EVALUACIÓN DE LA INTEGRIDAD DEL ACROSOMA DE ESPERMATOZOIDE OVINO CRIOPRESERVADO UTILIZANDO DOS TEMPERATURAS DE ENFRIADO 5ºC Y -5ºC ACROSOME INTEGRITY EVALUATION ON THE CRYOPRESERVED SHEEP SPERMATOZOA USING TWO COOLING TEMPERATURES (5° C AND -5° C) Jiménez MK1, Angulo MR2, Ortíz HA2, Gutiérrez PO1, Hernández EJ1, Juárez–Mosqueda ML.1 1Departamento de Morfología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la UNAM. 2Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión en Producción Ovina (C.E.I.E.P.O.) de la FMVZ RESUMEN. La teca perinuclear (TP) es el principal citoesqueleto de la cabeza del espermatozoide de los mamíferos y recientemente se ha señalado que esta sufre alteraciones durante la criopreservación del semen de toro. La TP cubre al núcleo espermático y ha sido involucrada en los procesos de espermiogénesis y fertilización. El objetivo del presente trabajo fue evaluar si la integridad de la TP también se afecta en los espermatozoides del ovino criopreservados pero bajo dos temperaturas de enfriamiento (5º C y -5º C) y analizar la posible correlación entre el daño del citoesqueleto y el acrosoma. El trabajo se realizó en el Centro de Enseñanza, Investigación y Extensión de Producción Ovina y en el Departamento de Morfología de la FMVZ de la UNAM. Se utilizaron 2 sementales de la raza Suffolk y 2 de la raza Dorset, el semen se recolectó mediante la técnica de vagina artificial. El acrosoma se evaluó mediante la técnica de triple tinción para microscopía fotónica y la subestructura de la TP se evaluó mediante tinción negativa para microscopia electrónica de transmisión. Al análisis estadístico de las muestras mediante las pruebas de T-pareada, ANOVA y Pearson del programa Minitab, mostraron diferencias significativas (P<0.05) entre la integridad de la TP del semen fresco (%) y el descongelado (%), pero no existió diferencia significativa entre las muestras descongeladas. Tampoco se encontró correlación entre el daño del citoesqueleto y la pérdida de acrosoma. INTRODUCCIÓN Y OBJETIVO El acrosoma se localiza en la parte anterior de la cabeza del espermatozoide cubriendo dos tercios del núcleo, contiene enzimas que son esenciales para la penetración de la zona pelucida del ovulo dichas enzimas se liberan al exterior mediante un proceso de exocitosis denominado reacción acrosomal, necesario para la fertilización del ovulo ( Fig 1). La congelación y descongelación pueden afectar las membranas del espermatozoide debido a la transición de fases que sufren los lípidos por efecto de la temperatura. Algunos investigadores mencionan que el enfriado lento hasta -5º C puede mejorar la estabilidad de las membranas espermáticas, disminuyendo el daño al acrosoma. El objetivo del presente trabajo fue evaluar el mantenimiento del acrosoma por efecto de 2 temperaturas de enfriamiento previo a la congelación (5º C y -5º C). MATERIAL Y MÉTODOS El presente estudio se realizó en C.E.I.E.P.O de la UNAM, en el poblado de Tres Marías, Municipio de Huitzilac, Estado de Morelos. Se utilizó el semen de 4 machos de las razas Suffolk y Dorset, con una edad entre los 2 y 6 años. La recolección del semen se realizó utilizando la técnica de vagina artificial y este se evaluó macroscópica y microscópicamente. El semen fue dividido en dos fracciones, una de ellas se empleó como semen fresco y la otra se congeló. El enfriado comenzó a temperatura ambiente (22º C) una parte del semen fue llevado hasta alcanzar una temperatura de 5º C (en dos horas) y otra hasta llegar a -5º C (en una hora más) utilizando para ello un refrigerador de uso doméstico. Una vez alcanzadas las temperaturas se procedió al congelamiento de las muestras en vapores de nitrógeno líquido. Para la evaluación del semen criopreservado se descongelaron dos pajillas por temperatura en un baño María a 37º C durante 30 segundos. Se utilizó el método de la triple tinción (TT) que permite diferenciar entre células vivas y muertas con y sin acrosoma. Las observaciones se hicieron en un microscopio de luz. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Las células se clasificaron y contabilizaron de acuerdo a los patrones de afinidad y reacción tintorial de la TT y los resultados se muestran en el cuadro 1. Como se observa hubo una diferencia estadística significativa entre los patrones observados en las muestras de semen fresco y las muestras congeladas previo enfriamiento, lo cual coincide con en estudios anteriores en semen de bovino. Sin embargo no se encontró diferencia estadística entre las muestras enfriadas a 5° C y -5° C, lo cual difiere con otras investigaciones. En ambos tipos de muestras el porcentaje de espermatozoides fertilizantes (vivos con acrosoma) fue muy bajo, lo cual posiblemente sea atribuido a que otras estructuras de la célula, más sensibles a los cambios de temperatura, sean dañadas por el proceso de criopreservación. Diversas investigaciones señalan que las proteínas del citoesqueleto son susceptibles a los cambios de temperatura; en otro tipo de células se ha demostrado que el citoesqueleto interviene en el mantenimiento de la integridad de la membrana plasmática (cuadro 2, fig.2). CUADRO 1. RESULTADO DE LA COMPARACIÓN ENTRE PATRONES DE ESPERMATOZOIDES FRESCOS Y DESCONGELADOS TEÑIDOS CON TRIPLE TINCIÓN. Membrana acrosomal interna Figura 1. Esquema de la cabeza del espermatozoide. (Gutiérrez 2006) Membrana acrosomal externa Membrana plasmática Acrosoma Capa postacrosomal Capa subacrosomal PATRONES FRESCO % 5°C % - 5°C % Muerto con acrosoma 27.83a 54.67b 48.58b Muerto sin acrosoma 25.00a 41.67b 47.83b Vivo con acrosoma 43.92a 3.33b 2.67b Vivo sin acrosoma 3.25a 0.33b 0.92b Literales diferentes indican diferencia significativa entre tratamientos (P < 0.05) CUADRO 2. EVALUACION DE LA INTEGRIDAD DE LA SUBESTRUCTURA DE LA TP ENTRE TRATAMIENTOS. (T-PAREADA) TP Fresco 5ºC -5ºC Integra 86.33+/-4.48a 59.67+/-5.87b 73.50+/-4.06b Alterada 12+/-4.11a 38+/-5.44b 24.67+/-2.80b Literales diferentes indican diferencia estadística significativa P < 0.05 INTEGRIDAD DE LA SUBESTRUCTURA DE LA TECA PERINUCLEAR Fig.2. Ultramicrofotografías de cabezas de espermatozoides de ovino contrastadas con tinción negativa, donde se observa la integridad de la subestructura de la teca perinuclear (TP). a) Subestructura normal mostrando las papilas (flecha) distribuidas a lo largo del borde apical de la PA y la delimitación de las mismas por una línea continúa. b) Subestructura alterada mostrando la pérdida de algunas papilas (flecha). c) Cabeza espermática mostrando la ausencia de la subestructura (flechas) de la TP. Barra 1 μm. SA: capa subacrosomal de la TP; PA: capa postacrosomal de la TP. CONCLUSIÓN Aunque después de la descongelación un alto porcentaje de espermatozoides conservaron el acrosoma, el enfriado de las células hasta -5° C no permitió mantener la integridad de la membrana plasmática ya que el porcentaje de células vivas fue muy bajo en ambos tipos de enfriado. La triple tinción es una valiosa herramienta que permite la identificación de los espermatozoides con y sin acrosoma y de estos, diferenciar el porcentaje de vivos y muertos. Apoyado por DGAPA-UNAM PAPIIT-IN 206506 E-mail [email protected] REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 1. Ponsart C., Gerard O., Caplin S.:Insemination; history and state of the art in animals. Gynecol Obstet Ferti 32(10)880-6 (2004). 2. Ortíz, A. Antecedentes sobre el uso de la inseminación artificial. Memorias "inseminación artificial en ovinos". 2005. 3. Ostermeier, G.,Sartor.,Susko, L., Parrish, J.B.: Bull feertility and sperm nuclear shape. Ag. Biotech Net. Vol 2 Sept. (2000). 4. Neil Dm,Bm de Gazella, Magnesio de Chaves, Migaraya Mh, Colenbrander B, Agüero A.: membrana change during different stages of a freeze-thaw protocol for equine semen cryopreservation. Theriologenology. 59 (8): 1693-705 (2003). 5. Curry, M.R., Cryopreservation of semen from domestic livestock. Rev. Reprod. 5: 46-52 (2000). 6. Salomon, S., Maxwell, W.M.C.: Frozen storage of ram semen I. progressing, freezing, thawing and fertility after cervical insemination. Animal Reproduction Science 3-4 (37) 185-249 (1995). 7. Watson, P. F.: The Causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction Science. (60-61) 481-492 (2000). 8. Watson, P., F.: Recent developments and concepts in the criopreservation of spermatozoa and the assessment of their post-thawing function. Reprod Fertil Dev. 7: 871-891 (1995). 9. Oko, R., Maravei, D.: Protein composition of the perinuclear theca of bull spermatozoa. Biol. Reprod. 50: 1000-1014 (1994). 10. Gutiérrez P. O. Correlación del daño de la teca perinuclear y la descondensación del núcleo del espermatozoide criopreservado del cerdo. Tesis de maestría. Universidad Nacional Autónoma de México. México D.F. 2006. 11. Ross M., Histología. 3raed. Editorial Médica Panamericana. México. 1992 12. Valencia J., Juarez-Mosqueda M.L.: Transporte de gametos y fertilización. En Galina C. Reproducción de animales domésticos. 2da ed.Editorial Limusa Noriega. México. 2006. 13. Bonet, S., Briz, M., Pinart, E., Sancho, S., García-Gil N y Badia E. Morfología espermática en porci. Institut d'Estudis Catalans (Ed.) Arxius de les seleccions de sciencies, vol. 126.Barcelona, España. 2000. 14. Hafez, E.; Reproducción e inseminación artificial en animales domésticos. 7maed. Interamericana-Mc Graw-hill. México. 2002. 15. Oko, R., Clermont, Y.: Origin and distribution of perforatorial proteins during spermatogenesis of the rat: an inmunoccytochemical study. Anat. Rec., 230: 489-501 (1991). 16. Hernández E.J. ¿Depende la descondensación de núcleo espermático del cobayo de la estabilidad de la subestructura de la teca perinuclear? Tesis de maestría. Universidad Nacional Autónoma de México. México D.F. 2004. 17. Juárez-Mosqueda, M., Mujica A.: A perinuclear theca subestructure is formed during epididymal Guinea pig sperm maturation and disapears in acrosome reacted cells. J. Struct. Biol. 128: 225-236 18. Sutovsky P. et al.: Interactions of sperm perinuclear theca whit the oocyte: implications for oocyte activation, anti-polyspermy defense, and assisted reproduction. Microscopy Research And Technique 61: 362-378 (2003). 19. Kimura, Y., Yanagimachi, R. Kuretate, S.,Bortkiewwicz, H., Perry, A., Yanagimachi, H., Analysis of mouse oocyte activation suggest the involment of sperm perinuclear material. Biol. Reprod., 58: 1407- 1415 (1998). 20. Buhr M, Canvin A; Bauley L.: Efects of Semen Preservation on Boar Spermatozoa Head Membranas. Gamete Research. 23: 441-449 (1990). 21. Salamon, S., Evans,G. and Maxwell, W.M.C. Inseminación artificial de ovejas y cabras. 1ra ed., Acribia S.A., España.1990. 22. Martínez O.C., Juárez-Mosqueda M de L, Hernández J., Valencia J., Cryopreservation of bull spermatozoa alters the perinuclear theca. Theriogenology 66: 1969-1975 (2006). 23. Vázquez, J., Carrizosa, J.: Identificación del estado del acrosoma y viabilidad de los espermatozoides por una técnica de triple tinción. 4tas. Jornadas internacionales de reproducción animal e inseminación artificial. León comunicaciones. 35-38 (1980). 24. Garde, J., García Artiga, C., Gutiérrez, A., Vásquez, I. Triple tinción para valorar acrosomas normales y viabilidad espermática en semen ovino. Med. Vet. (9) 2 (1992). 25. Longo, F.J. Basics proteins of the perinuclear theca of mammalian spermatozoa and spermatids: a novel clas of cyroskeletal elements. The journal of Cell Biology 105: 1105-1120 (1987). 26. Rios G.E. Comparación del enfriado tradicional a +5ºC vs el enfriado a 2ºC y -2ºC sobre la criosupervivencia y la capacitación prematura del semen de carnero. Tesis de maestría. Facultad de Estudios Superiores-Cuautitlán. México D.F. 2005.