Nombre: Juan Bacigalupo Vicuña Grados: Licenciado en Biología

Nombre:
Juan Bacigalupo Vicuña
Grados:
Licenciado en Biología, 1975
Universidad de Chile, Chile
Ph.D. en Biología, 1983
Brandeis University, Estados Unidos
Cargo :
Profesor Titular
Principales distinciones, premios y reconocimientos.
Doft Graduate Fellowship, Brandeis University. 1978-1980.
Grass Foundation Fellowship. MBL, Woods Hole, MA, USA. 1984.
Tinker Foundation Fellowship. MBL, Woods Hole, MA. USA, 1985.
Cátedra Presidencial en Ciencias. 1997.
Medalla Rectoral, University of Chile. 1998 y 2000
Sir Allen Sewell Award, Griffith University, Brisbane, Australia. 2003
Fellow of the John S. Guggenheim Memorial Foundation, USA, 2006
Visiting Professor, University of Oregon, Eugene, USA, 1998
Visiting Scholar, Griffith University, Brisbane, Australia. 2003, 2007
Visiting Professor, University of Colorado Denver, USA, 2010
Miembro de International Brain Research Organization-Latin American Regional Committee (IBRO-LARC)
Miembro de IBRO Workshop & Symposia Funding Programme Committee (2001-2009)
Miembro de IBRO Nominating Committee (2009-2014)
Presidente Sociedad Chilena de Neurociencia (desde 2013)
Líneas de investigación.
Estamos interesados en la fisiología sensorial, principalmente en la transducción sensorial. Investigamos la
transducción de la luz en los fotorreceptores de Drosophila y de odorantes y feromonas en neuronas
quimiosensoriales de mamíferos (rata y ratón). Todos los organismos, desde bacterias a mamíferos, tienen la
capacidad de detectar su entorno según sus necesidades particulares. Las células receptoras sensoriales juegan el
rol clave de proporcionarles esta información vital. Para detectar correctamente las señales sensoriales que les
son relevantes, los organismos poseen una variedad de células sensoriales equipadas con sofisticados
mecanismos moleculares que les permiten responde de manera confiable, selectiva y rápida dentro de un rango
increíblemente amplia de intensidades de estímulo, desde extremadamente bajas hasta niveles varios ordenes de
magnitud mayores. En todas las células de nuestro interés, el estímulo sensorial correspondiente activa un
receptor acoplado a proteína-G, desencadenando una cascada de señalización que media la apertura de canales
iónicos de "transducción", generando un receptor potencial seguido de la descarga de potencial de acción. Los
proteínas que componen dichas cascadas residen en organelos altamente especializados, microvellosidades en
los fotorreceptores y cilios en CSNs, donde forman complejos moleculares asociados a la membrana que son en
gran parte desconocidos. Aunque la mayoría de las proteínas implicadas en los mecanismos correspondientes han
sido identificadas, hay muchas preguntas fundamentales sin resolver que deberán ser contestadas para entender
cómo funcionan estas células. Para lograr esto es necesario desentrañar cómo estas proteínas se orquestan para
transducir eficientemente los estímulos: cuáles y cuántas de las proteínas de transducción forman los complejos
(transducisomas), cómo se integran y cómo interactúan entre ellas y con otros componentes celulares, cómo son
tan exquisitamente regulados para lograr sus funciones, cómo satisfacen sus altas exigencias energéticas
(Proyecto FONDECYT 1140520, 2014-2018), y muchos otros. No es sorprendente que esta empresa exija enfoques
multidisciplinarios, muchos de los cuales utilizamos habitualmente en nuestro laboratorio, tales como técnicas
electrofisiológicas, bioquímicas, inmunoquímicas y modelamiento. Utilizamos herramientas como registros
eléctricos de canales individuales y registros macroscópicos, agentes farmacológicos, mutantes, compuestos
enjaulados, etc. Es importante mencionar que hemos desarrollado una manera única (no usada en otros
laboratorios) de registrar corrientes de canales de iones en fragmentos (parches) de membrana (adheridos y
escindidos) de cilios y de microvellosidades donde ocurre la transducción sensorial. Mediante registros de canales
no sólo podemos caracterizar los canales de transducción en sus membranas nativas, sino que principalmente
explorar los eventos moleculares involucrados en la transducción; esto es posible porque podemos tener acceso
directo a la parte interna de la membrana sensorial, donde las proteínas tienen sus sitios regulatorios, de modo
de manipular los componentes de la transducción de diversas maneras para lograr nuestros objetivos .
Publicaciones desde 2011.
Nuñez-Parra A, Cortés-Campos C, Bacigalupo J, García MA, Nualart F, Reyes JG. 2011. Expression and
distribution of facilitative glucose (GLUTs) and monocarboxylate/H+(MCTs) transporters in rat
olfactory epithelia. ChemSenses. 36: 771-780.
Acuña M, Perez-Nuñez R, Noriega J, Cardenas AM, Bacigalupo J, Delgado R, Arriagada C, SeguraAguilar J, Caviedes R, Caviedes P. 2012. Altered voltage dependent calcium currents in a neuronal
cell line derived from the cerebral cortex of a trisomy 16 fetal mouse, an animal model of down
syndrome. Neurotox Res. 22: 1059-68.
Bacigalupo J. 2012. Chile bajo la mirada de Charles Darwin. In Darwin y la Evolución: avances en la
Universidad de Chile. A Veloso and A Spotorno, Eds. Editorial Universitaria de Chile, 386 pp.
Astorga G, Härtel S, Sanhueza M, Bacigalupo J. 2012. TRP, TRPL and cacophony channels mediate Ca2+
influx and exocytosis in photoreceptor axons in Drosophila. PLoS ONE 7(8): e44182.
doi:10.1371/journal.pone.0044182
López E, Mackay-Sim A, Bacigalupo J, Sulz L. (2012).Leukaemia inhibitory factor stimulates
proliferation of olfactory progenitors via inducible nitric oxide synthase. PloS ONE(9): e45018.
doi:10.1371/journal.pone.0045018
González-Silva C, Vera J, Bono MR, González-Billault C, Hansen A, Gibson EA, Restrepo D,
Bacigalupo J. 2013. Ca2+ -activated Cl- channels of the CaCl family express in the cilia of a subset of
rat olfactory neurons. PLoS ONE 8(7): e69295. doi:10.1371/journal.pone.0069295
Muñoz Y, Fuenzalida K, Bronfman M, Gatica A, Bacigalupo J, Roth AD, Delgado R. 2013. Fatty acid
composition of Drosophila photoreceptors light-sensitive microvilli. Biol Research. 46:289-294.
Vera J, Pezzoli M, Pereira U, Bacigalupo J, Sanhueza M. 2014.Electrical resonance in the θ frequency
range in olfactory amygdala neurons. Plos One. doi: 10.1371/journal.pone.0085826.
López F, Delgado R, López R, Bacigalupo*, J, Restrepo* D. 2014. Transduction for pheromones in the
main olfactory epithelium is mediated by the Ca2+-activated channel TRPM5. (*corresponding
authors). J Neurosci.34:3268-3278.
Delgado R, Muñoz Y, Peña-Cortes H, Giavalisco P, Bacigalupo J. 2014. Diacylglycerol activates the
light-dependent channels TRP and TRPL in the photosensitive microvilli of Drosophila melanogaster
photoreceptors. J Neurosci 34:6679-6686.
Madrid R, Bacigalupo J. 2015. Editors. TRP channels in sensory transduction. Springer International
Publishing Switzerland. 234 pp.
Bacigalupo J, Delgado R, Muñoz Y, O’Day P. 2015. TRP channels in visual transduction. In: TRP
channels in sensory transduction. Eds, R. Madrid, J Bacigalupo. Springer International Publishing
Switzerland 2015. Pp 97-110.
Restrepo D, Delay R, Lin W, López F, Bacigalupo J. 2015. TRP channels in transduction for responses to
odorants and pheromones. In: TRP channels in sensory transduction. Eds, R. Madrid, J Bacigalupo.
Springer International Publishing Switzerland 2015. Pp 111-126.
Delgado R, Mura CV, Bacigalupo J. 2016. Single Ca2+-activated Cl- currents recorded from toad
olfactory cilia. BMC Neuroscience. DOI: 10.1186/s12868-016-0252-0.
Proyectos de investigación (desde 2010).
Millennium Institute for Cell Dynamics and Biotechnology. MIDEPLAN ICM P05-001-F. 2007-2012. Investigador
Senior.
Participación de la Ca2+-ATPasa de cilios olfatorios en la remoción del Ca2+ luminar que ingresa durante la
respuesta a odorantes. FONDECYT 1080653. Investigator Principal. 2008-2010.
Signal transduction in TRPM5-expressing olfactory sensory neurons. FIRCA/NIH 1R03TW007920-01A1 (USA). Coinvestigador. 2008-2011.
On search of the elusive Ca2+-dependent Cl- channel involved in odor transduction in olfactory cilia. FONDECYT
1100682. Investigator Principal. 2011-2014.
Study of light transduction, light adaptation and response deactivation mechanisms of Drosophila photoreceptors
by means of single-channel recordings from the photosensitive membrane. FONDECYT 1100730. Coinvestigator. 2010-2014.
Energy sources of the chemosensory cilia of olfactory sensory neurons. FONDECYT 1140520.
Investigador Principal. 2014-2018.