Cultivo de alimento vivo

INVESTIGACIÓN
Cultivo de
alimento vivo
para la producción de
larvas de peces marinos
en el CIAD Mazatlán.
Pareja de copépodos, Artemia y rotífero.
T
o dos los laboratorios de acuicultura
para la producción de semilla (larvas de
moluscos, crustáceos, peces, equinodermos, etc) necesitan un área destinada a la
producción de cultivos de apoyo (microalgas,
rotíferos, copépodos, Artemia, etc) denominados alimento vivo, para poder sostener las
necesidades de alimentación de las larvas.
En la producción de larvas de peces marinos,
es esencial tener un laboratorio destinado a la
producción de alimento vivo, y esta producción
es más compleja que para otros cultivos, pues a
diferencia de las larvas de moluscos por ejemplo,
que solo necesitan microalgas o las larvas de
camarón que requieren microalgas y Artemia,
las larvas de peces marinos requieren mayor
variedad de alimento vivo; la mayoría de las
especies de peces marinos en cultivo larvario se
alimentan con microalgas, rotíferos y Artemia,
(Abdo et al. 2010) si además se le añaden
copépodos al cultivo, aumentan las probabilidades de éxito (Flores-Rojas, 2011).
intensivo de las larvas de peces marinos. Estas
especies, por su tamaño, su naturaleza eurihalina, su rápida tasa de reproducción, y su habilidad de crecer en altas densidades, los hace muy
valiosos como el primer alimento de los peces.
(Fulks y Main, 1991).
Los copépodos son crustáceos de pocos
milímetros que son considerados entre las
alternativas de alimentación en Acuicultura.
En el ambiente marino los copépodos ocupan
un importante papel en las poblaciones que
conforman el zooplancton, pues es este grupo
uno de los recursos de alimentación más importantes para peces y crustáceos.
La Artemia es excelente como alimento
vivo, por tener una serie de características nutricionales y físicas apropiadas para las larvas de
peces. En el cultivo de larvas de peces marinos,
los nauplios de Artemia se otorgan después de
los rotíferos y copépodos y es el último alimento
vivo que se ofrece a las larvas antes de su
destete.
Material y métodos
En el CIAD unidad Mazatán se cuenta con un
laboratorio para la producción de alimento vivo
(fig. 1) donde se producen diferentes especies
de microalgas, rotíferos, copépodos y Artemia.
Las microalgas son un recurso alimenticio en
el cultivo comercial de muchas especies marinas,
incluyendo todas las etapas de crecimiento de
moluscos bivalvos, algunas etapas larvales de
crustáceos y las primeras etapas de algunas
especies de peces. Además son utilizadas para
producir zooplancton, que a su vez, se utiliza
como alimento para las larvas de peces y crustáceos (Lavens and Sorgeloos, 1996).
Las especies de microalgas cultivadas en el
CIAD son Nannochloropsis oculata, Isochrysis sp.
y Chaetoceros muelleri, su cultivo se realiza por
medio de inóculos sucesivos desde cepas hasta
garrafón de 20 l, con el medio “f/2”, para volúmenes mayores (de columnas de 80 l, 700 l (fig.
2) hasta tanques de 7000 l) se utilizan nutrientes
agrícolas.
Los rotíferos Brachionus plicatilis y Brachionus
rotundiformis son indispensables en el cultivo
N. oculata e Isochrysis sp. se utilizan para la
técnica de agua verde en el cultivo larvario de
peces , N. oculata para la producción de rotíferos
y C. muelleri para la producción de copépodos.
Fig.1. Laboratorio de alimento vivo del CIAD
Fig.2. Cultivo de N. oculata en columnas de
80 y 700 l.
Fig.3. Tanques de 600 y 1200 l para cultivar
rotíferos y copépodos.
Se mantiene una cepa del rotífero Brachionus
sp. para iniciar los cultivos, estos se producen en
tanques cilindrocónicos de 600 y 1200 l (fig. 3),
la densidad de siembra es de aproximadamente
30-40 rotíferos ml-1. La microalga utilizada es N.
oculata a una densidad de 15 a 20 x 106 células
ml-1 complementando de ser necesario con
levadura de pan (Saccharomyces cerevisiae) la
cual se da en raciones de 0.5 gramos por cada
millón de rotíferos. Los tanques de 600 y 1200
l se llenan a una cuarta parte de su capacidad
con la microalga concentrada subiendo el nivel
diariamente con microalga, después de 4 días
alcanzan una densidad de 150-250 rotíferos ml-1
y se cosechan total o parcialmente de acuerdo a
las necesidades diarias de las larvas a alimentar
o bien, para sembrar otro tanque con rotíferos,
la cosecha se realiza con una bolsa de luz de
malla de 40 µ.
El copépodo Pseudodiaptomus euryhalinus
es mantenido en cepa, para de allí iniciar con
los cultivos en tanques cilindrocónicos de 600 y
1200 l, los tanques se llenan a una quinta parte
de su capacidad con agua de mar y la microalga
C. muelleri, cada tercer día se le sube el nivel
con agua marina y microalga, ya que están a su
máxima capacidad, se hacen cosechas parciales
diariamente, reponiendo con agua marina y
microalga lo cosechado (los tanques se siembran en promedio con entre 0.1-0.2 copépodos
ml-1 para finalmente llegar a una producción de
entre 10-14 copépodos ml-1).
La Artemia no se cultiva en las instalaciones
del CIAD, como es el caso de microalgas, rotíferos y copépodos; se obtiene eclosionando los
quistes previamente descapsulados (Fig. 4) que
se consiguen en el mercado, la densidad de los
quistes incubados no debe sobrepasar los 2 gl-1.
Velasco-Blanco G., Abdo-de la Parra M.I., Rodriguez-Ibarra L.E., IbarraCastro L., García-Aguilar N.
Centro de Investigación en alimentación y Desarrollo, A.C.
Av. Sabalo-Cerritos S/N C.P. 82010
Mazatlán, Sinaloa, México
[email protected]
Agradecimiento
Los autores agradecen a la M.C. Ana Puello por proporcionar la cepa de
copépodos y la asistencia técnica de los señores Manuel cruz y Juan Huerta.
Fig.4. Incubación de nauplios de Artemia
descapsulados.
Literatura citada
Abdo De La Parra, M.I., García Ortega, A., Martínez Rodríguez, I.E.,
González Rodríguez, B.T., Velasco Blanco, G., Hernández González, C.,
Duncan, N.J. 2010. An intensive hatchery rearing protocol for larvae of the
bullseye puffer, Sphoeroides annulatus (Jenyns). Aquaculture Research.
(10):554-560.
Flores-Rojas A.A. 2011. Uso de copépodo Pseudodiaptomus euryhalinus
para el mejoramiento del crecimiento y supervivencia en el cultivo piloto de
pargo flamenco Lutjanus guttatus. Tesis de Maestría. Centro de Investigación
en Alimentación y Desarrollo. Mazatlán, Sinaloa, México. 94 pp.
Fulks, W., Main, K.L. (eds.) 1991. Rotifer and Microalgae Culture Systems.
Proceedings of a U.S.-Asia Workshop. Honolulu, Hawaii. pp. 364.
Lavens, P.; Sorgeloos, P. (eds.) Manual on the production and use of live food
for aquaculture. FAO Fisheries Technical Paper. No. 361. Rome, FAO. 1996.
pp 295.