Actuaciones ecológicas posibles para complementar el control natural de las poblaciones de los artrópodos más comunes de los cítricos en el litoral mediterráneo. ARTRÓPODO Piojo rojo de California o Poll roig de Califòrnia Aonidiella aurantii Maskell Piojo gris o Poll gris Parlatoria pergandii Comstock Piojo blanco o Poll blanc Aspidiotus nerii Bouche METODOLOGÍA DE SEGUIMIENTO Observación de frutos ocupados en el año anterior y muestreos de población. Trampas cromotrópicas y sexuales Observación de frutos ocupados en el año anterior y muestreos de población Observación de frutos ocupados en el año anterior y muestreos de población Serpetas gruesa y fina Cornuaspis (Lepidosaphes) beckii Newman Cornuaspis (Insulaspis) gloverii (Pack) Cotonet Planococcus citri Risso Observación de frutos ocupados en el año anterior y muestreos de población Caparreta negra Saissetia oleae (Olivier) Observación de presencia en hojas y ramillas Cochinilla o Cotxinilla acanalada Icerya purchasi Maskell Piojo rojo o Poll roig Anecdótico Chrysomphalus dictyospermi (Morgan) Pulgones o "pugons" Aphis spiraecola Patch Myzus persicae (Sulzer) Toxoptera aurantii (B. de F.) Aphys gossypii Glover Moscas blancas Aleurothrixus floccosus Maskell Dialeurodes citri Ash. Parabemisia myricae (Kuw.) Polilla del limonero o Prays Prays citri Mill Barreneta Ectomyelois ceratoniae Zeller Minador Phyllocnistis citrella Stainton Mosca de la fruta Ceratitis capitata Wied Ácaro rojo Panonychus citri (Mc Gregor) Ácaro Tetranychus urticae Koch Ácaro de las maravillas Aceria sheldoni (Erwing) Caracoles y babosas Mosquito verde Empòasca decipiens Paoli Chinche verde Calocoris trivalis Costa Observación de presencia en frutos UMBRAL DE INTERVENCIÓN Presencia en fruta de cosecha previa, tratar en 1ª generación al máximo de formas sensibles, en 2ª o posteriores o a la salida del invierno > 2% de fruta afectada en cosecha previa, tratar en 1ª generación al máximo de formas sensibles > 5% de fruta afectada en cosecha previa, tratar en 1ª generación al 50% de hembras con huevos y larvas, o al máximo de formas sensibles, antes del cierre del cáliz > 2% de fruta afectada en cosecha previa, tratar en 1ª generación al máximo de formas sensibles. Si es < 2%, tratar en 2ª generación si es necesario Utilizar control biológico de mayo-junio. Tratar si sobrepasa el 20% de frutos dañados. Tratar la 1ª generación (hasta L3), cuando superen 3 L / hoja En 2ª gen., cuando se alcance el 100% de huevos avivados (al mismo umbral anterior) No tratar ALTERNATIVAS ECOLÓGICAS Mantenimiento y mejora de las cubiertas vegetales y otros hábitats de los entomófagos útiles, repelentes o antagonistas. Aceite mineral (1-2%) Aceite parafínico (1,5-2%) Silicato de sodio (0,3-5%) Jabón potásico (1-3%, poca eficacia) Polisulfuro de calcio (hasta el 8% en invierno, poca eficacia) Trampas con feromonas Sueltas de fauna auxiliar (Criptolaemus para cotonet en abril-junio, Aphytis para piojos a partir de primavera) Desplazado por Aonidiella y Parlatoria Trampas cromotrópicas. Observación del % brotes dañados Umbrales: T. aurantii: > 10% brotes atacados A. gossypii y M. persicae: > 50% Normalmente sólo se requiere en Clemenules, injertadas y plantones Cubiertas vegetales (hasta brotación) y setos (floración invernal y pulgones) Jabón potásico (1-3%) Aceite parafínico y mineral (1%) Lithothamne, polvo de roca, cola de caballo, ajo Azadiractina, nim, rotenona, piretrina Cubiertas vegetales y setos Jabón potásico o aceite Nim Observar en brotes su población y nivel de parasitismo Intervenir únicamente si se sobrepasa el 20% de los brotes atacados y hay una tasa de parasitismo baja Seguimiento de vuelo con feromonas sexuales; observación de fenología y grado de ataque de las flores y frutos > 5% de las flores + frutos dañados. Tratar cuando haya > 50% de la flor abierta (> 4 elementos florales / brote) Trampas feromonas Bacillus thuringiensis No se recomienda tratar Evitar cotonet, polilleros B. thuringiensis Cubiertas vegetales permanentes Azadiractina, nim, aceite parafínico, extracto de ajo, B. thuringiensis Mosqueros y trampas atrayentes Parcheo con azadiractina, rotenona o piretrina (Spinosad) Cubiertas vegetales y setos Aceite parafínico, extracto de ajo, nim Azufres Liberación de fitoseidos Observación de brotes atacados Medir nivel de población con trampas. Observación de primeros frutos picados Observación de formas móviles y fitoseidos en hojas Observación de formas móviles en hojas y frutos Observación de brotes dañados en la última brotación Observación de su presencia Trampas cromotrópicas amarillas Golpeo de ramas y observación de brotes tiernos No tratar en adultos. En plantones e injertos: presencia a partir de 2ª brotación, y brotes de < 5 cm. Inmediatamente antes del envero, si > 0,5 moscas/mosquero y día en trampas alimenticias, en tempranas y tardías Si hay > 30% de hojas con fitoseidos no se trata. Si hay más, tratar cuando: > 20% hojas ocupadas (agosto-octubre) > 80% de hojas el resto del año 10% hojas con formas móviles ó 2% de frutos con formas móviles en envero 20% de brotes afectados, antes de la movida de primavera (brote < 5 cm); verano antes de la movida Inicio de su presencia en brotes de plantones e injertadas Presencia en trampas Primeros daños en brotes tiernos; plantones Aplicaciones al suelo de sulfato de hierro Insecticida vegetal (rotenona, piretrina, …) Lithothamne, polvo de roca, cola de caballo, ajo Tabla : Factores del control biológico de las poblaciones de artrópodos más comunes en territorio valenciano (elaboración a partir de García Marí et al., 1992, Garrido, 1999, Jacas y Garrido, 1999). ARTRÓPODO Piojo rojo de California o Poll roig de Califòrnia Aonidiella aurantii Maskell Piojo rojo o Poll roig Chrysomphalus dictyospermi (Morgan) Piojo gris o Poll gris Parlatoria pergandii Comstock Piojo blanco o Poll blanc Aspidiotus nerii Bouche Serpeta gruesa Lepidosaphes beckii Newman Serpeta fina Insulaspis gloverii (Pack) Cotonet Planococcus citri Risso Caparreta negra Saissetia oleae (Olivier) Cochinilla o Cotxinilla acanalada Icerya purchasi Maskell Pulgón verde de los cítricos Aphis spiraecola Patch Pulgón verde del melocotonero Myzus persicae (Sulzer) Pulgón negro de los cítricos Toxoptera aurantii (B. de F.) Pulgón del algodonero Aphys gossypii Glover Mosca blanca algodonosa Aleurothrixus floccosus Maskell Moscas blanca de los cítricos Dialeurodes citri Ash. Moscas blanca japonesa Parabemisia myricae (Kuw.) Bemisia de los cítricos Bemisia citricola Prays Prays citri Barreneta Ectomyelois ceratoniae Zeller Minador Phyllocnistis citrella Stainton CONTROL BIOLÓGICO Aphytis chrysomphali, A. melinus, A. lignanensis (en estudio), Comperiella bifasciatta (posible), Prospaltella perniciosi (en estudio) Aphytis chrysomphali, A. melinus, A. chilensis, A. hispanicus, A. lignanensis (en estudio), A. proclia, Encarsia citrina, Prospaltella perniciosi, Aspidiotiphagus lounsbouryi Aphytis hispanicus, A. maculicormis (posible), Encarsia inquirenda, Hemisarcoptes coccophagus Aphytis melinus, A. chilensis, A. longiclavae, Encarsia citrina Aphytis lepidosaphes, A. proclia, A. mytilaspides, A. maculicornis, A. chrysomphali, Prospaltella singularis, Encarsia citrina, Exochomus quadripustulatus, Chilocorus bipustulatus Encarsia (Prospaltella) elongata Leptomastix dactilopii, Anagyrus pseudococci, Leptomastidea abnormis, Leucopis griseola, Criptolaemus montrouzieri Metaphycus lounsburyi, M. luteolus, M. helvolus, Scutellista cyanea, Coccophagus scutellaris Rodolia cardinalis, otros comunes a los anteriores (Chilocorus bipustulatus, Lindorus lophantae, Exochomus quadripustulatus, Hemisarcoptes spp., Cheletogenes spp., Lestodiplosis spp., Chrisoperla carnea, ácaros fitoseidos) Afelinus sp., Lysiphlebus testaceipes, Trioxis angelicae, Praon sp., Aphidius matricariae, Coccinella septempunctata, Scymnus subvillosus, Adalia sp., y otros coccinélidos Chrysoperla carnea, Syrphus sp., Aphidoletes sp., Verticillium lecanii Cales noacki Amitus spinifer Otros entomófagos Encarsia lahorensis Encarsia tricolor Encarsia spp. Eretmocerus mundus EFICACIA OBSERVACIONES MC Los dos primeros no son suficientes para controlarlo. BC Fundamentalmente los dos primeros. MC CR MC BC C C Ciptolaemus y Leptomastix son claves, pero el primero falla en periodos fríos. Precisa reintroducción anual. Si sólo existe Scutellista, el control es malo; el factor climático es importante. BC El factor clave es la Rodolia. Deberemos actuar con conservación y mejora. C Si tienen refugio cercano, su actuación es más rápida. BC En primavera y otoño. A. spinifer solo está en Alicante. C C BC Ageniaspis fuscicollis, Trichograma evanescens, aves insectívoras, arañas Aves insectívoras, arañas Pnigalio mediterraneus, Pn. pectinicornis, Cirrospilus pictus, C. vittatus, Ageniaspis citricola, Galeusomyia fausta, Sympiesis gregori Crisopas, mariquitas MC Cada vez es mayor el control por parásitos autóctonos. A. citricola en donde se ha aclimatado realiza un buen trabajo. Mosca de la fruta Ceratitis capitata Wied Ácaro rojo o pardo Panonychus citri (Mc Gregor) Araña roja Tetranychus urticae Koch Ácaro de las maravillas Aceria sheldoni (Erwing) BC = Buen control C = Controlada CR = Control regular MC = Mal controlada Crisopas y fauna del suelo Euseius stipulatus, Thryphlodromus phialatus, Amblyseius californicus Conwetzia psociformis y crisopas, Stethorus punctillum Fitoseidos Crisopas y mariquitas Fitoseidos Crisopas y mariquitas MC BC MC MC Dependerá de las condiciones climáticas y de los fitosanitarios usados para que tengan un control suficiente Tabla : Influencia de algunos tratamientos fitosanitarios empleados en citricultura ecológica sobre la fauna auxiliar (a partir de Jacas y Garrido, 1999). Tabla : Periodo de mayor actividad de la fauna auxiliar que actúa en el control natural de las poblaciones de los artrópodos más frecuentes en el litoral meditrráneo (Garrido, 1999). NOMBRE MANEJO ECOLÓGICO Nemátodos (Tylenchulus sp.) Negrilla (Capnodium citri Berk. & Desm.) Gomosis (Phytophtora sp) y otros hongos del suelo (pudrición de raíces con Armillaria sp., Dematophora sp., Clitocybe sp.) Antracnosis o seca de ramas (Colletotrichum sp., Phomopsis sp., Phoma sp.) Pudrición de frutos (Phytohptora sp. y Penicillium sp.) Bacteriosis spp.) Virus (Pseudomonas - Rotación con hortalizas y frutales (7-10 años). - Patrones tolerantes: Poncirus y Citrange. - Potenciación de micorrizas y hongos saprófitos y antagonistas del suelo (con materia orgánica y abonos verdes). - Asociación con plantas nematicidas (Brassica sp., Sinapis sp.). - Uso de estiércoles frescos enterrados en superficie. - Solarización. - Hongo saprofito que se desarrolla sobre la melaza excretada por mosca blanca, pulgones, cotonet, etc. Tratamiento al insecto que produce la melaza. - Lavado con jabón potásico (hasta el 3%), neutralizado con acético o similar. - Potenciación de micorrizas y hongos, saprófitos del suelo. - Evitar encharcamientos y riego en el cuello: cultivo en meseta o con ruedos aireados, vigilar el riego localizado. - Solarización y biofumigación.. - Control biológico gomosis: Mirotezium sp., Penicillium sp. - Limpieza y desinfección de heridas con propóleo, cal, silicato de sodio (0,5%-2%), compuestos cúpricos, permanganato potásico. - Cuidar las replantaciones (pudrición), quitando restos de raíces, ramas viejas, tocones, etc. Recomendable rotación. - Los más vigorosos son más sensibles (Citrange). El naranjo amargo tolera bien. - Vigilar, tratar sólo ante presencia. - Evitar estrés hídrico o nutricional. - Desinfección con propóleo, silicato de sodio, permanganato potásico o cobre. Puede mezclarse jabón. - En campo: mantener la cubierta vegetal en época de lluvias - Evitar excesos de nitrógeno. - Tratar con permanganato o cobre en faldas. - En almacén: evitar heridas o golpeos, realizar un buen destrío. - Evitar heridas, sobre todo en época de lluvias o humedades altas. - Desinfectar con propóleo, permanganato o compuestos de cobre. - Utilizar variedades tolerantes y libres (de viveros controlados): Cleopatra, Poncirus, Citrange, etc. - Evitar contactos con materiales viróticos (injertos, ...). - Limpiar bien los instrumentos de poda después de cada árbol. - Eliminar adventicias sobre las que pueda transmitirse (p.ej., psoriasis sobre Chenopodium chinoa).