media se desvía en 0,04164 (ad) antes del tratamiento.
Mínimo: 0,30 adimensional (ad)
 La elasticidad de la piel facial (ad) mínima en 32 pacientes fue de 0,30(ad) antes del
tratamiento.
Máximo: 0,44 adimensional (ad)
 La extensibilidad de la piel facial (ad) máxima en 32 pacientes fue de 0,44 (ad) antes
del tratamiento.
Elasticidad de la piel facial (adimensional) 10 semanas después de la
segunda etapa de tratamiento:
Media: 0,45 adimensional (ad)
72
 El promedio de la elasticidad de la piel facial (ad) en los 32 pacientes fue de 0,45
(ad) 10 semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
Desviación Estándar: 0,06505 adimensional (ad)
 La distribución de la elasticidad de la piel facial (ad) en los 32 pacientes con
respecto a su media se desvía en 0,06505 (ad) 10 semanas después de la segunda
etapa del tratamiento.
Mínimo: 0,31 adimensional (ad)
 La elasticidad de la piel facial (ad) mínima en 32 pacientes fue de 0,31 (ad) 10
semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
Máximo: 0,59 adimensional (ad)
 La extensibilidad de la piel facial (ad) máxima en 32 pacientes fue de 0,59 (ad) 10
semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
Hidratación de la piel facial mediante ecografía cutánea (unidades
arbitrarias) antes tratamiento:
Media: 68,0281 unidades arbitrarias (ua)
 El promedio de hidratación de la piel facial (ua) en los 32 pacientes fue de
68,0281(ua) antes del tratamiento.
Desviación Estándar: 10,73620 unidades arbitrarias (ua)
 La distribución de la hidratación de la piel facial (ua) en los 32 pacientes con
respecto a su media se desvía en 10,7362(ua) antes del tratamiento.
Mínimo: 51 unidades arbitrarias (ua)
 La hidratación de la piel facial (ua) mínima en 32 pacientes fue de 51(ua) antes del
tratamiento.
Máximo: 82,80 unidades arbitrarias (ua)
 La hidratación de la piel facial (ua) máxima en 32 pacientes fue de 82,8(ua) antes
del tratamiento.
Hidratación de la piel facial mediante ecografía cutánea (unidades
arbitrarias) 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento:
Media: 71,8531 unidades arbitrarias (ua)
 El promedio de hidratación de la piel facial (ua) en los 32 pacientes fue de
71,8534(ua) 10 semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
Desviación Estándar: 10,39457 unidades arbitrarias (ua)
 La distribución de la hidratación de la piel facial (ua) en los 32 pacientes con
respecto a su media se desvía en 10,39457 (ua) 10 semanas después de la segunda
etapa del tratamiento.
73
Mínimo: 52,30 unidades arbitrarias (ua)
 La hidratación de la piel facial (ua) mínima en 32 pacientes fue de 52,30 (ua) 10
semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
Máximo: 89,10 unidades arbitrarias (au)
 La hidratación de la piel facial (ua) máxima en 32 pacientes fue de 89,10 (ua) 10
semanas después de la segunda etapa del tratamiento.
TABLAS DE FRECUENCIAS Y REPRESENTACIÓN GRAFICA
Tabla 1
Extensibilidad de la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) - antes tratamiento
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
Porcentaje acumulado
,422
1
3,1
3,1
3,1
,423
1
3,1
3,1
6,3
,433
2
6,3
6,3
12,5
,438
1
3,1
3,1
15,6
,440
1
3,1
3,1
18,8
,442
1
3,1
3,1
21,9
,443
1
3,1
3,1
25,0
,448
1
3,1
3,1
28,1
,453
1
3,1
3,1
31,3
,458
1
3,1
3,1
34,4
,459
1
3,1
3,1
37,5
,461
1
3,1
3,1
40,6
,462
1
3,1
3,1
43,8
,472
1
3,1
3,1
46,9
,473
1
3,1
3,1
50,0
,479
1
3,1
3,1
53,1
,480
1
3,1
3,1
56,3
,481
1
3,1
3,1
59,4
,483
1
3,1
3,1
62,5
,489
1
3,1
3,1
65,6
,492
1
3,1
3,1
68,8
,501
1
3,1
3,1
71,9
,519
1
3,1
3,1
75,0
,568
1
3,1
3,1
78,1
,573
1
3,1
3,1
81,3
,583
1
3,1
3,1
84,4
,589
1
3,1
3,1
87,5
74
,590
1
3,1
3,1
90,6
,597
1
3,1
3,1
93,8
,598
2
6,3
6,3
100,0
Total
32
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 6.3% de los pacientes presentan 0.43 mm y
0.6 mm de extensibilidad de la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan
C) antes tratamiento.
Histograma 1
Según el histograma de frecuencia de la Extensibilidad de la piel facial (milímetros)
antes tratamiento , observamos una distribución
asimétrica hacia la derecha y
platicurtica ( es decir la distribución no es simétrica ni mesocurtica).
75
Tabla 2
Extensibilidad de la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) - 10 semanas después de la
segunda etapa de tratamiento
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
Porcentaje acumulado
,310
3
9,4
9,4
9,4
,332
1
3,1
3,1
12,5
,343
1
3,1
3,1
15,6
,356
1
3,1
3,1
18,8
,358
1
3,1
3,1
21,9
,369
1
3,1
3,1
25,0
,380
1
3,1
3,1
28,1
,382
1
3,1
3,1
31,3
,388
1
3,1
3,1
34,4
,390
2
6,3
6,3
40,6
,412
1
3,1
3,1
43,8
,416
1
3,1
3,1
46,9
,417
1
3,1
3,1
50,0
,420
1
3,1
3,1
53,1
,423
1
3,1
3,1
56,3
,429
1
3,1
3,1
59,4
,431
1
3,1
3,1
62,5
,441
2
6,3
6,3
68,8
,449
1
3,1
3,1
71,9
,459
1
3,1
3,1
75,0
,460
1
3,1
3,1
78,1
,473
1
3,1
3,1
81,3
,488
1
3,1
3,1
84,4
,510
1
3,1
3,1
87,5
,513
1
3,1
3,1
90,6
,524
1
3,1
3,1
93,8
,533
1
3,1
3,1
96,9
,540
1
3,1
3,1
100,0
Total
32
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 9,4% de los pacientes presentan 0.31 mm de
extensibilidad de la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) 10
semanas después tratamiento, un 6,3% de 0.39 mm y 0.441 mm.
76
Histograma 2
Según el histograma de frecuencia de la Extensibilidad de la piel facial (milímetros)Ecografía cutánea (Dermascan C) 10 semanas después del tratamiento , la distribución
es asimétrica a la derecha y platicurtica ( es decir la distribución no es simétrica ni
mesocurtica).
77
Tabla 3
Elasticidad de la piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- antes tratamiento
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
Porcentaje acumulado
,300
1
3,1
3,1
3,1
,301
1
3,1
3,1
6,3
,308
1
3,1
3,1
9,4
,312
2
6,3
6,3
15,6
,329
1
3,1
3,1
18,8
,330
1
3,1
3,1
21,9
,332
1
3,1
3,1
25,0
,335
1
3,1
3,1
28,1
,347
1
3,1
3,1
31,3
,352
1
3,1
3,1
34,4
,357
1
3,1
3,1
37,5
,360
1
3,1
3,1
40,6
,361
1
3,1
3,1
43,8
,364
1
3,1
3,1
46,9
,369
1
3,1
3,1
50,0
,370
1
3,1
3,1
53,1
,372
1
3,1
3,1
56,3
,379
1
3,1
3,1
59,4
,390
1
3,1
3,1
62,5
,390
1
3,1
3,1
65,6
,392
1
3,1
3,1
68,8
,393
1
3,1
3,1
71,9
,399
1
3,1
3,1
75,0
,402
1
3,1
3,1
78,1
,412
1
3,1
3,1
81,3
,413
1
3,1
3,1
84,4
,420
1
3,1
3,1
87,5
,430
1
3,1
3,1
90,6
,431
1
3,1
3,1
93,8
,432
1
3,1
3,1
96,9
,443
1
3,1
3,1
100,0
Total
32
100,0
100,0
78
Se observa que del total de la muestra un 6,3% de los pacientes presentan 0.312 ad, de
elasticidad de la piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- antes
tratamiento.
Histograma 3
Según el histograma de frecuencia de la Elasticidad de la piel facial (adimensional) Ecografía cutánea (Dermascan C)- antes tratamiento, la distribución es asimétrica a la
izquierda y platicurtica ( es decir la distribución no es simetrica ni mesocurtica).
79
Tabla 4
Elasticidad de la piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- 10 semanas después de la segunda
etapa de tratamiento
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
Porcentaje acumulado
,307
1
3,1
3,1
3,1
,361
1
3,1
3,1
6,3
,370
1
3,1
3,1
9,4
,371
1
3,1
3,1
12,5
,373
1
3,1
3,1
15,6
,381
1
3,1
3,1
18,8
,390
1
3,1
3,1
21,9
,412
1
3,1
3,1
25,0
,412
1
3,1
3,1
28,1
,413
1
3,1
3,1
31,3
,428
1
3,1
3,1
34,4
,440
1
3,1
3,1
37,5
,441
1
3,1
3,1
40,6
,441
1
3,1
3,1
43,8
,443
1
3,1
3,1
46,9
,448
1
3,1
3,1
50,0
,451
1
3,1
3,1
53,1
,451
1
3,1
3,1
56,3
,452
1
3,1
3,1
59,4
,460
1
3,1
3,1
62,5
,463
1
3,1
3,1
65,6
,465
1
3,1
3,1
68,8
,471
1
3,1
3,1
71,9
,472
1
3,1
3,1
75,0
,490
1
3,1
3,1
78,1
,510
1
3,1
3,1
81,3
,510
1
3,1
3,1
84,4
,514
1
3,1
3,1
87,5
,522
1
3,1
3,1
90,6
,562
1
3,1
3,1
93,8
,585
1
3,1
3,1
96,9
,593
1
3,1
3,1
100,0
Total
32
100,0
100,0
80
Se observa que del total de la muestra un 3,1% de los pacientes presentan entre 0.307 y
0.593 ad, de elasticidad de la piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan
C)-10semanas después del tratamiento.
Histograma 4
Según el histograma de frecuencia de la Elasticidad de la piel facial (adimensional) Ecografía cutánea (Dermascan C) 10 semanas después del tratamiento, la distribución es
asimétrica a la derecha y leptocurtica ( es decir la distribución no es simétrica ni
mesocurtica)
81
Tabla 5
Hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage Khazaka,Germany) - antes
tratamiento
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
Porcentaje acumulado
51,000
1
3,1
3,1
3,1
53,300
1
3,1
3,1
6,3
53,400
1
3,1
3,1
9,4
53,700
1
3,1
3,1
12,5
54,700
1
3,1
3,1
15,6
55,500
1
3,1
3,1
18,8
55,900
1
3,1
3,1
21,9
57,500
1
3,1
3,1
25,0
58,900
1
3,1
3,1
28,1
59,100
1
3,1
3,1
31,3
59,500
1
3,1
3,1
34,4
59,700
1
3,1
3,1
37,5
60,300
1
3,1
3,1
40,6
66,100
1
3,1
3,1
43,8
69,000
1
3,1
3,1
46,9
69,100
1
3,1
3,1
50,0
70,600
1
3,1
3,1
53,1
71,200
1
3,1
3,1
56,3
72,700
1
3,1
3,1
59,4
74,300
1
3,1
3,1
62,5
74,700
1
3,1
3,1
65,6
75,700
1
3,1
3,1
68,8
76,200
1
3,1
3,1
71,9
76,600
1
3,1
3,1
75,0
79,600
2
6,3
6,3
81,3
79,800
1
3,1
3,1
84,4
80,800
1
3,1
3,1
87,5
81,500
1
3,1
3,1
90,6
82,000
1
3,1
3,1
93,8
82,100
1
3,1
3,1
96,9
82,800
1
3,1
3,1
100,0
32
100,0
100,0
Total
82
Se observa que del total de la muestra 6,3% de los pacientes presentan 79,6 u.a de
hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage
Khazaka,Germany) - antes tratamiento.
Histograma 5
Según el histograma de frecuencia de la Hidratación de la piel facial (unidades
arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage Khazaka,Germany) - antes tratamiento,
la distribución es asimétrica a la izquierda y platicurtica ( es decir la distribución no es
simétrica ni mesocurtica).
83
Tabla 6
Hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage
Khazaka,Germany) - 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
52,300
1
3,1
3,1
3,1
56,100
1
3,1
3,1
6,3
58,200
1
3,1
3,1
9,4
59,800
1
3,1
3,1
12,5
59,900
1
3,1
3,1
15,6
61,100
1
3,1
3,1
18,8
61,200
1
3,1
3,1
21,9
62,000
1
3,1
3,1
25,0
62,300
1
3,1
3,1
28,1
62,400
1
3,1
3,1
31,3
64,500
1
3,1
3,1
34,4
65,100
1
3,1
3,1
37,5
67,900
1
3,1
3,1
40,6
69,200
1
3,1
3,1
43,8
69,600
1
3,1
3,1
46,9
73,200
1
3,1
3,1
50,0
73,400
1
3,1
3,1
53,1
74,500
1
3,1
3,1
56,3
76,100
1
3,1
3,1
59,4
76,900
1
3,1
3,1
62,5
78,300
1
3,1
3,1
65,6
78,900
1
3,1
3,1
68,8
79,200
1
3,1
3,1
71,9
79,800
1
3,1
3,1
75,0
82,500
1
3,1
3,1
78,1
82,900
1
3,1
3,1
81,3
83,200
1
3,1
3,1
84,4
83,800
1
3,1
3,1
87,5
84,900
1
3,1
3,1
90,6
85,300
1
3,1
3,1
93,8
85,700
1
3,1
3,1
96,9
89,100
1
3,1
3,1
100,0
32
100,0
100,0
Total
84
Se observa que del total de la muestra 3.1% de los pacientes presentan entre 52.3 y 89.1
u.a de hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580
(Courage Khazaka,Germany) -10 semanas después del tratamiento.
Histograma 6
Según el histograma de frecuencia de la Hidratación de la piel facial (unidades
arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage Khazaka,Germany)
- 10 semanas
después tratamiento, la distribución es asimétrica a la izquierda y platicurtica (es decir la
distribución no es simetrica ni mesocurtica).
85
DIAGRAMA DE CAJA (BOX-PLOT)
Box-Plot 1
Según el diagrama de caja, se observa que no existen datos atípicos en la distribución de
la extensibilidad de la piel facial (milímetros)- ecografía cutánea (Dermascan C) antes
ni después del tratamiento; hay una disminución de la extensibilidad de la piel facial
después del tratamiento de manera significativa. Antes del tratamiento médico estético,
la media de la extensibilidad es mayor (0,4931mm), si la comparamos con la media
obtenida después del tratamiento (0,4187mm).
86
Box-Plot 2
Según el diagrama de caja, se observa que existen datos atípicos en la distribución de la
Elasticidad de la piel facial (adimensional)- ecografía cutánea (Dermascan C) 10
semanas después del tratamiento. Hay un aumento de la elasticidad de la piel facial
después del tratamiento de manera significativa; antes del tratamiento médico estético la
media de la elasticidad es menor de (0,3699ad), si la comparamos con la media obtenida
después del tratamiento (0,4500ad).
87
Box-Plot 3
Según el diagrama de caja, se observa que no existen datos atípicos en la distribución de
la Hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias)- Corneometer MPA 580 (Courage
Khazaka, Germany) – ni antes ni 10 semanas después de la segunda etapa de
tratamiento. Hay un aumento de hidratación de la piel facial después del tratamiento de
manera significativa; antes del tratamiento médico estético la media de la hidratación es
menor de (68,0281ua), si la comparamos con la media obtenida después del tratamiento
(71,8531ua).
88
PRUEBA DE NORMALIDAD
Ho: La Extensibilidad sigue una distribución normal
H1: La Extensibilidad no sigue una distribución normal
Prueba de Kolmagórov-Smirno para una muestra
Extensibilidad de la
piel facial (milímetros)
N
Parámetros normales
a,b
- Ecografía cutánea
piel facial (milímetros)
(Dermascan C) - 10
- Ecografía cutánea
semanas después de
(Dermascan C) - antes
la segunda etapa de
tratamiento
tratamiento
32
32
,4931
,4187
,05954
,06566
Absoluta
,195
,075
Positiva
,195
,075
Negativa
-,146
-,074
1,103
,424
,175
,994
Media
Desviación típica
Diferencias más extremas
Extensibilidad de la
Z de Kolmagórov-Smirno
Sig. asintót. (bilateral)
a. La distribución de contraste es la Normal.
b. Se han calculado a partir de los datos.
Se observa que según la Prueba de Kolmagórov-Smirno la distribución la extensibilidad
de la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) - antes y 10 semanas
después de tratamiento se distribuye de manera normal, porque su p-valué es mayor a
0,05 (nivel de significación), es decir que se acepta la hipótesis nula.
89
Ho: La Elasticidad sigue una distribución normal
H1: La Elasticidad no sigue una distribución normal
Prueba de Kolmagórov-Smirno para una muestra
Elasticidad de la piel
facial (adimensional) -
N
Elasticidad de la piel
Ecografía cutánea
facial (adimensional) -
(Dermascan C)- 10
Ecografía cutánea
semanas después de la
(Dermascan C)- antes
segunda etapa de
tratamiento
tratamiento
32
32
,3699
,4500
,04164
,06505
Absoluta
,088
,119
Positiva
,080
,119
Negativa
-,088
-,095
Z de Kolmagórov-Smirno
,499
,676
Sig. asintót. (bilateral)
,965
,751
Parámetros normales
a,b
Media
Desviación típica
Diferencias más extremas
a. La distribución de contraste es la Normal.
b. Se han calculado a partir de los datos.
Se observa que según la Prueba de Kolmagórov-Smirno la distribución la elasticidad de
la piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- antes y 10 semanas
después de tratamiento se distribuye de manera normal, porque su p-valué es mayor a
0,05 (nivel de significación), es decir que se acepta la hipótesis nula.
90
Ho: La Hidratación sigue una distribución normal
H1: La Hidratación no sigue una distribución normal
Prueba de Kolmagórov-Smirno para una muestra
Hidratación de la piel facial
(unidades arbitrarias) -
N
Hidratación de la piel facial
Corneometer MPA 580
(unidades arbitrarias) -
(Courage
Corneometer MPA 580
Khazaka,Germany) - 10
(Courage
semanas después de la
Khazaka,Germany) - antes
segunda etapa de
tratamiento
tratamiento
32
32
68,0281
71,8531
10,73620
10,39457
Absoluta
,170
,131
Positiva
,170
,131
Negativa
-,127
-,107
Z de Kolmagórov-Smirno
,964
,741
Sig. asintót. (bilateral)
,310
,643
Parámetros normales
a,b
Media
Desviación típica
Diferencias más extremas
a. La distribución de contraste es la Normal.
b. Se han calculado a partir de los datos.
Se observa que según la Prueba de Kolmagórov-Smirno la distribución la hidratación de la
piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage Khazaka, Germany)
antes y 10 semanas después de tratamiento se distribuye de manera normal, porque su pvalué es mayor a 0,05 (nivel de significación), es decir que se acepta la hipótesis nula.
91
PRUEBA DE T PARA MUESTRA RELACIONADAS
Ho: La Extensibilidad de la piel facial antes tratamiento es igual a la extensibilidad de
la piel 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
H1: La Extensibilidad de la piel facial antes tratamiento es diferente a la extensibilidad
de la piel 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
Prueba de muestras relacionadas
Diferencias relacionadas
95% Intervalo de confianza para
Error típ. de la
Media
Par 1
Extensibilidad de la piel
,074469
Desviación típ.
,058901
media
,010412
la diferencia
Inferior
,053233
Superior
,095705
t
gl
7,152
Sig. (bilateral)
31
facial (milímetros) Ecografía cutánea
(Dermascan C) - antes
tratamiento Extensibilidad de la piel
facial (milímetros) Ecografía cutánea
(Dermascan C) - 10
semanas después de la
segunda etapa de
tratamiento
Se observa que el valor T de estudent es 7,15 y su p-valué (0.00) es menor que 0.05 (nivel
de significación) por lo tanto se rechaza la hipótesis nula, es decir que existe diferencia
significativa en el tratamiento antes y después en la extensibilidad de la piel facial.
92
,000
Ho: La Elasticidad de la piel facial antes tratamiento es igual a la elasticidad de la piel
10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
H1: La Elasticidad de la piel facial antes tratamiento es diferente a la elasticidad de la
piel 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
Prueba de muestras relacionadas
Media
-,080112
Par 1
Desviación típ.
,063732
Diferencias relacionadas
95% Intervalo de confianza para la
diferencia
Error típ. de la
media
Inferior
Superior
,011266
-,103090
-,057135
Elasticidad de la piel facial
Sig.
t
-7,111
gl
(bilateral)
31
(adimensional) - Ecografía
cutánea (Dermascan C)- antes
tratamiento - Elasticidad de
la piel facial (adimensional) Ecografía cutánea
(Dermascan C)- 10 semanas
después de la segunda etapa
de tratamiento
Se observa que el valor T de estudent es 7,11 y su p-valué (0.00) es menor que 0.05 (nivel
de significación) por lo tanto se rechaza la hipótesis nula, es decir que existe diferencia
significativa en el tratamiento antes y después en la elasticidad de la piel facial.
93
,000
Ho: La Hidratación de la piel facial antes tratamiento es igual a la hidratación de la piel
10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
H1: La Hidratación de la piel facial antes tratamiento es diferente a la hidratación de la
piel 10 semanas después de la segunda etapa de tratamiento.
Prueba de muestras relacionadas
Diferencias relacionadas
95% Intervalo de confianza para
Error típ. de la
Media
Par 1
Hidratación de la piel facial
-3,825000
Desviación típ.
7,552013
media
1,335020
la diferencia
Inferior
-6,547791
Superior
-1,102209
t
-2,865
gl
Sig. (bilateral)
31
(unidades arbitrarias) Corneometer MPA 580
(Courage
Khazaka,Germany) - antes
tratamiento - Hidratación
de la piel facial (unidades
arbitrarias) - Corneometer
MPA 580 (Courage
Khazaka,Germany) - 10
semanas después de la
segunda etapa de
tratamiento
Se observa que el valor T de estudent es 2,86 y su p-valué (0.007) es menor que 0.05 (nivel
de significación) por lo tanto se rechaza la hipótesis nula, es decir que existe diferencia
significativa en el tratamiento antes y después en la hidratación de la piel facial.
94
,007
CORRELACIONES BIVARIANTES DE PEARSON
Correlaciones
Extensibilidad de la piel facial
Extensibilidad de la piel facial (milímetros) -
Correlación de Pearson
Ecografía cutánea (Dermascan C) - antes tratamiento
Sig. (bilateral)
Extensibilidad de la piel facial
(milímetros) - Ecografía
(milímetros) - Ecografía
cutánea (Dermascan C) - 10
cutánea (Dermascan C) - antes
semanas después de la
tratamiento
segunda etapa de tratamiento
,001
N
Extensibilidad de la piel facial (milímetros) -
Correlación de Pearson
Ecografía cutánea (Dermascan C) - 10 semanas
Sig. (bilateral)
después de la segunda etapa de tratamiento
,561**
1
32
32
,561**
1
,001
N
32
32
**. La correlación es significativa al nivel 0,01 (bilateral).
Significa que existe un 56.1% de correlación lineal directa entre la extensibilidad de la piel
facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) - antes tratamiento y extensibilidad de
la piel facial (milímetros) - Ecografía cutánea (Dermascan C) - 10 semanas después de la
segunda etapa de tratamiento, y esta relación es estadísticamente significativa porque el pvalué (0.001) es menor que 0.05 (nivel de significación).
Correlaciones
Elasticidad de la piel
facial (adimensional) -
Elasticidad de la piel facial
Correlación de Pearson
(adimensional) - Ecografía cutánea
Sig. (bilateral)
(Dermascan C)- antes tratamiento
N
Elasticidad de la piel
Ecografía cutánea
facial (adimensional) -
(Dermascan C)- 10
Ecografía cutánea
semanas después de la
(Dermascan C)- antes
segunda etapa de
tratamiento
tratamiento
1
,351*
,049
Elasticidad de la piel facial
Correlación de Pearson
(adimensional) - Ecografía cutánea
Sig. (bilateral)
(Dermascan C)- 10 semanas después de
N
32
32
*
1
,351
,049
32
32
la segunda etapa de tratamiento
*. La correlación es significante al nivel 0,05 (bilateral).
Significa que existe un 35.1% de correlación lineal directa entre elasticidad de la piel facial
(adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- antes tratamiento y elasticidad de la
piel facial (adimensional) - Ecografía cutánea (Dermascan C)- 10 semanas después de la
95
segunda etapa de tratamiento, y esta relación es estadísticamente significativa porque el pvalué (0.049) es menor que 0.05 (nivel de significación).
Correlaciones
Hidratación de la piel
facial (unidades arbitrarias)
Hidratación de la piel facial (unidades
Correlación de Pearson
arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage
Sig. (bilateral)
Khazaka,Germany) - antes tratamiento
Correlación de Pearson
arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage
Sig. (bilateral)
Khazaka,Germany) - 10 semanas después de la
- Corneometer MPA 580
facial (unidades arbitrarias)
(Courage
- Corneometer MPA 580
Khazaka,Germany) - 10
(Courage
semanas después de la
Khazaka,Germany) - antes
segunda etapa de
tratamiento
tratamiento
1
,745**
,000
N
Hidratación de la piel facial (unidades
Hidratación de la piel
32
32
**
1
,745
,000
N
32
segunda etapa de tratamiento
**. La correlación es significativa al nivel 0,01 (bilateral).
Significa que existe un 74.5% de correlación lineal directa entre hidratación de la piel
facial (unidades arbitrarias) - Corneometer MPA 580 (Courage Khazaka, Germany) antes tratamiento e hidratación de la piel facial (unidades arbitrarias) - Corneometer
MPA 580 (Courage Khazaka, Germany) - 10 semanas después de la segunda etapa de
tratamiento, y esta relación es estadísticamente significativa porque el p-valué (0.000) es
menor que 0.05 (nivel de significación).
96
32
3) ENCUESTA EPIDEMIOLOGICA Y ESTADISTICA DECRIPTIVA
ENCUESTA EPIDEMIOLOGICA I / TABLAS DE FRECUENCIAS /
REPRESENTACION GRAFICA
Tabla 7
Estadísticos
Edad
N
Válidos
32
Perdidos
0
Media
49,88
Mediana
50,00
43a
Moda
Desv. típ.
6,105
Varianza
37,274
Asimetría
,053
Error típ. de asimetría
,414
Curtosis
-1,198
Error típ. de curtosis
,809
a. Existen varias modas. Se mostrará el menor de
los valores.
Media: 49.88 años.
 El promedio de edad entre los 32 pacientes es de 50 años aproximadamente.
Mediana: 50 años
 El 50% de los pacientes son mayores de 50 años y el otro 50% son menores o iguales
a 50 años.
Mediana: 43 años.
 La edad que más se repite entre los 32 pacientes es de 43 años.
Desviación Estándar: 6.10 años.
 La distribución de la edad en los 32 pacientes con respecto a su media se desvía en
6.10 años.
Mínimo: 40 años.
 La edad minina entre los 32 pacientes es de 40 años.
Máximo: 60 años.
 La edad máxima entre los 32 pacientes es de 60 años.
97
TABLAS DE FRECUENCIAS Y REPRESENTACIÓN GRÁFICA
Tabla 8
Edad
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
40
1
3,1
3,1
3,1
41
2
6,3
6,3
9,4
42
1
3,1
3,1
12,5
43
3
9,4
9,4
21,9
44
1
3,1
3,1
25,0
45
2
6,3
6,3
31,3
47
2
6,3
6,3
37,5
48
3
9,4
9,4
46,9
49
1
3,1
3,1
50,0
51
3
9,4
9,4
59,4
52
1
3,1
3,1
62,5
53
1
3,1
3,1
65,6
54
3
9,4
9,4
75,0
56
3
9,4
9,4
84,4
57
1
3,1
3,1
87,5
58
1
3,1
3,1
90,6
59
1
3,1
3,1
93,8
60
2
6,3
6,3
100,0
32
100,0
100,0
Total
Se observa que del total de la muestra un 9.4% de los pacientes tiene edades de 43 a 56
años ; y un 6.3% de 43 a 60 años respectivamente.
98
Histograma 7
Según el histograma de frecuencia de la edad , la distribución es asimétrica a la derecha y
platicurtica (es decir que no es simétrica ni mesocurtica la distribución)
Tabla 9
Sexo
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Femenino
27
84,4
84,4
84,4
Masculino
5
15,6
15,6
100,0
32
100,0
100,0
Total
Gráfico 1
99
Se observa que del total de la muestra un 84.4% son mujeres y un 15.6% son hombres.
Tabla 10
Residencia (últimos 10 años)
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Europa
Porcentaje
32
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% han vivido en los últimos 10 años en
Europa.
Tabla 11
Raza
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Blanca
30
93,8
93,8
93,8
Mestiza
1
3,1
3,1
96,9
Ascendencia Judía
1
3,1
3,1
100,0
32
100,0
100,0
Total
Gráfico 2
Se observa que del total de la muestra un 93.7% son de raza blanca, un 3.13% son
mestiza y ascendencia judia.
100
Tabla 12
Escolaridad
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Elemental básico
2
6,3
6,3
6,3
Bachillerato
6
18,8
18,8
25,0
Técnico superior
7
21,9
21,9
46,9
Universitario
17
53,1
53,1
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 3
Se observa que del total de la muestra un 53.1% de su nivel de escolaridad es
universitario, un 21.9% son técnico superior, un 18.8% son de bachillerato y un 6.3% son
de elemental básico.
101
Tabla 13
Vida laboral
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Oficina
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
30
93,8
93,8
93,8
otros
2
6,3
6,3
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 4
Se observa que del total de la muestra un 93.75% ha desarrollado su vida laboral en
oficinas y un 6.3% en otros.
102
Tabla 14
Expuesto
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Cuarzo que contiene sílice
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
1
3,1
3,1
3,1
1
3,1
3,1
6,3
30
93,8
93,8
100,0
32
100,0
100,0
cristalina
Arcilla que contiene sílice
cristalina
No ha estado expuesto a estos
productos
Total
Gráfico 5
Se observa que del total de la muestra un 93.75% no ha estado expuesto a estos
productos, 3.1% ha estado expuesto a cuarzo y arcilla que contiene sílice cristalina .
103
Tabla 15
Tiempo expuesto
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
más de diez años
Perdidos
Sistema
Total
Porcentaje
2
6,3
30
93,8
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% ha estado expuesto a más de diez años a
estos productos.
Tabla 16
Actualmente expuesto
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
2
6,3
6,3
6,3
No
30
93,8
93,8
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 6
Se observa que del total de la muestra un 93.7% no esta actualmente expuesto a estos
productos y un 6.3% si esta actualmente expuesto.
104
Tabla 17
Tiempo alejado exposición
Porcentaje
Frecuencia
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Válidos
Más de diez años
30
93,8
Perdidos
Sistema
2
6,3
32
100,0
Total
Se observa que del total de la muestra un 100% esta alejado de la exposición de estos
productos más de diez años.
Tabla 18
Hábitos Tóxicos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
No tengo hábitos tóxicos
Porcentaje
32
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% no tienen hábitos tóxicos.
Tabla 19
Consumo medicamentos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
8
25,0
25,0
25,0
No
24
75,0
75,0
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 7
Se observa que del total de la muestra un 75% no consumen medicación de forma
habitual o crónica, y un 25% si lo consumen.
105
Tabla 20
Tipo medicamento
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Antinflamatorios
3
9,4
37,5
37,5
Analgésico
2
6,3
25,0
62,5
Antidepresivo
2
6,3
25,0
87,5
Otros
1
3,1
12,5
100,0
Total
8
25,0
100,0
24
75,0
32
100,0
Sistema
Gráfico 8
Se observa que del total de la muestra un 37.5% consumen antinflamatorios, un 25%
consumen analgésico-antidepresivo, y un 12.5% consumen otros medicamentos.
106
Tabla 21
Antecedentes Patológicos Familiares Enfermedad Crónica
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Diabetes mellitus tipo II
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
3
9,4
9,4
9,4
Hipertensión arterial
12
37,5
37,5
46,9
Hipercolesterolemia
6
18,8
18,8
65,6
Hipertrigliceridemia
2
6,3
6,3
71,9
Hiperuricemia
2
6,3
6,3
78,1
No tengo APF de interés
7
21,9
21,9
100,0
32
100,0
100,0
Total
Gráfico 9
Se observa que del total de la muestra un 37.5% presentan antecedentes patológicos
familiares de enfermedad crónica de Hipertensión Arterial, un 21.88% no presentan APF
de interés, un 18.8% presentan Hipercolesterolemia y un 6.25% presentan
Hipertrigliceridemia y Hiperuricemia.
107
Tabla 22
Antecedentes Patológicos Familiares Autoinmune Granulomatosa
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Enfermedad de Crohn
No tengo APF de enfermedad
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
1
3,1
3,1
3,1
31
96,9
96,9
100,0
32
100,0
100,0
granulomatosa
Total
Gráfico 10
Se observa que del total de la muestra un 96.88% no presentan antecedentes patológicos
familiares de enfermedad autoinmune granulomatosa y un 3.13% si presentan APF de
enfermedad de Crohn.
108
Tabla 23
Antecedentes Patológicos Personales Enfermedades Crónica No Transmisible
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Hipertensión arterial
3
9,4
9,4
9,4
Hipercolesterolemia
2
6,3
6,3
15,6
Hipotiroidismo
2
6,3
6,3
21,9
25
78,1
78,1
100,0
32
100,0
100,0
No tengo APP de enfermedad
crónica
Total
Gráfico 11
Se observa que del total de la muestra un 78.13% no presentan antecedentes patológicos
familiares de enfermedades crónica no transmisible, un 9.38% presentan Hipertensión
Arterial, un 6.3% presentan Hipercolesterolemia y Hipotiroidismo.
109
Tabla 24
Antecedentes Patológicos Personales Enfermedad Autoinmune Granulomatosa
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
No tengo APP de enfermedad
Porcentaje
32
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
100,0
granulomatosa
Se observa que del total de la muestra un 100% no presentan antecedentes patológicos
personal de enfermedad autoinmune granulomatosa.
Tabla 25
Visita Médico antes Tratamiento
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
30
93,8
93,8
93,8
No
2
6,3
6,3
100,0
32
100,0
100,0
Total
Gráfico 12
Se observa que del total de la muestra un 93.75% si recuerdan la última visita al médico
antes que le hicieran el tratamiento médico- cosmético con material autólogo y un 6.3%
no lo recuerdan.
110
Tabla 26
Diagnóstico enfermedad Médico
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
12
37,5
38,7
38,7
No
19
59,4
61,3
100,0
Total
31
96,9
100,0
1
3,1
32
100,0
Sistema
Gráfico 13
Se observa que del total de la muestra un 61.29% el médico si le diagnóstico alguna
enfermedad infectocontagiosa estacionaria y un 38.71% el médico no le diagnóstico
ninguna enfermedad.
111
Tabla 27
Enfermedad Diagnosticada
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Gastroenteritis aguda viral
1
3,1
8,3
8,3
Virosis respiratoria
4
12,5
33,3
41,7
Amigdalitis aguda
1
3,1
8,3
50,0
Faringitis aguda
3
9,4
25,0
75,0
Otitis aguda
1
3,1
8,3
83,3
Infección urinaria
1
3,1
8,3
91,7
Herpes simple tipo I
1
3,1
8,3
100,0
Total
12
37,5
100,0
Sistema
20
62,5
32
100,0
Total
Gráfico 14
Se observa que del total de la muestra un 33.33% la enfermedad diagnostica fue virosis
respiratoria, un 25% faringitis aguda y un 8.3% gastroenteritis aguda viral, amigdalitis
aguda, otitis aguda, infección urinaria y herpes simple tipo I.
112
Tabla 28
Antes de haber recibido el tratamiento de medicina cosmética con materiales autólogos, a usted se le diagnosticó una
enfermedad infectocontagiosa.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Una semana antes
5
15,6
15,6
15,6
Dos semanas antes
5
15,6
15,6
31,3
Tres semanas antes
3
9,4
9,4
40,6
No lo recuerdo
1
3,1
3,1
43,8
18
56,3
56,3
100,0
32
100,0
100,0
No se me ha diagnosticado ninguna
enfermedad infecto-contagiosa en
los últimos meses
Total
Gráfico 15
Se observa que del total de la muestra un 56.25% no le diagnosticaron ninguna
enfermedad infectocontagiosa en los últimos meses, 15.6% le diagnosticaron una semana
antes y dos semanas antes, un 9.38% tres semanas antes y un 3.13% no lo recuerdan.
113
Tabla 29
Antes del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo usted ha recibido alguna
vacuna.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
9
28,1
28,1
28,1
No
23
71,9
71,9
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 16
Se observa que del total de la muestra un 71.88% no recibió ninguna vacuna antes del
tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 28.13% si ha recibido
alguna vacuna.
114
Tabla 30
Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede recordar el tiempo
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Me he vacunado treinta días antes
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
3
9,4
33,3
33,3
2
6,3
22,2
55,6
2
6,3
22,2
77,8
2
6,3
22,2
100,0
9
28,1
100,0
23
71,9
32
100,0
del tratamiento médico-estético
Me he vacunado dos meses antes
del tratamiento médico-estético
Me he vacunado tres meses antes
del tratamiento médico-estético
Me he vacunado cuatro meses
antes del tratamiento médicoestético
Total
Perdidos
Sistema
Total
Gráfico 17
Se observa que del total de la muestra un 33.33% recuerda que se había vacunado treinta
días antes del tratamiento médico-estético, un 22.22% fue vacunado entre dos meses a
cuatro meses antes del tratamiento médico-estético.
115
Tabla 31
Usted puede identificar la vacuna que ha recibido antes del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Tétanos
2
6,3
22,2
22,2
Hepatitis B
1
3,1
11,1
33,3
Haemophilus influenzae tipo B
6
18,8
66,7
100,0
Total
9
28,1
100,0
23
71,9
32
100,0
Sistema
Total
Gráfico 18
Se observa que del total de la muestra un 66.67% identifico que la vacuna que ha recibido
antes del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo fue Haemophilus
Influenzae tipo B, un 22.22% tétanos y un 11.11% Hepatitis B.
116
Tabla 32
Existe alguna zona específica en la que usted se haya realizado otros tratamientos de cosmética,
con materiales sintéticos.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
11
34,4
34,4
34,4
No
21
65,6
65,6
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 19
Se observa que del total de la muestra un 65.63% específica que si existe alguna zona
donde se haya realizado otros tratamientos de cosmética con materiales sintéticos y un
34.38% no lo especifica.
117
Tabla 33
Conoce el tipo de material implantado
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
3
9,4
27,3
27,3
No
8
25,0
72,7
100,0
Total
11
34,4
100,0
Sistema
21
65,6
32
100,0
Total
Gráfico 20
Se observa que del total de la muestra un 72.73% no conoce el tipo de material
implantado y un 27.27% si lo conocen.
Tabla 34
Especifique el tipo de biomaterial implantado. I) Biológico
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Biosintético de ácido hialurónico
Porcentaje
4
12,5
28
87,5
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
(cultivo bacteriano)
Perdidos
Total
Sistema
Se observa que del total de la muestra un 100% especifica que el tipo biomaterial
implantado fue Biosintético de ácido hialurónico (cultivo bacteriano).
118
Tabla 35
Especifique el tipo de biomaterial implantado. II) No biológicos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Micro-esfera metacrilato
Perdidos
Sistema
Total
Porcentaje
3
9,4
29
90,6
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% especifica que el tipo biomaterial
implantado fue Micro-esfera metacrilato.
Tabla 36
Tiempo de implante (en años)
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Menos de un año
1
3,1
12,5
12,5
Más de un año
2
6,3
25,0
37,5
Entre dos y cinco años
3
9,4
37,5
75,0
Entre seis y diez años
1
3,1
12,5
87,5
Más de diez años
1
3,1
12,5
100,0
Total
8
25,0
100,0
24
75,0
32
100,0
Sistema
Gráfico 21
Se observa que del total de la muestra un 37.5% respondió que el tiempo de implante está
entre dos y cinco años, un 25% más de un año y un 12.5% respondieron menos de un
año, entre seis y diez años y más de diez años.
119
Tabla 37
Usted está de acuerdo en formar parte de un pequeño grupo de pacientes para un estudio
experimental.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí está de acuerdo en
formar parte de un pequeño grupo de pacientes para un estudio experimental.
Tabla 38
Su médico le ha ofrecido una información detallada acerca del tratamiento de medicina cosmética
con materiales autólogos, sus ventajas, posibles riesgos y complicaciones.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, que su médico le ha
ofrecido una información detallada acerca del tratamiento de medicina cosmética con
materiales autólogos, sus ventajas, posibles riesgos y complicaciones.
Tabla 39
Usted conoce a los médicos que le realizarán el tratamiento de medicina cosmético con materiales
autólogo,
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, conoce a los médicos
que le realizarán el tratamiento de medicina cosmético con materiales autólogo.
120
Tabla 40
Su médico es especialista en
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Medicina general y comunitaria
16
50,0
50,0
50,0
Dermatología
16
50,0
50,0
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 22
Se observa que del total de la muestra un 50% conoce que su médico es especialista en
Medicina general y comunitaria, y un 50% conocen que son en Dermatología.
Tabla 41
Antes de tratamiento de medicina cosmética con factores de crecimiento autólogos se le
realizo una analítica general.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
32
Porcentaje
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, antes de tratamiento de
medicina cosmética con factores de crecimiento autólogos se le realizo una analítica
general.
121
ENCUESTA EPIDEMIOLOGICA II / TABLAS DE FRECUENCIAS /
REPRESENTACION GRAFICA
Tabla 42
Es la primera vez que usted se realiza un tratamiento de medicina cosmética con
factores de crecimiento autólogo.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, es la primera vez que se
realizaban un tratamiento de medicina cosmética con factores de crecimiento autólogo.
Tabla 43
En cuantas ocasiones usted fue sometida a tratamiento médico cosmético con materiales autólogos para lograr
un resultado evidente a la observación.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Dos ocasiones
31
96,9
96,9
96,9
Tres ocasiones
1
3,1
3,1
100,0
32
100,0
100,0
Total
Gráfico 23
Se observa que del total de la muestra un 96.88% fue sometido en dos ocasiones a
tratamiento médico cosmético con materiales autólogos para lograr un resultado evidente
a la observación y un 3.13% fue sometido en tres ocasiones.
122
Tabla 44
Las zonas tratadas actualmente con materiales autólogos coinciden con las zonas tratadas anteriormente
con materiales sintéticos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
10
31,3
90,9
90,9
No
1
3,1
9,1
100,0
Total
11
34,4
100,0
Sistema
21
65,6
32
100,0
Gráfico 24
Se observa que del total de la muestra un 90.91% respondió que sí, las zonas tratadas
actualmente con materiales autólogos coincide con las zonas tratadas anteriormente con
materiales sintéticos y un 9.09% respondió no.
123
Tabla 45
Inmediatamente después de haber recibido tratamiento médico estético con materiales autólogos usted presento
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Inflamación
Ninguna sintomatología
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
30
93,8
93,8
93,8
2
6,3
6,3
100,0
32
100,0
100,0
Gráfico 25
Se observa que del total de la muestra un 93.75% presento signos de inflamación
inmediatamente después de haber recibido tratamiento médico estético con materiales
autólogos y un 6.25% no presento ninguna sintomatología.
124
Tabla 46
Su médico le prescribió antibióticos después del tratamiento médico-estético con materiales
autólogos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
No
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que su médico no le prescribió
antibióticos después del tratamiento médico-estético con materiales autólogos.
Tabla 47
Usted tuvo la necesidad de consumir analgésico después del tratamiento médico-estético con
materiales autólogos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
7
21,9
21,9
21,9
No
25
78,1
78,1
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 26
Se observa que del total de la muestra un 78.13% respondió que sí tuvo la necesidad de
consumir analgésico después del tratamiento médico-estético con materiales autólogos y
un 21.88% respondió que no.
125
Tabla 48
Después de haber recibido el tratamiento de medicina cosmética con material autólogo, usted
presento alguna enfermedad infectocontagiosa
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
8
25,0
25,0
25,0
No
24
75,0
75,0
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 27
Se observa que del total de la muestra un 75% respondió que después de haber recibido
el tratamiento de medicina cosmética con material autólogo no presento enfermedad
infectocontagiosa, y un 25% respondió si haber presentado enfermedad
infectocontagiosa.
126
Tabla 49
Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede especificar de las siguientes enfermedades infectocontagiosa, ¿cuál le
fue diagnosticada?
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Total
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Gastroenteritis aguda
2
6,3
28,6
28,6
Virosis respiratoria
5
15,6
71,4
100,0
Total
7
21,9
100,0
25
78,1
32
100,0
Sistema
Gráfico 28
Se observa que del total de la muestra un 71.43% especifico que enfermedades
infectocontagiosa diagnosticada fue virosis respiratoria y un 28.57% le diagnosticaron
gastroenteritis aguda.
127
Tabla 50
Después de haber recibido el tratamiento de medicina cosmética con material autólogo a usted se le diagnostico una
enfermedad infectocontagiosa
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Una semana después del
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
5
15,6
62,5
62,5
2
6,3
25,0
87,5
1
3,1
12,5
100,0
8
25,0
100,0
24
75,0
32
100,0
tratamiento
Dos semanas después del
tratamiento
Cuatro semanas después del
tratamiento
Total
Perdidos
Sistema
Total
Gráfico 29
Se observa que del total de la muestra un 62.5% una semana después de haber recibido el
tratamiento de medicina cosmética con material autólogo presento enfermedad
infectocontagiosa, un 25% dos semanas después del tratamiento y un 12.5% cuatro
semanas después del tratamiento.
128
Tabla 51
Después del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo, ¿Usted ha recibido alguna
vacuna?
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
8
25,0
25,0
25,0
No
24
75,0
75,0
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 30
Se observa que del total de la muestra un 75% respondió no haber recibido vacuna después
del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 25% si recibió alguna
vacuna.
129
Tabla 52
Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede recordar el tiempo.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Me vacune treinta días después del
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
6
18,8
75,0
75,0
2
6,3
25,0
100,0
8
25,0
100,0
24
75,0
32
100,0
tratamiento
Me vacune dos meses después del
tratamiento
Total
Perdidos
Sistema
Total
Gráfico 31
Se observa que del total de la muestra un 75% fue vacunado treinta días después del
tratamiento y un 25% dos meses después del tratamiento.
130
Tabla 53
Usted puede identificar la vacuna que ha recibido después del tratamiento.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Perdidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Tétanos
1
3,1
12,5
12,5
Haemophilus Influenzae tipo B
7
21,9
87,5
100,0
Total
8
25,0
100,0
24
75,0
32
100,0
Sistema
Total
Gráfico 32
Se observa que del total de la muestra un 87.5% la vacuna que recibió después del
tratamiento fue Haemophilus Influenzae tipo B y un 12.5% fue Tétanos.
131
Tabla 54
Usted presento alguna afección bucodentaria después del tratamiento de medicina cosmética.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Si
1
3,1
3,1
3,1
No
31
96,9
96,9
100,0
Total
32
100,0
100,0
Gráfico 33
Se observa que del total de la muestra un 96.88% no presento afección bucodentaria
después del tratamiento de medicina cosmética y un 3.13% si lo presento.
Tabla 55
Si la respuesta es SI, puede especificar el tiempo de aparición.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
La primera semana
Perdidos
Sistema
Total
Porcentaje
1
3,1
31
96,9
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% presento una aparición de infección
bucodental la primera semana.
132
Tabla 56
Fue necesario acudir al odontólogo y realizar alguna intervención quirúrgica.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Perdidos
Sistema
Total
Porcentaje
1
3,1
31
96,9
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, fue necesario acudir al
odontólogo y realizar alguna intervención quirúrgica.
Tabla 57
Fue necesario el consumo de antibióticos
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Perdidos
Sistema
Total
Porcentaje
1
3,1
31
96,9
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, fue necesario el
consumo de antibióticos.
Tabla 58
Usted considera este tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos, un
procedimiento mínimamente invasivos, no quirúrgico.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
Porcentaje válido
100,0
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, considera este
tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos, un procedimiento
mínimamente invasivos, no quirúrgico.
Tabla 59
Usted considera que con anestesia local es suficiente para realizar este procedimiento facial de
medicina cosmética con materiales autólogos.
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, considera que con
anestesia local es suficiente para realizar este procedimiento facial de medicina cosmética
con materiales autólogos.
133
Tabla 60
Usted está satisfecho con los resultados obtenidos con este tratamiento cosmético
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
acumulado
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, está satisfecho con los
resultados obtenidos con este tratamiento cosmético.
Tabla 61
Usted repetiría en el futuro este procedimiento médico-estético-cosmético
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
Si
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que sí, repetiría en el futuro
este procedimiento médico-estético-cosmético.
Tabla 62
Usted presento alguna complicación después de haber transcurrido 1 mes del tratamiento médico
cosmético con materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
No
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que no presento alguna
complicación después de haber transcurrido 1 mes del tratamiento médico cosmético con
materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
Tabla 63
Usted presento alguna complicación después de haber transcurrido 6 meses del tratamiento médico
cosmético con materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas
Porcentaje
Frecuencia
Válidos
No
Porcentaje
32
100,0
Porcentaje válido
100,0
acumulado
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que no presento alguna
complicación después de haber transcurrido 6 meses del tratamiento médico cosmético
con materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
134
Tabla 64
Usted presento alguna complicación después de haber transcurrido 12 meses del tratamiento
médico cosmético con materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de
granulomas
Porcentaje
Frecuencia
Porcentaje
Porcentaje válido
acumulado
Válidos
No
32
100,0
100,0
100,0
Se observa que del total de la muestra un 100% respondió que no presento alguna
complicación después de haber transcurrido 12 meses del tratamiento médico cosmético
con materiales autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
CRUCE DE VARIABLES RELEVANTES / ENCUESTA EPIDEMIOLOGICA
Gráfico 34
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 1
mes del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a cuerpo
extraño con formación de granulomas un 93.75% son de oficina y un 6.25% es de otros.
135
Gráfico 35
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 6
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos , tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 93.75% son de oficina y un 6.25% es de
otros.
Gráfico 36
Se observa que loes que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 12
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 93.75% son de oficina y un 6.25% es de
otros.
136
Gráfico 37
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 1
mes del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a cuerpo
extraño con formación de granulomas un 93.75% no han estado expuesto a estos
productos, un 3.13% han estado expuesto a cuarzo y arcilla que contiene sílice cristalina.
Gráfico 38
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 6
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 93.75% no han estado expuesto a estos
productos, un 3.13% han estado expuesto a cuarzo y arcilla que contiene sílice cristalina.
137
Gráfico 39
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 12
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 93.75% no han estado expuesto a estos
productos, un 3.13% han estado expuesto a cuarzo y arcilla que contiene sílice cristalina.
Gráfico 40
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 1
mes del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a cuerpo
extraño con formación de granulomas un 71.88% no han recibido vacuna antes del
tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 21.13% si recibieron
vacuna.
138
Gráfico 41
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 6
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 71.88% no han recibido vacuna antes
del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 21.13% si recibieron la
vacuna.
Gráfico 42
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 12
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 71.88% no han recibido vacuna antes
del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 21.13% si recibieron la
vacuna.
139
Gráfico 43
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 1
mes del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a cuerpo
extraño con formación de granulomas un 65.63% no han realizado otros tratamientos de
cosmética con materiales sintéticos y un 34.38% si lo han realizado.
Gráfico 44
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 6
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 65.63% no han realizado otros
tratamientos de cosmética con materiales sintéticos y un 34.38% si lo han realizado.
140
Gráfico 45
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 12
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 65.63% no han realizado otros
tratamientos de cosmética con materiales sintéticos y un 34.38% si lo han realizado.
Gráfico 46
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 1
mes del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a cuerpo
extraño con formación de granulomas un 75% no han recibido vacuna después del
tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 25% si recibieron vacuna.
141
Gráfico 47
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 6
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 75% no han recibido vacuna después
del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 25% si recibieron
vacuna.
Gráfico 48
Se observa que los que no presentaron complicaciones después de haber transcurrido 12
meses del tratamiento médico cosmético con materiales autólogos, tipo de rechazo a
cuerpo extraño con formación de granulomas un 75% no han recibido vacuna después
del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo y un 25% si recibieron
vacuna.
142
ANÁLISIS DE INDEPENDENCIA O BONDAD DE AJUSTES DE LAS
VARIABLES RELEVANTES
Hipótesis nula: El entorno laboral
materiales de construcción)
es independiente con lo expuesto (productos y
Hipótesis alterna: El entorno laboral es no independiente con lo expuesto (productos y
materiales de construcción)
Tabla 65
Tabla de contingencia Vida laboral * Expuesto
Recuento
Expuesto
No ha estado
Vida laboral
Cuarzo que contiene
Arcilla que contiene
expuesto a estos
sílice cristalina
sílice cristalina
productos
Total
Oficina
0
0
30
30
Otros
1
1
0
2
1
1
30
32
Total
Tabla 66
Pruebas de chi-cuadrado
Valor
gl
Sig. asintótica (bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson
32,000a
2
,000
Razón de verosimilitudes
14,963
2
,001
Asociación lineal por lineal
30,597
1
,000
N de casos válidos
32
a. 5 casillas (83,3%) tienen una frecuencia esperada inferior a 5. La frecuencia mínima esperada es ,06.
El valor de chi-cuadrado es 32 y su p-valué (0.00) es menor a 0.05 (nivel de
significación) por lo tanto se rechaza la hipótesis nula, es decir que el entorno laboral es
dependiente con lo expuesto (productos y materiales de construcción).
Tabla 67
Medidas simétricas
Error típ. asint.a
Valor
T aproximada
Sig. aproximada
Intervalo por intervalo
R de Pearson
-,993
,001
-47,730
,000c
Ordinal por ordinal
Correlación de Spearman
-,999
,001
-169,706
,000c
N de casos válidos
a. Asumiendo la hipótesis alternativa.
b. Empleando el error típico asintótico basado en la hipótesis nula.
c. Basada en la aproximación normal.
32
143
Según la correlación de sperman existe un 99.9% de relación inversamente proporcional
entre la vida laboral y lo expuesto (productos y materiales de construcción) de manera
muy significativa ya que su p-valúe (0.00) es menor a 0.05 (nivel de significación).
Hipótesis nula: El entorno laboral es independiente con la enfermedad diagnosticada.
Hipótesis alterna: El entorno laboral
diagnosticada.
es no independiente con la enfermedad
Tabla 68
Tabla de contingencia Enfermedad Diagnosticada * Vida laboral
Recuento
Vida laboral
Oficina
Enfermedad Diagnosticada
otros
Total
Gastroenteritis aguda viral
1
0
1
Virosis respiratoria
3
1
4
Amigdalitis aguda
1
0
1
Faringitis aguda
2
1
3
Otitis aguda
1
0
1
Infección urinaria
1
0
1
Herpes simple tipo I
1
0
1
10
2
12
Total
Tabla 69
Pruebas de chi-cuadrado
Sig. asintótica
Valor
gl
(bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson
1,800a
6
,937
Razón de verosimilitudes
2,496
6
,869
,114
1
,736
Asociación lineal por lineal
N de casos válidos
12
a. 14 casillas (100,0%) tienen una frecuencia esperada inferior a 5. La frecuencia mínima esperada es
,17.
El valor de chi-cuadrado es 1.8 y su p-valúe (0.937) es mayor a 0.05 (nivel de
significación) por lo tanto se acepta la hipótesis nula, es decir que el entorno laboral es
independiente con la enfermedad diagnosticada.
144
Tabla 70
Medidas simétricas
Error típ. asint.a
Valor
T aproximada
Sig. aproximada
Intervalo por intervalo
R de Pearson
-,102
,259
-,323
,753c
Ordinal por ordinal
Correlación de Spearman
-,100
,223
-,317
,758c
N de casos válidos
a. Asumiendo la hipótesis alternativa.
b. Empleando el error típico asintótico basado en la hipótesis nula.
c. Basada en la aproximación normal.
12
Según la correlación de sperman existe un 10.2% de relación inversamente proporcional
entre la vida laboral y la enfermedad diagnosticada y es no significativa ya que su pvalúe (0.758) es mayor a 0.05 (nivel de significación).
145
RESULTADOS
I-MORFOLOGÍA FACIAL OBSERVACIONAL MEDIANTE
IMAGEN FOTOGRÁFICA
II-MORFOLOGÍA CUTÁNEA MEDIANTE
ULTRASONICAS (elasticidad-extensibilidad)
146
IMÁGENES
I-MORFOLOGÍA FACIAL OBSERVACIONAL MEDIANTE IMAGEN
FOTOGRÁFICA (antes del tratamiento-10 semanas después de la segunda sesión).
En estas imágenes fotográficas, tomadas antes del tratamiento con materiales autólogos
(1, 3, 5, 7, 9, 11, 13, 15, 17, 19, 21) y después del tratamiento (2, 4, 6, 8, 10, 12, 14, 16,
18, 20, 22).Se observa una evidente modificación en la morfología facial, si comparamos
el antes y con el después.
En las imágenes fotográficas después del tratamiento apreciamos:
-un mejor tapizado de los relieves óseos, mayoritariamente las superficies convexas, a
nivel peri orbitario, peri oral, malar, y zona glabelar.
-disminución de la profundidad de los ojos.
-disminución de la profundidad del surco nasogeniano.
-disminución de las ojeras.
-elevación de la cola de la ceja.
-disminución de las arrugas transversales de expresión.
-disminución de código de barro en labio superior.
-disminución de la rectitud y angulación de los labios.
-mayor suavidad en la expresión del rostro.
-mejor armonía.
-mejor homogeneidad de las discromías.
147
Imagen 1 y 2
148
Imagen 3 y 4
149
Imagen 5 y 6
150
Imagen 7 y 8
151
Imagen 9 y 10
152
Imagen 11 y 12
153
Imagen 13 y 14
154
Imagen 15 y 16
155
Imagen 17 y 18
156
Imagen 19 y 20
157
Imagen 21 y 22
158
II-MORFOLOGÍA CUTÁNEA MEDIANTE IMAGEN ULTRASÓNICA
(extensibilidad-elasticidad)
Se puede apreciar en primer plano:
-Banda negra (no ecogenica) es la presencia de agua de la cámara del equipo (A).
-La línea densa ecogenica de color blanco, se corresponde a la “epidermis” (B).
-Banda de diversos colores que van desde el verde, azul, rojo y amarillo, equivalente a la
“dermis” (C).
-Estructura no ecogenica que sigue a la dermis, corresponde al tejido adiposo (D).
La intensidad del color en las imágenes ultrasónicas a nivel cutáneo-fácil, están en relación
a la ecogenicidad del tejido, que a su vez es proporcional a la densidad y cohesión de la red
de colágeno del tejido.
Imágenes tomadas antes del tratamiento:
1,3,5,7,9,11,13,15,17,19,21,23,25,27,29,31,33,35,37,39,41,43,45,47,49,51,53,55,57,59,61,63
Imágenes tomadas después del tratamiento:
2,4,6,8,10,12,14,16,18,20,22,24,26,28,30,32,34,36,38,40,42,44,46,48,50,52,54,56,58,60,62,64
Se observa una evidente respuesta ultrasónica a nivel de la dermis, con lo cual pudimos
determinar parametros cuantitativos.
159
IMAGEN 1
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5980 mm
Elasticidad 0,3688 adimensional
IMAGEN 2
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4880 mm
Elasticidad 0,4477 adimensional
IMAGEN 3
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5010 mm
Elasticidad 0,3639 adimensional
IMAGEN 4
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3430 mm
Elasticidad 0,5930 adimensional
IMAGEN 5
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4530 mm
Elasticidad 0,4134 adimensional
IMAGEN 6
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,5330 mm
Elasticidad 0,4652 adimensional
160
IMAGEN 7
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4920 mm
Elasticidad 0,3013 adimensional
IMAGEN 8
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3800 mm
Elasticidad 0,3705 adimensional
IMAGEN 9
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4480 mm
Elasticidad 0,3793 adimensional
IMAGEN 10
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3560 mm
Elasticidad 0,5897 adimensional
IMAGEN 11
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4230 mm
Elasticidad 0,3993 adimensional
IMAGEN 12
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4590 mm
Elasticidad 0,3070 adimensional
161
IMAGEN 13
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5681 mm
Elasticidad 0,3122 adimensional
IMAGEN 14
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4601 mm
Elasticidad 0,3700 adimensional
IMAGEN 15
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4431 mm
Elasticidad 0,4200 adimensional
IMAGEN 16
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3900 mm
Elasticidad 0,4400 adimensional
IMAGEN 17
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5892 mm
Elasticidad 0,3079 adimensional
IMAGEN 18
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,5130 mm
Elasticidad 0,5100 adimensional
162
DISCUSIÓN
La falta de materiales biológicos naturales, ha impulsado el uso de materiales sintéticos en la
medicina estética-cosmética y otras ramas de la medicina en los últimos tiempos a pesar de
ser los conocidos riesgo de rechazo (4) (5). En este trabajo evaluamos el uso de materiales
autólogos en el rejuvenecimiento cutáneo facial. Este tipo de material ofrece numerosas
ventajas comparado con los materiales sintéticos. Por ejemplo, su obtención es fácil y de bajo
costo, el riesgo de rechazo (granulomas) por incompatibilidad es mínimo, las características
físicas facilita su uso al ser más manejable y moldeable, logrando un resultado final superior
debido a su aspecto natural, siendo estables y duraderos.
Se ha postulado, que el riesgo de desarrollar
reacción adversa “tipo rechazo a cuerpo
extraño” con materiales sintéticos, incrementa con el uso de diferentes implantes sintéticos en
una misma zona (50) (51) (52) (53) (54). En nuestro estudio, el 34,38% de los pacientes
tratados con material autólogo, tenía como antecedentes implantes previos con materiales
sintéticos, y el 90,91% coincidía la zona tratada con materiales sintéticos y con autólogos, sin
embargo, en ninguno de los pacientes se observo reacciones adversas de rechazo durante el
tiempo de seguimiento controlado de dos años.
El origen de las reacciones adversas a los materiales sintéticos no se sabe con certeza. Una
de las teorías mas aceptadas es la asociación de la formación de granulomas con la presencia
de agentes infecciosos a nivel local o sistémico, lo cual conlleva a estimulación del sistema
inmunológico y con ellos la activación de los mecanismos de rechazo (50) (51) (52) (53) (54)
(55) (56) (57). Es importante señalar, que en nuestro estudio ningún paciente desarrollo
reacción de rechazo, a nivel local o sistémico, durante dos años de seguimiento, a pesar de
que un gran número de ellos desarrolló cuadros de infecciones y recibieron inmunización con
vacunas tanto antes como después de la aplicación del tratamiento cosmético con material
163
autólogo. Esto nos hace pensar que la utilización de estos materiales autólogos es bastante
segura, aun en la presencia de enfermedades infectocontagiosas o vacunas.
La inflamación pos-operatoria, fue el problema más frecuente en nuestro estudio,
desapareciendo de forma progresiva en el transcurso de una o dos semanas, lo cual coincide
con lo reportado por otros autores en intervenciones quirúrgicas similares (58). Otros autores
describen además, edema prolongado en un 8% de los pacientes (50), lo cual no lo
observamos en nuestros pacientes. Tampoco observamos otras complicaciones serias como
necrosis grasa o infecciones de estructuras profundas, descrita por otros autores (58).
Debido a que nuestro procedimiento terapéutico es mínimamente invasivo, con la menor
manipulación posible, en nuestro protocolo no incluimos el uso de antibióticos, a diferencia
de otros autores que generalmente hacen cobertura antibiótica (53) (54) (55).
La técnica utilizada para la aplicación del material autólogo es mínimamente invasiva,
realizando túneles de 2mm para facilitar la entrada de la cánula extremo romo (7cc x 1,25mm
®), controlando de esta forma el volumen y distribución del material aplicado. El
procedimiento mejora la estética de las zonas receptoras, sin dejar cicatrices y en el caso del
trasplante de tejido adiposo se puede también mejorar la zona donante donde existía
adiposidad localizada. La simplicidad del procedimiento influye además en la recuperación
rápida de los pacientes.
Otras de las ventajas del procedimiento que describimos es que el uso de anestesia, esta se
limita a nivel local y troncular, a diferencia de otros procedimientos similares donde es
común el uso de anestesia general, sedación y bloqueos nerviosos regionales sensitivos es
común. En la zona donante de tejido adiposo, habitualmente utilizamos anestesia superficial
tangencial en abanico con Lidocaína 2%, en las zonas receptoras realizamos bloqueo troncular
nervioso sensitivo con (Lidocaína 1% + Epinefrina 20mg/0,0125-1,8 ml) ya que además del
efecto anestésico, tiene numerosos efectos que ayudan al procedimiento quirúrgico, por
164
ejemplo la prolongación del efecto post-operatorio de aproximadamente 6 horas, lo cual
resulta en menos uso de analgésicos. Además, las propiedades vasoconstrictoras de la
epinefrina influyen en la disminución del sangramiento local y consecuente formación de
hematomas. Algunos autores plantean que el uso de soluciones anestésicas puede provocar
toxicidad local
e incluso que la adrenalina puede llegar a licuar el tejido adiposo
(61).Nosotros somos de la opinión, que tal efecto lipolítico sobre las zonas en las que se ha
realizado anestesia local o tumescente, no ocurre, además en estudio experimental no se ha
observado toxicidad anestésica, coincidiendo con el criterio de otros autores (62).
Numerosos métodos han sido aplicados con el objetivo de evaluar la efectividad de los
procedimientos de rejuvenecimiento cutáneo facial, como la resonancia magnética nuclear
(RMN) y tomografía axial computarizada (TAC) (39). Si bien estos métodos dan detalles de
la morfología de las aéreas tratadas, ellos no brindan datos funcionales del tejido, lo cual pone
en duda si el alto costo de estos estudio justifica su utilidad. En nuestro estudio, decidimos
evaluar el resultado del tratamiento a través de la morfología facial mediante la comparación
de imagen fotográfica tomadas antes y después del tratamiento. Además, mediante imagen
ultrasónica a nivel de la dermis, se determinó ecogenicidad, densidad y cohesión de la red de
colágeno, lo que nos permitió determinar parámetros cuantitativos de extensibilidad,
elasticidad e hidratación.
Con nuestro procedimiento se logro un cambio evidente en la morfología facial acompañado
de un alto grado de satisfacción por parte de los pacientes. Estos cambios positivos en
apariencia se mantenían en el momento que se hizo la evaluación a las 10 semanas del
tratamiento. Sin embargo, lo más importante es la mejoría de los cambios funcionales
observados según los estudios ecográficos del área tratada, los cuales demostraron cambios
positivos en la extensibilidad y elasticidad de la piel después del tratamiento. Otro parámetro
165
evaluado fue la hidratación, alcanzando diferencia estadística antes y después del tratamiento
a nivel de stratum corneum en sus capas medias bajas. (63) (64).
Somos del criterio, que los métodos utilizados en nuestro trabajo para evaluar la eficacia del
tratamiento tienen varias ventajas sobre la RMN y el TAC. Además de brindarnos más
información desde el punto de vista estético y funcional, estos métodos nos permiten una
evaluación más rápida a nivel de consulta, no se expone al paciente a radiaciones ionizante,
pueden ser empleados en pacientes con prótesis metálicas y además de ser métodos de bajo
coste.
El método utilizado más comúnmente para la obtención de tejido adiposo, es a través de
aspiradores mecánico a presión negativa. Sin embargo, en nuestro estudio preferimos obtener
el tejido adiposo a través del aspirado manual, usando para ello una jeringa de 10 mL; somos
de la opinión que este procedimiento genera menos traumatismos al tejido adiposo a
trasplantar. Además, evitamos el uso de ultrasonidos, por el daño térmico, traumático y
cavitación que ocasiona (37) (38).
Generalmente se prefiere usar el tejido adiposo purificado, para lo cual el tejido obtenido se
somete a diferentes procesos físicos de centrifugación, lavado, colado, decantado etcétera
(22). En nuestro estudio, sin embargo utilizamos tejido adiposo sin purificar. El uso de tejido
adiposo en su forma natural persigue varios objetivos. Por ejemplo, al evadir la manipulación
del tejido adiposo obtenido, disminuye el traumatismo osmótico y/o mecánico del adipocito,
facilitando su vitalidad y función fisiológica una vez trasplantado (24), además como este se
trasplanta con su entorno natural, preservando su estroma vascular, donde se encuentra el
nicho de células omnipotente (65). Por último, como el tejido adiposo obtenido se transfiere
en la misma jeringa, se disminuye de esta forma la posibilidad de complicaciones por
infecciones.
166
El procedimiento de rejuvenecimiento cutáneo facial en el que remodelamos
curvas y
volúmenes con tejido adiposo que seguimos en nuestro estudio es similar al descrito por otros
autores (61) (58), aplicando el tratamiento a diferentes niveles del tejido, desde el plano
muscular profundo hasta la dermis profunda. A pesar que el procedimiento es relativamente
sencillo desde el punto de vista quirúrgico, es necesario dominar la técnica correcta de
aplicación de tratamiento. El ángulo de aplicación es uno de los parámetros que más influye
en el éxito del tratamiento y depende del área donde este se aplica. Por ejemplo, mientras que
en la zona peri bucal y peri orbitaria, el tratamiento se aplica de forma horizontal, en un
ángulo aproximado de 5 grados, en el resto de la cara se crean vectores y se aplica de forma
tangencial al plano horizontal, pero perpendicular a los pliegues y arrugas de fuerza. Mientras
que el tejido adiposo se aplica usando cánulas de extremo romo de 7cm x 1,25mm® (66),
para la aplicación del PRP y la trombina lo hacemos con aguja 27 G 1 ¼®, colocada
la
aguja en posición tangencial para el PRP y para la trombina en posición horizontal, con
respecto al plano de trabajo.
Aunque el objetivo del trabajo no es la descripción anatómica del procedimiento, si
consideramos importante resaltar la complejidad de la anatomía facial y el riesgo de dañar
estructuras anatómicas importantes como
nervios y vasos sanguíneos durante el
procedimiento. La aplicación de los materiales autólogos a nivel facial, desde el punto de
vista técnico, se puede considerar un procedimiento sencillo, no obstante, la complejidad
anatómica de la cara hace que ella solo debe ser aplicada por profesionales entrenados en el
procedimiento y siempre actuando con prudencial.
La cantidad de tejido adiposo a administrar, depende de la estratégica a seguir, en nuestro
estudio, optamos por la normocorrección, aunque
otros autores prefieren inyectar más
volumen del requerido, con el objetivo de disminuir la frecuencia de intervenciones. En
nuestro trabajo, el tratamiento se aplico para lograr determinados objetivos de restauración,
167
los cuales fueron delineados conjuntamente con el paciente. Estos objetivos determinaron en
cada paciente la extensión y frecuencia del tratamiento. De forma general, podemos definir
nuestro enfoque de tratamiento como minimalista, ya que optamos por abordar en cada
tratamiento pequeñas extensiones, aplicando solo la cantidad necesaria, minimizando
traumatismos en la zona tratada y la respuesta inflamatoria que le sigue, y con ello aumentar
las probabilidades de la supervivencia del trasplante (58).
Es conocido, que la supervivencia del tejido adiposo trasplantado es muy pobre,
independientemente del método y la técnica utilizada para el implante (67) (68).
Los
mecanismos que contribuyen a la pérdida del tejido adiposo trasplantado no se conocen aun
con detalle. No obstante, se ha demostrado que los cambios en la respuesta fisiológica local,
propios del trauma
y la respuesta inflamatoria, juegan un papel importante en la
supervivencia del trasplante (69). Se ha especulado que otros factores, como genéticos,
dietéticos y ambientales pueden influir en la longevidad del trasplante.
Aunque en nuestro trabajo realizamos el trasplante de forma instantánea de la zona donante a
la
receptora, la criopreservación del tejido adiposo para su utilización ulterior es una
posibilidad que se podría también evaluar, ya que se sabe que el tejido adiposo se puede
criopreservar a -20ºC ó -30ºC por un periodo de hasta 10 meses (61).
Sabemos que los adipocitos trasplantados pasan por una fase de isquemia, en la que se ven
rodeados
de
macrófagos,
histiocitos
y polimorfonucleares,
con
un
proceso
de
neovascularización, de forma centrípeta desde la periferia hacia el centro. Basado en estas
observaciones, varios autores recomiendan el uso de sustancias anabolizantes, como insulina,
tiroxina, factores de crecimiento o aminoácidos para facilitar la supervivencia del adipocito.
Por otro lado, se postula que los histiocitos pueden adoptar las características de los
adipocitos, reemplazándolos completamente, por inducción de factores tisulares locales (64)
(70) (71).
168
En nuestra técnica, al tejido adiposo a trasplantar le añadimos (PRP) con sus factores de
crecimiento obtenido tras la degranulación de las plaquetas, como sustancia anabolizante,
para estimular el metabolismo celular (70).
Existen varios métodos descritos para la obtención de (PRP), en nuestro estudio utilizamos la
descrita por Eduardo Anitua (27), teniendo especial cuidado en evitar la activación prematura
de las plaquetas y la perdidas de factores de crecimiento. Con este objetivo, procesamos solo
pequeñas cantidades de sangre (40 mL), comparado con 400 mL descrito por otros autores
(19) (37). Para la activación del (PRP) se utiliza una dosis optimizada de cloruro de calcio
(100mg/mL) correspondiéndose con el 10% del (PRP) obtenido por cada paciente, ya que una
excesiva concentración de Ca2+ puede provocar una disminución en la exocitosis, debido a
una probable activación de proteasas presentes en las plaquetas que son dependientes de
cationes divalentes. Hoy se sabe que las plaquetas y los factores que ella alberga, además de
su importante papel en la hemostasia, tienen también un papel determinante en la reparación
y regeneración tisular (19) (26) (27) (37). Recientemente, el interés en las plaquetas y en los
factores derivados de las misma ha despertado considerablemente interés científico, sobre
todo por su fácil obtención y por el amplio potencial de su uso en diversas ramas de la
medicina (18) (26) (36) (72) (73) (74) (75) (76).
Varios métodos se han publicado para la purificación de trombina presente en el plasma, los
cuales varían en complejidad técnica e instrumentación. En nuestro trabajo hemos
estandarizado el método para la obtención de la trombina autóloga mediante precipitación
físico-química en presencia de etanol, a partir de 5mL de sangre venosa. La factibilidad y
seguridad del uso de la trombina obtenida por este método ha sido evaluada con anterioridad,
escudriñando el posible efecto inflamatorio que podría tener el ethanol residual en la
preparación. En dichos estudios no se ha encontrado ningún signo de respuesta inflamatoria,
como la presencia de neutrófilos, eosinofilos o necrosis en la zona tratada (45) (46) (47) (48)
169
(49). Los efectos biológicos de la administración de trombina, tanto autóloga como
heteróloga, han sido motivo amplio estudio (18) (26) (32) (36), (77) (78). De forma general su
uso es seguro, no obstante, también se han reportado reacciones adversas. Uno de los riesgos
del uso de trombina, es la inducción una respuesta inmunológica anti-trombina y el desarrollo
de hipersensibilidad, aunque este reacción se ha reportado con el uso de trombina heteróloga y
no con el uso de trombina autóloga (79) (80) (81) (82) (83), pudiendo utilizar esta ultima
como medio de soporte tisular en la restauración de zonas dérmicas envejecidas.
Con relación al (PRP), en nuestro trabajo para determinar la fracción de plasma a utilizar
según número de plaquetas, teniendo como premisa la ultra-estructura plaquetaria con un
diámetro de 3mm2, volumen 4-7mm3, peso de 10pg y carga negativa en su superficie. Se
realizo el conteo de 10mL de sangre con el tubo en posición vertical, la cual fue centrifugada
a 200Xg durante 8 minutos, sin freno en la centrifuga, quedando 3mL de plasma. Obteniendo
un conteo de plaquetas en el mililitro superior 10x109L,
medio 51x109L e
inferior
145x109L (84). Según nuestros resultados, decidimos trabajar con la fracción inferior del
(PRP) por su mayor concentración de plaquetas, siempre cuidando no tocar la capa buffycoat
durante el pipeteado.
Nuestro estudio demuestra la factibilidad de generar soporte biológico a partir de materiales
autólogos, con las consecuentes ventajas sobre el uso de materiales sintéticos en cuanto a la
bioseguridad de este tipo de tratamiento (85). Además demostramos que el uso del material
autólogo no solo es factible sino también eficaz, de acuerdo a la mejoría observada en los
parámetros evaluados como, extensibilidad, elasticidad, e hidratación ;además los pacientes
consideraron la intervención poco invasiva y todos recomendarían o se repetirían el
procedimiento, de ser necesario, lo que demuestra su gran satisfacción con los resultados
obtenidos.
170
CONCLUSIONES
La extensibilidad y elasticidad de la piel mostro mejoría en todos los pacientes tratados. En
el caso de la extensibilidad, se observo una variación promedio de 0,4931 milímetros a
0,4187 milímetros, mientras que la elasticidad de la piel aumento de 0,3699 adimensional a
0,4500 adimensional. La hidratación aumento de 68,0281 unidades arbitraria a
71,8531unidades arbitrarias. Alcanzando parámetros diferencia estadística relevante.
La realización de imágenes ultrasónicas antes y después del tratamiento, nos permitió
determinar cambios en la densidad y regularidad de la dermis, así como variaciones en la
cohesión de la red de colágeno.
La realización de imágenes fotográficas antes y después del tratamiento, nos permitió
observar cambios evidentes en la morfología facial, dados por una mejor armonía y
homogeneidad, así como un rejuvenecimiento facial.
La inflamación local post-operatoria fue el problema que se encontró más frecuente, no
produciéndose complicaciones como necrosis o infecciones. A pesar de que algunos
pacientes fueron tratados en dos y tres ocasiones, no se observaron complicaciones a largo
plazo, como reacciones de rechazo a nivel local o sistémico, aun en el caso de pacientes que
habían recibido implantes sintéticos anteriores en la zona tratada o que desarrollaron
procesos infecto contagiosos en el periodo de evaluación.
Todos los pacientes consideraron que la anestesia local fue suficiente y en ningún caso fue
necesaria la administración de sedantes o anestesia general. Los pacientes consideraron la
intervención poco invasiva y todos recomendarían o se repetirían el procedimiento, de ser
necesario, lo que demuestra su gran satisfacción con los resultados obtenidos.
El uso de medios diagnostico de bajo coste, como las imágenes ultrasónicas de la piel,
ofrecen datos funcionales de los tejidos, protegiendo al paciente de radiaciones ionizantes.
Los materiales autólogos, brindan una nueva alternativa segura y eficiente tanto para la
medicina estética-cosmética como para otras ramas de la medicina.
171
RECOMENDACIONES
Las propiedades beneficiosas del soporte autólogo descrito en nuestro trabajo y la
facilidad de su obtención, disponibilidad, así como el riesgo mínimo de reacciones
adversas, hacen de estos
un candidato a utilizar en el futuro para
tratamientos en
diversas ramas de la medicina. Recomendándose estudios más amplios, con un periodo
de seguimiento más prolongado en tiempo, para evaluar su eficacia a largo plazo.
.
172
BIBLIOGRAFÍA
1-Rosenthal J, Woolfry AE, Pawlowska A, et al. Hematopoietic Cell Transplantation With
Autologous Cord Blood in Patients With Severe Aplastic Anemia: An Opportunity to
Revisit the Controversy Regarding Cord Blood Banking for Private Use. Pediartr Blood
Cancer, 2011.56:p.1009-1012.
2-Broxmeyer HE, Douglas GW, Hangoc G, et al. Human umbilical cord blood as a
potential source of transplantable hematopoietic stem/progenitor cells. Proc Natl Acad
Sci USA, 1989.86:p.3828-3832.
3-Harris DT. Non-haematological uses of cord blood stem cells. Br J Haematol,
2009.147:p177-184.
4-Ballen K. Challenges in umbilical cord blood stem cell banking for stem cell
reviews and reports. Stem Cell Rev, 2010.6:p.8-14.
5-Koza V, Jindra P, Svojgrova M, et al. Successful autologous transplantation in a
patient with severe aplastic anemia (SAA). Bone Marrow Transplant, 1998. 21:p.957959.
6-Sniestrup C, Hoelmich LR, Dahlstrom K. Long-term complication after injection of
permanent tissue-fillers to the lips. Ugesk Loeger, 2009.171(17):p.1414.
7- De Boulle, K. Management of Complications after implantation of fillers. J Cosmet
Dermatol, 2004. (1):p.2-15.
8-Bellisle F, Clement K, Le Barzic. The eating inventory and body adiposity from leanness
to massive obesity. Obes Res, 2004. 12(2):p.2023-30.
9-Perez-Echarri N, Noel-Suberville C, Redonnet A. Role of adipogenec and thermogenic in
susceptibility or resistence to develop diet-induced obesity in rats. J Physiol Biochem,
2007.63(4): p.317-27.
10-Chiellini C, Cochet O, Negroni L. Characterization of human mesenchymal stem cell
secretome at early steps of adippocyte and osteoblast differentiation. BMC Mol Biol, 2008.
26(9):p.26.
11-Lafontan M. Advences in adipose tissue metabolism. Int J Obes, 2008.32 Suppl 7:S3951.
12-Arner P. Human fat cell lipolysis. Biochemistry,regulation and clinical role. Endocrinol
Metab, 2005. 19(4): p.471-82.Review.
13-Walke CG, Bryson JM, Hancock DP. Leptin secretion is related to glucose-derived
lipogenesis in isolated adipocytes. Int J Obes, 2007. 31(4):p.723-9.
173
14-Forte GI, Scola L, Misiano G, Miliano S.Relevance of gamma interferon, tumor
necrosis factor alpha, and interleukin-10 gene polymorphisms to susceptibility to
Mediterranean spotted fever. Clin Vaccine Immuno, 2009. 16(6):p.811-5.
15-Mouraux T. Hormones in adipose tissue. Rev Med Brux, 2009. 30(2):p.122-4.
16- Yan-Charvet L, Massiéra F, Lamandé N. Deficiency of angiotensina type 2 receptor
rescues obesity but not hypertension induced by overexpression of angiotensinogen in
adipose tissue. Endocrinology, 2009. 150(3):p.1421-8.
17-Lozito TP, Kuo CK, Taboas JM, Tuan RS. Human mesenchymal sten cells express
vascular cell phenotypes upon interaction with endothelial cell matrix. J Cell Biochem,
2009.107(4):p.714-22.
18-Anitua E, Andia I, Ardanza B, et al: Autologous platelets as a source for healing and
tissue regeneration. Thromb Haemost, 2004. 91(1):p.4-15.
19- Everts PA, Jakimowicz JJ, Beek van M, Schonberger JP, Devilee RJ, Overdevest EP,
Kanape JT, Zundert van A: Reviewing the structural features of autologous plateletleukocyte gel and suggestions for use in surgery.Eur Surg Res, 2007.39:p.199-207.
20-Zhu Y, Liu T, Song K, et al: Ex vivo expansion of adipose tissue-derived stem cells in
spinner flasks. Biotechnol, 2009. 4 (8):p.1198-209.
21-Ersek RA, Chang P, Salisbury MA. Lipo Layering of autologous fat: an improved
technique with promising results. Plast Reconstr Surg, 1998.101(3):p.820-6.
22-Pu LL, Coleman SR, Cui X. Autologous fat grafos harvested and refined by the
Coleman technique: a comparative study. Plast Reconstr Surg, 2008.122(3):p.932-7.
23-Laurent F, Capon-Dégardin N, Martinot-Duquennoy V. Role of lipo-filling in the
treatment of sequelae in craniosynostosis surgery.Ann Chir Plast Esthet, 2006.51(6):p.5126.
24-Ducours Jl, Poizac P, Andanza B, et al:Brraquer-Simons syndrome and facial lipofilling.Apropos of a case. Rev Stomatol Chir Maxillofac, 1991. 92(2):p.105-11.
25-Foyatier JL, Mojallal A,Voulliaume D, et al: Clinical evaluation of structural fat tissue
grafo (Lipoestructure) in volumentric facial restoration with face-lift. About 100 cases. Ann
Chir Plast Esthet, 2004. 49(5):p.437.
26-García García V, Corral I, Bascones Martínez A. Plasma rico en plaquetas y su
utilización en implantología dental.AvPeriodon Implantol, 2004. 16(2):p.81-92.Review
27-Anitua E. Plasma rich in growth factors: preliminary results of use in the preparation of
future sites for implants. Int J Oral Maxillofac Implants, 1999. 14(4):p.529-35.
28-Garcia Mesa M, Coma Alfonso C. Características estructurales y funcionales de las
plaquetas. Rev Cubana y Cir Vasc, 2000. 1(2):p.132-41.Review.
174
29-Beca T, Hernandez G, Morante S, et al: Plasma rico en plaquetas. Av Periodon
Implantol, 2007. 19(1):p.39-52.Review.
30- Heldin CH,Eriksson U, Ostman A. New members of the platelet derived growth factor
family of mitogenos. Arch Biochem Biophys, 2002. 398(2):p.284.
31- Evans MC, Barocas VH. The modulus of fibroblast-populated collagen gels is not
determined by final collagen ande cell concentration. J Biomech, 2009. 131(10):p.1010-14.
32-Gonshor A. Técnicas para producir plasma rico en plaquetas y concentrado plaquetario:
Antecedentes y proceso. Internacional de Odontología Restauradora y Conservadora,
2002. 6(6):p.583-93.
33-Seegers WH. Blood clotting mechanisms: Three Basic reactions. Annu Rev Physiol,
1969.31:p.269-96.Review.
34- Martinez JM, Cano J, Gonzalo JC, et al: Do ambulatory-use Platelet –Rich Plasma
(PRP) concentration present risks? Medical Oral, 2002.7 (5):p.375-9.Review.
35- Iannace C, Di Libero L, Manetta F, et al: Coleman lipofilling: Experience of an Italian
group and review of the literatura. Chir Ital, 2009.61(1):p.67-75.
36- Barret JP, Sarobe N, Grande N, et al: Maximizing results for lipofilling in facial
reconstruction. Clin Plast Surg, 2009. 36(3):p.487-92.
37- Anitua E, Sánchez M, Orive G, et al: The potential impact of the preparation rich in
growth factors (PRGF) in different medical fields. Biomaterials, 2007. 28(31):p.45514560.Review.
38-Coleman SR: Long term survival of fat transplants: controlled demonstrations.
Aesthetic Plas Surg, 1995. 19(5):p.421.
39- Coleman SR: Facial recontouring with lipostructure. Clin Plast. Surg, 1997.24(2):34767.
40- Fontdevila J, Serra-Remon JM, Raigosa M, et al: Assessing the long-term viability of
facial fat grafts: an objective measure using computed tomography. Aesthet Surg J, 2008.
28(4):p.380-6.
41-Furie B, Furie BC. Molecular and cellular biology of blood coagulation. N Engl J Med,
1992. 326(12):p.800-6
42-Real Decreto 1854/1993, de 22 de octubre, BOE de 20 de noviembre por el que se
determina con carácter general los requisitos técnicos y condiciones mínimas de la
homodonación y bancos de sangre.
43-Orden Ministerial de 2 de junio de 1998, BOE del 11, por la que se establecen
principios de actuación dirigidas a la seguridad del plasma para su uso.
175
44- Alonso Verduras C. Seguridad de los hemoderivados. Métodos de inactivación. El
farmacéutico hospitales, 2000 (113):p.10-4.
45-De Somer,F.,V.De Brauwer, et al. Can autologous thrombin with a rest fraction of
ethanol be used safely for activation of concentrated autologous platelets applied on
nerves? Eur Spine J, 2006. 15(4):p.501-5.
46-Silver, F.H., M.C. Wang, et al. Preparation and use of fibrin glue in
surgery.Biomaterials, 1995. 16(12):p.891-903.
47- Silver, F.H., M.C. Wang, et al.Preparation of fibrin glue: a study of chemical and
physical methods.J Appl Biomater, 1995. 6(3):p.125-83.
48-Thorn, J.J., H.Sorensen, et al. Autologous fibrin glue with growth factors in
reconstructive maxillofacial surgery. Int J Oral Maxillofac Surg, 2004. 33(1):p.75-100.
49-Yoshida,H.,K.Hirozane,et al.Comparative study of autologous fibrin glues prepared by
cryo-centrifugation,cryo-filtration,and ethanol precipitation methods. Biol Pharm Bull,
1999. 22(1):p.1222-5.
50-Zehnder JL, Leung LLK. Development of antibodies to thrombin and factor V with
recurrent bleeding in a patient exposed to topical bovine thrombin. Blood,
1990.76(10):p.2011-16.
51-Bielecki TM, Gazdzik TS, Arendt J, et al. Antibacterial effect of autologous platelet gel
enriched with growth factors and other active substances. J Bone Joint Surg, 2007.
89:p.417-20.
52-El-Sharkawy H,Katarci A,Deady J, et al. Platelet rich plasma: growth factors and pro
and anti-inflammatory properties. J Periodontol, 2007. 78:p.661-69.
53-De Boulle K.Management of complications after implantation of fillers. J Cosmet
Dermatol, 2004. 3(1):p.2-15.
54-Auclair E: Benefit of complementary lipofilling in aesthetic breast augmentation with
implant. Ann Chir Plast Esthet, 2009.54(5):p.491-5.
55-Vanay, MB, and K. Abul, Robbins y Cotan, Patología Estructural y Funcional, 2007.
7(2):p.82-83.
56-Fernandez-Figuera, MT. Reacciones cutánea a tratamiento farmacológico y cosmético.
Revista Española de Patología, 2007.
57-Bigata X, Ribera M, Bielsa I, Ferrándiz C. Adverse granulomatous reaction after
cosmetic dermal silicones injection. Dermatol Surg, 2001.27:p.198-200.
58-Duffy DM. Complications of fillers: overview. Dermatol Surg, 2005. 31(11Pt2):p.162633.
176
59-Saygun I, Sahin S, Musaback U, et al: Human Cytomegalovirus in peripheral giant cell
granulomas. Oral Microbiol Immunol, 2009. 24(5):p.408-10.
60-Fischer J, Metzler G.Cosmetic permanent fillers for soft tissue augmentation: a new
contraindication for interferon therapies. Arch Dermatol, 2007.143(4):p.507-10.
61-Guerrerosantos J: Long-term outcome of autologous fat transplantation in aesthetic
facial recontouring. Sixteen years of experience with 1936 cases. Clin Plast Surg, 2000.
27(4):p.515.
62-Casaer B, Tan EK, Depooter M. The role antibiotic prophylaxis in abdominoplasty: a
review of the infection rate in 300 treated without prophylaxis, 2009.123(1):p.42.
63-Nestor MS. Prophylaxis for and treatment of uncomplicated skin and skin structure
infections in laser and cosmetic surgery. J Drugs Dermatol, 2005.4(6suppl):S20-5.Review.
64-Ellembogen R.Fat transfer. Current use in practice. Clin Plast Surg, 2000. 27(4):p.545.
65-Smith P, Adams WP, Lipschitz AH, et al: Autologous human fat grafting: Effect of
harvesting preparation techniques on adipocyte graft survival. Plast Reconstr. Surg, 2006.
117(4):p.1830-44.
66-De Paepe K, Houben E, Adam R, et al: Seasonal effects on the nasolabial skin
condition. Skin Pharamacol Physiol, 2009.22(1):p.14-8.
67-Egawa M, Tagami H. Comparison of the depth profiles of water and water-binding
substances in the stratum corneum determined in vivo gy Raman spectroscopy between the
cheek and valour forearm skin. Br J Dermatol, 2008.158(2):p.251-60.
68-Murohara T, Shintani S, Kodo K. Autologous adipose-derived regeneration cells for
therapeutic angiogenesis. Curr Pharm Des, 2009. 15(24):p.2784-90.
69-Villarreal Fierro C, Sanz García S, García Martínez A, et al: Lipostructure with
Coleman technique. Personal experience.Cir.Plas. Iberolatinoam.Vol 32-Nº3, 2006:p.208199.
70-Aygit A, Sarikaya A, Doganay L, et al: Te fate intramusculary injected fat auografts.an
experimental study in rabbits. Aesthetic Plast.Surg, 2004. 28(5):p.339-334.
71- Rieck B, Schlaad S.Measurements in vivo of the survival rate in autologous adipocyte
transplantation. Plast. Reconstr. Surg, 2003.111(7):p.2315.
72-Shiffman M. History of autologous fat transplant survival. Art Science and Clinical
Practice, 2010, 98-3-642-00473:p.471.
73-Calabria R.Three dimensional face lifting. PLast Reconstr Surg, 2002.110(1):p.351.
74-Mojallal A, Foyatier JL. The effect of different factors on the survival of the
transplanted adipocytes. Ann Chir PLast Esthet, 2004. 49(5):p.426.
177
75-Dugrillon A, et al: Autologous concentrate platelet-rich plasma (PRP) for focal
application in bone regeneration .Int.J. Oral Maxillofac. Surg, 2002.31(6):p.615-9.
76-Marx RE. Platelet rich plasma: Evidence to support its use. J Oral Maxillofac Surg,
2004. 62(4):p.489-96.Review.
77-Sasaki GH, Mirzai T, Potyondy L, et al: In vivo use of human fibrin blue Ander the
subperiosteal and subcutaneous planes in Holtzman rats. Aesthet Surg J, 2003.23(6):p.45868.
78-Pers M. Some general surgical principles as applied to aesthetic surgery. Scand J Plast
Reconstr Surg, 1983. 17(3):p.187-90.
79-Man D, Plosker H, Winlad-Brown JE. The use of autologous platelet-rich plasma
(platelet gel) and autologous platelet-poor plasma (fibrin glue) in cosmetic surgery. Plast
Reconstr Surg, 2001.107(1):p.229-37.
80-Komorowska-Timek E, Teruya T, Abou-Zamzam A, et al: Treatment of radial and ulner
artery pseudoaneurysms using percutaneous thrombin inyection. J Hand Surg, 2004.
29(5):p.936-42.
81-Lang G, Cseskco A, Stamatis G, et al: Efficacy and safety of topical application of
human fibrinogen/thrombin coated collagen patch (TachoComb) for treatment of air
leakage after standard lobectomy. Eur J Cardiothrorac Surg, 2004. 25(2):p.160-6.
82-Hasegawa T, Okada K, Takano Y, et al: Autologous fibrin-coated small-caliber vascular
protheses improve anti trombogenicity by reducing immunologic response. J Thorac
Cardiovasc Surg, 2007.133(5):p.1268-76.
83-Ofosu FA, Crean S, Reynolds MW. A safety review of topical bovine thrombin induced
generation of antibodies to bovine proteins. Clin Ther, 2009. 31(4):p.679-91.
84-Revista Cubana Angiol y Cir Vasc, 2000. 1(2):132-41.
85-Nueden AT,Nurden P, Sanchez M, et al. Platelets and wound healing. Fontiers Biosci,
2008.13:p.3532-48.
178
ANEXOS
Anexo I:
- Encuesta epidemiológica I
Nombre Apellidos: ________________________________________________________
Fecha Nacimiento: _____/_____/_____
Día
mes año
Número Teléfono: _______________________________
Correo Electrónico.______________________________
Primeramente deseamos saber una información de carácter general sobre usted y rogamos su colaboración. Por favor sus respuestas se deben corresponder a
marcar números o rellenar espacios en blanco.
Datos generales
1. Cuál es su sexo?
Femenino 1
Masculino 2
2. Lugar de nacimiento
Europa
1
África
2
Asia Menor
3
Asia Mayor
4
Islas del Pacifico 5
Islas del Caribe
6
Sur América
7
Norte América
8
Centro América
9
Otros
10
Por favor especifique______________________
3. ¿Donde ha vivido en los últimos 10 años?
Europa
1
África
2
Asia Menor
3
Asia Mayor
4
Islas del Pacifico
5
Islas del Caribe
6
Sur América
7
Norte América
8
Centro América
9
Otros
10
Por favor especifique_________________________
4. ¿Dentro de que raza usted se pudiera clasificar?
Blanca
1
Negra
2
Caucásica
3
Mestiza
4
Asiática
5
Islas del Pacifico
6
Nativo de América
7
Ascendencia Judía
8
Otros
9
Por favor especifique: _____________________
5. a) ¿Cual es su nivel de escolaridad adquirido?
Elemental básico
1
Enseñanza Secundaria Obligatoria
2
Bachillerato
3
Técnico Superior
4
Universitario
5
Entorno laboral
6. Su vida laboral se ha desarrollado en:
Oficina
Construcción de viviendas de ladrillo, concreto
Granjas Avícolas
Otros
1
2
3
4
7. Usted ha estado expuesto a:
Arena seca que contiene sílice cristalina
Cuarzo que contiene sílice cristalina
Arcilla que contiene sílice cristalina
Labores de derribo de concreto, ladrillo
Utilización de taladro de piedra que contenga cuarzo, arcilla, tierra de arena
Barrido en seca de piedra de concreto, piedra, arcilla, polvo de arena
No he estado expuesto a estos productos
179
1
2
3
4
5
6
7
8. En caso que la pregunta 7 se recoja algún dato de exposición ¿Cuánto tiempo lleva expuesto a sílice cristalina (cuarzo, arena, arcilla, piedra de concreto)?
Menos de un mes
1
Un mes
2
Dos meses
3
De tres a cinco meses
4
De seis meses a un año
5
De de uno a dos años
6
De dos a tres años
7
De tres a cuatro años
8
De cuatro a cinco años
9
De cinco a 10 años
10
Más de 10 años
11
9. Actualmente está expuesto a sílice cristalina (cuarzo, arena, arcilla, piedra de concreto)
Si 1
No 2
10. En caso que la pregunta anterior la respuesta sea NO especifique el tiempo que lleva alejado de la exposición a sílice cristalina (cuarzo, arena, arcilla,
piedra de concreto)
Un año
Dos años
Tres años
Más de cinco años
Más de diez años
1
2
3
4
5
Hábitos Tóxicos
11. Hábitos Tóxicos
Bebedor habitual de alcohol
1
Tabaquismo
2
Consumo de Drogas
3
Otros
4
Por favor especifique_____________________________
No tengo hábitos tóxicos
5
Consumo de medicación de forma habitual o crónica
12. Usted consume medicamentos de forma habitualmente o crónica.
Si 1
No 2
13. Usted puede identificar los medicamentos que habitualmente consume.
Antinflamatorios
1
Especifique_________________________
Analgésicos
2
Especifique__________________________
Anticonceptivos
3
Especifique___________________________
Antidepresivos
4
Especifique____________________________
Ansiolíticos
5
Especifique____________________________
Antibióticos
6
Especifique______________________________
Esteroides (vía oral)
7
Especifique_______________________________
Esteroides (vía tópica) 8
Especifique____________________________
Otros
9
Especifique______________________________
Antecedentes Patológicos Familiares y Personales
14. Antecedentes Patológicos Familiares de Enfermedad Crónica.
Diabetes Mellitus Tipo I
1
Diabetes Mellitus Tipoi
2
Hipertensión Arterial
3
Hipercolesterolemia
4
Hipertrigliceridemia
5
Hiperuricemia
6
Insuficiencia Renal Crónica
7
Enfermedad tejido conectivo
8
Hipertiroidismo
9
Hipotiroidismo
10
Tiroiditis Hashimoto
11
No tengo APF de interés
12
180
Otras
13
Por favor especifique___________________________________
15. Antecedentes Patológicos Familiares de Enfermedad Autoinmune Granulomatosa
Enfermedad de Crohn
1
Sarcoidosis
2
Enfermedad Wegener
3
Síndrome Churg Strauss
4
Poliangeitis Microscópica
5
Leucitoclastica cutánea
6
Purpura Schoilein Henoch
7
Microglobulinemia esencial
8
Enfermedad Kawasaki
9
Poliarteristis Nudosa
10
Vasculitis de Arteria Temporal
11
Arteritis Takayuso
12
No tengo APF de enfermedad granulomatosa 13
Otros
14
Por favor especifique_________________________
16. Antecedentes Patológicos Personales de Enfermedad Crónica No Transmisible.
Diabetes Mellitus Tipo I
1
Diabetes Mellitus Tipoi
2
Hipertensión Arterial
3
Hipercolesterolemia
4
Hipertrigliceridemia
5
Hiperuricemia
6
Insuficiencia Renal Crónica
7
Enfermedad tejido conectivo
8
Hipertiroidismo
9
Hipotiroidismo
10
Tiroiditis Hashimoto
11
Enfermedad Hepática
12
Enfermedad Cardiovascular
13
Asma/Enfisema
14
Artritis
15
Catarata
16
Ulcera péptica
17
Osteonecrosis avascular
18
Osteoporosis
19
Osteoporosis con fractura
20
Fractura ósea espontánea
21
Discrasia sanguínea
22
No tengo APP de enfermedad crónica
23
Otras
24
Por favor especifique___________________________________
17. Antecedentes Patológicos Personales conocido de Enfermedad Autoinmune Granulomatosa
Enfermedad de Crohn
1
Sarcoidosis
2
Enfermedad Wegener
3
Síndrome Churg Strauss
4
Poliangeitis Microscópica
5
Leucitoclastica cutánea
6
Purpura Schoilein Henoch
7
Microglobulinemia esencial
8
Enfermedad Kawasaki
9
Poliarteristis Nudosa
10
Vasculitis de Arteria Temporal
11
Arteritis Takayuso
12
No tengo APF de enfermedad granulomatosa 13
Otros
14
Por favor especifique_________________________
18.a) Usted recuerda la última visita que le hizo a su médico, antes que le hicieran el tratamiento médico cosmético con material autólogo.
Si 1
No 2
b) Si la respuesta del inciso anterior es “SI” .La pregunta es ¿En esta visita se le diagnostico alguna enfermedad infectocontagiosa estacionaria?
Si
1
No
2
c) Usted puede identificar la enfermedad diagnosticada en esa visita.
Gastroenteritis aguda viral
1
Virosis respiratoria
2
Neumonía viral
3
Neumonía bacteriana
4
Mononucleosis infecciosa
5
Hepatitis Viral A
6
Hepatitis viral B
7
Amigdalitis aguda
8
Faringitis aguda
9
Otitis aguda
10
181
Infección urinaria
11
Herpes simple tipo I
12
Herpes simple tipo II
13
Otras
14
Especifique el diagnostico______________________________________
No recuerdo el diagnostico 15
19. Antes de haber recibido el tratamiento de medicina cosmética con materiales autólogos, a usted se le diagnostico una enfermedad infectocontagiosa.
Una semana antes
1
Dos semanas antes
2
Tres semanas antes
3
Cuatro semanas antes
4
Dos meses antes
5
Tres meses antes
6
Cuatro meses antes
7
Cinco meses antes
8
Seis meses antes
9
Otros
10
Especifique el tiempo_____________________________________
No lo recuerdo
11
a) Especifique la enfermedad________________________________________
b) No se me ha diagnosticado ninguna enfermedad infectocontagiosa en los últimos
meses.
20.a) Antes del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo usted ha recibido alguna vacuna.
Si 1
No 2
b) Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede recordar el tiempo.
Me he vacunado treinta días antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado dos meses antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado tres meses antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado cuatro meses antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado cinco meses antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado seis meses antes del tratamiento médico estético
Me he vacunado un año antes del tratamiento médico estético
Me ha vacunado dos años antes del tratamiento médico estético
No puedo identificar el tiempo de vacunación antes del tratamiento estético
1
2
3
4
5
6
7
8
9
c) Usted puede identificar la vacuna que ha recibido antes del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo.
Tetanus
1
Hepatitis A
2
Hepatitis B
3
Hepatitis A+B
4
Tosferina
5
Haemophilus Influenzae
tipo B
6
Triple (sarampión/rubéola/parotiditis)
7
Meningococo C conjugada
8
Prueba tuberculina
9
Polio oral
10
Polio inyectable
11
Otras
12
Especifique por favor_______________________________________
21. a) Existe alguna zona específica en la que usted se haya realizado otros tratamientos de cosmética, con materiales sintéticos.
Si 1
No 2
b) Conoce el tipo de material implantado
Si 1
No 2
22. Si el inciso “b” de la pregunta anterior es “Si “. Especifique el tipo de biomaterial implantado.
I).Biológico
a) Factor de crecimiento autólogo
1
b) Autólogo grasa
2
c) Autólogo auto-colágeno
3
d) Heterólogo colágeno (bovino)
4
e) Heterólogo ácido hialurónico (cresta ave)
5
f) Heteróloga silicona (sílice)
6
g) Biosintéticos ácido hialurónico (cultivo bacteriano)
7
h) Dermis completa
8
i) No lo sé
9
j) Otros
10
Por favor, especifique________________________________
II).No biológicos
a) Ácido poli láctico
1
b) Hilos (PTFE) poli tetra fluoruro expandido
2
c) Microesfera metacrilato
3
d) Microesfera polisacáridos
4
e) Microesfera poliacrilamida
5
f) Microesfera polialquilimida
6
g) Microesfera hidroxiapatita
7
h) Microesfera alcohol-polivinilo
8
182
i) No lo sé
9
j) Otros
10
Por favor, especifique____________________________________
III).Tiempo de implante
a) Menos de 1 año
b) Más de 1 año
c) Entre 2 y 5 años
d) Entre 6 y 10 años
e) Más de 10 años
23- Usted está de acuerdo en formar parte de un pequeño grupo de pacientes para un estudio experimental.
Si 1
No 2
24. Su médico le ha ofrecido una información detallada acerca del tratamiento de medicina cosmética con materiales autólogos, sus ventajas, posibles riesgos
y complicaciones.
Si
1
No 2
25. Usted conoce a los médicos que le realizarán el tratamiento de medicina cosmético con materiales autólogo,
Si
1
No 2
26. Su médico es especialista en:
Medicina General y Comunitaria
Dermatología
Medicina Cosmética
Internista
Cirujano
1
2
3
4
5
27. Antes de tratamiento de medicina cosmética con factores de crecimiento autólogos se le realizo una analítica general.
Si 1
No 2
Anexo II:
Encuesta epidemiológica II
Nombre Apellidos: ________________________________________________________
Fecha Nacimiento: _____/_____/_____
día
mes año
Número Teléfono: _______________________________
Correo Electrónico.______________________________
Primeramente deseamos saber las características generales posteriores al tratamiento médico estético-cosmético que le fue realizado por su médico. Rogamos su
colaboración. Por favor sus respuestas se deben corresponder a marcar números o rellenar espacios en blanco.
1. Es la primera vez que usted se realiza un tratamiento de medicina estética-cosmética con materiales autólogos.
Si
1
No 2
2. En cuantas ocasiones usted fue sometida a tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos para lograr las expectativas deseadas.
En una ocasión
En dos ocasiones
En tres ocasiones
1
2
3
3. Las zonas tratadas actualmente con materiales autólogos, coinciden con las zonas tratadas anteriormente con materiales sintéticos.
Si
1
No 2
4. Inmediatamente después de haber recibido el tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos usted presento.
Inflamación (color, rubor, dolor)+Edema y/o Equimosis
1
Necrosis
2
Infección
3
Otros
4
Ninguno sintomatología
5
5. Su médico le prescribió antibiótico después del tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos.
Si
1
No 2
6. Usted tuvo necesidad de consumir analgésicos después del tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos.
Si
1
No 2
7.a) Después de haber recibido el tratamiento de medicina estética-cosmética con materiales autólogos, usted presento alguna enfermedad infectocontagiosa.
Si
1
No
2
b) Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede especificar de las siguientes enfermedades infectocontagiosa, cual le fue diagnosticada.
Gastroenteritis aguda viral
1
Virosis respiratoria
2
Neumonía viral
3
183
Neumonía bacteriana
4
Mononucleosis infecciosa
5
Hepatitis Viral A
6
Hepatitis viral B
7
Amigdalitis aguda
8
Faringitis aguda
9
Otitis aguda
10
Infección urinaria
11
Herpes simple tipo I
12
Herpes simple tipo II
13
Otras
14
Especifique el diagnostico______________________________________
No recuerdo el diagnostico
15
c) La enfermedad diagnosticada ocurrió
Una semana después del tratamiento médico estético-cosmético
Dos semanas después del tratamiento médico estético-cosmético
Tres semanas después del tratamiento médico estético-cosmético
Cuatro semanas después del tratamiento médico estético-cosmético
Dos meses después del tratamiento médico estético-cosmético
Tres meses después del tratamiento médico estético-cosmético
Cuatro meses después del tratamiento médico estético-cosmético
Cinco meses después del tratamiento médico estético-cosmético
Seis meses después del tratamiento médico estético-cosmético
Un año después del tratamiento médico estético-cosmético
No lo recuerdo
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
8.a) ¿Después del tratamiento de medicina cosmética con material autólogo, usted ha recibido alguna vacuna?
Si
1
No
2
b) Si la respuesta del inciso anterior es “SI” puede recordar el tiempo.
Me vacune treinta días después del tratamiento estético
Me vacune dos meses después del tratamiento estético
Me vacune tres meses después del tratamiento estético
Me vacune cuatro meses después del tratamiento estético
Me vacune cinco meses después del tratamiento estético
Me vacune seis meses después del tratamiento estético
No puedo identificar el tiempo de vacunación después del tratamiento estético
1
2
3
4
5
6
7
c) Usted puede identificar la vacuna que ha recibido después del tratamiento.
Tetanus
1
Hepatitis A
2
Hepatitis B
3
Hepatitis A+B
4
Tosferina
5
Haemophilus Influenzae tipo B
6
Triple (sarampión/rubéola/parotiditis)
7
Meningococo C conjugada
8
Prueba tuberculina
9
Polio oral
10
Polio inyectable
11
Otras
12
Especifique por favor_______________________________________
9. Usted presento alguna afección bucodentaria después del tratamiento de medicina cosmética.
a) Si
1
No
2
b) Si la respuesta es SI, puede especificar el tiempo de aparición.
La primera semana
1
La segunda semana
2
La tercera semana
3
Al mes
4
A los dos meses
5
A los tres meses
6
c) Fue necesario acudir al odontólogo y realizar alguna intervención quirúrgica.
Si
1
No
2
d) Fue necesario el consumo de antibióticos.
Si
1
No
2
10. Usted considera este tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos, un procedimiento mínimamente invasivos, no quirúrgico.
Si 1
No 2
11. Usted considera que con anestesia local es suficiente para realizar este procedimiento facial de medicina estética-cosmética con materiales autólogos.
Si
1
No 2
12. Usted está satisfecho con los resultados obtenidos con este tratamiento médico estético-cosmético
Si 1
No 2
184
13- Usted repetiría en el futuro este procedimiento medico estético-cosmético
Si
1
No
2
14. Usted a presento alguna complicación después de haber transcurrido 1 mes del tratamiento médico estético-cosmético con materiales autólogos, tipo
rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
Si 1
No 2
15. Usted presento alguna complicación después de haber transcurrido 6 meses de haber recibido el tratamiento médico estético-cosmético con materiales
autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
Si
1
No 2
16. Usted presento alguna complicación después de haber transcurrido 12 meses de haber recibido el tratamiento médico estético-cosmético con materiales
autólogos, tipo rechazo a cuerpo extraño con formación de granulomas.
Si
1
No 2
Anexo III:
Consentimiento informado I: Rejuvenecimiento cutáneo facial con materiales autólogos
Normativa vigente en materia de derecho a la información del paciente
Don/Doña……………………………………………………………………. con D.N.I…………………..manifiesta que ha sido amplia y
suficientemente informado/a por el Dr/a …………………………………………………………. a cerca de mi estado de salud mediante
interrogatorio y analítica previa.
-Se me informo de manera comprensiva, simple y entendible, e incluso por escrito (documento de información) y mediante imágenes
de las características de este tratamiento; que es un procedimiento mínimamente invasivo, totalmente con material de origen autólogo
(mis propias células adiposas y mi propia sangre).
-Que soy un paciente sometido/a a un procedimiento de medicina estética-cosmética de forma voluntaria para un tratamiento totalmente
satisfactivo, considerándome perfectamente enterado de todos los detalles del mismo, efectos colaterales post-operatorios, expectativas
reales sobre el resultado así como de las posibles complicaciones (inflamación, eritema, dolor, rechazo, infección….).Que el resultado no
podrá ser valorado durante los primeros días y en algunos casos deberán pasar semanas.
-Reconozco y acepto que no se me pueden dar garantías o seguridad absoluta respecto a los resultados del tratamiento, y manifiesto que
mis preguntas en este sentido han sido contestadas satisfactoriamente.
-Asumo el riesgo de que, como consecuencia de un tratamiento correctamente realizado, puedo no sentirme satisfecho/a con la apreciación
personal y subjetiva del resultado estético obtenido, algo que el médico no puede prevenir ni evitar.
-Asumo que como consecuencia del tratamiento puedo sufrir un perjuicio estético en lugar de una mejoría.
-Reconozco y acepto que el tratamiento propuesto no agota los recursos, y pueda ser que requiera una actuación terapéutica posterior.
-Se y acepto que ciertas circunstancias personales que no oculto y que constan en mi historial clínico pueden incrementar la incidencia de
complicaciones indicadas.
-Como paciente colaborador para este proyecto, además del procedimiento terapéutico, doy mi consentimiento para que se me tome una
biopsia cutánea antes y después del tratamiento con materiales autólogos con el objetivo de ampliar la investigación.
-Doy el consentimiento y autorizo a practicar el procedimiento señalado. Sé que la firma y la concesión de este consentimiento
informado no supone ninguna renuncia a posibles reclamaciones futuras, ya sean de orden medico como legal. Sé que también puedo
revocar de la firma de este consentimiento en cualquier momento previo a la intervención.
Fecha…………..de…………………..20……
Firma
___________________
Sr./Sra………………………
Dr./Dra………………………….Médico que informa
Consentimiento informado II: Rejuvenecimiento cutáneo facial con materiales autólogos
Normativa vigente en materia de derecho a la información del paciente
Don/Doña……………………………………………………………………. con D.N.I…………………..autorizo e igualmente consiento
al Dr…………………………..y su equipo médico o al archivo de imágenes relacionadas con mi caso, a efectuar fotografías en la zona
tratada pre y post tratamiento, que puedan ser utilizadas con fines científicos, docentes o médicos, quedando entendido que su uso no
constituya ninguna violación a la intimidad o confidencialidad, a las que tengo derecho.
Fecha…………..de…………………..20……
Firma
___________________
Sr./Sra………………………
Dr./Dra………………………….Médico que informa
185
Anexo IV:
Imágenes ultrasónicas
IMAGEN 19
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5983 mm
Elasticidad 0,4321 adimensional
IMAGEN 20
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,5402 mm
Elasticidad 0,4899 adimensional
IMAGEN 21
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4381 mm
Elasticidad 0,3471 adimensional
IMAGEN 22
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3821 mm
Elasticidad 0,5621 adimensional
IMAGEN 23
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4596 mm
Elasticidad 0,3566 adimensional
IMAGEN 24
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4490 mm
Elasticidad 0,4119 adimensional
186
IMAGEN 25
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4581 mm
Elasticidad 0,3286 adimensional
IMAGEN 26
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4231 mm
Elasticidad 0,4122 adimensional
IMAGEN 27
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5732 mm
Elasticidad 0,4427 adimensional
IMAGEN 28
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,5101 mm
Elasticidad 0,4627 adimensional
IMAGEN 29
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5198 mm
Elasticidad 0,3933 adimensional
IMAGEN 30
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4732 mm
Elasticidad 0,5102 adimensional
187
IMAGEN 31
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5900 mm
Elasticidad 0,3700 adimensional
IMAGEN 32
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,5244 mm
Elasticidad 0,4599 adimensional
IMAGEN 33
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4831 mm
Elasticidad 0,3122 adimensional
IMAGEN 34
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4124mm
Elasticidad 0,3810 adimensional
IMAGEN 35
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4222 mm
Elasticidad 0,3519 adimensional
IMAGEN 36
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3100 mm
Elasticidad 0,4284 adimensional
188
IMAGEN 37
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4619mm
Elasticidad 0,4310 adimensional
IMAGEN 38
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4410 mm
Elasticidad 0, 5139 adimensional
IMAGEN 39
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4722 mm
Elasticidad 0,3612 adimensional
IMAGEN 40
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4319 mm
Elasticidad 0,4428 adimensional
IMAGEN 41
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4331 mm
Elasticidad 0,3000 adimensional
IMAGEN 42
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3102 mm
Elasticidad 0,3898 adimensional
189
IMAGEN 43
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4819 mm
Elasticidad 0,3321 adimensional
IMAGEN 44
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4414 mm
Elasticidad 0,3727 adimensional
IMAGEN 45
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4331 mm
Elasticidad 0,4296 adimensional
IMAGEN 46
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3321 mm
Elasticidad 0,0,4714 adimensional
IMAGEN 47
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4622 mm
Elasticidad 0,3351 adimensional
IMAGEN 48
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4176 mm
Elasticidad 0,4510 adimensional
190
IMAGEN 49
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4401 mm
Elasticidad 0,3599 adimensional
IMAGEN 50
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3584 mm
Elasticidad 0,4126 adimensional
IMAGEN 51
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4803 mm
Elasticidad 0,3900 adimensional
IMAGEN 52
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3900 mm
Elasticidad 0,4410 adimensional
IMAGEN 53
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5970 mm
Elasticidad 0,4022 adimensional
IMAGEN 54
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3884 mm
Elasticidad 0,4515 adimensional
191
IMAGEN 55
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4892 mm
Elasticidad 0,3896 adimensional
IMAGEN 56
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4296 mm
Elasticidad 0,5223 adimensional
IMAGEN 57
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,4799 mm
Elasticidad 0,3921 adimensional
IMAGEN 58
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,4160 mm
Elasticidad 0,4717 adimensional
IMAGEN 59
Antes del tratamiento
Extensibilidad 0,5831 mm
Elasticidad 0,3296 adimensional
IMAGEN 60
10 semanas después de la segunda sesión
Extensibilidad 0,3691 mm
Elasticidad 0,3614 adimensional
192