RECOMENDACIONES PARA LA DESINFECCION DE MATERIAL

ÁREA DE CONTROL MEDIO AMBIENTAL
Servicio Medicina Preventiva y Salud Pública
RECOMENDACIONES PARA LA DESINFECCION DE MATERIAL
SEMICRITICO EN CONSULTAS AMBULATORIAS DE OFTALMOLOGIA
La desinfección es un proceso que elimina la mayoría o todos los
microorganismos sobre los objetos inanimados con la excepción de esporas
bacterianas. Se efectua por medio de agentes químicos, clasificados en tres
categorías: Alta, intermedia y baja, según la intensidad de su acción.
Clasificación de los elementos y niveles de desinfección:
De acuerdo al riesgo potencial de transmitir una infección durante su
uso, los materiales se dividen en:
a) Críticos: Constituido por instrumental u objetos que se introducen
directamente dentro del torrente sanguíneo o dentro de áreas normalmente
estériles del cuerpo (Ej. instrumental quirúrgico, catéteres cardíacos,
implantes, etc.)
Tienen GRAN RIESGO DE PRODUCIR INFECCIONES
a) Semicríticos: Constituido por elementos que están en contacto con las
membranas mucosas intactas del paciente o piel lesionada . Generalmente
no penetran en cavidades estériles del cuerpo (Ej.: endoscopios rígidos y
flexibles no invasivos, tubos endotraqueales, citoscopios, tonómetros, etc.)
Tienen GRAN RIESGO DE PRODUCIR INFECCIONES
b) No críticos: Son aquellos elementos que habitualmente no tocan al
paciente o tocan la piel intacta (Ej.: muletas, mesa del paciente,
tensiómetro, estetoscopio, etc.)
Tienen POCO RIESGO DE PRODUCIR INFECCIONES
Niveles de desinfección:
a) Alto nivel: Destruye todos los microorganismos con excepción de un gran
número de esporas bacterianas (bacterias, casi todas las esporas de
hongos, bacilo de TBC, pequeños virus)
b) Nivel intermedio: Inactiva bacterias vegetativas, hongos, casi a todos los
virus, pero no a endosporos bacterianos.
c) Bajo nivel: Destruyen a la mayoría de las bacterias, algunos virus, algunos
hongos, pero no afectan organismos más resistentes como bacilo de TBC o
endosporos bacterianos.
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Clasificación de los desinfectantes según la intensidad de su acción:
•Desinfectantes de alto nivel. (D.A.N.): matan bacterias vegetativas, bacilo
de tuberculosis, hongos, virus lipídicos y no lipídos, pero no necesariamente
alto número de esporos bacterianos. Ej.: formaldehído, glutaraldehído, peróxido
de hidrógeno, ácido peracético.
•Desinfectantes de nivel intermedio (D.N.I.): matan bacterias vegetativas,
algunos hongos, bacilo de tuberculosis y la mayor parte de los virus. No
eliminan los esporos bacterianos resistentes. Ej.: Alcohol etílico e isopropílico,
cloro y compuestos del cloro, iodóforos.
•Desinfectantes de bajo nivel (D.B.N.): matan las bacterias vegetativas,
algunos hongos y algunos virus, pero no actúan sobre bacilo de tuberculosis y
esporas bacterianas. Ej.: Compuestos de amonio cuaternario.
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DESINFECCION DE MATERIAL SEMICRITICO EN CONSULTAS
AMBULATORIAS DE OFTALMOLOGIA
1. TONÓMETROS
A. De contacto
1) Inmersión de los 3 mm distales del biprisma en una solución de lejía
doméstica diluida al 1:10 durante cinco minutos (1). Para ello se pueden
construir dispositivos como son una placa de petri perforada en una de sus
caras con un orificio de 11 mm de diámetro (3) o un dispensador de colirio con
el extremo invertido hacia el interior de la botella (4). Luego se ha de aclarar el
biprisma bajo el grifo de agua corriente y posteriormente ha de ser secado
convenientemente. Lo más indicado es disponer de dos biprismas por
tonómetro, así, mientras se utiliza uno de ellos el otro se halla en inmersión. La
solución de lejía diluida debe recambiarse una vez al día. El inconveniente
principal es que el uso reiterado decolora la marcas de los grados en el
biprisma, que son útiles en la tonometría con astigmatismos corneales
anteriores elevados.
2) Alternativamente se puede utilizar una solución de peróxido de hidrógeno
(agua oxigenada) al 3% durante 5 a 10 minutos (soluciones limpiadoras de
lentes de contacto blandas - Oxisept,
Aosept, etc.). Esta solución debe ser reemplazada dos veces al día y es
facilmente inactivada por los restos de materia orgánica (1).
3) La inmersión en alcohol isopropilo al 70% (Alcohol Isopropílico 2-Propanol
Merck®) durante un minuto es también efectiva (5), pero tiende a disolver el
pegamento cimentador de los componentes del biprisma (6) y puede ocasionar
alteraciones corneales si no se seca suficientemente (7); en su defecto puede
utilizarse de igual forma el alcohol etílico a una concentración nunca
inferior al 70. La simple limpieza sin inmersión con toallitas impregnadas en
alcohol puede ser insuficiente en la eliminación completa de virus.
4) La colocación de un capuchón estéril de silicona sobre el biprisma con
cada nuevo paciente es definitiva en la prevención de la transmisión de todo
tipo de infección. La lectura de la presión intraocular que se obtiene con los
capuchones de silicona comercializados en España por General Óptica (Tono
Shield®) incrementa en un una media del 10% el valor de la presión intraocular
que se obtendría sin el capuchón, teniendo este método una sensibilidad
cercana al 100% en la detección de presiones intraoculares >= 21 mmHg (810). La correcta aplicación de la cubierta de silicona resulta además esencial
para evitar la aparición de plegamientos y distorsiones en la superficie de
aplanación.
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5) Puede recurrirse también a la aplicación de una tira de PVC (Parafilm M®,
utilizado en el laboratorio para el taponado y sellado de tubos de ensayo), u
otro material maleable que se pueda adaptar a la superficie de aplanación y
que posea propiedades adhesivas para fijarse en el biprisma del tonómetro. La
utilización del Parafilm M® se ha documentado que eleva la lectura de la
presión intraocular una media de 0,5 mm Hg (9). El mayor beneficio de este
método con respecto a los capuchones comercializados es su costo más
económico. Sin embargo, hay que tener en cuenta que la superficie no es
estéril y que su utilización ha de ir precedida de la adaptación o construcción de
la cubierta a partir del material original. Con esto se intenta evitar la
contaminación del biprisma del tonómetro, pero no se asegura la esterilidad de
la superficie como en el caso del Tono Shield®.
Tonómetro Schiotz.
Se debe desmontar el tonómetro después de cada uso. El tubo debe ser
limpiado con una escobilla larga que se haya impregnado en alcohol isopropilo
o etanol al 70%. Luego debe ser secado con otra escobilla. La plataforma debe
ser limpiada con una esponja o toalla empapada en alcohol y debe ser secada
antes de volver a ensamblar todas las piezas (1).
B. De aire
Dado que su superficie no entra en contacto con la córnea ni la película
lagrimal, su utilización está muy indicada en los pacientes sospechosos de
padecer cualquier enfermedad infecciosa susceptible de ser contagiada a
través de la tonometría. No obstante, y debido a la pequeña posibilidad de que
hayan salpicado microgotas de la película lagrimal o que en las maniobras de
acercamiento del aparato pueda haberse rozado la superficie o los anejos
oculares, se deberá limpiar la superficie frontal del aparato con una esponja
empapada en alcohol isopropilo o etanol 70%.
2. LENTES DE EXPLORACIÓN DE CONTACTO
Para desinfectar las lentes de tres espejos tipo Goldmann, Rodenstock,
Peyman, etc, se deben situar hacia arriba de manera que la concavidad de la
superficie que entró en contacto con el paciente y la carcasa circular de la lente
se puedan humedecer con una esponja empapada en alcohol isopropilo o
etanol al 70%. Para mayor seguridad se puede llenar la copa que forma la
concavidad de la lente con lejía diluida al 1/10. Pasados 5 minutos se retira la
lejía y se coloca la superficie debajo del grifo con agua corriente para que se
aclare bien y se deja secar. Si desea secar más rápidamente se puede utilizar
un papel suave pero nunca gasas, para evitar el rallado de la superficie óptica.
De este modo se limpia tanto la superficie externa de la lente como la parte que
entra en contacto con el paciente sin permitir que la lejía debilite el pegamento
que une la cubierta antirreflectante a la superficie de la lente más próxima al
oftalmólogo.
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3. LENTILLAS DE CONTACTO DE PRUEBA
Deben limpiarse después de cada prueba con un paciente diferente.
3.A. Semirrígidas gas-permeables y duras
Aunque en la limpieza individual de este tipo de lentes de contacto los
pacientes utilizan habitualmente soluciones a base de agentes surfactantes
(Duraclean-Duracare® de Allergan, Visus® Limpiador-Conservante de
Lenticon, etc.), estos componentes no aseguran la descontaminación viral que
se pretende lograr en las lentes de prueba en la consulta.
Para desinfectar estas lentes entre paciente y paciente se puede realizar la
inmersión en solución de peróxido de hidrógeno al 3% durante 5 minutos, o en
cualquier solución a base de clorhexidina (Contigen®, Hexidín®, etc.), aunque
estas últimas apenas se mantienen a la venta en la actualidad. Si se dispone
de ambos métodos, el más estudiado es el peróxido de hidrógeno al 3%.
Además, se puede disponer de él fácilmente, utilizando cualquier solución
limpiadora de lentes blandas a base de peróxido de hidrógeno (Oxisept®
solución desinfectante y neutralizante convencionales, Oxisept Comfort® de
Allergan solución única, Aosept® solución única, etc).
Antes de colocar en un paciente una lente de contacto semirrígida o rígida que
haya estado sometida a desinfección con sistemas utilizados normalmente en
las lentes de contacto blandas se deberá humectar con una lágrima artificial
para no generar molestias a los pacientes.
Los peróxidos de un solo paso en general ofrecen menos garantías de
mantener una actividad antimicrobiana continuada. Sin embargo, la solución a
base de la molécula Polyquad (Opti-Soak aseptizante), que contiene peróxidos
en formulación de lágrima artificial, es una solución única aprobada por la FDA
para ser utilizada en las cajas de prueba siempre que se recambie antes de los
30 días. Para asegurar la desinfección con la molécula de Polyquad es
necesario que las lentes se mantengan en inmersión en la solución durante 4
horas.
3.B. Blandas
Puede utilizarse tanto la solución de peróxido de hidrógeno al 3%, o Polyquad,
(Opti-Free® Aseptizante), como los sistemas de desinfección basados en el
calor. No obstante, si se utiliza este último hay que asegurarse antes por el
fabricante, de que ese tipo específico de lentes blandas sean aptas para la
desinfección térmica.
Con las lentes de contacto desechables los pacientes utilizan normalmente
soluciones limpiadoras con actividad desinfectante limitada. En la consulta, sin
embargo, la desinfección de estas lentes desechables entre pacientes debe
realizarse con sistemas de peróxido, al igual que se procedería con el resto de
lentes de contacto blandas convencionales
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MÉTODOS DE PREVENCIÓN PRIMARIA Y MEDIDAS ADICIONALES EN
CASO DE APARICIÓN
DE UN BROTE DE QUERATOCONJUNTIVITIS AGUDA EPIDÉMICA
Métodos de prevención primaria
1º Técnica aséptica en las consultas oftalmológicas:
Utilización de guantes
Lavado de manos
2º Uso de colirios o soluciones oftalmológicas individuales.
3º Desinfección de los tonómetros de aplanación y lentes de contacto o de
gonoscopia por inmersión durante 5-10 minutos en peróxido de hidrógeno al
3% o similar (Ver apartado de desinfección).
4º Limpieza de la cabeza de las lámparas con agua y jabón.
5º Prevención de la afectación ocular con gafas y guantes en los trabajadores.
Medidas adicionales en caso de brote
1º Notificación rápida al Servicio de Medicina Preventiva de un aumento de
casos observados de queratoconjuntivitis epidémica (QCE).
2º Investigación epidemiológica (fuentes, vías de contagio, etc).
3º El personal sanitario que haya resultado infectado no debe atender
pacientes durante los 14 días siguientes al inicio de los síntomas.
4º Habilitar una consulta oftalmológica separada para el seguimiento de casos
confirmados.
5º Información a los pacientes de las medidas higiénicas que deben adoptar
para evitar la diseminación de la enfermedad:
- Lavado de manos antes y después de aplicar colirios.
- Evitar el contacto de ojos y secreciones con las manos.
- Evitar compartir toallas, pañuelos, gafas, cosméticos, colirios, etc.
6º Reducir el número de exploraciones oftalmológicas no imprescindibles como
tonometría y gonoscopia, y adecuar las técnicas asépticas.
Revisado marzo 2008