QUANTA LiteTM dsDNA

QUANTA LiteTM ASCA IgG (S. cerevisiae) 708865
Para Diagnóstico In Vitro
Complejidad de CLIA: Alto
Aplicación
QUANTA LiteTM ASCA (S. cerevisiae) IgG es un ensayo basado en la técnica ELISA (Enzyme-Linked
Immunosorbent Assay) para la detección semi cuantitativa de anticuerpos anti-Saccharomyces cerevisiae
(ASCA) de clase IgG en suero humano. La presencia de anticuerpos anti-ASCA IgG puede ser utilizada en
conjunción con hallazgos clínicos y otras pruebas de laboratorio como ayuda en el diagnóstico de pacientes
con la enfermedad de Crohn.
Sumario y Explicación de la prueba
La enfermedad inflamatoria intestinal (EII) es el término general utilizado para describir las enfermedades
que causan una inflamación de los intestinos. La enfermedad de Crohn (EC) y la colitis ulcerosa (CU) son
las dos principales EIIs. En la enfermedad de Crohn, la inflamación suele producirse en el último tramo del
intestino delgado (íleon distal), aunque puede afectar a cualquier parte del tracto digestivo. La inflamación
producida por la enfermedad de Crohn se interna profundamente en el tejido afectado, al contrario que la
colitis ulcerosa, que causa inflamación y úlceras en las capas más superficiales de las paredes del colon y el
recto. La inflamación en la enfermedad de Crohn es asimétrica y segmentada, con áreas que contienen
tanto tejido sano como infectado, al contrario que la colitis ulcerosa, que provoca una inflamación simétrica e
ininterrumpida desde el recto proximal.1-3
Tanto la enfermedad de Crohn como la colitis ulcerosa son enfermedades crónicas que afectan a hombres y
mujeres más o menos por igual, siendo más comunes en el norte de Europa y Norteamérica.
Aproximadamente el 20% de los individuos con enfermedad de Crohn tienen algún pariente consanguíneo
con algún tipo de EII. La edad a la que suele aparecer la enfermedad de Crohn está entre los 15 y 30 años.
También se ha observado un segundo pico de incidencia, más reducido, entre los 50-70 años. En la década
anterior, toda una serie de informes han indicado un aumento en la prevalencia de la enfermedad de Crohn
en varias zonas geográficas. 4-7 A pesar de que existen muchas teorías acerca de las causas de la
enfermedad de Crohn y la colitis ulcerosa, ninguna ha sido demostrada. Puesto que muchos de los síntomas
de la enfermedad de Crohn y de la colitis ulcerosa son similares, el diagnóstico suele ser complicado, lento
e invasivo. 1-3 Aproximadamente un 10-12% de los casos son inclasificables en un principio y se definen
como “colitis indeterminada”. A medida que pasa el tiempo, casi la mitad de estos pacientes acaban siendo
clasificados como positivos para EC o CU. 8-10
Los anticuerpos anti-Saccharomyces cerevisiae (ASCA) han demostrado tener una prevalencia mucho
mayor en los pacientes con enfermedad de Crohn que en los que sufren colitis ulcerosa o los controles
sanos. 8-14 Estos anticuerpos, que pueden incluir las clases IgG y IgA, parecen dirigirse a las secuencias de
manosa en la capa de manana del Saccharomyces cerevisiae.14-16 La presencia de anticuerpos IgG o IgA
ASCA ha demostrado tener una mayor especificidad para la enfermedad de Crohn. Un informe reciente
detectó que la presencia de anticuerpos IgG e IgA ASCA era 100% específica para la enfermedad de
Crohn.8 La detección de ASCA puede resultar muy valiosa para diferenciar la enfermedad de Crohn de la
colitis ulcerosa en algunos pacientes. 8-10
Sin embargo, un subgrupo de pacientes con enfermedad de Crohn no presenta anticuerpos ASCA.
Actualmente se desconoce si estos individuos forman un subgrupo de pacientes con características clínicas
específicas.
Procedimiento de trabajo
Los pocillos de la microplaca contienen antígeno parcialmente purificado del S. cerevisiae que se ha unido
en condiciones que mantienen su estado nativo. Se añaden controles y muestras convenientemente diluidas
en pocillos separados, uniéndose durante la incubación los anticuerpos anti ASCA IgG al antígeno que los
recubre. El resto de componentes no unidos se elimina mediante lavado y se añade conjugado anti IgG
humana a cada pocillo. Un segundo paso de incubación permite que el conjugado se una a los anticuerpos
presentes. Tras un lavado que elimina el conjugado sobrante, se añade un sustrato cromogénico y tras
incubación la actividad enzimática presente en el pocillo es proporcional a la intensidad de color
desarrollado. El ensayo puede ser evaluado fotométricamente comparando la intensidad de color en las
muestras con la de los controles.
Reactivos
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Microplaca ELISA de poliestireno con pocillos recubiertos con antígeno parcialmente purificado S.
cerevisiae (12-1 x 8 pocillos), envasada en su soporte en una bolsa de aluminio con desecante
Control negativo ELISA, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero humano ausente de
anticuerpos humanos anti S. cerevisiae, prediluido, 1.2 ml
Control ELISA ASCA IgG Positivo Débil, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero
humano con anticuerpos anti S. cerevisiae, prediluido, 1.2 ml
Control ELISA ASCA IgG Positivo Fuerte, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero
humano con anticuerpos anti S. cerevisiae, prediluido, 1.2 ml
Diluyente de Muestra HRP, 1 frasco color rosado conteniendo tampón con Tris, Tween 20 y
conservante, 50 ml
Solución de Lavado Concentrada HRP, 1 frasco de concentrado 40x color rojo conteniendo tampón
con Tris y Tween 20, 25ml. Referirse a la Sección “Metodología” para instrucciones de dilución.
Conjugado HRP IgG, con anti- IgG humana de cabra, 1 frasco - color azul conteniendo tampón,
estabilizante de proteína y conservante, 10ml
1
8.
9.
Cromógeno TMB, 1 frasco conteniendo estabilizantes, 10ml
Solución de Parada HRP, Acido Sulfúrico 0.344 M, 1 frasco, incolora, 10 ml
Advertencias
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
Aviso: Este producto contiene cloramfenicol al 0.02% en el Diluyente de muestras, controles y
conjugado considerado en el estado de California como causante de cáncer.
Todo material de origen humano usado en la preparación de los controles para este producto se ha
examinado resultando negativo para anticuerpos contra HIV, HbsAg, y HCV por métodos aprobados
por la FDA. Ningún método puede sin embargo ofrecer garantía completa que HIV, HBV, HCV o
otros agentes contagiosos estén ausentes. Por lo tanto, los controles ASCA IgG ELISA positivo
fuerte, ASCA IgG ELISA positivo débil y ELISA negativo deben manejarse como si fueran material
potencialmente contagioso.17
Dado que se utiliza azida sódica como conservante, este producto puede ser tóxico por ingestión o
absorción a través de piel o mucosas. La azida sódica puede reaccionar con el plomo o cobre de las
tuberías para formar azidas metálicas potencialmente explosivas. Si se utilizan desagües para la
eliminación de reactivos se recomienda lavarlos con abundante agua para prevenir la formación de
dichas azidas metálicas.
El Conjugado HRP contiene diluido un producto químico venenoso y corrosivo que puede ser tóxico
si se ingiere. Para impedir quemaduras, evitar el contacto con piel o ojos.
El Cromógeno TMB contiene un irritante. Puede ser dañino si es inhalado, ingerido o absorbido por
la piel. Evitar la inhalación, ingestión o contacto con piel y ojos.
La Solución de parada HRP consiste de una solución diluida de ácido sulfúrico. Evitar exposición a
bases, metales, u otros compuestos que puedan reaccionar con ácidos. El ácido Sulfúrico es
venenoso y corrosivo, puede ser tóxico si ingerido. Para impedir quemaduras, evitar contacto con
piel y ojos.
Se recomienda utilizar el equipo protector apropiado al trabajar con este kit.
Los reactivos derramados deben limpiarse inmediatamente. Siga las normas aplicables en su
laboratorio acerca de la eliminación de residuos.
Precauciones
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Este producto es para ser usado en el Diagnóstico In Vitro.
La sustitución de componentes diferentes de los incluidos en el sistema puede generar resultados
inconsistentes.
Un lavado incompleto o ineficiente y una eliminación insuficiente de líquido de los pocillos puede dar
lugar a una pérdida de precisión y/o un fondo elevado.
La adaptación de este ensayo para su uso en procesadores automáticos u otros dispositivos,
totalmente o en parte, puede producir diferencias en los resultados en comparación con el
procedimiento manual. Es responsabilidad de cada laboratorio de validar sus procedimiento
automatizado y comprobar que produce resultados dentro de los límites aceptables.
Existe una variedad de factores que influyen en la realización del ensayo. Esto incluye la
temperatura inicial de los reactivos, la temperatura ambiente, la exactitud y reproducibilidad de
técnica de pipeteo, la calidad de la técnica de lavando, el fotómetro que se utiliza para medir los
resultados, y los tiempos de incubación durante el ensayo. Es necesario un exquisito cuidado y un
trabajo consistente para obtener resultados exactos y reproducibles.
Se recomienda seguir estrictamente el protocolo.
El sellado incompleto de la bolsa “zip-lock” que contenga tiras sin usar y desecante provocará la
degradación del antígeno que se apreciará en un empeoramiento de la precisión de resultados.
Pueden observarse absorbancias inaceptablemente bajas tras dos o más usos separados de un
conjugado HRP. Es importante seguir todas las recomendaciones de manipulación específicas para
este producto para evitar que esto ocurra.
La contaminación química del conjugado HRP puede ocurrir como resultado de una limpieza o
secado inadecuados del equipo o instrumentos. Residuos de productos químicos comunes en el
laboratorio como formalina, lejía, etanol, o detergente causan la degradación del conjugado HRP con
el tiempo. Enjuague bien todo equipo o instrumentos después de usar dichos productos.
Condiciones de Almacenaje
1.
2.
3.
Guardar todos los reactivos del kit en nevera a 2-8°C. No congelar. Los reactivos son estables hasta
la fecha de caducidad si son almacenados y manipulados correctamente.
Las tiras sin utilizar deben volverse a guardar en la bolsa de aluminio que contiene desecantes
cerrándola herméticamente y almacenándola a 2-8ºC.
La solución de lavado diluida es estable 1 semana a 2-8°C.
Recolección de Muestras
Este kit requiere suero como muestra. La adición de azida u otros conservantes a las muestras puede
afectar adversamente los resultados. No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que
contengan partículas visibles. Deben asimismo evitarse las muestras lipémicas o hemolizadas.
Tras la recolección de las muestras de sangre, el suero debe ser separado del coágulo. El documento
NCCLS H18-A2 recomienda las siguientes condiciones de almacenaje para muestras: 1) Guardar las
muestras a temperatura ambiente no más de 8 horas. 2) Si el ensayo no se va completar en 8 horas,
refrigerar la muestra a 2-8°C. 3) Si el ensayo no se va completar entre 48 horas, o para enviar las muestras,
congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las muestras deben agitarse bien antes
de utilizarse.
2
Procedimiento
Materiales Suministrados
1
1
1
1
1
1
1
1
1
Microplaca ASCA IgG ELISA (12-1 x 8 pocillos), con soporte
1.2 ml control prediluido negativo ELISA
1.2ml control prediluido ASCA IgG ELISA Positivo Débil
1.2ml control prediluido ASCA IgG ELISA Positivo Fuerte
50ml Diluyente de muestra HRP
25ml Solución de lavado concentrada 40X
10ml Conjugado IgG (cabra) anti IgG humana
10ml Cromógeno TMB
10ml Solución parada HRP (Ácido Sulfúrico 0.344M)
Material necesario no incluido
Micropipetas para 5, 100, 200-300 y 500µl
Puntas desechables para micropipeta
Tubos para dilución de muestras, 4ml
Agua destilada
Recipiente de 1L para la solución de lavado reconstituida
Lector de microplacas capaz de medir densidades ópticas a 450nm (y a 620nm para lecturas de doble
longitud de onda)
Metodología
Antes de empezar
1.
2.
3.
4.
Llevar todos reactivos y muestras a la temperatura ambiente (20-26°C) y agitar.
Diluir la solución de lavado HRP 1:40 añadiendo el contenido del envase con concentrado a 975 ml
de agua destilada. Si no va a utilizar toda la placa, puede preparar una cantidad menor de solución
de lavado añadiendo 2.0 ml del concentrado a 78ml de agua destilada para cada 16 pocillos que
vayan a utilizarse. El tampón diluido es estable 1 semana a 2-8°C.
Preparar una dilución 1:101 de cada muestra a procesar añadiendo 5 µl de muestra a 500 µl de
diluyente. Las muestras diluidas deben ser utilizadas dentro de las 8 horas de su preparación. NO
DILUIR los controles ASCA IgG ELISA positivo débil, positivo fuerte y ELISA negativo.
La determinación de la presencia o ausencia de anticuerpos anti ASCA IgG usando unidades
arbitrarias requiere dos pocillos para cada uno de los tres controles y uno o dos pocillos para cada
muestra. Se recomienda que las muestras se hagan por duplicado.
Procedimiento de Ensayo
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
TODOS REACTIVOS DEBEN ESTAR A TEMPERATURA AMBIENTE (20-26°C) ANTES DE
EMPEZAR EL ENSAYO. Ponga el número necesario de tiras en el soporte. Devolver
inmediatamente las tiras sin utilizar a la bolsa de aluminio y sellarla firmemente para
minimizar la exposición a la humedad.
Agregar 100µl de los controles prediluidos ASCA IgG ELISA Positivo Débil, ASCA IgG ELISA
Positivo Fuerte, ELISA Negativo y las muestras prediluidas a los pocillos. Cubrir los pocillos e
incubar 30 minutos a temperatura ambiente en una superficie plana. El tiempo de incubación
empieza después de la adición de la última muestra.
Lavado: Aspirar el contenido de cada pocillo. Agregar 200-300µl de solución de lavado a todos
pocillos y aspirar. Repetir esta secuencia dos veces más para un total de tres lavados. Invertir la
placa y golpearla suavemente en material absorbente para eliminar cualquier fluido residual tras el
último lavado. Es importante que cada pocillo esté completamente vacío después de cada paso de
lavado. Mantener la misma secuencia para la aspiración que la usada para la adición de muestras.
Agregar 100µl de Conjugado IgG HRP a cada pocillo. El conjugado debe pipetearse en las
condiciones más asépticas posibles y siguiendo buenas técnicas de laboratorio. Aspirar solamente la
cantidad de conjugado necesaria para el ensayo. PARA EVITAR CUALQUIER CONTAMINACIÓN
POTENCIAL MICROBIANA Y/O QUÍMICA, NUNCA DEVOLVER EL CONJUGADO SIN USAR A
SU RECIPIENTE ORIGINAL. Incubar los pocillos 30 minutos como en el paso 2.
Lavado: Repetir el paso 3.
Agregar 100µl de Cromógeno TMB a cada pocillo e incubar 30 minutos en oscuridad a temperatura
ambiente.
Agregar 100µl de Solución de parada a cada pocillo. Mantener la misma secuencia y
temporalización que la efectuada en la adición de Cromógeno. Agitar suavemente la placa para
mezclar bien los pocillos.
Leer la absorbancia (DO) de cada pocillo a 450nm en un plazo máximo de una hora. Si se desea
seguir el método de lectura bicromática puede utilizarse 620 nm como longitud de onda de
referencia.
Control de Calidad
1.
2.
Los controles ASCA IgG ELISA Positivo Débil, ASCA IgG ELISA Positivo Fuerte y Control Negativo
ELISA deben procesarse con cada lote de muestras para asegurar que todos reactivos y
procedimientos funcionan correctamente.
El usuario debe notar que debido a que los controles ASCA IgG ELISA Positivo Débil, ASCA IgG
ELISA Positivo Fuerte y ELISA Negativo son prediluidos, no controlan procedimientos asociados con
3
3.
4.
dilución de especímenes.
Pueden añadirse controles adicionales según las directivas o requisitos del laboratorio. Pueden
prepararse controles válidos haciendo alícuotas de un “pool” de suero humano que debe
almacenarse a < -20°C.
Para considerar válidos los resultados deben considerarse satisfechos todos los criterios
especificados a continuación, si alguno de ellos no se cumple la prueba debe considerarse inválida y
repetirse.
a.
La absorbancia del control ASCA IgG Positivo debe ser superior a la del control ASCA IgG
positivo débil y la de este debe ser superior a la del control negativo.
b.
El control ASCA IgG positivo fuerte debe tener una absorbancia mayor que 1.0 mientras que
la del control negativo no debe exceder de 0.2.
c.
La absorbancia del control ASCA IgG positivo débil debe ser superior al doble del control
negativo, u oscilar entre 0.25.
d.
Los controles ELISA negativo y ASCA IgG positivo fuerte están pensados para monitorizar
problemas de reactivo de magnitud substancial. El control ASCA IgG positivo fuerte no puede
asegurar precisión alguna en el punto de corte del ensayo.
e.
El usuario puede referirse al documento NCCLS (National Committee of Clinical Laboratory
Standards) C24-A para una guía adicional acerca de buenas prácticas de laboratorio.18
Cálculo de Resultados
Debe determinarse en primer lugar el promedio de densidades ópticas de cada juego de duplicados. La
reactividad para cada muestra se calcula dividiendo la densidad óptica promedio de la muestra por la
densidad óptica promedio del control ASCA IgG positivo débil.
DO Muestra
Valor de la Muestra = —————————————————— x Valor ELISA Positivo Débil
(unidades)
DO ELISA Positivo Débil
(unidades)
La reactividad de la muestra está relacionada de manera no lineal con la cantidad de anticuerpo presente.
Mientras que los aumentos y disminuciones en la concentración de anticuerpos del paciente se reflejarán en
el aumento o disminución correspondiente de la reactividad, los cambios no son proporcionales (por
ejemplo, al doblarse la concentración de anticuerpo no se dobla la reactividad). Si se deseara una
cuantificación más precisa de la cantidad de anticuerpo, puede informarse como el título de anticuerpo de la
muestra la última dilución positiva de una serie de diluciones seriadas de la muestra.
Interpretación de los Resultados
La técnica ELISA es muy sensible y es capaz de detectar pequeñas diferencias entre poblaciones de
pacientes. Los valores presentados a continuación son sólo valores sugeridos. Cada laboratorio debe
establecer su propio rango normal basado en su propia metodología, controles, equipo y población de
pacientes.
La muestra puede clasificarse con un valor negativo, (negativo para anticuerpo IgG anti S. cerevisiae),
equivoco, o positivo (anticuerpo IgG anti S. cerevisiae detectado) según la tabla siguiente.
Unidades
0.0 – 20.0
20.1 – 24.9
>25
Negativo
Equívocos
Positivo
Las muestras calificadas como equivocas deben ser analizadas de nuevo antes de informarlas.
1.
Un resultado positivo indica la presencia de anticuerpos anti-ASCA IgG y sugiere la
posibilidad de pacientes con la enfermedad de Crohn.
2.
Las muestras con niveles equívocos de anticuerpos IgG ASCA no pueden evaluarse para
saber el estado de los anticuerpos. Si los resultados siguen siendo equívocos después de
repetir el test, deberán considerarse equívocos y/o deberá tomarse otra muestra.
3.
Un resultado negativo indica la ausencia de anticuerpos anti-ASCA IgG o niveles inferiores al
punto de corte del ensayo.
4.
Se sugiere que los resultados informados por el laboratorio incluyan la afirmación “Los
siguientes resultados se obtuvieron con el kit INOVA QUANTA LiteTM ASCA IgG ELISA. Los
valores obtenidos con kits de diferentes fabricantes pueden variar y no pueden
intercambiarse entre ellos. La magnitud de los niveles informados de IgG no puede
correlacionarse con un punto final”.
Limitaciones del Procedimiento
1.
2.
3.
4.
5.
La presencia de inmunocomplejos u otros agregados de inmunoglobulinas en la muestra del
paciente puede producir un aumento de uniones inespecíficas y causar falsos positivos en este
ensayo.
Un resultado negativo para anticuerpos IgG ASCA no permite descartar la presencia de la
enfermedad de Crohn.
Un resultado negativo para anticuerpos IgG ASCA no descarta la presencia de anticuerpos ASCA,
puesto que la concentración de anticuerpos puede estar por debajo del límite de detección del
ensayo.
Un resultado positivo sólo indica la presencia de anticuerpos anti-S. cerevisiae y no indica
necesariamente la presencia de la enfermedad de Crohn.
Los resultados de este ensayo deben utilizarse conjuntamente con hallazgos clínicos y otras
4
6.
7.
pruebas serológicas.
El rendimiento del ensayo no ha sido establecido para pacientes con enfermedad de Crohn o colitis
ulcerosa.
La funcionalidad del ensayo no ha sido establecida para matrices diferentes del suero.
Valores Esperados
Se estima que la prevalencia de la enfermedad de Crohn es de 10 a 198 personas por cada 100,000 y
parece que está en aumento. 4-7 La enfermedad de Crohn es más común en las poblaciones del norte de
Europa y Norteamérica. Esta enfermedad afecta a hombres y mujeres más o menos por igual.
Rango Normal
Se ensayó un panel combinado de 501 muestras de sujetos asintomáticos y sanos procedentes de
California, Nueva York, Austria, Luxemburgo y Bélgica mediante el kit QUANTA LiteTM ASCA IgG ELISA. La
edad de la población variaba entre 1 y 75 años. Para las 5 poblaciones regionales, la especificidad aparente
fue de entre el 92 y el 100% (media = 95.2%). Ninguna de las muestras (0/501) dio positivo para anticuerpos
IgG e IgA anti-ASCA. La especificidad del ensayo ASCA IgG, incluyendo todas las muestras sin enfermedad
de Crohn (controles sanos más las muestras de suero patológico que aparecen), fue del 93.2% (663/711).
Sensibilidad y Especificidad Relativas
Se ensayaron las muestras clínicamente definidas de pacientes con enfermedad de Crohn, colitis ulcerosa y
sanos mediante el kit QUANTA LiteTM ASCA IgG. De los 102 pacientes positivos para anticuerpos IgG e IgA
ASCA, todos menos 2 eran pacientes a los que ya se les había diagnosticado la enfermedad de Crohn.
Ninguno de los controles normales y sólo 2 de las muestras con colitis ulcerosa dieron positivo para
anticuerpos IgG e IgA ASCA. El rango de edades del grupo clínico de pacientes con enfermedad de Crohn y
colitis ulcerosa era de 17 a 64 años y de 19 a 71 años respectivamente.
RESULTADOS QUANTA LiteTM ASCA ELISA
Grupo clínico
Enfermedad de Crohn
Colitis ulcerosa
Controles sanos
N=
215
161
148
IgG Pos
IgA Pos
IgG o IgA Pos
74.4% (157/211) 49.0 (103/210) 76.2% (160/210)
14.2% (22/156)
1.9% (3/158) 14.6% (23/156)
4.1% (6/145)
1.4% (2/147)
5.6% (8/144)
IgG e IgA Pos
47.6% (100/210)
1.3% (2/156)
0% (0/144)
Nota: en los cálculos no se incluyeron los resultados equívocos.
Estudio de la reactividad cruzada
Se ensayaron las muestras de suero de 75 pacientes con anticuerpos de enfermedades autoinmunes o
infecciosas, así como diversos trastornos clínicos, para determinar la reactividad cruzada utilizando el kit
QUANTA LiteTM ASCA (S. cerevisiae) IgG ELISA. Los resultados que se presentan a continuación contienen
datos combinados procedentes de varias clínicas.
Tipo de muestra
Gliadina IgG positivo
Gliadina IgG positivo
Transglutaminasa IgA
Anticuerpos antinucleares (ANA) pos
Hepatitis autoinmune (HAI), tipo 1
H. pylori positivo
Cirrosis hepática con ascitis
Hepatitis alcohólica
Hepatitis C crónica
Enfermedad hepática crónica
Hepatitis Granulomatosa tras vacuna BCG cáncer de vejiga inmuno rx
Hepatitis NOS
Gastroenteritis no infecciosa
Varices esofágicas con hemorragia
n=
12
8
7
8
15
10
1
2
6
2
1
1
1
1
ASCA IgG Positive
0
2 (25%)
0
0
1 (6.6%)
0
0
2 (100%)
1 (16.7%)
0
1 (100%)
0
0
0
Precisión y Reproducibilidad
La repetibilidad intra ensayo del kit QUANTA LiteTM ASCA (S. cerevisiae) IgG ELISA fue evaluada mediante
el análisis de 6 muestras un total de 15 veces cada una.
Spec.A
Media (Unidades)75.6
DE
2.8
CV%
3.7
Spec.B
13.1
0.7
5.2
Spec.C
116.6
3.0
2.6
Spec.D
29.9
1.2
4.1
Spec.E
10.4
0.5
4.5
Spec.F
44.8
1.7
3.8
Se evaluó la variación inter-ensayo testando por duplicado un panel de 8 muestras, dos veces durante 3
días.
Spec.1
Media (Unidades)47.7
DE
1.4
CV%
3.0
Spec.2
11.7
0.4
3.5
Spec.3
123.5
6.7
5.4
Spec.4
38.8
1.4
3.6
5
Spec.5
49.3
1.2
2.4
Spec.6
117.7
5.8
4.9
Spec.7
14.9
0.4
2.6
Spec.8
6.6
0.3
5.0
Referencias
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
Merck
Manual
of
Diagnosis
and
Therapy.
1999.
Whitehouse
Station,
NJ.
(www.merck.com/pubs/mmanual).
Coche J-C and J-F Colombel. Heterogeneity of Inflammatory Bowel Disease: Clinical Subgroups of
Patients. Res. Clin. Forums 20(1): 135-145, 1998.
National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (NIDDK). Crohn’s Disease. NIH
Publication No. 98-3410, 1998.
(www.niddk.nih.gov/health/digest/pubs/crohns/crohns.htm).
Bernstein CN, Blanchard JF, Rawsthorne P and A Wajda. Epidemiology of Crohn’s disease in a
central Canadian province: a population-based study. Am. J. Epidemiol. 149(10): 916-924, 1999.
Loftus EV Jr, Silverstein MD, Sandborn WJ, Tremaine WJ, Harmsen WS and AR Zinsmeister.
Crohn’s disease in Olmsted County, Minnesota, 1940-1993: incidence, prevalence, and survival.
Gastroenterol. 114(6): 1161-1168, 1998.
Niv Y, Abuksis G and GM Fraser. Epidemiology of Crohn’s disease in Israel: a survey of Israeli
kibbutz settlements. Am J. Gastroenterol. 94 (10): 2961-2965,1999.
Shivananda S, Lennard-Jones J, Logan R, Fear N, Price A, Carpenter L and M van Blankenstein.
Incidence of inflammatory bowel disease across Europe: is there a difference between north and
south? Results of the European Collaborative Study on Inflammatory Bowel Disease (EC-IBD). Gut
39:690-697, 1996.
Ruemmele FM, Targan SR, Levy G, Dubinsky M, Braun J and ER Seidman. Diagnostic accuracy of
serological assays in pediatric inflammatory bowel disease. Gastroenterol. 115: 822-829, 1998.
Rutgeerts P and S Vermeire. Clinical value of the detection of antibodies in the serum for diagnosis
and treatment of inflammatory bowel disease. Gastroenterol. 115:1006-1022, 1998.
Panaccione R and WJ Sanborn. Is antibody testing for inflammatory bowel disease clinically useful?
Gastroenterol. 116:1001-1008, 1999.
Main J, McKenzie H, Yeaman GR, Kjerr MA, Robson D and Pennington CR, et al. Antibody to
Saccharomyces cerevisiae (baker’s yeast) in Crohn’s disease. Brit. J. Med. 297:1105-1106, 1988.
McKenzie H, Main J, Pennington CR and D Parrat. Antibody to selected strains of Saccharomyces
cerevisiae (baker’s and brewer’s yeast) and Candida ablicans in Crohn’s Disease. Gut 31:536-538,
1990.
Lindberg E, Magnusson K-E, Tysk C and G Jarnerot. Antibody (IgG, IgA, and IgM) to baker’s yeast
(Saccharomyces cerevisiae), yeast mannan, gliadin, ovalbumin and betalactoglobulin in monozygotic
twins with inflammatory bowel disease. Gut 33: 909-913, 1992.
Sendid B, Colombel JF, Jacquinot PM, Faille C, Fruit J, Cortot A, Lucidarme D, Camus D and D
Poulain. Specific antibody response to oligomannosidic epitopes in Crohn’s Disease. Clin. Diag. Lab.
Immunol. 3(2):219-226, 1996.
Quinton J-F, Sendid B, Reumaux D, Duthilleul P, Cortot A, Grandbastien B, Charrier G, Targan SR,
Colombel J-F and D Poulain. Anti-Saccharomyces cerevisiae mannan antibodies combined with
antineutrophil cytoplasmic autoantibodies in inflammatory bowel disease: prevalence and diagnostic
role. Gut 42:788-791, 1998.
Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories. Center for Disease Control/National
Institute of Health, 1999, Fourth Edition, (HHS Pub. # (CDC) 93-8395).
National Committee for Clinical Laboratory Standards.1991. Internal quality control: Principles and
definitions; Approved Guideline, NCCLS Document C24-A, Vol 11(6).
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