Curso Teórico Práctico Transformación genética: Nuevos conceptos y herramientas Curso dirigido por Rodrigo Caroca, PhD. Instituto Max Planck, Alemania Agenda Programada Quito, 29 junio al 5 julio 2015 Lunes 29 de junio 8:30- 9:00 Inscripción de participantes 9:00- 13:00 Transformación nuclear I 9:00 – 9:15 Introducción al curso. Presentación de objetivos y actividades 9:15-11:00 -­‐ Utilidad de la transformación genética de plantas (Sobreexpresión y silenciamiento de genes, knock out, identificación de promotores, localización sub-celular de proteínas). -­‐ Transformación genética mediada por Agrobacterium tumefaciens: historia, mecanismos moleculares, protocolos de transformación. 11:00-11:20 11:20-13:00 Coffee break -­‐ Diseño de vectores para transformación con Agrobacterium. Descripción de distintos tipos de vectores, selección de promotores (constitutivos, tejido-específicos, inducibles), optimización de secuencias, clonación molecular. -­‐ Vectores binarios compatibles con el sistema de clonación Gateway. Cómo funciona y vectores disponibles. 13:00-14:30 Almuerzo 14:30- 17:00 Práctica I Diseño y construcción de vectores para transformación genética de plantas Temas Bioinformática y presentación de los pasos previos a la transformación genética de plantas Actividades -­‐ Uso de herramientas bioinformáticas para análisis de secuencias. -­‐ Identificación de sitios de restricción y recombinación homóloga, clonamiento in silico. -­‐ Diferentes tipos de clonamiento molecular. Martes 30 de junio 9:00- 13:00 Transformación nuclear II 9:00-11:00 Transformación por biobalística: -­‐ Fundamentos teóricos y mecanismos moleculares -­‐ Diseño de vectores para transformación con biobalística -­‐ Procedimientos para llevar a cabo transformación Transformación múltiple: -­‐ Modificación de varios caracteres en un sólo evento de transformación Ventajas, desventajas respecto a Agrobacterium tumefaciens 11:00-11:20 11:20-13:00 Actividad 1 13:00-14:30 Coffee break Transformación transiente: -­‐ Utilidad, métodos de transformación, ventajas y desventajas respecto a la transformación estable Magnifection, una herramienta para obtener niveles muy elevados de proteínas recombinantes en plantas Definir un mini-proyecto para generar una planta transgénica. Objetivo, especie, método de transformación, etc. Almuerzo 14:30- 17:00 Práctica II Introducción estable y transitoria de ADN en células vegetales Temas Transformación genética, agroinflitración, Agrobacterium, gen reportero GUS Actividades -­‐ Llevar a cabo transformación de explantes de tomate de árbol. -­‐ Agroinfiltración de hojas de tabaco con un vector que contenga el gen GUS. Miércoles 1 de julio 9:00- 13:00 Transformación genética de plastidios 9:00-11:00 -­‐ El genoma del cloroplasto y expresión génica dentro de este organelo. -­‐ Diseño de vectores para transformación de cloroplastos (regiones homólogas, regiones regulatorias de la expresión génica, optimización de codones). 11:00-11:20 Coffee break 11:20-13:00 -­‐ Métodos de transformación del genoma del cloroplasto. -­‐ Ventajas y desventajas respecto a transformación nuclear. Actividad 2 Avanzar en los proyectos de generación de plantas transgénicas. 13:00-14:30 Almuerzo 14:30- 17:00 Práctica III Detección de transgenes expresados en plantas genéticamente modificadas Temas Identificación de plantas transgénicas, transcripción reversa, PCR en tiempo real, análisis de expresión del gen GUS. Actividades -­‐ Usando ADN genómico extraído de tomate de árbol como molde, se llevará a cabo una PCR convencional para detectar si el material analizado está modificado genéticamente. -­‐ Usando mRNA previamente aislado se realizará una reacción de transcripción reversa con primers poliT. El cDNA sintetizado se usará como molde para llevar a cabo una reacción de qPCR para detección de la expresión del gen GUS. Jueves 2 de julio 9:00- 13:00 Plantas transgénicas y su impacto en la agricultura 9:00-11:00 -­‐ Ejemplos concretos de plantas transgénicas disponibles comercialmente. -­‐ Impacto comercial y ambiental. -­‐ Eliminación de los marcadores de selección y estrategias para evitar dispersión de transgenes. 11:00-11:20 Coffee break 11:20-13:00 Finalización de los proyectos de transformación y discusión de los Actividad 3 contenidos del curso. 13:00-14:30 Almuerzo 14:30- 17:00 Práctica IV Ensayo fluorométrico para detección del gen reportero GUS I Temas Usos del gen reportero GUS, ensayos enzimáticos para su detección en plantas transformadas de manera transiente y estable. Actividades -­‐ Purificación de proteínas desde de las hojas agroinfiltradas en la práctica II. -­‐ Ensayo de actividad para detectar la expresión de GUS por fluorometría. Viernes 3 de julio 9:00- 13:00 Presentación y defensa de proyectos 9:00-11:00 -­‐ Cada grupo tendrá 15 minutos para presentar su proyecto y 5 minutos para discutirlo con sus compañeros* 11:00-11:20 Coffee break 11:20-13:00 -­‐ Continuación de las presentaciones. 13:00-13:30 Entrega de certificados. 13:00-14:30 Almuerzo 14:30- 17:00 Práctica V Ensayo fluorométrico para detección del gen reportero GUS II Temas Continuación de la práctica IV. Actividades -­‐ Visualización de los resultados del ensayo de actividad de GUS por medio de un ensayo fluorométrico. * La presentación del proyecto es requisito para la entrega de certificado del participación en el curso