MANUAL DE PRACTICAS DE BOTANICA

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Instituto tecnológico superior de
zongolica
MANUAL DE PRACTICAS
DE BOTANICA APLICADA
BIOL. ISIDRA CASTRO MARTINEZ
JUNIO 2014
INTRODUCCIÓN
La botánica aplicada es importante pues permite al alumno entender su importancia
en relación a los componentes de tejidos y órganos, así como la taxonomía y biología
de las plantas cultivadas.
La asignatura tiene relación con las siguientes materias: Biología en temas como
célula vegetal y sus organelos, reproducción de vegetales, herencia, manipulación
genética y diversidad vegetal; Desarrollo sustentable en temas aprovechamiento
racional de los vegetales. Así como otras asignaturas Edafología, Agroecología y
nutrición Vegetal en temas como química de suelos, factores que afectan la
producción y actividad en absorción radical respectivamente.
Contribuir a garantizar una producción de calidad, proponiendo y aprovechando los
recursos agrícolas de acuerdo a las condiciones climáticas, hídricas, edáficas y
sociales.
El Manual de Prácticas de Laboratorio de Botánica Aplicada, es una
herramienta sistematizada que complementa el estudio de cada uno de los
temas más importantes que se imparten en el aula. Consta de ocho prácticas
que contemplan una breve introducción, un listado del material a utilizar, el
método o procedimientos y un cuestionario para contestar por el alumno,
adicional a su reporte de observaciones y de resultados.
Este documento es adecuado para su aplicación en los programas de estudio
de Botánica Aplicada con Laboratorio
REGLAMENTO DEL LABORATORIO
1.
Las sesiones de laboratorio tienen una duración de 2 horas, cuyo horario
y lugar será determinado por la Coordinación del Programa, cada
semestre. Como en general se tienen que realizar diversas actividades
por sesión, es importante iniciar a la hora establecida, por esta razón, la
tolerancia de retraso máxima será de 10 minutos, después de
transcurrido este tiempo ya no se permitirá la entrada al laboratorio.
2.
El uso de bata de laboratorio es obligatorio.
3.
Cada equipo limpiará la mesa de trabajo al inicio y final de la práctica.
4.
Después del uso del microscopio éste deberá quedar perfectamente
limpio, con la intensidad de la luz en el mínimo, el cable enrollado y el
objetivo de menor aumento orientado hacia la platina.
5.
Una vez finalizada la práctica no se deberá dejar ninguna clase de
material en el laboratorio.
6.
Para el desarrollo de cada práctica el grupo se organizará en equipos de
2 o 3 personas.
7.
Traer por equipo: un trapo para limpiar, cinta adhesiva (masking tape),
marcador indeleble e instructivo de la práctica.
8.
El adecuado desarrollo de las prácticas, requiere del uso de material
vegetal de diferente tipo, el cual se consigue fácilmente en los mercados
locales o en el Campus. Por tal razón, los equipos que no traigan
material para trabajar, no serán aceptados en el laboratorio y la práctica
correspondiente inmediatamente será calificada con cero.
9.
El reporte de cada práctica se entregará a los 8 días de finalizada la
práctica (salvo algunas excepciones que se indicaran por el instructor).
Se penalizará con un punto menos por día de retraso, a partir del día de
entrega. Este reporte constará principalmente de resultados de las
actividades realizadas en el laboratorio (7 puntos), cuestionario (2 puntos) y
conclusiones y Bibliografía (1 punto). Estas referencias deben corresponder a
los documentos físicos y virtuales consultados para complementar el reporte
y/o responder el cuestionario (no se permite incluir como material consultado
los apuntes del curso).
10.
Es obligación del alumno asistir a todas las sesiones de laboratorio
programadas, por lo que no se aceptará el reporte de la práctica a la
que no se haya asistido. Así, la inasistencia a la práctica significará un
cero en el reporte y se considerará para el cálculo de sus calificaciones.
LINEAMIENTOS DEL REPORTE
1. EL REPORTE debe de contener los siguientes datos:
a. Portada que debe incluir: Datos del alumno, número de la práctica,
profesor, etc.).
b. Introducción.
c. Objetivos.
d. Material (Laboratorio y biológico).
e. Desarrollo.
f. Resultados.
g. Conclusiones.
h. Cuestionario.
i. Bibliografía.
2. El alumno deberá entregar el reporte en tiempo y forma, con fecha de
entrega notificada previamente por el técnico académico.
3. EL REPORTE ES INDIVIDUAL, solo tendrá calificación si el alumno asistió
a la práctica.
NOTA: Si el alumno entrega el reporte sin la impresión de este formato de
prácticas, puede omitir solo la parte de materiales y desarrollo.
IV. EVALUACIÓN PARA ACREDITAR EL CURSO DE BOTANICA.
1. La parte práctica constara de un 20% de la calificación parcial del curso,
la parte teórica constara de otro 70%, para acreditar el curso deberá
aprobar ambas partes.
2. Se requerirá el 80% de asistencia al total de la sesiones del laboratorio,
para tener derecho a la calificación final.
3. Se calificará de 0 a 10 cada informe de la práctica, de acuerdo a la
calidad del mismo.
PRÁCTICA 1. USO DEL MICROSCOPIO
Introducción
La observación de células o tejidos vegetales es difícil, debido tanto a su
tamaño (5 a 50 µm) como a la ausencia de color. El ojo humano es capaz de
detectar diferentes longitudes de onda dentro del espectro visible (colores), así
como variaciones en la intensidad de luz. La mayoría de los componentes
celulares son transparentes en la región del espectro visible, con excepción de
algunas estructuras que contienen pigmentos que facilitan su observación al
absorber en ciertas longitudes de onda y reflejar en otras dentro del mismo
espectro visible, propiedad que les confiere color. Sin embargo por si mismos
sus componentes presentan bajo contraste debido a que las células vivas,
contienen una alta proporción de agua lo cual afecta en la absorción de luz, aun
después de ser deshidratada. Esta situación se puede resolver a través de su
tinción. Los componentes celulares, absorben de manera preferencial ciertos
colorantes de acuerdo a sus afinidades químicas o moleculares. Sin embargo,
la mayoría de los colorantes pueden causar alteraciones en las células
vivientes, por lo que es recomendable una fijación previa a la tinción.
El microscopio facilita la observación de estructuras celulares teñidas o no
mediante el uso de un adecuado poder de resolución y de los diferentes
sistemas de iluminación; los más comunes son: campo claro o tipo Köhler,
contraste de fases, luz polarizada, contraste diferencial de interferencia, campo
oscuro y fluorescencia.
En el laboratorio se cuenta únicamente con microscopios con un sistema de
iluminación de campo claro, por lo que la intención fundamental de este
ejercicio es que el alumno realice una observación óptima al aprender a
aprovechar al máximo la luz consiguiendo un campo visual uniformemente
iluminado.
Objetivo
Que el alumno afiance su conocimiento sobre el microscopio óptico mediante
un repaso de las partes que lo integran así como del adecuado manejo del
mismo.
Materiales
Microscopio óptico de campo claro
1 ó 2 preparaciones semipermanentes
Procedimiento
1. Con la ayuda de su profesor identifique las siguientes partes del
microscopio:
a. botón o tornillo del interruptor de apagado/encendido, que en algunos
casos también funciona como control de brillo (reóstato)
b. control de brillo (reóstato).
c. condensador con la palanca del ajuste del diafragma.
d. tornillo para desplazamiento del condensador.
e. tornillo micrométrico y macrométrico para ajuste de la platina.
f. revolver con objetivos 4X, 10X, 40X y 100X.
g. oculares, aditamento para ajuste del enfoque y control de ajuste de
distancia interpupilar.
h. pinzas o en su caso porta muestras y sus respectivos tornillos para
desplazamiento vertical y lateral.
2. Instrucciones de uso del microscopio.
a. Antes de enchufar el microscopio, cerciórese de que el interruptor de
encendido/apagado esté en la posición de apagado y que el control de
intensidad luminosa este en la posición de mínima intensidad. Enchufe la
clavija a la toma de corriente.
b. Compruebe que el objetivo de menor aumento (4X o 10X) este en posición
hacia la platina.
c. Ponga la preparación en la platina y centre el espécimen.
d. Encender la luz y utilizar el reóstato para ajustar la intensidad luminosa de
modo que sea cómoda para sus ojos.
e. Levantar el condensador hasta tocar la preparación, con el tornillo
correspondiente.
f. Utilizar los tornillos micrométricos y macrométrico para enfocar el
espécimen.
g. Ajustar la distancia interpupilar donde se sienta cómodo y leer la medida
en escala interpupilar (anotar este número para la vez próxima).
h. Enfoque utilizando el ojo derecho (o con el ojo izquierdo si el control de
enfoque ocular se encuentre en el ocular derecho) utilizando el tornillo
macrométrico y el micrométrico. Ajuste el enfoque del ocular izquierdo.
Cierre el ojo derecho y centre el espécimen usando el anillo de enfoque en
el ocular izquierdo. Para evitar fatiga visual, ajustar los oculares y la
distancia interpupilar cuidadosamente, utilizando ambos ojos.
i. Para cambiar el aumento, de vuelta al revolver colocando el objetivo de
mayor amplificación que siga al que esté utilizando. En general los
microscopios son para focales, lo que significa que según se cambia de
objetivos el foco siempre estará casi listo. Utilice el tornillo micrométrico
solamente con el objetivo de mayor aumento (100X). El objetivo 100X es
el único que requiere aceite de inmersión.
j. Finalmente, se puede ajustar el contraste usando la palanca del ajuste del
diafragma del condensador. Note que el contraste aumenta mientras que
mueve la palanca a la derecha. No utilizar el diafragma del condensador
para ajustar el brillo, este ajuste se debe hacer con el reóstato.
k. Antes de quitar la preparación, gire suavemente el revólver al objetivo de
menor aumento.
l. Regrese el microscopio a su sitio de almacenaje después de:
m. Comprobar que se ha retirado la preparación y que el objetivo de menor
aumento está en su lugar.
n. Dar vuelta al control de brillo a la intensidad más baja y apagar la lámpara.
o. Desenchufar y doblar el cable eléctrico.
3. Respecto a la limpieza de los lentes, si utiliza el microscopio correctamente
normalmente no necesitará limpiar los objetivos. Si llegan a ensuciarse,
utilice solamente el papel para lentes para limpiarlos. Los oculares también
se pueden limpiar con el papel para lentes.
Bibliografía
1. López Ríos, G.F. 1998. Botánica. Anatomía, Morfofisiología y Diversidad.
Universidad Autónoma de Chapingo. Texcoco, Edo. De México. p. 13-14, 3032.
2. Roberts, A. 2006. Plant Structure and Development Lab Manual. Department
of Biological Sciences. University of Rhode Island. p. 6 (versión electrónica
consultada
en
abril
del
2007,
http://www.uri.edu/cels/bio/plant_anatomy/lab_manual.html,).
3. Sandoval Z., E. 2005. Técnicas aplicadas a los estudios de la anatomía
vegetal. Cuaderno del Instituto de Biología 38. Universidad Nacional
Autónoma de México. D.F. p. 169-170.
Reporte
Incluya los esquemas con los aumentos correspondientes del material
observado (la identidad de cada uno, está en la etiqueta de la preparación).
Preparación semipermanente1.
Preparación semipermanente 2.
____________________________
_____________________________
Aumento:_____________________
Aumento:______________________
Cuestionario
1. ¿Cuántos tipos de microscopios existen a la fecha? Mencione al menos 3
tipos diferentes.
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
2. ¿Cómo se calcula el aumento total al que se está observando un objeto en el
microscopio?
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
3. ¿Qué es la resolución? ¿De qué factores depende este valor?
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
4. ¿A mayor aumento, mayor resolución? Explique.
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
_____________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Bibliografía consultada
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________________________________________________________
PRÁCTICA 2. RAIZ
Introducción
La raíz es el órgano típico de anclaje de la planta al suelo y realiza la función de
absorción y conducción de agua y sales minerales. Las raíces se distinguen de
los tallos por la presencia de cofia y la organización del sistema vascular. En las
raíces con crecimiento primario se pueden encontrar tejidos como epidermis,
parénquima cortical, endodermos, periciclo, floema y xilema. Mientras que en
las raíces con crecimiento secundario se distinguen básicamente floema, xilema
y peridermis.
La forma de los sistemas radicales determina la capacidad de las plantas para
adquirir el agua y los nutrientes necesarios para su supervivencia, es decir, su
evolución y adaptación con respecto al sustrato. Entre los sistemas radicales
más comunes tenemos las raíces columnares o típicas, las ramificadas o
fibrosas, las suculentas napiformes y tuberiformes, con micorrizas (simbiosis
hongo-raíz), con nódulos bacterianos (simbiosis bacteria-raíz), haustorios de
plantas parásitas, etc.
Objetivo
El alumno observará e identificará los diferentes tejidos que se presentan en las
raíces y observar algunas de sus variantes morfológicas de este órgano
vegetal.
Materiales
Portas y Cubres
Navajas
Zanahoria
Alfalfa
Plántulas de mono y dicotiledóneas (fríjol y maíz) Otros materiales
Procedimiento
1. Haga cortes transversales de zanahoria, fríjol y maíz. Identifique y
esquematice los diferentes tejidos que las constituyen.
2. Observe directamente al microscopio estereoscópico la raíz de fríjol y maíz.
Establezca el tipo de sistema radical que poseen.
3. Observe las raíces de leguminosas silvestres y localice las zonas de
infección por bacterias fijadoras de nitrógeno.
4. Observe al microscopio raíces de diferentes plantas y establezca basándose
en su estructura, función y origen el tipo de raíz al que corresponde.
Bibliografía
López Ríos, G.F. 1998. Botánica. Anatomía, morfofisiología y diversidad.
Universidad Autónoma de Chapingo. Texcoco, Edo. De México. p. 87-107.
Harrington, H.D., Durrell, L.W. 1957. How to identify plants. The Swallow Press.
Inc. Chicago. p. 36 - 39.
Moreno, N.P. 1984. Glosario Botánico Ilustrado. C.E.C.S.A. México, D.F. p. 38 41.
Reporte
Esquema que representa el c. t.
Esquema que representa el c. t.
(corte transversal) de la raíz de
(corte transversal) de la raíz de fríjol
zanahoria
con crecimiento primario. ____X.
con
crecimiento
secundario. _____X.
Esquema que representa el c. t. (corte
Esquema que representa el nódulo
transversal) de la raíz de maíz con
de una leguminosa. _____X
crecimiento primario. _____X.
Lista del tipo de sistema radical de los ejemplares utilizados en esta práctica.
Zanahoria: ______________________________________________________
Frijol: ___________________________________________________________
Maíz: ___________________________________________________________
Cuestionario
1. Indique cuales son las diferencias entre raíz y radícula.
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
2. Haga un esquema de las posibles vías de movimiento de agua en la raíz.
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________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
3. Explique que es el periciclo y sus posibles funciones
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 3. TALLO
Introducción
El tallo es un órgano de crecimiento determinado, que está formado por
múltiples fitómeros, (cada fitómero está constituido por un nudo y un
entrenudo), que sirven como eje y sostén de las hojas fotosintéticas y
estructuras reproductoras por encima del sustrato, así incrementa tanto la
eficiencia fotosintética como eficiencia reproductiva. Además los tallos
transportan agua y minerales hacia las hojas vía el xilema y fotosintetatos
desde las hojas a las raíces vía floema.
Las características anatómicas distintivas de los tallos están íntimamente
relacionadas con la distribución de los tejidos conductores tanto al nivel de sus
entrenudos como de los nudos. En los entrenudos, se pueden observar los
llamados haces vasculares, que son paquetes discretos alrededor del tallo
formados tanto por xilema como por floema. Mientras que en los nudos (zona
de inserción de las hojas), los haces vasculares dejan el tallo para entrar en las
hojas, dejando huecos a los que se les denomina lagunas foliares, cuya
distribución y número es característico de cada grupo de plantas.
Las plantas son organismos plásticos que responden a las condiciones
ambientales de diversas formas, una de ellas es mediante adaptaciones
estructurales a nivel de tallo. Así las plantas xerófilas (adaptadas a ambientes
secos), tienden a presentar tallos suculentos con abundancia de tejido
conductor algunas tienen hojas muy pequeñas y los tallos que asumen la
actividad fotosintética; las plantas hidrófilas (propias de ambientes acuáticos y
riparios), suelen presentar abundancia de aerénquima; las plantas mesófilas
(adaptadas a condiciones medias), se pueden identificar fácilmente epidermis,
tejido fundamental (parénquima, colénquima, esclerénquima, córtex, médula),
tejido vascular (xilema, floema). Las halófitas, que están adaptadas a
condiciones de alta salinidad, comparten muchas de sus características con las
xerofitas y también suelen ser suculentas.
Objetivo
El alumno examinará Ia estructura general del tallo en diferentes tipos de
plantas y observar algunas de sus variantes morfológicas.
Materiales
Portas y Cubres
Navajas
Porciones de tallo de:
a) girasol (Helianthus annus L.)
b) maíz (Zea mays L.) u otra gramínea
c) calabaza (Cucurbita pepo L.)
d) Geranio (Pelargonium sp.)
e) coleo (Coleus sp.)
f) Ephedra (xerofita)
g) Salicornia (halófita)
h) Myriophyllum (hidrófita).
Microscopio óptico de campo claro
Lupa estereoscópica
Safranina
Procedimiento
1. Organización del tallo de una dicotiledónea
a. Haga una preparación fresca del corte transversal de tallo de Helianthus e
identifique los siguientes tejidos y regiones: epidermis, tejido fundamental
(parénquima, colénquima, esclerénquima, córtex, médula), tejido vascular
(xilema, floema).
2. Haces vasculares
a. Los haces vasculares están formados tanto por xilema como por floema,
pero su arreglo es diferente dependiendo del tipo de planta.
b. Identifique y dibuje un haz vascular (indicando donde se encuentra el
metaxilema, protoxilema, floema, fibras y procambium) de las siguientes
plantas:
i. Helianthus (haz colateral abierto)
ii. Zea mays (haz colateral cerrado)
iii. Cucurbita (haz bicolateral)
3. Anatomía nodal
a. Para analizar la estructura del nudo, haga cortes seriados de tallo de
Pelargonium, Coleus y alguna gramínea. Analice los cortes e identifique:
las lagunas foliares, trazas foliares, haces axiales y filotaxia.
4. Adaptaciones ambientales de los tallos.
a. Haga preparaciones de tallos de las siguientes plantas: Ephedra (xerofita),
Salicornia (halofita) y Myriophyllum (hidrófita).
Bibliografía
Harrington, H.D., Durrell, L.W. 1957. How to identify plants. The Swallow Press.
Inc. Chicago. p. 36 – 39.
Moreno, N.P. 1984. Glosario Botánico Ilustrado. C.E.C.S.A. México, D.F. p. 38 –
41.
Roberts, A. 2006. Plant Structure and Development Lab Manual. Department
of Biological Sciences. University of Rhode I sland. p. 28-29.
Cuestionario
1. ¿Qué diferencia observó entre el haz colateral abierto y el haz colateral
cerrado?
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_______________________________________________________________
_______________________________________________________________
_______________________________________________________________
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2. ¿Qué es una laguna foliar?
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_______________________________________________________________
_______________________________________________________________
________________________________________________________
3. ¿Cómo se explica la similitud entre los tallos de las halófitas y las xerófitas?
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________________________________________________________________
________________________________________________________________
Conclusiones
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 4. HOJA
Introducción
Las hojas son de los órganos más diversos de las plantas, gran variabilidad y
plasticidad en tamaño, indumento, filotaxia y distribución de estomas, lo que les
permite adaptarse y sobrevivir a una gran cantidad de ambientes. Esto se
refleja en una amplia gama de formas e incluso adaptaciones.
Las hojas nomófilas o foliosas, son el principal órgano fotosintetizador y de
intercambio gaseoso. En muchos grupos de plantas las hojas constan de una
lámina simple aplanada dorsiventralmente; en algunas plantas además se
presenta peciolo que une a la lámina con el tallo. La lámina de las hojas
peciololadas puede presentar diversos grados de división: desde las simples,
lobadas, pinnatífidas, pinnatisectas y pinnadas (o compuestas) incluso en varios
órdenes. En las hojas compuestas la continuación del peciolo, hacia el ápice, se
conoce como raquis, mientras que los segmento laminares reciben el nombre
de foliolos o pinnas.
Generalmente cada especie de plantas presenta todas sus hojas iguales
(isofilia), sin embargo, existen casos de plantas con tallos postrados en los que
pueden presentarse dos o más tipos de hojas (anisofilia), como en algunas
selaginelas. Sucede también, que puede haber diferencias en la forma y/o
tamaño de acuerdo a su fertilidad (dimorfismo sexual), tal como ocurre en
muchos helechos.
Por la disposición (filotaxia) de las hojas en el tallo se presentan tres patrones
principales: (1) alternas, cuando hay una hoja por nudo, pueden estar en forma
de hélice o dísticas; (2) opuestas, cuando son dos hojas por nudo, estas
pueden ser decusadas o formar una hélice; y (3) verticiladas, cuando más de
dos hojas salen de un mismo nudo.
Desde el punto de vista anatómico, la lámina de las hojas presenta tres
regiones: epidermis abaxial y adaxial, mesófilo o clorénquima y el tejido
vascular que está inmerso en el mesófilo. En particular, la características del
clorénquima (o mesófilo), varían entre los diferentes grupos de plantas, así por
ejemplo puede ser unifacial (no se distingue superficie abaxial de la adaxial) o
bifacial.
El peciolo tiene una anatomía semejante a la del tallo, presentando una
epidermis que lo rodea y una región cortical-mesofílica, donde se encuentran
los haces vasculares. Por el número de haces vasculares, los peciolos se
clasifican en uni o plurifasciculados. La disposición de los paquetes en sección
transversal generalmente es zigomorfa. En algunos casos cada haz vascular
foliar está rodeado por una vaina de tipo endodérmico, a este tipo se le
denomina esquizomeristélico.
Objetivo
Que el alumno sea capaz de evidenciar y analizar algo de la diversidad
anatómica y morfológica de las hojas nomófilas o foliosas.
Materiales
Hojas de las siguientes plantas: y Además de una o dos hojas foliosas más a
elección de cada estudiante
Portas y Cubres
Navajas
Hojas de:
a) Solanum eleaegnifolium (trompillo) o Sisymbrium irio (mostacilla) u otra
dicotiledónea
b) Cynodon dactylon (pata de gallo) o de Zea mays L. (maíz)
c) Bromus (pasto de espiga similar a la avena)
d) Pinus sp. (pino)
e) Al menos otra hoja foliosa más
Microscopio óptico de campo claro
Lupa estereoscópica
Safranina
Procedimiento
Anatomía de las hojas
1. Anatomía foliar de dicotiledóneas, monocotiledóneas y coníferas.
a. Las hojas de las dicotiledóneas tienen típicamente nerviación reticulada
que puede ser simple o compuesta. Además de que suelen ser bifaciales.
Examine un corte transversal de una hoja de Solanum eleaegnifolium e
identifique: vena media, epidermis superior e inferior, parénquima
empalizada, parénquima esponjoso, tejido vascular (xilema y floema) y
vaina.
b. Las hojas de las plantas monocotiledóneas se caracterizan por presentar
venación paralela y la base de las hojas envolventes. Examine las hojas
de varias gramíneas e identifique la vaina, lígula y lámina. Haga una
preparación de un corte transversal de la hoja de Cynodon dactylon e
identifique los tejidos que ya identifico previamente en la hoja de la
dicotiledónea.
c. Compare la anatomía de la hoja de C. dactylon (C4) con la de Bromus sp.
(C3).
d. Las hojas de la mayoría de las coníferas (gimnospermas) son perennes y
por lo tanto resistentes y coriáceas. Examine las hojas de pino y haga un
corte transversal, luego en el corte trate de observar y distinguir los tejidos
y el arreglo de los mismos. Las hojas de pino muestran diversas
adaptaciones entre las que se incluyen: (1) estomas hundidos, (2) simetría
isobilateral, (3) una endodermis y (4) conductos resiníferos. Al identificar
las adaptaciones piense en cada una de ellas trate de explicar cómo estas
les ayudan a estas plantas a soportar las condiciones de frío y falta de agua
durante el invierno.
2. Morfología de las hojas
a. Utilizando las hojas que trajo, realice la descripción de cada una
indicando:
b. Filo taxia (posición en el tallo o la rama)
c. Si es hoja entera, compuesta (tipo) o modificada.
d. Presencia o ausencia de pecíolo
e. Presencia o ausencia de estipulas
f. Forma general
g. Si es compuesta, incluir forma del foliolo o filialillo).
h. Forma de la base
i. Forma del ápice
j. Margen
Bibliografía
López Ríos, G.F. 1998. Botánica. Anatomía, morfo fisiología y diversidad.
Universidad Autónoma de Capingo. Texcoco, Edo. De México. p. 149-184.
Tejero-Díez, J.D., Granillo-Velázquez, M. P. 1998. Plantea. Introducción al
estudio de las plantas con embrión. Universidad Nacional Autónoma de México.
Campus Estacara. 2da. Edición. México D.F. p. 93-94.
Roberts, A. 2006. Plan Estructure and Development Lab Manual. Department of
Biological Sciences. University of Rhode Island. p. 30-31.
Reporte
1. Anatomía de las hojas. Indique para cada esquema: vena media, epidermis
superior e inferior, estomas, clorénquima (tipo), tejido vascular (xilema y
floema), vaina y presencia y tipo de estructuras anexas o secretoras.
Esquema que representa el c. t. de
una hoja de S. eleaegnifolium.
Esquema que representa el c. t. de
una hoja de Cynodon dactylon (C4).
_____X.
_______X
Esquema que representa el c. t. de
una hoja de Bromus sp. (C3).
Esquema que representa el c. t. de
hoja de pino. ______X
_______X
Esquema que representa el c. t. de
hoja de Taxus. _____X.
2. Morfología de las hojas
Descripción y esquema de 5 hojas foliosas:
Cuestionario
1. ¿En qué hojas pudo distinguir la superficie abaxial de la adaxial, al nivel del
corte anatómico? Explique.
________________________________________________________________
2.- En las hojas de monocotiledóneas que examinó, ¿es evidente la diferencia
entre el parénquima en empalizada y el parénquima esponjoso?
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________________________________________________________________
________________________________________________________________
3. ¿Cómo son las células de la vaina en estos materiales?
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
4. ¿Cuál es la función de las células agrandadas de la vaina, en las plantas
C4?
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
5. ¿Qué relación tienen las características de las hojas de pino con su
tolerancia a condiciones de frío invernal?
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________
________________________________________________________________
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Bibliografía consultada
________________________________________________________________
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PRÁCTICA 5. FLOR
Introducción
La flor es un órgano de las angiospermas que proviene del meristemo apical, en
el cual se diferencian un conjunto de hojas modificadas y adaptadas para la
reproducción (sépalos, pétalos, estambres y carpelos). Las hojas florales
carecen de yemas axilares y los entrenudos del eje, sobre el cual están
insertas, permanecen muy cortos, por lo que en conjunto se observan como
verticilos de hojas. El receptáculo, es el extremo modificado del tallo que
sostiene a todos los verticilos florales.
El estambre, constituye el progenitor masculino o androceo y está formado por
un filamento y una antera, en cuyo interior se producen los granos de polen o
gametofitos masculinos o microgametofitos.
El pistilo está formado por uno o más carpelos y en él se distinguen,
generalmente, tres estructuras: ovario, estilo y estigma. El o los carpelos, en su
conjunto se conocen como gineceo o progenitor femenino. En el interior del
ovario se producen el o los óvulos que constituyen el megaesporangio con sus
cubiertas protectoras. Este carácter es distintivo para las angiospermas. El
extremo receptivo del carpelo, el estigma, posibilita la germinación del grano de
polen y el estilo soporta el desarrollo del tubo polínico, ambos procesos son
indispensables para la fecundación.
De las estructuras de las angiospermas, la flor es la que es menos alterada por
cambios ambientales. A través de sus formas, colores y aromas, las flores han
coevolucionado con sus polinizadores y son la base de estudios de taxonomía y
sistemática.
Objetivo
Que el alumno reconozca las estructuras responsables de la reproducción
sexual en angiospermas y sea capaz de distinguir los diferentes verticilos
florales.
Materiales
Flores traídas por los alumnos
Lupa estereoscópica
Navajas
Portaobjetos
Cubreobjetos
Cajas de Petri
Frasco Gotero
Pinzas de punta fina
Agujas de disección
Apuntes
Procedimiento
Utilizando las flores que trajo, separe cada uno de los verticilos que componen
a cada una de las flores e identifique cada una de las siguientes condiciones:
Simetría: (*)actinomorfa o radial; (¡) o zigomorfa o bilateral
Verticilos florales
1. Flor completa
2. Flor incompleta
3. Sexo
a. Flor masculina ♂
b. Flor femenina ♀
c. Flor hermafrodita
d. Flor neutral 0
4. Sexualidad
a. Flor perfecta (con androceo y gineceo)
b. Flor imperfecta (con un solo sexo)
5. Flor con perianto
a. Cáliz: Kn indica el número de sépalos
i. Dialisépalo o polisépalo (sépalos libres Kn)
ii. Gamosépalo o sinsépalo (sépalos fusionados K(n))
iii. Modificaciones (calicillo, vilano, petaloide, etc.)
b. Corola: Cn indica el número de pétalos
i. Dialipétala o polipétala (pétalos libres Cn)
ii. Gamopétala o simpétala (pétalos fusionados C(n))
iii. Modificaciones (sepaloide, forma, etc.)
6. Flor con perigonio
a. Tépalos: Pn indica el número de tépalos
i. Dialitépala o politépala (tépalos libres Pn)
ii. Gamotépala o simtépala (tépalos fusionados P(n))
7. Características generales de la flor (tamaño, color, olor, forma, etc.)
8. Analice las características del androceo (estambres)
a. Tamaño (homodínamos, didínamos, heterodínamos)
b. Fusión
i. De filamentos (monadelfos o didelfos)
ii. De anteras (singenésicos)
iii. Al pistilo ( ginandros An o Gn)
iv. En columna (A(n))
c. Antera
i. Inserción (basifija, dorsifija, subasifíja o versátil)
ii. Tecas (monoteca o diteca)
iii. Orientación (introrsas o extrorsas)
iv. Fértiles o estériles (estaminodios)
9. Analice las características del gineceo
a. Número de hojas carpelares o carpelos
i. Apocárpico (varios pistilos Gn)
ii. Sincárpico (un solo pistilo simple o compuesto G(n))
iii. Monocarpelar, bicarpelar, tricarpelar, etc.
iv. Unilocular, bilocular, trilocular, etc.
v. Placentación axilar (p.ax.), parietal (p.p.), lateral (p.l.), central (p.c.),
basal (p.b.), pendular (p.pe.)
vi. Número de óvulos (monospermo, polispermo)
b. Posición
i. Hipógino de ovario súpero (perianto inferior al ovario)
ii. Epígeno de ovario ínfero (perianto superior al ovario)
iii. Semi-ínfero (si el perianto rodea al ovario)
Bibliografía
López Ríos, G.F. 1998. Botánica. Anatomía, Morfofisiología y Diversidad.
Universidad Autónoma de Chapingo. Texcoco, Edo. De México. p. 185-241.
López Curto, M.L., Márquez Guzmán, J. y Murguía Sánchez, G. 1998. Técnicas
para el estudio del desarrollo en angiospermas. Facultad de Ciencias. UNAM. p.
9-11,
Reporte
Resuma los datos de cada flor analizada (al menos 2 por persona) como una
fórmula floral, con varios ejemplares, agrupando con paréntesis las estructuras
que se fusionen:
Simetría,
*¡
sexo,
♂♀
perigonio,
Pn
cáliz,
Kn
corola,
Cn
androceo, gineceo.
An
Gn
Fórmula floral I
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Fórmula floral II
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Cuestionario
1. ¿Cuáles son las diferencias entre flores completas e incompletas, y entre
flores perfectas e imperfectas? De un ejemplo de cada una (cuatro ejemplos
en consecuencia).
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
2. ¿Cuáles son las características básicas que debe tener una estructura para
ser considerada una flor?
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
Conclusiones
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
________________________________________________________________
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Bibliografía consultada
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PRÁCTICA 6. COLECTA DE EJEMPLARES BOTÁNICOS
(ACTIVIDAD DE CAMPO EN 2 SESIONES)
INTRODUCCION
El conocimiento y conservación de los recursos biológicos de México son de
interés relevante porque representan sus principales bienes y servicios. La
riqueza florística de México es muy elevada; se estima que el número probable
de especies de plantas oscila entre 25,000 y 30,000, de las cuales cerca del
60% son endémicas (Rzedowski, 1998). La alarmante y creciente modificación
de las comunidades naturales hace necesario un inventario biológico lo más
completo posible, a corto plazo (Dirzo y Raven, 1994), y la taxonomía vegetal
es fundamental en la catalogación de esta biodiversidad (Chiang, 1989; Dávila y
Sosa, 1994). Desafortunadamente, como ocurre con muchos países
subdesarrollados, un conocimiento confiable de su riqueza biológica está lejos
de ser asequible (Villaseñor, 2003).
La palabra herbario originalmente se refería a un libro de plantas medicinales,
pero en la actualidad denota una entidad que maneja una colección de
ejemplares vegetales en una secuencia de clasificación aceptada, que está
disponible para su consulta (López y Rosas, 2002). Los ejemplares contenidos
en los herbarios son imprescindibles para la realización de estudios florísticos,
ecológicos, fito-geográficos y sistemáticos. Además, como colección de plantas
secas, identificadas y ordenadas, éstas son por si mismas registros
permanentes de la biodiversidad (Quesada et al., 1999).
La exploración, la recolecta y la herborización de ejemplares botánicos, son
indispensables en el proceso de conformación de un herbario. Y al constituirse
un herbario: Se conocerán las plantas locales, regionales, nacionales e
internacionales, es posible conservar ejemplares de las plantas endémicas y en
peligro de extinción y, se favorece la educación formal e informalmente a las
personas sobre la importancia y la diversidad de las plantas.
OBJETIVOS:
1. Que el alumno conozca el procedimiento general de la recolecta de plantas
así como el registro de información en campo.
2. Que el alumno lleva a la práctica uno de los procedimientos para la
realización de un inventario florístico.
MATERIAL
Cuando nos disponemos a realizar colecta de muestras vegetales, es necesario
contar con los siguientes materiales:













GPS
Prensa de campo (rejillas de madera de aprox. 30x45cm)
Tijeras de podar.
Etiquetas de colgar.
Navaja o cuchillo.
Pala de jardinero.
Bolsas plásticas grandes y medianas
Papel periódico, entre el cual se colocarán las muestras.
Libreta de campo.
Lápiz, plumón indeleble.
Cinta métrica.
Podadora.
Fichas de colecta. Son etiquetas que se anexan a cada muestra; en las
cuales se anota el número ha asignado a la misma y otras informaciones
o datos pertinentes (No confundir con la ficha de herbario).
 Sobres de papel para guardar pequeños frutos, semillas y/o flores
pequeñas.
Si se dispone de ellos, se pueden llevar también:
 Grabadora de mano para registro de observaciones.
 Cámara de fotos, para tomar fotografías del ambiente en que se
encuentran las plantas, asociación vegetal a la cual pertenecen; etc.
PROCEDIMIENTO.
1. Localice una planta con hojas maduras y con flores y/o frutos; no colecte
individuos juveniles ni adultos infértiles, será difícil su identificación.
Las partes carnosas o gruesas puede cortarlas longitudinal o transversalmente.
Colectar una rama con al menos tres hojas, para apreciar la filotaxia.
En el caso de que la muestra (en plantas trepadoras o enredaderas, por
ejemplo) supere en tamaño a la hoja, se debe plegar en zig-zag.
En el caso de que sea un helecho:
Coléctelo asegurándose que tenga esporangios (puede buscarlos en el envés
de la fronda) y rizoma.
Recolectar ejemplares con frondes vegetativas y reproductivas (si fueran
dimórficas), raíz y tallo.
En aquellos ejemplares que por su tamaño no pueden recolectarse completos,
incorporar una pequeña porción de tallo a las frondes recolectadas.
Si es una hierba:
Coléctela completa, incluyendo la raíz (sin tierra);
Colectar ejemplares con raíz, tallo, hojas, flores y frutos.
Si las flores son unisexuales, asegurarse de colectar material de ambos sexos
indicando si están en una misma o en diferentes plantas.
Tener sumo cuidado con la parte subterránea del ejemplar ya que puede contar
con tubérculos, bulbos, rizomas, raíces gemíferas, etc. Cavar cuidadosamente
extrayendo un pan de tierra con la parte subterránea. Desmenuzar suavemente
la tierra restante hasta que quede descubierto el sistema subterráneo del
ejemplar.
Registrar el color de flores y órganos vegetativos, las variaciones morfológicas
entre individuos de una población (si existieran) y toda característica que no
podrá ser apreciada en el material posteriormente disecado.
Si se trata de plantas pequeñas, colectar varios individuos.
En árboles y arbustos:
Cortar ramas con flores y frutos, si es posible del mismo individuo. Si el árbol es
muy alto se utiliza la tijera telescópica (podadora) para recolectar sus ramas. De
lo contrario, puede utilizarse un hilo de nailon o tanza con un peso atado al
extremo a modo de boleadora.
Corte una rama no mayor de 40 x 25 cm que incluya hojas, flores y/o frutos (no
colectar ejemplares de más de 42 cm)
Si las ramas estériles muestran diferencias con aquellas floríferas, también
deben ser recolectadas.
Si las flores son unisexuales, asegurarse de recolectar material de ambos sexos
e identificar si la planta es dioica, diclino-monoica o polígama.
Si se observan diferentes hojas en una misma planta (heterofilia), colectar
ramas con cada tipo.
Registrar porte, altura aproximada, diámetro de tronco, color de la corteza,
forma de la copa, si es perenne o caducifolio, etc.
Registrar el color de flores y órganos vegetativos, las variaciones morfológicas
entre individuos de una población (si existieran) y toda característica que no
podrá ser apreciada en el material posteriormente disecado.
Las porciones u órganos duros pueden ser recolectados en bolsas para su
posterior acondicionamiento antes del secado.
Cuando el material es abundante, colectar muestras duplicadas (previendo que
algunas puedan estropearse durante el traslado o en el proceso de
herborización). Si recolecta un duplicado (o varios) que deberá tener el mismo
número de colecta.
Los frutos y semillas se colectan en sobres, o en su defecto, en bolsas plásticas
PRÁCTICA No. 7 DETERMINACIÓN TAXONÓMICA
(LABORATORIO EN 2 SESIONES)
INTRODUCCION
La taxonomía (del griego ταξις, taxis, "ordenamiento", y νομος, nomos, "norma"
o "regla") es, en su sentido más general, la ciencia de la clasificación. La
Taxonomía Biológica es una subdisciplina de la Biología Sistemática, que
estudia las relaciones de parentesco entre los organismos y su historia
evolutiva. Más allá de la escuela que la defina, el fin último de la Taxonomía es
organizar al árbol filogenético en un sistema de clasificación.
En este proceso, a un taxón o grupo de organismos asociados se les asigna
categoría taxonómica (ya sea, una clase, un orden, un género, una especie,
etc.), al que se otorgó un nombre latinizado. Ese taxón se describe, se asocia a
un ejemplar "tipo", y se publica en una revista científica. Cuando se hace todo
esto, el taxón tiene un ‖nombre correcto‖ aceptado por toda la comunidad
científica. La Nomenclatura es la subdisciplina que se ocupa de reglamentar
estos pasos.
La Determinación o identificación es la especialidad, dentro de la taxonomía,
que se ocupa de los principios de elaboración de las claves dicotómicas y otros
instrumentos dirigidos al mismo fin. Básicamente, la determinación o
identificación ubica a un organismo desconocido en un taxón conocido del
sistema de clasificación dado a partir de sus caracteres diagnósticos.
Los caracteres que se utilizan para la determinación botánica son muy variables
y dependerá del grupo de plantas que se revise (helechos, gimnospermas o
angiospermas), de la categoría taxonómica (clase, orden, familia, género, etc.)
o del grupo de especies de que se trate. Antes de iniciar es importante tener
varios especímenes de una especie: casi todas las clasificaciones y claves
están basados en las partes sexuales de la planta (flores, frutos); una de las
principales razones es que las partes florales tienden a ser más estables a
través del tiempo y bajo condiciones ambientales, que las partes vegetativas,
además de que reflejan mejor las relaciones entre las plantas (Bowles, 2004).
OBJETIVOS:
1. Que el alumno adquiera o repase las herramientas metodológicas y prácticas
para la determinación de plantas vasculares.
2. Que el alumno reconozca los caracteres o cualidades de importancia taxonómica
(caracteres diagnóstico) en los distintos grupos de plantas vasculares.
MATERIAL
 Ejemplares botánicos recolectados en la práctica de campo (práctica No. 1)
 Literatura especializada (claves)
 Glosario botánico
 Microscopio estereoscópico
 Microscopio compuesto
 Regla
 Agua jabonosa
 Portaobjetos
 Cubreobjetos
 Agujas
 Pinzas de disección
PROCEDIMIENTO.
1. De cada uno de los ejemplares que se recolectaron en la práctica de campo,
debe revisarse con cuidado para reconocer las estructuras morfológicas que son de
utilidad en la determinación taxonómica.
2. Antes de iniciar con el proceso de determinación deberá de elegirse
cuidadosamente la clave a utilizar para efectuar el proceso de manera exitosa
3. Las claves de determinación proporcionadas para realizar esta actividad son de
tipo dicotómico, por lo que se recomienda leer con cuidado las dos opciones antes
de elegir la correcta.
4. Debe considerarse que es necesaria la revisión minuciosa del ejemplar, tanto a
simple vista, con microscopio estereoscópico o incluso con microscopio compuesto,
para tomar una decisión adecuada en la determinación
5. Además de la recomendación del párrafo anterior, se sugiere lo siguiente
(Madrigal-Sánchez, 1986):
Observar con cuidado la muestra antes de iniciar la identificación.
Leer siempre las dos alternativas.
Asegurarse de que se ha entendido el significado de los términos involucrados.
Cuando se citen medidas, usar una regla.
Cuando se trate de objetos pequeños, utilizar una lente de suficiente aumento,
para observar el rasgo o estructura que se desee.
No base su conclusión en una sola observación, sino en el promedio a través del
estudio de varias partes u organismos.
Si las alternativas que se comparan no son claras, o si no se tiene la posibilidad de
escoger la alternativa porque no hay información suficiente.
RESULTADOS.
I. Se entregará por equipo al final del curso, una lista de las especies determinadas
taxonómicamente, ordenados por: Familia, género y especie.
II. Se entregará una lista de referencias bibliográficas utilizadas correctamente
III. Se entrega de manera individual: cuestionario con respuestas y conclusiones de
la práctica.
CUESTIONARIO.
1. ¿Qué diferencia hay entre taxonomía vegetal, sistemática vegetal y botánica
sistemática?
2. ¿Qué es una fórmula floral? ¿El conocimiento de la fórmula floral tiene aplicación
en este proceso?
3. ¿Cuáles son las partes de un nombre científico?
4. Si tuvieras que agregar dos recomendaciones para el proceso de determinación
botánica, ¿cuáles serían? Redáctalas.
CONCLUSIONES:
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_________________________________________________________________
_________________________________________________________________
_________________________________________________________________
_________________________________________________________________
_________________________________________________________________
_________________________________________________________________
PRÁCTICA 8.- IDENTIFICACIÓN
AGROECOSISTEMAS
DE
ARVENSES
Y
MALEZAS
EN
INTRODUCCIÓN
Imagínate que un campesino ha realizado la siembra de fríjol en condiciones de
temporal, y luego de pasados cuarenta días visitó la parcela y lejos de encontrar
fríjol, encontró sólo una gran diversidad de hierbas que ha cubierto totalmente al
cultivo. Considerando que ya no podrá realizar la escarda y el deshierbe manual
porque es incosteable, opta por abandonar el cultivo.
En otro momento, otro productor decide pastorear un pequeño hato de borregos
en cierta área y, a las pocas horas, mitad de los animales están tirados en el
suelo con panza casi a reventar y finalmente mueren por timpanismo.
Por el contrario, el vecino de este productor, corta hierbas diversas para
engordar borregos ahorrando y ganando unos buenos pesos. En parcelas
contiguas, una familia recolecta quintoniles, quelite, epazote, malva y quelite
cenizo, que serán comercializados en el mercado local, no sin antes apartar
algunos de ellos como alimento.
Por todo lo anterior, podemos señalar que la naturaleza a través de una
evolución, ha creado numerosas y diversas formas de plantas con
características y propiedades diferentes. En la actualidad, y como consecuencia
de un desarrollo histórico-social, el hombre utiliza gran diversidad de plantas
para diversos fines.
Desde los inicios de la agricultura, las plantas sometidas al cultivo han convivido
con una gran cantidad de hierbas que aparecen y siempre están presentes en
los espacios agrícolas modificados por el hombre, y ha sido este mismo, el que
ha ideado diversas estrategias para evitar la competencia de estos con los
cultivos. De esta manera, en Mesoamérica los diversos grupos culturales
crearon instrumentos de madera como la coa y la azada de piedra, que
sirvieron entre otras cosas, para mantener baja las poblaciones de hierbas
asociadas al cultivo. Muchas de las plantas presentes en las áreas cultivadas,
fueron utilizadas como alimento humano, como medicina, en rituales mágicoreligiosos, entre otros usos.
Por lo anterior, podemos concluir que cualquier definición que se haga sobre
una planta que causa algún perjuicio, será un concepto antropocéntrico.
Una de las definiciones de maleza es aquella que dice que una maleza es una
planta que crece donde no se le desea o la que indica que una maleza es
una planta fuera de lugar. Esta definición no distingue entre aquellas plantas
que exhiben características de verdaderas malas hierbas, de las que sólo
ocasionalmente causan daños.
La concepción agroecológica de la agricultura considera a estas plantas como
arvenses, buenazas, plantas toleradas y otros más, pero no como “malezas.
El concepto de arvense comprende aquellas plantas que:
a) Crecen en lugares donde el hombre practica la agricultura y regularmente
están asociados a los cultivos
b) El hombre las utiliza para diversos fines y no son consideradas como plantas
indeseables.
Es necesario, conocer aquellas plantas en los agroecosistemas y función o
funciones que cumplen en la naturaleza, antes de juzgarlas como plantas
indeseables.
OBJETIVOS
1. Identificar las principales características morfológicas de las arvenses
presentes en los agroecosistemas.
2. Caracterizar los mecanismos de dispersión de las arvenses, tanto naturales
como los influenciados por la actividad humana.
3. Conocer las principales arvenses, así como el papel que juegan en los
agroecosistemas.
PROCEDIMIENTO:
1.- El sitio donde se realizará la práctica podrá ser cualquier campo de cultivo
que presente gran diversidad de arvenses en los espacios cultivados o en la
periferia de éstos.
2.- El maestro organizará al grupo en equipos.
3.- Cada equipo llevará el material necesario de la práctica, previamente
asignado por el profesor así como el instructivo correspondientes.
4.- Cada equipo se distribuirá en la parcela o espació definido para que con la
guía de campo elaborada para tal fin, identifique y caracterice cada una de las
arvenses del sitio.
5.- Las características de cada arvense se anotarán en el cuadro anexo.
6.- Si no hay guía de campo, el profesor del curso indicara las características
más generales de cada una de las arvenses y malezas encontradas en el
campo.
IV. MATERIALES
Por equipo:
• Formato de práctica
‘Cuaderno de trabajo
• Papel periódico
Lápiz
• Láminas de cartón corrugado
. Navaja de campo
• Regla de un metro o flexómetro de 3 metros
. Prensa de madera
• Pala recta
. Lupa
PRESENTACIÓN DEL INFORME
Cada equipo entregará el informe de la práctica en digital, el cual deberá
contener la información detallada de cada uno de los puntos de la metodología
y de las actividades realizados así como el cuestionario y cuadro anexo con los
datos de campo.
Cada equipo deberá entregar la colecta de plantas, montada en hojas de
cartulina blanca con la etiqueta de identificación para cada especie.
VI. CUESTIONARIO
1. ¿Qué especie de arvenses se encontraron?
2. ¿Cuáles especies son las más predominantes?
3. ¿Cuáles arvenses presentan mayor número de semillas?
4. ¿Qué tipo de hoja predomina en las especies observadas?
5. ¿Qué habito de crecimiento presentaron?
6. ¿Qué es el periodo crítico de competencia?
7. ¿Qué importancia tiene conocer las características de las arvenses?
8. ¿Qué especies de arvenses se presentan en su región de origen y cómo son
utilizadas?
9. ¿Qué características de los arvenses las hacen ser competidoras con el
cultivo?
10. ¿Formule un conclusión de la práctica realizada.
BIBLIOGRAFÍA
Altieri. 1996. Ecología y manejo de malezas en “Agroecología y agricultura
sostenible”. CUADES. La habana, Cuba.
Domínguez, V.J.L. 2000. Guía de estudios de la biología de malezas.
Departamento de Parasitología Agrícola, UACh, Chapingo, Méx.
Medina,
P.J. L. y Domínguez, V.J.L. 1994. Manual de prácticas: biología y ecología de
las malezas. UACh. Chapingo, Méx,
Restrepo, R. J. 1996. Agricultura orgánica. Primer curso taller de capacitación
en desarrollo sostenible: Agricultura orgánica. UACh. Chapingo, Méx.
Klingman, G.C. y Haston, F. M. 1980. Estudios de plantas nocivas, principio y
prácticas. Limusa. México
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