LAS HISTONAS DE LAS HISTONAS DE LEISHMANIA LEISHMANIA

Gaz. méd. Bahia 2009;79 (Supl.3):129-133
Las Histonas de Leishmania
129
LAS HISTONAS DE LEISHMANIA
LEISHMANIA HISTONES
Laura Ramírez 1, Salvador Iborra2, Camila Indiani de Oliveira3, Marcia Weber3, Daniel R. Abánades1, Victor M.
González4, Laura Corvo1, Carlos G. Nieto5, Carlos Alonso1, Pedro Bonay1, Aldina Barral3, Manoel Barral-Netto3,
Manuel Soto1
1
Centro de Biología Molecular Severo Ochoa, (CSIC-UAM). Departamento de Biología Molecular, Facultad de Ciencias,
Universidad Autónoma de Madrid, Madrid, España; 2Unidad de Inmunología Viral, Centro Nacional de Microbiología, Instituto
de Salud Carlos III, Majadahonda, Madrid, España; 3Centro de Pesquisas Gonçalo Moniz/CPqGM - Fundação Oswaldo Cruz/
FIOCRUZ; 4Departamento de Bioquímica-Investigación, Hospital Ramón y Cajal, Madrid, España; 5Departamento de
Parasitología, Facultad de Veterinaria, Universidad de Extremadura, Cáceres, España
Los genes que codifican para las diferentes histonas de Leishmania han sido caracterizados en la última década del
siglo XX. En este artículo de revisión describimos los principales aspectos relacionados con la organización génica
y la expresión regulada durante el ciclo celular de los genes codificantes para las histonas de Leishmania. En este
trabajo también hemos revisado los datos relacionados con la antigenicidad y la inmunogenicidad de las histonas
del parásito durante la infección natural de diferentes especies de Leishmania en humanos y perros. Se discuten los
principales aspectos de la respuesta inmunitaria generada contra las histonas del parásito. Finalmente, hemos
analizado los resultados obtenidos cuando estos antígenos parasitarios fueron empleados como moléculas profilácticas
contra la infección del parásito en diferentes modelos de leishmaniosis cutánea y visceral.
Palabras-clave: Leishmania, genes, expresión, histonas, antígenos, diagnóstico, vacunas.
In the last decade of the XXth century the genes coding for different Leishmania histones have been characterized. In this
review article we describe the main aspects related with the gene organization and the cell cycle regulated expression of
Leishmania histone coding genes. In this work we have also reviewed the data related to the antigenicity and immunogenicity
of the parasite histones during natural infection with different Leishmania species in humans and dogs. The main aspects
of the immune response elicited against parasite histones are discussed. Finally, we have analyzed the results obtained
when these parasite antigens were employed as prophylactic molecules against parasite infection in different models of
cutaneous and visceral leishmaniasis.
Key words: Leishmania, genes, expression, histones, antigens, diagnosis, vaccines.
Las histonas son un grupo de proteínas de bajo peso
molecular y alto contenido en lisina y arginina, que se asocian
al ADN de todas las células eucariotas para formar la cromatina.
La unidad básica de la cromatina es el nucleosoma, constituido
por la interacción entre la fibra de ADN y un núcleo proteico
formado por la agrupación de dos copias de cada una de las
histonas nucleosomales (H2A, H2B, H3 y H4) (Luger et al.,
1997). Este complejo nucleoproteico se repite a lo largo del
material genético formando una fibra de 11 nm que constituye
la unidad básica de organización de los cromosomas eucariotas.
Existe una quinta histona, denominada H1, que interacciona
con el ADN localizado entre los diferentes nucleosomas
compactando el material genético a una estructura conocida
como fibra de 30 nm. Una característica común a las histonas es
el elevado grado de conservación en su estructura primaria que
permite preservar la función de estas proteínas a lo largo de la
escala evolutiva de los eucariotas Thatcher; Gorovsky, 1994;
Recebido em 16/05/2009
Aceito em 08/06/2009
Endereço para correspondência: Dr. Manuel Soto. Centro de Biología
Molecular Severo Ochoa, (CSIC-UAM). Departamento de Biología
Molecular, Facultad de Ciencias, Universidad Autónoma de Madrid,
Madrid, España. Tel.: +34 91 1964508; fax +34 91 1964420. E-mail:
[email protected] (M. Soto).
Gazeta Médica da Bahia
2009;79 (Supl.3):129-133
© 2009 Gazeta Médica da Bahia. Todos os direitos reservados.
Wells, 1986). Esta conservación es muy marcada en las histonas
H3 y H4 mientras que la H2A, H2B y especialmente la histona
H1 pueden presentar ligeras variaciones en secuencia (Malik;
Henikoff, 2003).
La caracterización de los genes codificantes para las
histonas de los tripanosomátidos ha puesto de manifiesto la
existencia de un alto grado de variabilidad en la secuencia de
las histonas de estos protozoos en relación a las histonas de
eucariotas superiores (Galanti et al., 1998). Las diferencias
observadas parecen estar relacionadas con las peculiares
características de la cromatina de los kinetoplástidos ya que,
aunque su material genético se encuentra estructurado en
nucleosomas, su cromatina no experimenta procesos de
condensación en ninguna etapa de su ciclo celular (Solari,
1995). La débil interacción entre el ADN y el nucleosoma
provocada por el menor grado de hidrofobicidad de sus
histonas H3 y H4 (Bender; Betschart; Hecker, 1992; Bender et
al., 1991) junto al menor tamaño su histona H1 (Espinza et al.,
1996), hace imposible la compactación de la cromatina para
formar la fibra de 30 nm y estructuras superiores.
Organización y regulación de la expresión de los genes de
histonas en Leishmania
En el año 1991 se publicó por primera vez la secuencia de
los genes codificantes para la H2B de Leishmania enriettii,
www.gmbahia.ufba.br
130
Manuel Soto, et al.
primera histona caracterizada en el género Leishmania (Genske
et al., 1991). En la actualidad se han caracterizado los genes
codificantes para el resto de las histonas en diferentes especies
de Leishmania (Alzate et al., 2006; Belli et al., 1999; Lukes;
Maslov, 2000; Padilla et al., 2002; Papageorgiou; Soteriadou,
2002; Soto et al., 2003; Soto et al., 1997; Soto et al., 1996a)
Como ocurre en otras familias génicas de este parásito, existen
diferentes copias de los genes codificantes para cada una de
las histonas. Se encuentran formando agrupaciones
independientes compuestas por un número limitado de copias
organizadas en tándem (entre 2 y 3 copias). Estas agrupaciones
génicas se encuentran dispersas en el genoma, localizándose
incluso en diferentes cromosomas (Wincker et al., 1996). Esta
disposición, semejante a la descrita para otros eucariotas
inferiores, se diferencia de la que tiene lugar en eucariotas
superiores donde los genes de las diferentes histonas están
asociados en las mismas regiones del genoma, facilitando así
su expresión coordinada en la fase S del ciclo celular
(Hentschel; Birnstiel, 1981; Maxson et al., 1983).
El análisis de la secuencia de los genes caracterizados, ha
puesto de manifiesto un elevado grado de conservación entre
las regiones codificantes de las diferentes copias génicas de
cada histona. Sin embargo, existen pequeñas diferencias de
secuencia que generan diferentes isoformas de cada una de
las histonas, proteínas que varían entre sí en un número
limitado de aminoácidos. Por otra parte, el análisis comparativo
entre las histonas de Leishmania y las histonas de otros
eucariotas ha revelado la existencia de importantes diferencias,
localizadas fundamentalmente en las regiones amino y
carboxilo terminales, dominios proteicos que quedan
expuestos hacia el exterior de los nucleosomas (Luger et al.,
1997). Aun existiendo diferencias, se ha detectado un mayor
grado de conservación en las zonas globulares implicadas en
las interacciones que estabilizan el nucleosoma entre las
histonas de Leishmania y las de otros eucariotas. La
divergencia alcanza su punto máximo en el caso de la histona
H1. Esta proteína carece del dominio globular necesario para
la compactación de la cromatina (Aslund et al., 1994; Fasel et
al., 1993), y únicamente presenta similitud con el extremo
carboxilo terminal de la H1 de eucariotas superiores (Galanti
et al., 1998).
La conservación de secuencia en las regiones codificantes
de cada una de las histonas contrasta con la divergencia
existente entre las regiones 5’ y 3’ no traducidas (UTRs). Como
ejemplo, en los seis genes codificantes para la histona H2A
de L. infantum se pueden encontrar diferentes combinaciones
de tres regiones 5’ UTRs y tres regiones 3’ UTRs (Soto et al.,
2003). Además, estas regiones son distintas a las regiones
UTRs de los genes codificantes para el resto de las histonas,
que a su vez son divergentes entre sí. Estas diferencias pueden
afectar tanto al número de copias de ARN mensajero (ARNm)
presentes en el citosol del parásito, como al tamaño de los
mismos, habiéndose detectado mensajeros de diferentes
tamaños para las histonas H3 y H4 de L. infantum (Soto et al.,
1997; Soto et al., 1996a). Pese a estas diferencias, todos los
Gaz. méd. Bahia 2009;79 (Supl.3):129-133
tránscritos de los genes codificantes para las histonas de
Leishmania descritos hasta el momento están poliadenilados
(Galanti et al., 1998), como ocurre en los ARNm de las histonas
H3 y H4 de plantas, en los tránscritos de histonas en levaduras
y en las variantes de histonas de expresión disociada con el
ciclo celular de eucariotas superiores (Zhao; Hyman; Moore,
1999).
Los mecanismos que regulan la expresión de los genes de
histonas en Leishmania están siendo estudiados en la
actualidad. Es destacable señalar que parece existir una relación
entre la expresión de los genes de histonas y la infectividad
del parásito. Este aspecto ha sido estudiado
fundamentalmente en la histona H1. La sobre-expresión de
esta proteína en promastigotes recombinantes de L. major
provoca un retraso en la progresión del ciclo celular (Smirlis
et al., 2006) que reduce su infectividad in vitro (Papageorgiou;
Soteriadou, 2002) e in vivo (Smirlis et al., 2006). Estos
resultados ponen de manifiesto la importancia de la regulación
de las histonas del parásito a lo largo del ciclo celular. Como
ocurre en el resto de eucariotas, la expresión de los genes de
las histonas de Leishmania está asociada a la síntesis del
ADN, produciéndose fundamentalmente durante la fase S del
ciclo celular. Sin embargo, el mecanismo que controla esta
expresión difiere de los descritos para otros organismos
eucariotas, incluyendo al resto de los kinetoplástidos. Así, en
Leishmania no se han detectado variaciones significativas
en el nivel de los ARNm a lo largo del ciclo celular (Soto et al.,
2000), mientras que en eucariotas superiores e inferiores (Osley,
1991) y en parásitos del género Trypanosoma (Ersfeld et al.,
1996; Garcia-Salcedo; Gijon; Pays, 1999; Sabaj et al., 2001)
estos mensajeros sólo se encuentran presentes en la fase S.
El inicio de la transcripción controlada por promotores que se
activan al final de la fase G1 y comienzo de la fase S, así como
el correcto procesamiento de los tránscritos y la estabilización
de los ARNm de histonas son los principales mecanismos
que, actuando conjuntamente, restringen la presencia de los
ARNm en la fase del ciclo donde se duplica el material genético
(Marzluff; Duronio, 2002; Osley, 1991). En Leishmania esta
expresión dependiente de ciclo celular es regulada
fundamentalmente a nivel traduccional (Soto et al., 2000), ya
que los ARNm de las histonas nucleosomales del parásito
sólo se asocian con los ribosomas en la fase S del ciclo celular
(Soto et al., 2004). Existe un modelo que postula la existencia
de factores proteicos que modulan la traducción de los ARNm
al interaccionar con un pequeño elemento de secuencia que
está presente en la región 3’ UTR de todos los genes de
histonas de Leishmania (Haralambous; Smirilis; Soteriadou,
2005).
Antigenicidad e inmunogenicidad de las histonas de
Leishmania
Las histonas de Leishmania son moléculas reconocidas
por el sistema inmunitario de los pacientes afectados de
leishmaniosis. Existen numerosas evidencias que señalan a
estas moléculas como diana de las respuestas humorales
www.gmbahia.ufba.br
Gaz. méd. Bahia 2009;79 (Supl.3):129-133
Las Histonas de Leishmania
generadas durante la infección. En el suero de pacientes con
leishmaniosis visceral (LV) se han detectado anticuerpos
contra las histonas H2B y H2A (Passos et al., 2005; Maalej et
al., 2003) y las histonas H2B y H1 son reconocidas por
pacientes con leishmaniosis cutánea (LC) y mucocutánea
(LMC) (Carmelo et al., 2006; Montoya et al., 1997). La
antigenicidad de las histonas también se ha demostrado en la
leishmaniosis canina. Así, las histonas H2A, H2B, H3 y H4 de
Leishmania son antígenos reconocidos por sueros de perros
que padecen leishmaniosis visceral (LV) (Soto et al., 1999).
Todos estos trabajos indican que estas proteínas de
localización nuclear son reconocidas por el sistema
inmunológico del hospedador vertebrado tras la infección
natural con el parásito. Por otra parte, y empleando modelos
de leishmaniosis experimentales, se ha reforzado la idea de
que estas proteínas son antígenos inmunodominantes del
parásito ya que se han detectado anticuerpos anti-histonas
en el suero de hámsteres (Requena et al., 2000b) y perros
(Nieto et al., 1999) infectados experimentalmente con L.
infantum, y de ratones infectados con L. major (Iborra et al.,
2004). Estas respuestas humorales pueden relacionarse con
la patología asociada con algunas de las formas de
leishmaniosis, fundamentalmente por la formación de
inmunocomplejos que pueden asociarse con la generación de
daños tisulares (Ginel; Camacho; Lucena, 2008) así como por
la producción de interleuquina-10 (IL-10), linfoquina asociada
con la inactivación de respuestas celulares (Miles et al., 2005).
Es destacable señalar que pese al carácter conservado de
estas proteínas, la respuesta humoral generada contra ellas
es específica de las histonas del parásito, no existiendo
reactividad cruzada con las histonas del hospedador
(Requena; Alonso; Soto, 2000a). Como se muestra en la Figura
1A los sueros de perros afectados de LV reconocen a las
histonas en extractos nucleares del parásito sin mostrar
reconocimiento frente a las histonas de eucariotas superiores.
Esta especificidad es debida a que la localización de los
determinantes antigénicos reconocidos por los anticuerpos
de los perros enfermos, coincide con las regiones menos
conservadas de estas proteínas en relación a las histonas del
hospedador (Soto et al., 1995; Soto et al., 1996b; Soto et al.,
1999). Estas regiones se localizan en el extremo amino terminal
de las histonas H2A, H2B, H3 y H4 y en el extremo carboxilo
terminal de la H2A (Figura 1B).
Por otra parte, también se ha demostrado que las histonas
de Leishmania son capaces de generar respuestas celulares
asociadas con protección durante la infección. Así, la histona
H2B es capaz de inducir la proliferación y la secreción de
interferón-γ (IFN-γ) in vitro en ensayos de estimulación de
células mononucleares de sangre periférica (PBMC) de
pacientes con LC, o un clon de células T obtenido a partir de
un individuo inmune frente a la LV (De Carvalho et al., 2003;
Probst et al., 2001). También, la estimulación en cultivo de
PMBC de pacientes con LC empleando una versión
recombinante de la histona H3 es capaz de generar niveles
detectables de IFN-γ (De Carvalho et al., 2003).
Empleo de las histonas de Leishmania para el desarrollo de
vacunas
Teniendo en cuenta las características inmunogénicas de
las histonas de Leishmania, estas proteínas pueden
considerarse como moléculas candidatas para la generación
de vacunas contra este parásito. Se ha analizado el papel
profiláctico de la inmunización de estos antígenos en diferentes
modelos de infección experimental. En la mayoría de los
ensayos se han empleado estrategias diseñadas para la
redirección de las respuestas mediadas por linfocitos CD4+
Th2 (generadoras de anticuerpos anti-histonas durante la
infección) hacia la producción de respuestas celulares
protectoras mediadas por linfocitos CD4+ Th1.
Con este objetivo se han utilizado vacunas de ADN
desnudo basadas en plásmidos de expresión eucariota. Estas
vacunas inducen respuestas mediadas por linfocitos CD4+
Th1 secretores de IFN-γ y respuestas citotóxicas (Gurunathan;
Klinman; Seder, 2000). Así, la inmunización de las cuatro
histonas nucleosomales en forma de vacuna de ADN ha
demostrado proteger a ratones susceptibles (BALB/c) de la
infección con L. major (Iborra et al., 2004). La protección se
correlacionó con la generación de respuestas CD4+ Th1
específicas hacia las histonas de Leishmania que se asociaron
con una disminución de las respuestas humorales hacia el
resto de las proteínas del parásito. Una estrategia similar,
empleando vacunas de ADN codificantes para las histonas
H2B, H3 y H4 es capaz de generar una protección parcial
contra la infección de especies viscerotrópicas (L. donovani)
(Melby et al., 2000). El empleo de estas vacunas de ADN
basadas en las histonas se están ensayando en modelos de
infección experimental con otras especies de Leishmania
habiéndose obtenido resultados prometedores (Carneiro et
al., comunicación personal). Con el objetivo de aumentar la
inmunogenicidad de las vacunas genéticas se han inmunizado
ratones con células dendríticas estimuladas con las cuatro
histonas nucleosomales expresadas como proteínas
recombinantes y oligodesoxirribonucleótidos con motivos
CpG no metilados (CpG-ODN), moléculas de ADN
monocatenario que son capaces de suprimir respuestas
mediadas por linfocitos CD4+ Th2 (Rhee et al., 2002). Estas
vacunas han generado protección frente al desarrollo de la
LC y LV en el modelo ratón (Carrion; Folgueira; Alonso, 2008;
Carrion et al., 2007).
A pesar de que en ninguno de los ensayos anteriores se
ha detectado la generación de respuestas frente a las histonas
del hospedador, se han realizado ensayos en los que se
emplean como vacunas los fragmentos de las histonas que
presentan una mayor divergencia de secuencia respecto a las
histonas de eucariotas superiores. Así, la inmunización del
extremo amino terminal divergente de la histona H2B induce
un efecto protector frente a la LC provocada por la infección
de L. major en el ratón (Chenik et al., 2006). Por otra parte, las
regiones variables de la histona H2A (extremos amino y
carboxilo terminales) ha sido empleadas como vacuna
formando una proteína recombinante quimérica junto a otros
www.gmbahia.ufba.br
131
Manuel Soto, et al.
132
Gaz. méd. Bahia 2009;79 (Supl.3):129-133
Figura 1. Especificidad en el reconocimiento de las histonas de Leishmania por los sueros de perros con leishmaniosis visceral.
(A) Un extracto comercial de histonas de ternera (5 μgr; línea 1) y 10 μgr de proteínas nucleares de L. infantum (línea 2) se
resolvieron en geles de acrilamida en condiciones desnaturalizantes (SDS-PAGE) al 15%. En el panel de la izquierda se muestra
el gel teñido con azul de Coomassie. En el panel de la derecha se muestra el resultado de incubar un filtro de nitrocelulosa donde
se transfirió un gel similar, con un grupo de sueros de leishmaniosis visceral canina. Se indica en la figura la posición de las
histonas del parásito. (B) Análisis de la reactividad de los mismos sueros frente a péptidos sintetizados a partir de la secuencia
deducida de cada una de las histonas formadoras del nucleosoma H2A. Los sueros se analizaron individualmente mediante la
B
técnica de ELISA a una dilución de 1/100.
H2A
Abs
H3
0,8
A
0,7
0,6
0,5
1
2
1
2
0,4
0,3
kDa
0,2
0,1
66
H2B
111-129
101-120
Péptidos
91-110
81-100
71-90
61-80
14
51-70
41-60
31-50
21-40
11-30
1-20
20
121-132
106-125
91-110
76-95
61-80
46-65
31-50
16-35
1-20
45
36
29
24
Péptidos
Abs
H4
0.8
H2A/H2B
H3/H4
0.7
0.6
0.5
0.4
5.
6.
7.
8.
9.
Alzate JF. et al. Leishmania (Viannia) panamensis: cloning of
the histone H1 genes by representational difference analysis.
Exp Par 112: 126-129, 2006.
Aslund L. et al. A gene family encoding heterogeneous histone
H1 proteins in Trypanosoma cruzi. Mol Biochem Parasitol
65:317-330, 1994.
Belli S. et al. Leishmania major: histone H1 gene expression
from the sw3 locus. Exp Parasitol, 91:151-160, 1999.
10.
11.
121-132
106-125
3.
4.
1-20
2.
Péptidos
91-110
76-95
61-80
46-65
31-50
16-35
Referencias
1.
0.1
91-112
81-100
71-90
61-80
51-70
41-60
31-50
21-40
11-30
Agradecimientos
Este trabajo ha sido financiado por los Proyectos PHB20060006-PC del Ministerio de Educación y Ciencia, A/016407/08
de la AECID, 207RT0308 from CYTED y ISCIII-RETIC RD06/
0021/0008-FEDER y FIS/PI080101 de Ministerio de Ciencia e
Innovación y por un Proyecto Institucional de la Fundación
Ramón Areces. Aldina Barral, Camila Oliveira y Manoel BarralNetto son investigadores de CNPq.
0.3
0.2
1-20
antígenos del parásito (Soto et al., 1998). Esta proteína ha
generado respuestas protectoras frente a la infección
experimental por L. infantum en ratones y en perros (Molano
et al., 2003).
Finalmente cabe destacar el valor profiláctico de la histona
H1, purificada del parásito u obtenida de forma recombinante
en modelos experimentales de LC en el ratón (Solioz et al.,
1999) y en primates infectados con L. major junto a extractos
proteicos de la glándula salivar del vector transmisor, modelo
de infección que resulta más parecido a la infección natural
(Masina et al., 2003).
Péptidos
Bender K, Betschart B, Hecker H. Histone-DNA interactions in
the chromatin of procyclic Trypanosoma brucei brucei. Parasitol
Res 78:495-500, 1992.
Bender K. et al. Biochemical properties of histone-like proteins
of procyclic Trypanosoma brucei brucei. Acta Trop 50:169183, 1991.
Carmelo E. et al. The sera from individuals suffering from
cutaneous leishmaniasis due to Leishmania brazilensis present
antibodies against parasitic conserved proteins, but not their
human counterparts. Parasite 13:231-236, 2006.
Carrion J, Folgueira C, Alonso C. Immunization strategies against
visceral leishmaniosis with the nucleosomal histones of
Leishmania infantum encoded in DNA vaccine or pulsed in
dendritic cells. Vaccine 26:2537-2544, 2008.
Carrion J. et al. Adoptive transfer of dendritic cells pulsed with
Leishmania infantum nucleosomal histones confers protection
against cutaneous leishmaniosis in BALB/c mice. Microbes Inf
9:735-743, 2007.
Chenik M. et al. Vaccination with the divergent portion of the
protein histone H2B of Leishmania protects susceptible BALB/
c mice against a virulent challenge with Leishmania major. Vaccine
24: 2521-2529, 2006.
De Carvalho LP. et al. Characterization of the immune response to
Leishmania infantum recombinant antigens. Microbes Infect 5:7-12, 2003.
Ersfeld K. et al. A fluorescence in situ hybridisation study of the
regulation of histone mRNA levels during the cell cycle of
Trypanosoma brucei. Mol Biochem Par 81: 201-209, 1996.
www.gmbahia.ufba.br
Gaz. méd. Bahia 2009;79 (Supl.3):129-133
Las Histonas de Leishmania
12.
36.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
25.
26.
27.
28.
29.
30.
31.
32.
33.
34.
35.
Espinoza I. et al. Histone H1 and core histones in Leishmania and
Crithidia: comparison with Trypanosoma. Exp Cell Res 224:1-7, 1996.
Fasel NJ. et al. Identification of a histone H1-like gene expressed
in Leishmania major. Mol Biochem Par 62:321-323, 1993.
Galanti N. et al. Histone genes in trypanosomatids. Par Today
14:64-70, 1998.
Garcia-Salcedo JA, Gijon P, Pays E. Regulated transcription of
the histone H2B genes of Trypanosoma brucei. Eur J Biochem
264:717-723, 1999.
Genske JE. et al. Structure and regulation of histone H2B mRNAs
from Leishmania enriettii. Mol Cell Biol 11:240-249, 1991.
Ginel PJ, Camacho S, Lucena R. Anti-histone antibodies in dogs with
leishmaniasis and glomerulonephritis. Res Vet Sci 85:510-514, 2008.
Gurunathan S, Klinman DM, Seder RA. DNA vaccines:
immunology, application, and optimization. Annu Rev Immunol
18:927-974, 2000.
Haralambous C, Smirilis D, Soteriadou K. Evidence of the
presence of cis-regulating elements in the 3' UTRs of histone
genes and of protein(s) interacting with this element. Third
World Congress on Leishmaniosis, Sicily, Italy, 2005.
Hentschel CC, Birinstel ML. The organization and expression
of histone gene families. Cell 25:301-313, 1981.
Ibora S. et al. Vaccination with a plasmid DNA cocktail encoding
the nucleosomal histones of Leishmania confers protection against
murine cutaneous leishmaniasis. Vaccine 22:3865-3876, 2004.
Luger K. et al. Crystal structure of the nucleosome core particle
at 2.8 A resolution. Nature 389:251-260, 1997.
Lukes J, Maslov DA. Unexpectedly high variability of the histone
H4 gene in Leishmania. Par Res 86:259-261, 2000.
Maalej IA. et al. Comparative evaluation of ELISAs based on
ten recombinant or purified Leishmania antigens for the
serodiagnosis of Mediterranean visceral leishmaniasis. Am J Trop
Med Hyg 68:312-320, 2003.
Malik HS, Henikoff S. Phylogenomics of the nucleosome. Nat
Struct Biol 10:882-891, 2003.
Marzluff WF, Duronio RJ. Histone mRNA expression: multiple
levels of cell cycle regulation and important developmental
consequences. Curr Opin Cell Biol 14:692-699, 2002.
Masina, S., M, M.G., Demotz, S.O. and Fasel, N.J. (2003) Protection
against cutaneous leishmaniasis in outbred vervet monkeys using a
recombinant histone H1 antigen. J Inf Dis 188: 1250-1257.
Maxson R. et al. Expression and organization of histone genes.
Annu Rev Genet 17: 239-277, 1983.
Melby PC. et al. Identification of vaccine candidates for
experimental visceral leishmaniasis by immunization with
sequential fractions of a cDNA expression library. Infect Immun
68:5595-5602, 2000.
Miles SA. et al. A role for IgG immune complexes during infection with
the intracellular pathogen Leishmania. J Exp Med 201:747-754, 2005.
Molano I, Alonso MG, Miron C, Redondo E, Requena JM, Soto
M, Nieto CG, Alonso C. A Leishmania infantum multi-component
antigenic protein mixed with live BCG confers protection to
dogs experimentally infected with L. infantum. Vet Immunol
Immunopathol 92:1-13, 2003.
Montoya Y. et al. Recombinant antigens for specific and sensitive
serodiagnosis of Latin American tegumentary leishmaniasis.
Trans R Soc Trop Med Hyg 91:674-676, 1997.
Nieto CG. et al. Analysis of the humoral immune response against
total and recombinant antigens of Leishmania infantum:
correlation with disease progression in canine experimental
leishmaniasis. Vet Immunol Immunopathol 67:117-130, 1999.
Osley MA. The regulation of histone synthesis in the cell cycle.
Annu Rev Biochem 60:827-861, 1991.
Padilla C. et al. Genes coding structural proteins in the
Leishmania braziliensis complex. Trans R Soc Trop Med Hyg
96:S49-54, 2002.
37.
38.
39.
40.
41.
42.
43.
44.
45.
46.
47.
48.
49.
50.
51.
52.
53.
54.
55.
56.
57.
58.
133
Papageorgiou FT, Soteriadou KP. Expression of a novel Leishmania
gene encoding a histone H1-like protein in Leishmania major modulates
parasite infectivity in vitro. Infect Immun 70:6976-6986, 2002.
Passos S. et al. Recombinant Leishmania antigens for
serodiagnosis of visceral leishmaniasis. Clin Diagn Lab Immunol
12:1164-1167, 2005.
Probst P. et al. Identification and characterization of T cellstimulating antigens from Leishmania by CD4 T cell expression
cloning. J Immunol 166:498-505, 2001.
Requena JM, Alonso C, Soto M. Evolutionarily conserved proteins
as prominent immunogens during Leishmania infections. Parasitol
Today 16:246-250, 2000a).
Requena JM. et al. Immune and clinical parameters associated
with Leishmania infantum infection in the golden hamster model.
Vet Immunol Immunopathol 76:269-281, 2000b.
Rhee EG. et al. Vaccination with heat-killed Leishmania antigen or
recombinant leishmanial protein and CpG oligodeoxynucleotides induces
long-term memory CD4+ and CD8+ T cell responses and protection
against Leishmania major infection. J Exp Med 195:1565-1573, 2002.
Sabaj V. et al. Histone genes expression during the cell cycle in
Trypanosoma cruzi. J Cell Biochem 80:617-624, 2001.
Smirlis D. et al. Leishmania histone H1 overexpression delays
parasite cell-cycle progression, parasite differentiation and reduces
Leishmania infectivity in vivo. Mol Microbiol 60:1457-1473, 2006.
Solari AJ. Mitosis and genome partition in trypanosomes. Biocell
19:65-84, 1995.
Solioz N. et al. The protective capacities of histone H1 against
experimental murine cutaneous leishmaniasis. Vaccine 18:850859, 1999.
Soto M. et al. Cell-cycle-dependent translation of histone mRNAs
is the key control point for regulation of histone biosynthesis in
Leishmania infantum. Biochem J 379: 617-625, 2004.
Soto M. et al. Molecular cloning and analysis of expression of
the Leishmania infantum histone H4 genes. Mol Biochem
Parasitol 90:439-447, 1997.
Soto M. et al. Histone synthesis in Leishmania infantum is tightly
linked to DNA replication by a translational control. Biochem J
346:99-105, 2000.
Soto M. et al. Leishmania infantum possesses a complex family
of histone H2A genes: structural characterization and analysis of
expression. Parasitology 127:95-105, 2003.
Soto M. et al. Organization, transcription and regulation of
the Leishmania infantum histone H3 genes. Biochem J 318:
813-819, 1996a.
Soto M. et al. Multicomponent chimeric antigen for serodiagnosis
of canine visceral leishmaniasis. J Clin Microbiol 36:58-63, 1998.
Soto M. et al. Mapping of the linear antigenic determinants
from the Leishmania infantum histone H2A recognized by sera
from dogs with leishmaniasis. Immunol Lett, 48:209-214, 1995.
Soto M. et al. Characterization of the antigenic determinants of
the Leishmania infantum histone H3 recognized by antibodies
elicited during canine visceral leishmaniasis. Clin Exp Immunol
106:454-461, 1996b.
Soto M. et al. Antigenicity of the Leishmania infantum histones
H2B and H4 during canine viscerocutaneous leishmaniasis. Clin
Exp Immunol 115: 342-349, 1999.
Thatcher TH, Gorovsky MA. Phylogenetic analysis of the core histones
H2A, H2B, H3, and H4. Nucleic Acids Res 22:174-179, 1994.
Wells DE. Compilation analysis of histones and histone genes.
Nucleic Acids Res 14: r119-r149, 1986.
Wincker P. et al. The Leishmania genome comprises 36
chromosomes conserved across widely divergent human
pathogenic species. Nucleic Acids Res 24:1688-1694, 1996.
Zhao J, Hyman L, Moore C. Formation of mRNA 3' ends in
eukaryotes: mechanism, regulation, and interrelationships with other
steps in mRNA synthesis. Microbiol Mol Biol Rev 63:405-445, 1999.
www.gmbahia.ufba.br