Microscopio. Telescopio

1. Introducción
Un microscopio simple (de un lente o varios lentes), es un instrumento que amplifica una imagen y
permite la observación de mayores detalles de los posibles a simple vista. El microscopio más simple es
una lente de aumento o un par de anteojos.
El poder de resolución del ojo humano es de 0,2 mm es decir que para ver dos objetos separados estos
deben estar como mínimo a esa distancia.
El microscopio aumenta la imagen hasta el nivel de la retina, para captar la información.
La resolución depende de la longitud de onda de la fuente luminosa, el espesor del espécimen, la calidad
de la fijación y la
intensidad de la coloración.
Teóricamente la máxima resolución que se puede alcanzar es de 0,2 um dada por una luz con longitud
de onda de 540 nm, la cual pasa por un filtro verde (muy sensible por el ojo humano) y con objetos
condensadores adecuados. El ocular aumenta la imagen producida por el objetivo, pero no puede
aumentar la resolución.
Existen distintos microscopios ópticos generales y de investigación que se diferencian en factores tales
como la longitud de onda de la iluminación del espécimen, la alteración física de la luz que incide en la
muestra y procesos analíticos que se aplican a la imagen final.
2. Tipos de microscopios
Microscopio de campo claro − Es descendiente de los disponibles a partir de 1800.
Compuestos por:
Fuente luminosa que ilumina la muestra
Condensador que enfoca los rayos de luz sobre la muestra
Platina sobre la cual se coloca la muestra
Objetivo que recibe la luz que atravesó la muestra
Ocular que recibe directamente la imagen formada por el objetivo
La muestra a observar debe ser fina para que pueda ser atravesada por la luz. Con este tipo de
microscopio se deben utilizar métodos de tinción porque el campo claro de este no produce un nivel útil
de contraste.
Microscopio de contraste de fase − Permite observar células sin colorear y resulta especialmente útil
para células vivas.
Este aprovecha las pequeñas diferencias de los índices de refracción en las distintas partes de una célula
y en distintas partes de una muestra de tejido. La luz que pasa por regiones de mayor índice de
refracción experimenta una deflexión y queda fuera de fase con respecto al haz principal de ondas de
luz que pasaron la muestra. Aparea otras longitudes de onda fuera de fase por medio de una serie de
anillos ópticos del objetivo y del condensador, anula la amplitud de la porción fuera de fase inicial del
haz de luz y produce un contraste útil sobre la imagen. Las partes oscuras de la imagen corresponden a
las porciones densas del espécimen; las partes claras de la imagen corresponden a porciones menos
densas. Por lo tanto estos microscopios se utilizan para observar células vivas, tejidos vivos y cortes
semifinos no coloreados.
Dos modificaciones del microscopio de fase son el microscopio de interferencia y el microscopio de
interferencia diferencial.
Microscopio de campo oscuro − El objetivo recibe la luz dispersa o refractada por las estructuras del
espécimen. Para lograrlo, el microscopio de campo oscuro está equipado con un condensador especial
que ilumina la muestra con luz fuerte indirecta. En consecuencia el campo visual se observa como un
fondo oscuro sobre el cual aparecen pequeñas partículas brillantes de la muestra que reflejan parte de
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la luz hacia el objetivo.
El efecto es similar a las partículas de polvo que se ven en el haz de luz emanado de un proyector de
diapositivas en una habitación oscura. La luz reflejada por las partículas de polvo llegan hasta la retina
del ojo y las hacen visibles.
La resolución de este microscopio no puede ser mejor que la del microscopio de campo oscuro porque
emplea la misma fuente de longitud de onda, sin embargo puede detectar partículas individuales más
pequeñas en las imágenes de campo oscuro, debido al contraste creado.
Es útil para observar autorradiografías, cristales en la orina y para detectar espiroquetas en particular
el Treponema pallidum microorganismo causante de la sífilis.
Microscopio de fluorescencia − Una molécula que fluorece emite luz de longitud de onda que se
encuentra dentro del espectro visible, cuando es expuesta a una fuente de luz ultravioleta. Se usa para
revelar moléculas fluorescentes naturales, como la vitamina A y algunos neurotransmisores. Al ser
escasas las moléculas autofluorecentes su aplicación más difundida es para revelar una fluorescencia
agregada, como en la detección de antígenos o anticuerpos en procedimientos de coloración
inmunocitoquímica. También se puede inyectar moléculas fluorescentes específicas en un animal o
directamente en células y usarlas como marcadores. Estos métodos sirvieron para estudiar uniones
intercelulares, trayectorias de las fibras nerviosas en neurobiología y en detección de marcadores del
crecimiento fluorescentes en tejidos mineralizados.
Se insertan distintos filtros entre la fuente de luz ultravioleta y la muestra para producir luz
monocromática o casi monocromática, o entre el espécimen y el objetivo permitiendo que la estrecha
banda de longitudes de onda de fluorescencia llegue hasta el ojo o incida en una emulación fotográfica u
otro procedimiento analítico.
Microscopio de barrido confocal − Se usa para estudiar la estructura de los materiales biológicos.
Emplea un sistema de iluminación con rayo láser que es muy convergente y, en consecuencia produce
un punto de barrido muy poco profundo. La luz que emerge del punto es dirigida a un tubo
fotomultiplicador, donde es analizada. Se utiliza un sistema de espejos para mover el rayo láser a través
del espécimen, iluminando un solo punto por vez. Se registran los datos de cada punto de la muestra
recorrida con este rayo móvil y se guardan en una computadora. Luego se puede llevar la imagen a un
monitor de alta resolución. Este método tiene la ventaja de que se pueden tomar imágenes de la
muestra en cortes muy finos. Las regiones fuera de foco se restan de la imagen mediante un programa
para dar una definición máxima a la imagen.
Es posible también crear imágenes múltiples a diferentes profundidades dentro del espécimen y realizar
reconstrucciones tridimensionales.
Microscopio de luz ultravioleta − La imagen en el microscopio de luz ultravioleta depende de la
absorción de esa luz por las moléculas de la muestra. La fuente de luz ultravioleta tiene una longitud de
onda de 200 nm, por lo tanto puede alcanzar una resolución de 0,1 um. La microscopia ultravioleta no
es muy diferente del funcionamiento de un espectrofotómetro pero sus resultados son registrados en
fotografías. La muestra no se puede observar directamente a través del ocular porque la luz
ultravioleta puede dañar la retina.
El método sirve para detectar ácidos nucleicos, proteínas que contienen determinados aminoácidos.
Mediante longitudes de ondas específicas para la iluminación se puede obtener mediciones
espectrofotométricas para cuntificar el DNA y el RNA de cada célula.
Microscopio de polarización − Este microscopio es una simple modificación del microscopio óptico,
contiene un filtro polarizante llamado polarizador entre la fuente de luz y la muestra y se ubica un
segundo polarizador, denominado analizador entre el objetivo y el observador.
Se puede rotar el polarizador y el analizador; la diferencia entre sus ángulos de rotación se usa para
determinar el grado en que una estructura afecta el haz de luz polarizada. La capacidad que tiene un
cristal o estructura cristalina de rotar el plano de la luz polarizada se denomina birrefringencia.
Exhiben birrefringencia el músculo estriado o esquelético y las inclusiones cristaloides de las células
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intersticiales testiculares.
3. Microscopia electrónica
Dentro de los microscopios electrónico tenemos el de barrido y el de transmisión.
La ventaja de los microscopios electrónicos frente a los ópticos esta en que la longitud de onda del haz
de luz es aproximadamente 1/200, lo cual aumenta la resolución.
Microscopio electrónico de transmisión − La óptica es muy similar al óptico pero se diferencia en que
usa un haz de electrones en vez de un haz de luz visible.
Este microscopio se basa en los siguientes principios:
− Una fuente, un filamento de tungsteno calentado que emite electrones (cátodo)
• Un ánodo, hacia el cual son atraídos los electrones
• Una diferencia de potencial entre el cátodo y el ánodo imparte un voltaje de aceleración entre
20.000 y 200.000 voltios a los electrones, que crea la haz
• El haz pasa por una serie de electroimanes que tienen las mismas funciones que las lentes de
vidrio de un microscopio óptico
El condensador forma el haz y modifica el diámetro del haz que incide en el plano del espécimen. El haz
que atraviesa la muestra se coloca en foco y se aumenta por medio de un objetivo y se aumenta aun más
con una o más lentes proyectoras. La imagen final se visualiza sobre una planilla cubierta por fósforo.
Las porciones de la muestra que han sido atravesadas por los electrones aparecen brillantes, las
porciones que absorvieron o esparcieron los electrones por su densidad inherente o debido al agregado
de metales pesados durante la preparación del espécimen aparecen oscuras. Se coloca una placa
fotográfica o un detector de video por encima o por debajo de la pantalla del visor, con la finalidad de
obtener un registro permanente de la imagen sobre la pantalla.
Las muestras se preparan sobre la misma base que la del microscopio óptico pero requieren métodos
más finos.
Los preparados la restricción que tienen es que en cada paso se trabaja con especimenes de magnitud
3−4 órdenes menores o más finos que los utilizados para el microscopio óptico. Debido a la gran
resolución de estos microscopios electrónicos la calidad de la fijación, es decir el grado de preservación
de la estructura subcelular debe ser la mejor posible.
La preparación de rutina de los especimenes para la microscopia electrónica de transmisión comienza
con la fijación con glutaraldehído, seguida de un lavado con un buffer y de una fijación con tetróxido de
osmio.
Por lo general, se fijan para el microscopio electrónico de transmisión piezas de tejido no mayores de 1
mm3
El proceso de deshidratación es idéntico al empleado en la microscopia óptica
El tejido incluido en material plástico se secciona por medio de micrótomos especialmente diseñados,
que usan cuchillas de diamante.
Debido al limitado poder de penetración de los electrones, el espesor de los cortes preparados para el
microscopio electrónico de transmisión varia entre 50 nm y 150 nm. Estos cortes son demasiado finos
para poder ser manipulados; se los hace flotar desde el filo de la cuchilla en la superficie de una
bandeja llena de líquido, se recuperan y se colocan en rejillas de malla de cobre recubiertas por
plástico. Estas rejillas tienen 50−400 orificios por pulgada o hendiduras especiales para observar cortes
seriados.
Por lo general, la coloración de los cortes para microscopio electrónico de transmisión se realiza por
medio del agregado a la muestra de materiales de elevada densidad, tales como iones de metales
pesados. Estos iones de metales pesados se unen a los tejidos durante la fijación o la deshidratación o al
sumergir las muestras en soluciones de tales iones después del corte. El teróxido de osmio que se emplea
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de rutina en el fijador se une a los componentes fosfolipídicos de las membranas, lo cual agraga
densidad a la membrana.
A menudo se agrega nitrato de uranilo a las soluciones alcohólicas usadas en la deshidratación, con el
fin de agregar densidad a los componentes de las uniones celulares y a otros sitios. La inmersión
secuencial en soluciones de acetato de uranilo y citrato de plomo se usa rutinariamente para teñir los
cortes antes de observarlos con microscopio electrónico de transmisión.
La congelación−fractura es un método especial de preparación de la muestra para microscopia
electrónica de transmisión, de gran importancia en el estudio de membranas.
El material a examinar puede estar fijado o no; en el primer caso se elimina el fijador del tejido por
medio de lavados, antes de procesarlo. Se infiltra el tejido con un crioprotector, como el glicerol y se
congela rápidamente a unos −160 grados centígrados.
Microscopio electrónico de barrido − Se asemeja más que al microscopio electrónico de transmisión a
los tubos de televisión de donde deriva la microscopia electrónica. Para analizar la mayoría de los
tejidos se deja la muestra, se deshidrata por desecación de punto crítico, se cubre con una película
evaporada de oro−carbón, se monta en un taco de aluminio y se coloca en la cámara de muestras del
microscopio. En los tejidos mineralizados es posible eliminar todos los tejidos blandos con una lejía y
analizar las características estructurales del mineral.
Se logra el barrido con el mismo tipo de rastreo que explora el haz de electrones a través de la
superficie un tubo de televisión. Los electrones reflejados desde la superficie y los electrones forzados
hacia el exterior de la superficie son captados por uno o más detectores y reprocesados para formar una
imagen tridimensional en un televisión.
Se pueden tomar fotografías para registrar los datos o la imagen en una cinta de video. Se pueden usar
otros detectores para medir los rayos X emitidos desde la superficie, la catodoluminiscencia de las
moléculas del tejido por debajo de la superficie y los electrones de Auger emitidos en la superficie.
Muchos microscopios combinan las características de un microscopio electrónico de transmisión y de
barrido, el cual permite microanálisis por rayos X con sonda electrónica.
Se pueden adosar detectores al microscopio para reunir los rayos X emitidos cuando el haz de
bombardea el corte histológico, y mediante analizadores apropiados se construye un mapa que muestra
la distribución en los cortes de los elementos que tienen número atómico mayor de 12, en concentración
suficiente para producir rayos X en cantidad tal que se pueda analizar.
ð Características de un telescopio
Una de las características más importantes de cualquier tipo de telescopio, es sin duda la cantidad de
luz que puede recibir. De nada servirá un aparato con grandes aumentos si su apertura es pequeña, se
necesita un compendio entre estas dos cualidades para poder realizar observaciones de verdadera
calidad. Para calcular las ampliaciones máximas y mínimas sobre las que debemos basarnos a la hora
de trabajar, existe una sencilla fórmula que nos permitirá conocer la franja sobre la que nuestro
aparato nos permite movernos:
ð Para calcular la ampliación mínima óptima, bastará multiplicar el diámetro x 0,15.
ð Para calcular la ampliación máxima óptima, bastará multiplicar el diámetro x 2,4.
Estas fórmulas son válidas para aparatos con un diámetro no superior a 300mm, así pues y como
ejemplo: Para un telescopio de 100mm de diámetro, el límite inferior de aumentos se situaría en 100 x
0,15 = 15x y para el límite superior, el aumento máximo aconsejable sería de 100 x 2,4 = 240x. Esto
anterior no quiere decir que no se puedan conseguir aumentos mayores o menores, simplemente indica
la franja de ampliaciones sobre las que podremos realizar observaciones de calidad.
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También es muy importante el poder de resolución de aparato, es decir: La capacidad de separar
detalles muy cercanos y que está irremediablemente ligado al diámetro del objetivo:
ð El poder de resolución (Pr) es el resultante de dividir 115, que es la constante, entre el diámetro del
objetivo (D): La fórmula es la siguiente [Pr = 115/D]. EJEMPLO: Para un telescopio de 90mm, su
poder de resolución sería; [Pr=115/90 = 1,27"]. Estos datos son aproximativos, para hacer un cálculo
más preciso tendríamos que tener en cuenta otros factores, como son los atmosféricos, de
contaminación lumínica, etc.
La relación de apertura en un telescopio, es también de suma importancia para determinar el uso final
que se le ha de dar a éste:
ð La relación focal o relación de apertura de un telescopio, se determina dividiendo la longitud focal(F)
entre su diámetro. Contra más alta sea la relación de apertura, menor campo visual tendremos y en el
caso que querer realizar fotografías, mayor exposición necesitaremos. Supongamos que disponemos de
dos telescopios; Uno con una longitud focal de 1200mm y diámetro de 240mm; Y otro de longitud focal
900mm y diámetro de 80mm: Las relaciones de apertura, serían para el primero de [1200(F)/240= f5] y
para el segundo de [900(F)/80= f11,25]. De aquí se desprende que el primer ejemplo tendrá una focal
baja o lo que es lo mismo, un campo de visión alto lo cual permite que la luminosidad recibida también
sea muy elevada, con lo que tendremos un buen aparato capaz de vislumbrar objetos oscuros y
permitirnos disponer en el ocular de una amplia franja del cielo, permitiéndonos localizar los objetos
deseados con una gran facilidad. En el segundo ejemplo, sin embargo la relación focal es muy alta, esto
indica que el campo de visión es muy reducido, así como la luminosidad recibida que también es escasa,
impidiendo la localización de objetos oscuros y siendo desaconsejable para la astrofotografía, ya que
con escasa luminosidad, las exposiciones deben ser muy altas y eso unido al escaso campo de visión que
ofrecen, obliga a reajustar el telescopio para poder seguir el objeto a fotografiar. Lo ideal es disponer
de una relación focal media, esto es, aparatos con una franja comprendida entre f6 y f10−f11, que son
aptos tanto para realizar fotografías, como para observar planetas y objetos oscuros o distantes.
Una última característica y no por eso menos importante, es calcular a que aumentos estamos
trabajando:
ð Para el aumento con el que vamos a trabajar con nuestro telescopio, debemos fijarnos en la medida
que indica el ocular: Como ejemplo utilizaremos un caso práctico; Supongamos que hemos adquirido
un aparato con 70mm de diámetro de objetivo y una longitud focal de 900mm . Estos aparatos,
normalmente vienen dotados de dos tipos de lentes, una de 20mm y otra de 6mm. Para calcular los
aumentos que conseguiremos con ellas, bastará dividir la longitud focal, por el tamaño de la lente a
usar, así para 20mm [900(F)/20mm =45x] y para 6mm [900(F)/6mm=150x], con lo que dispondremos de
lentes que nos permitirán aumentos comprendidos entre los 45x y los 150x respectivamente.
Los aumentos a los que trabaja un telescopio no debemos dejar que nos impresionen, lo más importante
es la relación entre la longitud focal (F) y el diámetro del objetivo (D). 150x usados en un telescopio de
200mm permitirán ver muchos más detalles y con más claridad que esos mismos usados en un aparato
de 120mm, ya que lo importante es la cantidad de luz que recibimos en el ocular (a mayor diámetro
mayor capacidad de focalizar la luz), relegando a un segundo puesto el número de aumentos a
conseguir.
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