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Guía: Exámenes Especiales
ESCUELA DE SALUD
GUÍA
DIRIGIDO A:
Alumnos de la Escuela de Salud
REQUISITO :
Taller de punciones
Taller de precauciones estándares
DUOC-UC
Escuela de Salud
Guía: Exámenes Especiales
INTRODUCCIÓN
Existe una diferencia importante en pruebas de diagnóstico y el screening. Cuando
un individuo exhibe síntomas o signos de la enfermedad, se llevan a cabo una serie
de pruebas de diagnóstico y tales pruebas no suponen un screening. El objeto del
screening, por el contrario es identificar individuos asintomáticos que probablemente
padecen alguna enfermedad. Se requieren diferentes tipos de pruebas después de
un resultado de screening positivo y es por eso que los “exámenes especiales”
son los que guían el diagnostico para que el médico en conjunto con los signos y
síntomas de la enfermedad, establezca un diagnóstico definitivo.
OBJETIVOS
Al finalizar el taller el alumno será capaz de:
1. Identificar materiales para cada tipo de examen de esta guía.
2. Reconocer la importancia de cada paso involucrado en dicho
procedimiento en el éxito de los resultados. (etapas pre-analítica, analítica
y post-analítica)
3. Realizar los distintos tipos de exámenes.
4. Valorar condiciones que requiere cada examen realizado en taller
REALIZADO POR:
Enfermera- Tecnólogo medico de Laboratorio
DURACIÓN:
90 minutos
NUMERO DE ALUMNOS POR DOCENTE
Máximo 10 alumnos
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MARCO TEÓRICO
ESTOS EXÁMENES SON ESPECÍFICOS PARA EL DIAGNOSTICO DE
DISTINTAS ENFERMEDADES E INVOLUCRAN UNA SERIE DE PROCESOS
ESPECIALES PARA SU EJECUCIÓN
NOTA: repasar Diabetes Mellitus Asignatura “Anatomofisiopatologia”
TEST DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA, GLICEMIA BASAL, GLICEMIAPOST
CARGA, GLICEMIA POST PRANDIAL y HGT
Para hacer más fácil de entender definiremos cada una de estos conceptos:
A. Glicemia
Nivel de glucosa en sangre conocido como glicemia. Los valores normales
varían entre 70 mg/dl y 110 mg/dl. Esta prueba se realiza en un laboratorio
clínico con la muestra de sangre tomada de una vena periférica.
B. Glicemia en ayunas o glicemia basal
Nivel de glucosa en sangre que se mide en la mañana después de haber
ayunado entre un mínimo de 8 y un máximo 12 horas.
C. Glicemia en ayunas alterada
Algunos la definen igualmente como “alteración de la glicemia en ayunas”.
Corresponde al resultado de una glicemia en ayunas entre 110 y 125 mg/dl.
En estos casos se solicita una prueba de tolerancia a la glucosa oral para
definir si la persona presenta una intolerancia a la glucosa o diabetes.
D. Glicemia postcarga o test de tolerancia a la glucosa oral (TTGO)
Nivel de glucosa en sangre que se mide 2 horas después de haber ingerido 75
gramos de glucosa (en niños 1.75 grs. por kilo de peso) disueltos en 250cc. de
agua.
E. Glicemia posprandial o glicemia al azar
Nivel de glucosa en sangre que se obtiene después de haber consumido
algún alimento.
F. Hemoglukotest o glicemia capilar (HGT)
Glicemia obtenida a través de una muestra de sangre capilar proveniente al
hacer una punción del pulpejo de uno de los dedos de la mano y la gota de
sangre obtenida se aplica sobre una cinta que se coloca dentro de un aparato
(Hemoglukotest) que “lee” el resultado.
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Los criterios actuales para el diagnóstico de la Diabetes Mellitus aprobados por la
Asociación Americana de Diabetes (ADA, 1997) y la OMS (1998) son los siguientes:
1) Presencia de síntomas de diabetes (poliuria, polidipsia y pérdida no explicada de
peso) asociados a hiperglicemia superior a 200 mg/dl en cualquier momento del día
(al azar), independientemente del tiempo transcurrido desde la última comida (post
prandial).
2) Glicemia basal en ayunas ≥126 mg/dl confirmada en dos determinaciones, aún
estando asintomático.
3) Glicemia a las dos horas de sobrecarga oral con 75 grs. de glucosa ≥200 mg/dl,
confirmada en dos ocasiones.
Sólo si se da una de estas tres situaciones se puede establecer el diagnóstico de
diabetes.
Tanto la glicemia en ayunas como el test de tolerancia a la glucosa son adecuados
para determinar si hay diabetes. Sin embargo la glicemia en ayunas es preferida
debido a que es más sencilla y más rápido de realizar y más conveniente y aceptable
para el paciente, además de ser más barato.
Glicemia en ayunas < 110 mg/dl
Glicemia Normal
Glicemia 2 horas después de una carga de 75 grs.
de glucosa < a 140mg/dl
Glicemia en ayunas > 110 mg/dl y 126 mg/dl
Glicemia en ayunas
alterada o intolerancia a
la glucosa
Glicemia 2 horas después de una carga de 75 grs.
de glucosa > a 140mg/dl y < a 200 mg/dl
Glicemia en ayunas > a 126 mg/dl
Glicemia 2 horas después de una carga de 75 grs.
de glucosa > a 200 mg/dl
Diabetes
Glicemia al azar > a 200 mg/dl
Síntomas de Diabetes Mellitus
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GASES
A. Gases arteriales:
Se realizan para el estudio de patologías respiratorias, la muestra de sangre
es obtenida al puncionar una arteria para así obtener sangre arterial. Esta
muestra será extraída solo por un profesional; lo que no implica
desconocer el procedimiento en el cual Uds. tendrán muchas veces que
participar.
B. Gases venosos:
Se realiza para el estudio de patologías metabólicas, la muestra de sangre es
obtenida al puncionar una vena para así obtener sangre venosa
TIEMPO DE SANGRÍA
Es una medición en vivo de la función plaquetaria. Existen varios factores que
afectan al Tiempo de sangría: el número de plaquetas, su función y la integridad
vascular.
La hemostasia en una pequeña herida superficial como la provocada en esta prueba
depende de cómo se forma el tapón plaquetario.
El método más antiguo para medir el tiempo de sangría es el método de Duke, que
usaba una lanceta para hacer una punción en el lóbulo de la oreja. Más adelante
sale el método de Ivy donde se crea una presión venosa constante con un manguito
de presión arterial (40 mmHg) y se punciona el antebrazo con un dispositivo especial
para el tiempo de sangría. ( se estandariza el procedimiento)
Estudios recientes sugieren que el resultado de un Tiempo de sangría está
determinado no sólo por el número y función plaquetaria, sino también por el
hematocrito, ciertos componentes del mecanismo de coagulación, calidad de la piel y
técnica.
Cada laboratorio debe establecer su propio intervalo de referencias; (lo que
dependerá del dispositivo que se utiliza) el intervalo general de referencia es de 1 a 9
minutos. Para que sea un reflejo verdadero de la función plaquetaria in vivo, el
paciente debe evitar el uso de algunos medicamentos como aspirina o fármacos
similares durante siete días antes de la práctica de la prueba, ya que su ingestión
resulta en la prolongación del tiempo de sangría. ( en caso de estar con esta
indicación hecha por el medico se le debe sugerir al paciente que consulte
previamente al respecto)
Las causas posibles de disfunción plaquetaria incluyen: disfunciones hereditarias y
adquiridas de las plaquetas; enfermedad de Von Willebrand, afibrinogenemia,
hipofibrionogenemia y algunos trastornos vasculares.
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HEMOCULTIVOS
La indicación clásica de obtener hemocultivos, es la sospecha de bacteriemia en
pacientes con o sin foco aparente de infección. Los factores clásicos asociados a la
presencia de bacteremia verdadera, son la presencia de calofríos y fiebre mayor a
38,5ºC, existencia de enfermedades subyacentes graves (usualmente mortales a un
plazo no mayor de 5 años), cuadros de abdomen agudo y el antecedente de
drogadicción intravenosa. También todas aquellas infecciones que producen
bacteriemias continuas, como la endocarditis bacteriana y en general las infecciones
endovasculares.
En los casos en que no existe alguno de estos marcadores de bacteremia o cuando
el paciente ya esté recibiendo antimicrobianos, la probabilidad de aislar agentes
infecciosos en hemocultivos disminuye en forma muy significativa.
Se ha documentado que el mejor momento para obtener la muestra de sangre es
entre 2 horas a 30 minutos antes del peak febril (es importante recordar que los
pacientes ancianos o inmunodeprimidos pueden hacer bacteremias sin alzas
significativas de temperaturas, es decir mayor a 38.5 ºC). Dado que no se puede
predecir el momento del peak, se recomienda en forma arbitraria obtener tres
hemocultivos en 24 horas, tomados cada 30 a 90 minutos. Si se trata de un paciente
grave, se recomienda obtener los 2 a 3 hemocultivos dentro de un período corto de
tiempo e iniciar precozmente la terapia antimicrobiana.
La recomendación general es 2 a 3 hemocultivos en un período de 24 horas. Se ha
demostrado que en un episodio bacterémico la positividad de uno, dos y tres
hemocultivos corresponde a 80%, 90% y 99% respectivamente. La obtención de 2 a
3 hemocultivos en 24 horas no sólo aumenta la probabilidad de recuperar las
bacterias a partir de la sangre, sino que también permite diferenciar una bacteremia
verdadera de una contaminación.
INSUMOS Y EQUIPOS NECESARIOS PARA EL TALLER
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
Sala de simulación con lavamanos y mesones
Jabón
Clinic mano
Don José (simulador)
Codos y brazos de simulación
Cajas de cortopunzantes (mínimo 4)
Pinzas kelly (mínimo 4)
1 Gradilla
3 equipo de HGT (con lápiz porta lancetas)
Termómetro (mínimo 4)
Esfigmomanómetro (mínimo 4)
Cronómetro (mínimo 4)
Dispositivo surgicut (pediátrico, niño y adulto, uno de cada uno)
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TEST DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA, GLICEMIA POST CARGA Y HGT
Por alumno:
 1 Par de guantes de procedimientos.
 1 Camisa venoject
 1 Ligadura por alumno
 1 Aguja Venoject
 Alcohol o sachets de alcohol
 2 tubos de fluoruro o cualquier tipo de tubo ( por lo menos 1 fluoruro por
taller)
 2 Tórulas de algodón
 Parche curita
 Lápiz
 1 Vaso de 250 cc.
 1 Limón
 1 Baja lengua desechable
 1 Bolsa de 75 grs. de glucosa (o bolsitas con azúcar simulando glucosa)
 1 Timer o alarma horaria.
 1 Cinta de HGT
 1 lanceta
GASES
Por docente
 1 Jeringa de gases
 1 Aguja Nº 21G
 1 Aguja Nº 23G
 Hielo o unidad refrigerante
 1 Par de guantes de procedimientos
 2 Tórulas de algodón
 Alcohol al 70% o sachets
 1 Parche curita
 Pinza kelly
TIEMPO DE SANGRÍA
Por alumno:
 1Papel filtro
 1 torula de algodón
 Alcohol al 70% o sachets
 1 Par de guantes de procedimiento
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HEMOCULTIVOS
Preparación del paciente:
Agua
Jabón Compresa
Toalla de papel
Por docente
 Frasco de alcohol
 1 Par de guantes estériles
 1 Frasco para hemocultivo
 1 Jeringa de 10cc.
 1 Mascarilla desechable
 1 Paño clínico perforado
 1 aguja Nº 21G
 1 torula de gasa estéril
 Ligadura
 1 par de guante de procedimiento para el alumno
 Parche curita
 Orden de examen
 Termómetro ( alumno)

DESCRIPCION DEL PROCEDIMIENTO
NOTA: REVISAR GUÍA TALLER DE “PUNCIÓN DEL PULPEJO”
HGT (este examen se recomienda realizar previo a una sobrecarga de glucosa)
 Lo primero, es que usted conozca como funciona el equipo de HGT que
utilizara. (tipo de cinta, como insertar el código, tipo de lancetero, etc)
 Lavado de manos.
 Explicar al paciente el procedimiento.
 Valorar temperatura de los dedos (el frío produce vasoconstricción, si los
dedos están fríos frotar para aumentar la Tº o solicitar al paciente que se lave
las manos con agua caliente)
 El sitio de punción es la superficie lateral del dedo medio o anular,
preferiblemente.
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 Una vez escogido el sitio de la punción, puede dar un ligero masaje al área
para concentrar la sangre.
 Limpie el sitio con tórula seca
 Con una mano sostenga el dedo o área a puncionar y con la otra sostenga la
lanceta.
 Haga la punción con la lanceta o lápiz lancetero, realizando un movimiento
rápido, firme y profundo.
 Después de puncionar, descartar la primera gota de sangre, que contiene
líquido tisular, limpiándolo con el algodón.
 Presione el dedo para hacer salir la sangre, procurando que sea de manera
ininterrumpida.
 Deje caer la gota en el receptor (cinta de HGT)
 Coloque un algodón seco sobre el sitio puncionado haciendo presión para
parar el sangramiento.
 Lea la cifra que indica el HGT
 Explique al paciente que el procedimiento ha terminado.
 Lavese las manos.
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TEST DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA
 Verifique que el paciente viene en ayunas (exigencia mínima 8 horas y hasta
12 horas).
 Explique el procedimiento al paciente:
a. Tiempo de duración de la prueba mínimo de 2 horas en el
laboratorio
b. Nº de punciones, mínimo 2 veces
c. Condiciones del examen, debe permanecer sentado sin realizar
ejercicios ni pasearse.
d. No debe consumir ningún alimento ni fumar hasta que termine el
examen.
e. Que debe tomar un vaso con “azúcar” (75 grs. de glucosa)
f. El limón es para agregárselo a la glucosa para que sea mejor
tolerada (no es obligación)
g. Si presenta vómitos la prueba se debe suspender y realizar en otra
oportunidad.
 Lavado de manos
 Reúna el material necesario para el procedimiento
 Tome HGT (ya conoce la técnica), si el valor es > a 140 mg/dl no se puede dar
la glucosa y se suspende la prueba (esto depende de cada laboratorio), si el
resultado es < a 140 mg/dl siga con los siguientes pasos
 Prepare la glucosa: coloque agua tibia en el vaso hasta la mitad, agregue la
glucosa (según indicación) y agite con baja lengua, coloque el jugo del limón
(opcional para ser mejor tolerado) y llene con agua hasta completar 250 cc.
Siga revolviendo para que no precipite la glucosa en el fondo del vaso.
 Realice la punción (ya conoce la técnica)
 Solicite al paciente que beba el vaso en un tiempo menor de 5 minutos.
 Una vez que termina de beber el contenido se toma el tiempo para la segunda
muestra después de 2 horas.
 Coloque el timer en 60 (luego debe colocarlo nuevamente en 60 para
completar las 2 horas)
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Recuerde al paciente el reposo, no comer ni fumar y que debe esperar 2 horas…
 2 horas después
 Realice la punción (ya conoce la técnica)
 Indique al paciente que el procedimiento ha terminado
GASES (Colabora en el procedimiento, debe preparar material , al paciente
y saber como enviar lamuestra)
 Se toma muestra con técnica estándar.
 Se debe eliminar las burbujas de aire y se sella con la tapa que trae la jeringa
(NUNCA SE DEBE DEJAR LA AGUJA PUESTA).
 Colocar la jeringa entre hielos.
 Anotar en rotulo de la jeringa: nombre del paciente, Tº, FIO 2
TIEMPO DE SANGRÍA






Explicar procedimiento al paciente.
Reúna el material
Explicar la posibilidad de quede una pequeña cicatriz en sitio de punción.
Lavado de manos.
Sentar cómodamente. Si es niño es preferible tomar acostado en camilla.
Escoger en el antebrazo una zona de piel sana, libre de vellos. La región mas
adecuada es la zona interna del antebrazo 2 a 3 cm. bajo el pliegue.
 Colocar el mango del Esfigmomanómetro en el brazo (Las mangueras deben
quedar hacia el pliegue y la ropa no debe ejercer presión).
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 Sacar el seguro del Dispositivo (surgicut) a usar (adulto, niño y pediátrico)





Limpiar la zona con alcohol, deje secar.
Insuflar el mango con 40 mmHg. en adultos y 30 mmHg. en niños.
Apoyar el dispositivo en el brazo, de forma paralela al pliegue.
Oprima el gatillo.
Active el cronómetro.
 Cada 30 segundos absorba la sangre con el papel filtro sin tocar los bordes de
la incisión.
 Realice esto hasta que el papel no se manche, es decir, se produzca la
formación del tapón plaquetario.
 Desinflar y quitar el manguito.
 Afrontar bien los bordes de la incisión con el parche.
 Anote el tiempo de sangramiento.
CONTRAINDICACIONES: tratamientos con drogas que contengan ácido acetil
salicílico (Ej.: Alk-Seltzer, Anacin, Aspirina, Cafiaspirina, Cápsulas
antigripales, Cardioaspirina, Cheracol, Dominal, Ecotrin, Ewin, Yasta).
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HEMOCULTIVOS Colabora en el procedimiento, es presentación de materiales
y rotula y envó de exmanees)
 Solicitar orden médica al paciente y verificar cantidad de hemocultivos y si los
requiere con o sin fiebre.
 Explicar procedimiento al paciente
 Lavado de manos.
 Controlar temperatura axilar.
 Preparar unidad de toma de muestra y materiales. Se debe escoger un box
que no tenga circulación de gente.
 Seleccione el sitio de punción
 Palpe la vena y luego lavar piel con jabón y agua que escurra, secar con clinic
o equivalente.
 Solicite al paciente que mire hacia un lado para evitar que respire sobre la
zona de punción y la contamine.
 Colóquese la mascarilla
 Lavese las manos para iniciar el procedimiento.
 Prepare el material estéril en el campo.
 Ponga la jeringa y la tórulas estériles y el sachets, abra y presente el paño
perforado.
 Coloque el paño perforado en el brazo
 Limpiar piel con tórula con alcohol. Se realiza de adentro hacia fuera sin volver
al sitio anterior (en espiral). Secar con torula estéril.
 Ligue al paciente
 Colóquese guantes estériles
 Puncione con precisión y seguridad, extraiga la cantidad de sangre
correspondiente al contenido del frasco (10 % del contenido del caldo,
evaluando si es para adulto o niños )
 Cambie la aguja
 Limpie el tapón del frasco
 Puncione el frasco de hemocultivo.
 …30 minutos después
 …Puncione la siguiente muestra con la misma técnica, escogiendo otro sitio
de punción. (los tiempos entre muestras pueden ser mas distanciados)
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BIBLIOGRAFÍA
a) Hospital Clínico de la Universidad de Chile. Control de infecciones
intrahospitalarias, Productos Farmacéuticos y Normas Transfusionales.2001
b) www.nutricionistasdechile.cl/noticias/protocolos/PROTOCOLO%20DM%20TIPO%201
c) Brunner y Sudarth. Enfermería Medicoquirúrgica. Editorial McGraw-Hill
Interamericana. Volumen I .241.1998.
d) Eliana Escudero. Normas generales de Laboratorio Clínico. 2002
procedimiento del taller para instrucción docente
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ANEXO GUIA PARA EL DOCENTE
DESCRIPCION DEL PROCEDIMIENTO
EVIDENCIAS:
El alumno será capaz de:
-
Reconocer el valor del examen de laboratorio clínico como apoyo al diagnostico medico
Valorar la responsabilidad del técnico en la calidad de una muestra a través de
comprender cada etapa del proceso de un examen.
INTRUCCIONES:
A continuación, se proponen escenarios de trabajo para el taller.
Los alumnos deberán ser divididos en grupos en relación al número de escenarios
propuestos.
El docente facilitará el aprendizaje de las habilidades de los alumnos, enseñando, reforzando
y permitiendo que el alumno desarrolle destrezas hasta lograr en forma correcta realizar la
técnica o procedimiento solicitado en cada escenario.
Todos los grupos de trabajo deben rotar por los escenarios.
PROPUESTA DE ESCENARIOS DE PROCEDIMIENTOS PARA EL TALLER:
Escenario 1:
Toma muestra de hemoglucotest.
Preparación de solución para test de tolerancia a la glucosa.
Análisis de valores normales
Escenario 2:
Preparación del paciente y colaboración en la toma de muestra de gases arteriales.
Precauciones del transporte de la muestra.
Escenario 3:
Medición de tiempo de sangría
Análisis de valores normales
Escenario 4:
Preparación del paciente para toma de muestra para hemocultivo
Colaboración en la toma de muestra para hemocultivo.
Precauciones del envío de la muestra.
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METODOLOGÍA DE EVALUACIÓN
INTRUCCIONES:
El docente aplicará la pauta de evaluación correspondiente.
El docente preparará los escenarios de acuerdo a las situaciones planteadas, con los
materiales entregados, antes de realizar la evaluación.
SITUACIONES DE SIMULACIÓN PARA EVALUACION
SITUACION 1:
Paciente hospitalizado en UCI por traumatismo de tórax severo, conectado a
ventilación mecánica, por lo que se encuentra con control de gases arteriales cada
24 horas. Prepare el material para la toma de muestra, asista a la enfermera en el
procedimiento. Luego de realizado el examen, rotule y envíe a laboratorio.
SITUACION 2:
Paciente hospitalizada en UCI con shock séptico producido por infección de herida
operatoria en abdomen, resistente a tratamiento antibiótico. El médico indica tomar
hemocultivos. Prepare el material, al paciente y asista a la enfermera en la toma de
muestra del examen.
SITUACION 3:
Paciente de 60 años que se controla en el Consultorio por Diabetes mellitas. Realice
un hemoglucotest previo, de control. Diga que hace si el resultado del examen es de
350mg/dl.
SITUACION 4:
Paciente de 40 años, en estudio por hipofibrinogenemia. El médico solicita realizar
un tiempo de sangría. Realice el procedimiento. Diga que hace si al preguntar el
tratamiento, la paciente le dice que usa cardioaspirina en forma permanente.
SITUACION 5:
Ingresa al Servicio de Urgencia, paciente de 20 años de edad con compromiso de
conciencia. Tiene antecedentes de diabetes en tratamiento con insulina.
El médico le indica realizar un hemoglucotest.
SITUACION 6:
Llega al laboratorio paciente de 30 años de edad con indicación de test de tolerancia
a la glucosa.
Prepare el examen y entregue las indicaciones de éste al paciente.
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SITUACION 7:
Paciente de 70 años de edad, hospitalizado en el servicio de Medicina por
insuficiencia respiratoria producida por neumonía. El médico indica control de gases
arteriales.
Prepare el material y asista a la enfermera en la toma de muestra y envió de la
muestra al laboratorio.
SITUACION 8:
Paciente de 40 años de edad, operada de histerectomía, presenta cuadro febril de
39°C de temperatura, sin signos de infección en la herida operatoria. Para confirmar
diagnóstico, el médico solicita la toma de muestra de hemocultivos.
Prepare el examen y asista a la enfermera en la toma de muestra.
SITUACION 9:
Consulta en policlínico de medicina, paciente de 18 años de edad. El médico
sospecha una enfermedad plaquetaria y lo envía con una orden de examen para
tiempo de sangría.
Realice el tiempo de sangría en el simulador y en lo posible en un compañero
voluntario.
SITUACION 10:
Ingresa al laboratorio, paciente de 40 años de edad para toma de muestra de test de
tolerancia a la glucosa. Antes del inicio de examen debe tomar un hemoglucotest.
Realice el hemoglucotest y señale el resultado que necesita para continuar con el
examen.
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