Valores hematologicos y anestecia en la colonia de lobos marinos

ESTUDIO DE VALORES HEMATOLÓGICOS Y DOSIS ANESTÉSICAS EN LA COLONIA DE LOBOS
MARINOS. Isla de lobos Maldonado, Uruguay
Tavares E1 , Leizagoyen M del C1, Cirillo F2, Zipitria R2 , Ponce de Leon A3, Barreiro C 4, Infante P5 ,Castro G.
Lozano A. 6
1
DMV. IMM. Unidad de Parques Municipales Protegidos, Zoológico Parque Lecocq, Luis Batlle Berres S/N Km
19,500. Montevideo, URUGUAY. 2 DMV. IMM. Zoológico Villa Dolores. Montevideo, URUGUAY.
3
Lic. INAPE. Depto. Mamíferos Marinos. Constituyente 1497. Montevideo, URUGUAY. 4 INAPE. Depto.
Mamíferos Marinos. Constituyente 1497. Montevideo, URUGUAY, 5 DMV. Ejercicio Liberal. Antonio Machado
7892,P. Miramar. Canelones, URUGUAY, 6 DMV. Ejercicio Liberal Luis A. De Herrera 1503/1003. Montevideo,
URUGUAY
Objetivo
Estandarización de valores hematológicos y de dosis anestésicas para lobos finos de la Isla de Lobos, Maldonado,
Uruguay.
Materiales y Métodos
Para la estandarización de valores sanguíneos, se trabajó con una muestra de 41 ejemplares de Arctocephalus
australis . Fueron remitidas para su estudio en:
1.1 Litio para ionograma y funcional hepático. Fue utilizado un fotocolorímetro VTR 811 con kits comerciales de
Wiener Lab.
1.2 Edta potasio para hemograma, siendo centrifugados a 3000 r.p.m. durante 15 ' con kits comerciales de Wiener
Lab.
Los datos hallados fueron sometidos a un cálculo de error con los encontrados en la bibliografía
Para el cálculo de dosis anestésicas se trabajó con una muestra de 13 lobos finos Se utilizaron anestésicos
inhalatorios volátiles y fijos. Fue utilizado un equipo de gases (Dorli junior) con sistema abierto con éter sulfúrico.
Se aplica mascara de fabricación artesanal adaptada a la especie de referencia
La inducción anestésica se realiza con anestésicos fijos y el equipo inhalatorio fue utilizado para mantenimiento
Como agente curarizante fue utilizada la galamina y su antagonista la neostigmina.
Como premedicación fue utilizado un parasimpaticolítico, sulfato de atropina al 1/ 000 como bloqueador de efectos
cardiovagales y disminución de secreciones salivares y respiratorias.
Como drogas preanestesicas fueron utilizados un tranquilizante fenotiazinico como acepromazina al 1 % y como
tranquilizante menor diazepan al 0.5 %
Como anestésicos fijos fue utilizado un agonista adrenoreceptor alfa 2, xilazina al 10 %, ya que ofrece la ventaja de
su potencia, sus propiedades de brindar buena relajación muscular, analgesia y poseer antagonistas alfa dos como
atipamezole, tolazolina o yohimbina. Se combinó con un anestésico disociativo, el clorhidrato de ketamina al 5%
(para lograr la inmovilización total y un plano anestésico que permitiese manejar la especie
Como antagonista alfa 2 fue utilizado el hidrocloruro de yohimbina al 1% debido a ser el único disponible
actualmente en Uruguay
Los cálculos de dosis de anestésicos fijos se efectuaron por escala alométrica. El cálculo de SMEC, se realizó en
base a los distintos pesos estimados de los ejemplares muestreados, utilizándose al perro como dosis SMEC testigo.
SMEC canino = K( W -0.25), donde K = 70
Para xilazina se parte de 2mg/kg y ketamina 15 mg/kg.
Por ejemplo para el caso de un ejemplar de 20 kg. se llega a una dosis de 1.33 mg/kg. de xilazina y 10.6 mg/kg. de
ketamina
La aplicación de los anestésicos fijos se realizó en base de combinaciones anestésicas a saber:
Xilazina - ketamina en 9 Arctocephalus
Acepromazina- ketamina éter en 1 Arctocephalus
Xilazina, ketamina y éter sulfúrico en 1 Arctocephalus
Galamina en 1 Arctocephalus
Diazepan - ketamina en 1 Arctocephalus
A fin de estimar la cantidad de drogas anestésicas y antídotos a utilizar, y
debido a la diversidad de peso de los animales con los que se trabajó, se realizaron extrapolaciones alométricas cada
5 kg. de peso, partiendo en la especie Arctocephalus australis de ejemplares de 15 kg. a 50 g. Con la combinación
Xilacina -Ketamina las dosis de inducción anestésica extrapoladas, en mg/kg. para los diferentes pesos fueron las
presentadas en tabla 1
Tabla 1 Dosis de inducción anestésicas
{PRIVATE}Peso (kg.)
xilazina (mg/kg.)
Ketamina (mg/kg.)
15
1.49
11.37
20
1.39
10.60
25
1.31
10.00
30
1.25
9.50
35
1.20
9.18
40
1.16
8.89
45
1.13
8.64
50
1.10
7.45
Resultados
Se logró una primera aproximación de valores sanguíneos normales como ionograma, funcional hepático y
hemograma. (Cuadro 1) Las diferencias fueron significativas en los datos testados a excepción de los valores del Na,
lo cual no excluye que puedan ser sus rangos de variabilidad normal.
Cuadro 1 Valores sanguíneos
{PRIVATE}
X
SD
CV
N
Na meq/l
152.072
2.66
1.7
39
K meq/l
5.65
1.04
18.4
39
Ca mg/l
1.04
0.07
6.7
39
Urea g/l
0.82
0.17
20.7
39
Creatinina mg/l
1.36
0.30
22.05
39
Proteína total g/l
6.72
0.89
13.24
36
Amilasa UI/l
515.02
144.41
28.03
36
Colesterol mg/l
174.99
24.16
13.8
36
GR mm3
5.06
0.42
8.30
22
Hto %
52.8
3.31
6.2
22
Hb gr/dl
17.6
0.89
5.05
21
GB mm3
10777
3597
33.37
22
VCM F1
104.8
2.58
2.46
22
HCM pg
34.9
1.28
3.66
21
CHCH gr/dl
33.29
0.84
2.52
21
Plaquetas mm3
255
92.38
36.22
22
GOT
73.22
17.17
23.44
33
GPT
52.62
7.45
14.15
33
Las dosis resultantes de xilazina variaron entre 1,10 y 1,50 mg/kg y las de ketamina entre 7,5 y 11,4 mg/kg.
El primer signo se observó entre los primeros 2 a 5 minutos, mientras que el tiempo de inducción varió en un rango
mayor de 5 a 17 minutos a excepción de un ejemplar de 30 kg. de peso, estresado, que no entró en plano a pesar de
lo cual permitió su manejo.
El tiempo operacional varió entre 20 a 50 minutos. El tiempo total vario entre 35 minutos a 1 hora 25 minutos. Fue
suministrado el antagonista a 7 de los 9 ejemplares, el tiempo de recuperación varió entre 21 a 45 minutos. Todos
los mencionados hasta ahora se encontraban en hipertermia.
En un ejemplar la respuesta se obtuvo a los 2 minutos de la inoculación, siendo la temperatura corporal del mismo
de 38.5 °C
Un ejemplar de A. australis macho, con un peso estimado de 100 kg. y 1.70 m de longitud, fue el único ejemplar en
el cual no se aplicaron los cálculos alometricos por ser un ejemplar que se presentó en forma ocasional.
La inducción fue realizada en base a xilazina 200 mg de dosis total, lo que daría 2 mg/kg. y ketamina 1250 mg de
dosis total lo que daría 12.5 mg/kg.. Sé continuo el plano quirúrgico mediante éter sulfúrico por vía inhalatoria por
sistema abierto El animal se recuperó satisfactoriamente luego de un tiempo operacional fue de 1hora 14 minutos,
mientras que el tiempo total resultó en 1 hora 24 minutos.
A un ejemplar de Arctocephalus australis, macho de 40 kg., se le suministró la combinación de diazepan 0.125
mg/kg. y Ketamina 8 mg/kg., como inducción.
El primer signo de sedación se presenta a los 4 minutos, completando el tiempo de inducción a los 10 minutos desde
su inicio.
El tiempo operacional fue de 40 minutos, siendo el tiempo total de 1 hora 30 minutos. El ejemplar no tuvo
hipertermia, y se fue al agua por sus propios medios con una recuperación satisfactoria
La combinación de acepromazina, ketamina y éter fue administrada a un ejemplar macho de A. australis de 45 kg.
de peso. Se administraron conjuntamente ketamina 6.6 mg/kg. y acepromazina 0,22 mg/kg., repitiendo la ketamina a
los 14 minutos.
A los 27 minutos de la última dosis de ketamina se aplico la mascara de éter, obteniéndose efecto a los 20 minutos.
El tiempo operacional fue de 90 minutos, siendo el tiempo total de 110 minutos.
Galamina al 2 % fue administrada a un ejemplar de Arctocephalus de 37 kg. a una dosis inicial de 1.2 cc I/M, no
obteniéndose resultado. Se suplemento con una segunda dosis de 2cc a los 15 minutos, cuyo efecto si fue
satisfactorio en este caso. El primer signo fue a los 4 minutos de la segunda dosis.
El tiempo operacional fue de 10 minutos al cabo de los cuales se le suministra 2 cc de neostigmina i/m al
0.5 % y 2 cc i/V como antagonista.
Un aspecto importante a destacar en estas especies es el aumento de la frecuencia cardiaca durante el procedimiento
anestésico.
Se notó una estrecha relación entre la frecuencia cardíaca y la inspiración. Luego de una inspiración la frecuencia
cardíaca aumenta, la cual va disminuyendo hasta la próxima inspiración.
Otro aspecto a destacar en la anestesia de estos ejemplares es el aumento de la temperatura corporal, lo que requiere
el uso de duchas permanentes durante el procedimiento para evitar la hipertermia.
Conclusiones
Se desprende que la estandarización de valores requiere de una muestra mayor, aunque se alcanzaron valores de
referencia válidos, tanto hematológicos como en dosis anestésicas. En este caso, se posibilita el manejo de
ejemplares para maniobras como marcación e individualización, extracción de muestras e incluso cirugías menores,
siempre llevando un estricto control de la variación de la temperatura corporal.