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RIBONUCLEASAS:
SU POTENCIAL TERAPÉUTICO EN INFECCIONES VIRALES
Ribonucleases: Theurapetical potential on Viral Infections
XIOMARA ÚSUGA, MARÍA TERESA RUGELES
Grupo Inmunovirología-Biogénesis, Universidad de Antioquia.
Medellín, Colombia.
Presentado marzo 15 de 2006, aceptado junio 30 de 2006, correcciones agosto 10 de 2006.
RESUMEN
En la actualidad existe un gran interés por identificar proteínas o péptidos antimicrobianos que puedan ser herramientas terapéuticas que eviten el establecimiento o
permitan el control de diferentes infecciones. Las ribonucleasas (RNasas), pertenecientes a la superfamilia Ribonucleasa A, son enzimas que participan en varios procesos
fisiológicos, que van desde el procesamiento alternativo del RNA hasta la angiogénesis.
Estas enzimas son expresadas por diferentes tejidos y exhiben especificidades variables
contra diferentes sustratos de RNA. El potencial terapéutico de las RNasas se ha sugerido en procesos oncogénicos; adicionalmente, se ha descrito que tienen actividad
antiviral directa y el potencial de activar células del sistema inmune innato induciendo
su maduración y la producción de citoquinas proinflamatorias. Nuestro grupo de investigación ha realizado estudios que señalan la capacidad de cuatro RNasas recombinantes: EDN, -4EDN, RNasa A y angiogenina de inhibir la replicación del virus de la
inmunodeficiencia humana tipo 1 en linfocitos T de sangre periférica activados. En este
artículo se revisará la clasificación de las ribonucleasas que constituyen la superfamilia
RNasa A y se describirá, en forma detallada, lo que se conoce de la función biológica,
acción antiviral y mecanismo de acción de las RNasas a las que se les ha reportado
actividad antiviral.
Palabras clave: actividad antiviral, RNasa 1, EDN, ECP, ONC.
ABSTRACT
Currently, there is a great interest to identify proteins or antimicrobial peptides to be
included in the therapeutic arsenal for preventing different infectious diseases.
Ribonucleases (RNases) that belong to the Ribonuclease A superfamily participate in
several physiologic processes, from alternative splicing of RNA to organogenesis.
These enzymes are expressed by various tissues and exhibit variable specificities
against different RNA substrates. The therapeutic potential of RNases has been
suggested for oncogenic processes; in addition, direct antiviral activity and the
potential to activate cells from the innate immune system, inducing their maturation
and release of pro-inflammatory cytokines have been also associated with these
enzymes. Our research team, have carried out studies that indicate the ability of four
recombinant RNases: EDN, -4EDN, RNase A and angiogenin to inhibit HIV-1 replication in activated peripheral blood T lymphocytes. In this article we review the classification of RNases that belong to the Ribonucleases A superfamily; we describe in
detail what is known regarding the biologic function, inhibitory activity and mechanism of action of the RNases recognized by their antiviral activity.
Key words: antiviral activity, RNase 1, EDN, ECP, ONC.
INTRODUCCIÓN
La población de RNA en las células es controlada pos-transcripcionalmente por
enzimas denominadas ribonucleasas (RNasas) que poseen especificidades comunes o
diferentes, exhiben un patrón de expresión variable y difieren en su actividad contra
diferentes sustratos de RNA (Deshpande y Shankar, 2002). Una sola célula puede
contener hasta 20 RNasas diferentes, las cuales pueden hacer parte de complejos supramoleculares y funcionar en conjunto con otras enzimas (Deutscher y Li, 2001). Las
RNasas y sus homólogos estructurales son moléculas reguladoras que controlan
procesos que van desde el procesamiento alternativo a la organogénesis (Beintema y
Kleineidam, 1998). Diferentes estudios apoyan el uso de algunas RNasas para el tratamiento de enfermedades infecciosas y el cáncer, aunque su potencial terapéutico
está limitado por su habilidad para penetrar las células (Costanzi et al., 2005).
DEFINICIÓN
Las RNasas son proteínas con actividad enzimática presentes en bacterias (Ilinskaya
et al., 2001), hongos (Kao y Davies, 1999), plantas superiores (Roalson y McCubbin,
2003) y mamíferos (Breukelman et al., 2001), que participan en procesos fisiológicos
diversos tales como: muerte celular (Lin et al.,1994), replicación del DNA (Deshpande
y Shankar, 2002), transcripción, procesamiento y edición del RNA (Deshpande y
Shankar, 2002), defensa del hospedero (Domachowske et al., 1998) y control del
crecimiento tumoral (Griffiths et al., 1997).
CLASIFICACIÓN
Las ribonucleasas están divididas en tres grandes familias: la superfamilia RNasa A, la
familia T1 y la familia T2. La superfamilia Ribonucleasa A está constituida por las
RNasas de mamíferos y otros vertebrados como aves, reptiles y anfibios (Soochin et al.,
2005). Este grupo de proteínas presenta altas tasas de duplicación génica y pérdida de
genes de lo que ha resultado un número variable de genes en diferentes especies
(Soochin et al., 2005). En el ser humano, los genes que las codifican están ubicados en
el brazo largo del cromosoma 14. Sierakowska y Shugar (1977) agruparon las RNasas
humanas en dos categorías: RNasas secretadas y no secretadas; posteriormente, el
grupo de Weickmann et al. (1981) cambió el término de secretadas por el de RNasas de
tipo pancreático y Sorrentino y Libonati (1994), introdujeron el término no pancreáticas en reemplazo de no secretadas. Las RNasas de tipo pancreático incluyen tanto ribonucleasas encontradas en el páncreas como en otros fluídos corporales con propie-
dades catalíticas y estructurales similares a las RNasas pancreáticas humanas y de bovino. El término de tipo no pancreático se utilizó para las RNasas que presentan propiedades catalíticas y tienen secuencia similar a la neurotoxina derivada del eosinófilo
(EDN) o a la RNasa K2 de riñón de bovino. Otros miembros de la superfamilia RNasa
A, tales como la RNasa 4 y la RNasa PL3 de hígado porcino constituyen una tercera familia denominadas RNasas de tipo pancreático/no pancreático, las cuales son estructuralmente más similares a las RNasas de tipo pancreático pero comparten algunas
propiedades catalíticas con ambos tipos de ribonucleasas (Sorrentino y Libonati, 1997).
Nombre génico
Proteína
Especie
RNasa 1
Ribonucleasa
pancreática
Humano
RNasa 2
Neurotoxina derivada
del eosinófilo, EDN
Humano
RNasa 3
Proteína catiónica del
eosinófilo, ECP
Humano
RNasa 4
RNasa 4
Humano
RNasa 5
Angiogenina
Humano
RNasa k6
RNasa k6
Humano
RNasa 7
RNasa 8
RNasa 9
RNasa 7
RNasa 8
RNasa 9
Humano
Humano
Humano
RNasa 10
RNasa 10
Humano
RNasa 11
RNasa 12
RNasa 13
RNasa 11
RNasa 12
RNasa 13
Humano
Humano
Humano
Ortólogos
RNasa A (bovino),
RNasa seminal (bovino)
RNasa pancreática (ratón),
RNasa 1β, RNasa 1γ
y RNasa 1δ (rata)
RNasa pancreática (tortuga)
Onconasa (rana)
Grupo de RNasas EAR (rata y
ratón)*
EAR-1 (ratón),
ECP (rata),
RNasa 3 (rana)
RNasa 4 (ratón),
RNasa 4 (rata),
RNasa PL3 (porcino)
Angiogenina (ratón) y
Angiogenina 1 a 6 (rata)
RNasa k2 (bovino),
RNasa k6 (porcino),
RNasa 3 (ratón)
No presentan
No presentan
RNasa 9 (ratón y rata),
Train A (porcino),
RNasa 10 (ratón),
RNasa 10 (rata)
RNasa 11 (ratón y rata)
RNasa 12 (ratón y rata)
RNasa 13 (ratón y rata)
Seudogen
en humanos
No
Si
No
No
No
No
No
No
No
No
No
No
No
Tabla 1. RNasas pertenecientes a la superfamilia Ribonucleasa A. En esta tabla se listan las RNasas,
hasta ahora descritas, que hacen parte de la superfamilia RNasa A. *RNasas asociadas a eosinófilos
(EAR).
Actualmente algunos autores se refieren a las cinco primeras RNasas (Tabla 1) como
RNasas pancreáticas según la clasificación anteriormente descrita. Debido a que dichas clasificaciones pueden crear confusión, ninguno de esos términos será usado en
esta revisión.
N-terminal
C-terminal
1
55
14-15
40-41
73-75
87 94
69-70
101109-110 121
85
117-119
128
Figura 1. Representación esquemática de una RNasa humana. Las líneas continuas (
) corresponden a los aminoácidos conservados entre las RNasas 1 a 8. Las líneas en puntos (….) representan
cisteínas conservadas entre los miembros de la superfamilia RNasa A. Las líneas discontinuas (---)
corresponden a los residuos del sitio activo de las RNasa 1 (H-12, K-41, H-119) los cuales están presentes en todas las RNasas de la superfamilia RNasa A en posiciones similares (Soochin et al., 2005).
Las RNasas 9 y 10 no poseen la tríada catalítica ni el péptido señal (Penttinen et al., 2003) y las
RNasas 11, 12 y 13 presentan variabilidad en la región de la tríada catalítica (Soochin et al., 2005).
Estas enzimas están compuestas de un péptido señal de aproximadamente 25 aminoácidos y un péptido maduro con alrededor de 130 aminoácidos. Las RNasas presentan varias características estructurales conservadas, entre las cuales son particularmente importantes tres residuos catalíticos (una lisina y dos histidinas) y de seis a
ocho cisteínas que forman tres o cuatro puentes disulfuro (Soochin et al., 2005; Figs.
1 y 2). La homología entre las RNasas que hacen parte de la superfamilia RNasa A
puede ser entre 20% hasta casi un 100% (Soochin et al., 2005). Las RNasas 9 y 10 no
poseen la tríada catalítica ni el péptido señal (Penttinen et al., 2003) y las RNasas 11,
12 y 13 presentan variabilidad en la región de la tríada catalítica (Soochin et al.,
2005), lo que sugiere que estas enzimas no poseen actividad ribonucleolítica. Todas
estas enzimas exhiben una estructura tridimensional similar; las mayores diferencias
se encuentran en otros residuos que forman el sitio activo ribonucleolítico el cual es
responsable de las diferentes actividades específicas y preferencias de sustrato. A continuación se describirán, en mayor detalle, las RNasas humanas y la onconasa para
las cuales la actividad antiviral ha sido demostrada in vitro.
N-terminal
1
8-12
C-terminal
26 30 34 40-41
44-46
54 58
77
66-67
87 9396
83-84 9095
108 116-120
110-111
124
Figura 2. Representación esquemática de la RNasa A bovina. Las líneas continuas corresponden a los
residuos conservados entre esta RNasa y la Onconasa.
RNASA PANCREÁTICA HUMANA/RNASA 1
Ésta es una glicoproteína con una masa molecular de 15 kDa sin glicosilación, secretada por un gran número de tejidos tales como: páncreas (Weickmann et al., 1981),
riñón (Mizuta et al., 1990), hígado, cerebro, bazo (Futami et al., 1997) y endotelio
(Landré et al., 2002); también es producida por células tumorales de adenocarcinoma
pancreático (Peracaula et al., 2000). Adicionalmente, se encuentra en plasma seminal
(De Prisco et al., 1984) y orina (Futami et al., 1997). Es una de las RNasas de mayor
circulación en sangre con una concentración aproximada de 400 ng/mL (Weickmann
et al., 1984). Esta enzima monomérica está constituida por 128 aminoácidos y según
el tejido de origen puede presentar diferentes patrones de glicosilación, con tres puntos de glicosilación en el extremo amino terminal en los residuos asparagina-34 (Asn34), Asn-76 y Asn-88. La enzima de origen urinario presenta los tres sitios glicosilados;
la proteína pancreática y parte de la RNasa 1 seminal sólo están glicosiladas en Asn34 mientras que la enzima del riñón no es glicosilada, al igual que el 50% de las enzimas
presentes en plasma seminal y cerebro (Sorrentino y Libonati, 1997). Se ha encontrado
alteración en el patrón de glicosilación de la RNasa 1 producida por tejido de adenocarcinoma pancreático y líneas celulares de tumor pancreático. La RNasa 1 en condiciones normales presenta niveles más altos de fucosa y ausencia de ácido siálico en
comparación a la RNasa 1 secretada por la línea celular tumoral humana pancreática
(Dwek et al., 2003). Aunque la estructura primaria de esta proteína muestra un 70% de
identidad con la RNasa bovina A (Soochin et al., 2005), a diferencia de esta proteína,
la RNasa 1 humana posee una gran actividad contra el RNA de doble cadena, contiene
mayor proporción de residuos básicos, su actividad es diferencialmente influenciada
por la fuerza iónica y los iones divalentes y tiene una extensión en su porción carboxiloterminal de cuatro residuos de aminoácidos (Sorrentino y Libonati, 1997).
Función biológica. Aunque la RNasa pancreática humana no ha sido asociada con
alguna función biológica en especial (Sorrentino y Libonati, 1997), se demostró que
cataliza eficientemente la degradación del RNA de doble cadena in vitro (Sorrentino et
al., 2003), lo que sugiere su participación en la respuesta inmune innata. Además, se
encontró que es capaz de estimular células dendríticas para la producción de varios
factores solubles e inducir su maduración in vitro (De Yang et al., 2003). El uso de un
conjugado de RNasa pancreática y albúmina de suero humano inyectado en ratones
infectados con virus Influenza A e Influenza B, mostró alta actividad antiviral (Zelepuga
et al., 2003). Estudios recientes nuestros señalan que la RNasa pancreática recombinante inhibe la replicación del virus de la inmunodeficiencia humana tipo 1 (VIH-1) en
un cultivo primario de linfocitos T activados (Bedoya et al., en prensa).
Mecanismo de acción. La región amino terminal tiene un papel importante en el clivaje del RNA. Exhibe actividad catalítica específica por pirimidinas con una preferencia marcada por sustrato poli-citosina (poli-C) sobre poli-uracilo (poli-U). Además,
esta enzima es dos veces más activa que la RNasa A bovina, por poli-adenina (poli-A)
debido a la presencia del residuo aspártico-83 (Asp-83). Su acción catalítica se potencia en altas concentraciones de cloruro de sodio (NaCl) y muestra actividad óptima a pH 8,0 (Boix et al., 1996).
Inhibidores. Esta RNasa no es citotóxica gracias a la acción neutralizante de la proteína inhibidor de ribonucleasa (IR), glicoproteína citosólica de 50 kDa, cuya función
es preservar la integridad del RNA celular (Sorrentino y Libonati, 1997). Gaur et al.
(2001) demostraron que los residuos lisina-7 (Lis-7), glutamina-11 (Gln-11), Asn-71
y glutámico-111 (Glu-111) en la RNasa pancreática humana son los aminoácidos que
interactúan con el IR.
NEUROTOXINA DERIVADA DEL EOSINÓFILO EDN/RNASA 2
Esta proteína es producida y almacenada en eosinófilos (Durack et al., 1981), y se ha
encontrado en hígado (Sorrentino et al., 1988), bazo (Yasuda et al., 1990), neutrófilos
(Sur et al., 1998), placenta (Shapiro y Vallee, 1991), monocitos/macrófagos activados
(De Yang et al., 2004) y en orina (Beintema et al., 1988). Su peso molecular es de 18,4
kDa; es una proteína termoestable (Motojima et al., 1989), catiónica y con una vida media en sangre muy corta (Boix et al., 1996). La estructura tridimensional de la EDN se
caracteriza por la presencia de tres asas que la hacen diferente de las otras RNasas de la
superfamilia RNasa A. Además, presenta una inserción de aminoácidos Asp-115 a
tirosina-123 (Tyr-123) que comparte con la proteína catiónica del eosinófilo y la RNasa
k6 (Rosenberg, 1998). Posee cinco sitios potenciales para glicosilación en el aminoácido
asparagina (Beintema y Kleineidam, 1998). La EDN presenta dos formas alternas resultado de un procesamiento alternativo o de una modificación pos-trasduccional; una de
ellas contiene cuatro aminoácidos adicionales (Serina-Leucina-Histidina-Valina) en la
región amino terminal, considerada como parte de la secuencia señal ((-4)EDN; Shapiro
y Vallee, 1991). La EDN presenta una homología del 67% con la proteína catiónica del
eosinófilo. Su actividad neurotóxica se demostró cuando al ser inyectada intratecalmente en conejos indujo un síndrome de rigidez muscular, ataxia y parálisis asociada
con pérdida de las células de Purkinje; síndrome conocido como Fenómeno Gordon
(Rosenberg, 1998). Sus niveles en sangre se han encontrado elevados en enfermedades
asociadas con eosinofilia como por ejemplo en infección por helmintos (Durack et al.,
1979), asma bronquial (Tischendorf et al., 1996) y dermatitis atópica (Dahl et al., 1978).
Función biológica. Actúa como quimioquina para células dendríticas maduras e
inmaduras mediante la activación de la proteína quinasa activada por mitógenos
p42/44 (MAPK; Sugai et al., 1992). Adicionalmente, se ha demostrado su acción antiviral in vitro en líneas celulares crónicamente infectadas con el VIH-1 y contra el virus
respiratorio sincitial (Domachowske et al., 1998), y es responsable por la actividad
anti-VIH-1 que exhibe el sobrenadante de reacciones alogénicas (Rugeles et al., 2003).
Recientemente reportamos que la enzima EDN recombinante inhibe la replicación del
VIH-1 en linfocitos T activados (Bedoya et al., en prensa).
Mecanismo de acción. Se ha demostrado su acción de ribonucleasa sobre RNA de
cadena sencilla con preferencia sobre poli (U); esta actividad es inhibida en altas concentraciones de NaCl (De Yang et al., 2004) y muestra actividad ribonucleasa óptima
sobre RNA de levadura a pH entre 6,5-7,0 (Sorrentino y Libonati, 1997). Es incapaz
de catalizar la hidrólisis de nucleótidos cíclicos por la ausencia del aminoácido fenilalanina en la posición 120 (Sorrentino y Libonati, 1997) y de degradar RNA de doble
cadena bajo algunas condiciones experimentales (Motojima et al., 1989).
Inhibidores. La actividad de la EDN es neutralizada por el inhibidor de ribonucleasa
placentaria humana (Sorrentino y Libonati, 1994); el efecto neutralizante es dependiente de la dosis (Iyer et al., 2005).
PROTEÍNA CATIÓNICA DEL EOSINÓFILO ECP/RNASA 3
Esta RNasa constituye uno de los mayores componentes granulares del eosinófilo
(Olsson y Venge, 1972). Adicionalmente, se ha encontrado en líneas celulares eosinofílicas (Olsson et al., 1977) y en neutrófilos (Sur et al., 1998). Es una proteína secretada, de carácter básico y su propiedad altamente catiónica es dependiente del número
de residuos de arginina en la superficie molecular. En su secuencia presenta tres sitios
de glicosilación, en la región amino terminal, con oligosacáridos complejos similares
a los encontrados en EDN. ECP presenta un peso molecular de 15,6 kDa sin glicosilar,
mientras que las formas glicosiladas pueden variar entre 16 y 22 kDa (Barker et al.,
1989). La RNasa 3 presenta un 70% de homología con EDN; las diferencias entre
estas dos RNasas radica en el número de residuos de arginina, que en EDN son nueve
y en la ECP alcanza un total de 19 residuos. Su actividad ribonucleolítica es mucho
menor que la de EDN.
Función biológica. Varias actividades de la ECP han sido caracterizadas in vitro tales
como disminución del tiempo de coagulación dependiente del factor XII de la cascada
de coagulación (Venge et al., 1979), aumento de la fibrinolisis por activación del plasminógeno inducida por uroquinasa (Dahl y Venge, 1979) y regulación de los componentes de la vía clásica del complemento. Además, se demostró en varios estudios que
la ECP tiene toxicidad hacia Schistosoma (Ackerman et al., 1985), Trypanosoma (Molina et
al., 1988), Microphilariae (Hamann et al., 1990), Trichinella (Hamann et al., 1987) y
Plasmodium (Waters et al., 1987). También se demostró su actividad contra bacterias
Gram-negativas y Gram-positivas independiente de su acción ribonucleolítica (Carreras et al., 2003). Es tóxica para células y tejidos de mamíferos (Maeda et al., 2002). La
ECP humana recombinante ha demostrado actividad antiviral contra formas extracelulares del virus respiratorio sincitial (Domachowske et al., 1998).
Mecanismo de acción. La ECP es considerada como una enzima con actividad específica por RNA de cadena sencilla, con preferencia por poli(U). In vitro, la ECP muestra
actividad óptima a valores de pH entre 6,5-7,0 con RNA de levadura como sustrato
y es incapaz de catalizar la hidrólisis de nucleótidos cíclicos (Sorrentino y Glitz, 1991).
Debido a su carácter altamente catiónico, la ECP puede unirse a moléculas cargadas
negativamente de las membranas celulares, siendo capaz de formar canales selectivos
no iónicos o poros estables en la membrana (Young et al., 1986). Además de la formación del poro transmembrana, la ECP se internaliza y por medio de la interacción con
la proteína carboxipeptidasa E, en células neuroendocrinas, escapa al ataque proteolítico. Si logra acumularse en exceso y sobrepasa la concentración de los inhibidores
de RNasas, induce la degradación de moléculas de RNA citosólico inhibiendo el
crecimiento celular (Wu et al., 2004).
Inhibidores. Su acción citotóxica es completamente bloqueada por el inhibidor de
RNasa citosólico expresado ubicuamente (Maeda et al., 2002).
ONCONASA/P-30/RANPIRNASA
La onconasa (ONC) es una RNasa aislada de oocitos y de embriones en estadío temprano de la Rana pipiens. Es un miembro de la superfamilia RNasa A que presenta un
30% de homología con la RNasa A bovina. A pesar del bajo grado de homología entre
las estructuras primarias, la estructura tridimensional de la ONC muestra una topología muy similar a la RNasa A (Ardelt et al., 1994). Posee los principales residuos del
sitio activo y tres de los cuatro puentes disulfuro característicos de las RNasas; sin
embargo, la ONC parece tener un único mecanismo catalítico debido a un residuo
piro-glutamato en su región amino terminal (Boix et al., 1996). Es una proteína con
alta estabilidad térmica gracias a su estructura terciaria compacta (Notomista et al.,
2000). La ONC aislada de los oocitos de Rana pipiens ha sido evaluada en varios
ensayos clínicos en humanos como terapia antitumoral (Costanzi et al., 2005).
Función biológica. Se ha demostrado que esta RNasa es citotóxica in vitro para varias
líneas celulares tumorales de mamífero (Darzynkiewicz et al., 1988) y se ha descrito
también actividad antitumoral in vivo en modelos animales (Milkulski et al., 1990).
Tiene una gran capacidad de inhibir la replicación del VIH-1 en líneas crónicamente
infectadas con este virus (Saxena et al., 1996).
Mecanismo de acción. ONC muestra una actividad específica disminuída hacia sustratos específicos en comparación con la RNasa A; exhibe preferencia por poli(U) y
por poli-guanina(poli-G). Su actividad óptima se alcanza a pH 5,5. Estudios previos
en modelos animales indican que la citotoxicidad de ONC se debe a su capacidad de
unirse a la superficie celular, entrar al citosol y degradar el RNA causando la muerte
celular (Wu et al., 1993). Iordanov et al. (2000) reportó la especificidad de ONC por
RNA de transferencia, sin afectar el RNA ribosomal y mensajero. Las células tratadas
con ONC presentaron signos de apoptosis similares a los inducidos por caspasa-3,
que fueron independientes de la inhibición de la síntesis de proteínas.
Inhibidores. Las RNasas de anfibios no son bloqueadas por el inhibidor de ribonucleasas placentarias de mamíferos (Beintema y Kleineidam, 1998), lo que puede explicar su alta citotoxicidad en células de mamíferos.
PAPEL ANTIVIRAL DE LAS RIBONUCLEASAS
Los mamíferos están constantemente expuestos a una gran cantidad de microorganismos contra los cuales responden a través del sistema inmune innato y adaptativo.
La inmunidad innata representa la primera línea de defensa que es rápidamente activada en respuesta a la invasión microbiana, de la cual hacen parte diferentes células
y factores solubles. En los últimos años, varios de estos factores solubles con actividad microbicida, entre ellos las RNasas, han suscitado particular interés por el potencial terapéutico que tienen.
Se ha propuesto que algunas RNasas se unen a la superficie celular, gracias a su carácter altamente catiónico, entran al citosol y degradan el RNA induciendo la muerte
celular. Esta acción catalítica per se de las RNasas hace parte del mecanismo antiviral
de estas enzimas, tal como se ha sugerido para la ONC y la ECP, las cuales degradan
el RNA ribosomal. La acción citotóxica sobre la célula blanco limitaría la replicación
viral. Adicionalmente, se ha sugerido una acción directa de las RNasas, particularmente de la ONC sobre el RNA viral en cultivo de células H9 infectadas con el VIH-1
(Saxena et al., 1996). En el caso de virus DNA, la acción catalítica de las RNasas podría darse después de la transcripción, una vez se hayan producido los RNAm. Otro
mecanismo efector es la acción quimiotáctica y por ende pro-inflamatoria, como la
actividad exhibida por EDN. Al reclutar células dendríticas se induce la producción de
factores quimiotácticos para otras células del sistema inmune; de esta manera, EDN
potencia la respuesta innata y promueve la inmunidad adaptativa que permitiría eliminar más fácilmente la infección viral (Shapiro y Vallee, 1991).
El potencial terapéutico de las RNasas fue inicialmente explorado por Glukhov et al.
(1976) al usar la RNasa 1 para el tratamiento de pacientes infectados con el virus de la
encefalitis Tick-borne. Después del tratamiento, se observó una rápida resolución de los
síntomas meníngeos y de la pleocitosis en el fluído cerebroespinal. Desde entonces, se
han realizado varios estudios que han evaluado el uso terapéutico de estas enzimas en
otros modelos, particularmente tumorales, tanto in vitro como in vivo. Utilizando EDN
purificada, a partir de preparaciones comerciales de la hormona gonadotropina coriónica humana (hCG), se observó una disminución del crecimiento de una línea celular
derivada de Sarcoma de Kaposi, KSIMM, la cual fue dependiente de la dosis. Igualmente, se analizó un péptido sintético de 16 residuos, similar a la secuencia activa de la
enzima -4EDN, el cual exhibió un efecto citotóxico dependiente de la dosis, sobre la misma línea celular (Dricu et al., 2004). La ONC también ha sido evaluada como agente
antitumoral en estudios de fase II en pacientes con mesotelioma maligno (Milkulski et
al., 2002) y en estudios de fase I administrándola en forma intravenosa a pacientes con
diferentes tipos de tumores, quienes habían presentado resistencia a otras terapias
(Milkuski et al.,1993). Esta RNasa demostró una buena actividad antitumoral y un perfil
de toxicidad tolerable. Actualmente se están realizando estudios de fase III con esta
RNasa para el tratamiento del cáncer de pulmón, pancreático y mesotelioma maligno.
CONCLUSIONES
Basándose en estudios realizados in vitro y algunos in vivo, es evidente que las RNasas
tienen actividad antimicrobiana potencial, y un papel importante en iniciar y amplificar la respuesta inmune innata y adaptativa contra la invasión microbiana. La
actividad antiviral demostrada para estas RNasas abre un nuevo campo de estudio
dirigido a la creación de una nueva clase de agentes antivirales usando estas proteínas
o formas modificadas.
AGRADECIMIENTOS
Esta revisión hace parte del proyecto financiado por Colciencias y la Universidad de
Antioquia, código 115-04-12948.
BIBLIOGRAFÍA
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