Prueba de Flujo Lateral CrAg Para la detección del antígeno criptocócico – REF CR2003 PROCEDIMIENTO BÁSICO CUALITATIVO 1. Agregar 1 gota de diluyente de muestra LF al tubo 2. Agregar 40 µL de muestra de paciente al tubo 3. Insertar la tira como se observa en la figura. 4. Esperar durante 10 minutos. 5. Prueba / Control / Positivo / Negativo La Criptococosis es causada por las dos complejo Cryptococcus Si el especies CrAg estádel presente en la muestra, e Cryptococcus Gatti) (4). Los individuos con deficiencias en la inmunidad marcado celular son complejo antígeno-anticuerpo co La Prueba de Flujo Lateral CrAg es un sistema infecciónde(6). prueba La Criptococosis inmunocromatográfica es una de hasta las para infecciones que la detección interactúa máscualitativa comunes con la Línea oen los de pacien Prueb semicuantitativa de los antígenos polisacáridos capsulares del complejo especies Cryptococcus La detección del antígeno criptocócico (CrAg) El de complejo en suero antígeno-anticuerpo y en LCR ha sidomarcado ampliam (Cryptococcus neoformans y Cryptococcus Gatti) en suero y en líquido céfalo raquídeo sensibilidad y especificidad (1-3). forme(LCR). una Línea de Prueba visible. La Prueba de Flujo Lateral CrAg es un ensayo de laboratorio con carácterCon prescriptivo un adecuado que flujo favorece y reactividad el de lo diagnóstico de la Criptococosis. Principios biológicos negativa, hará que el anticuerpo control con Los anticuerpos inmovilizados en la Línea Explicación La Prueba de Flujo Lateral CrAg es un ensayo formarán inmunocromatográfico una Línea de Control sandwich. visible. La L muestra se agregan en un reservorio apropiado, Control). como Los resultados un tubo dede ensayo, pruebas en nega dond flujo lateral. La prueba utiliza la acción capilar control,delalaprueba muestra, no es para válida. capturar anticue conjugados con oro coloidal, y anticuerpos control conjugados con oro depositados Uso pretendido Materiales provistos Al manejar muestras de pacientes, deben Lastomarse muestras medidas en tránsito adecuadas deben manteners para prev infecciosos potencialmente presentes en la muestra. A. Diluyente de muestra LF (2,5 ml, REF Al manipular GLF025): los Solución reactivos salina en este tamponada kit, utilizar Procedimiento conguantes glicina, siempre, contienedado agentes que algunos re bloqueantes y un conservante. 0,095% (w/w) de azida de sodio. La azida de sodio nunca debe desecharse por el B. Tiras de prueba CrAg LF (50 tiras enquímico un recipiente puededesecante, reaccionarREF con LFCR50). el plomoProcedimiento o el cobre de las cualitativo cañerías y formar azid C. Control positivo CrAg (1 ml, REF CB1020): explosivas. Solución Los excesos salina tamponada de los reactivos con deben glicina desecharse salpicada con en un antígeno recipiente de resi criptocócico. 1. Agregar 1 gota de diluyente de muestra D. Inserto del envase. Estabilidad y conservación de microtitulación, tubo de ensayo, etc.). 2. Agregar 40 µL de muestra al recipiente. Materiales no provistos Todos los reactivos incluidos en este kit deben 3. Sumergir conservarse el extremo a temperatura blanco de una ambiente Tira d de vencimiento que figura en las etiquetas 4.de Esperar los mismos. durante 10 minutos. A. Pipetas (40 µL y 80 µL). 5. Leer y registrar los resultados inmediatam B. Timer Recolección de muestras y C. Tubos microcentrífugos descartables,preparación tubos de ensayo, o una placa de microtitulación. Precauciones Para resultados óptimos, debe utilizarse suero no hemolizado estéril o LCR procesamiento de las muestras, pueden conservarse a 2º-8º C hasta por 72 horas. Es necesaria una estandarización específica Las para muestras mantener pueden la altaconservarse calidad de materiales por períodos y reactivos. más extensos a <-20º C, s Toda modificación de los procedimientos descongeladas aquí descriptos,y queda vueltasbajo a congelar responsabilidad reiteradas del veces. usuario. 1 Zygomycetes La Prueba de Flujo Lateral CrAg fue Candida evaluadakrusei para reactividad cruzada contr pacientes con una variedad de patologíasAnticuerpo diferentes.antinuclear Los resultados positivo de esta evalua glabrata 1. Colocar 10 tubos microcentrífugos o tubos tablade a continuación. ensayo en una gradilla apropiada Candida y etiquetarlos del 1 al 10 (1:5 a 1:2560). Quizás se requieran diluciones adicionales si la muestra es positiva en Virus 1:2560. Hepatitis A Cladosporium trichoides 2. Agregar 4 gotas de diluyente de muestra LF (REF GLF025) al tubo%Nº1. Patología Cantidad 3. Agregar 2 gotas de diluyente de muestra LF a cada uno etiquetado Virus 2-10. Hepatitis C de de los tubos Positivas Neisseria meningitidis 4. Agregar 40 µL de muestra al tubo Nº 1 y mezclar bien.muestras Staphylococcus aureus 5. Transferir 80 µL de muestra del tubo Nº 1 al tubo Nº 2 5y mezclar bien. con este procedimiento de Peniciliosis 0% (0/5)Continuar Salmonella typhi dilución hasta llegar al tubo Nº Esporotricosis 10. 6 0 % (0/6) Streptococcus 6. Sumergir el extremo blanco de unaHAMA Tira de Prueba CrAg 5LF en la0muestra uno de lospneumoniae 10 tubos. % (0/5) en cada Mycobacterium tuberculosis 7. Esperar durante 10 minutos. Sífilis 10 0 % 8. Leer y registrar los resultados inmediatamente (ver LECTURA DE(0/10) LA PRUEBA). Efecto gancho en altas dosis Rubeola 5 0 % (0/5) Lectura de la prueba Micoplasmosis 10 0 % Si bien no es frecuente, las concentracio (0/10) Leer las reacciones inmediatamente.Toxoplasmosis La presencia de dos 7 líneas (Prueba y Control), pueden independientemente dar como resultado delíneas la de prue 0 % (0/7) intensidad de la línea de prueba, indica un resultado positivo. negativo. Si se sospecha, por tanto, que CMV 10 0 % negativos, debe utilizarse el procedimiento (0/10) Para el procedimiento de titulación semicuantitativo, el título del paciente debe informarse negativos.como la dilución más Blastomicosis 10 0 % alta que arroja un resultado positivo. (0/10) Valores esperados y características de rendimiento específicas Procedimiento de semicuantitativo titulación La Prueba de Flujo Lateral CrAg se eval fueron enviadas a un laboratorio en Esta muestras fueron analizadas usando la P criptocócico en látex Immy (REF CR100 criptocócico . Los resultados de estas comparaciones pu Comparación del método por aglutinación con látex Suero y LCR Immy LA Coccidiomicosis % no aparece, los resultados Una sola Línea de Control indica resultado negativo. Si 10 la línea0de control PossonNeg (0/10) inválidos y la prueba debe repetirse. Ensayo Pos 121 2 Histoplasmosis 10 0 % CrAg LFA Neg 0 116 (0/10) Control de calidad Candidiasis 10 0 % Suero y LCR Calculado 95% (0/10) CI Un control positivo (Control PositivoAspergillus CrAg REF GM CBO020) 10 puede evaluarse 1 gota de diluyente de 10 % agregando 100% 97% %Concordancia muestra LF (REF GLF025) seguido + de 1 gota de Control Positivo CrAg tubo. Un control negativo (1/10)en unpositiva (121/121)puede 100% evaluarse agregando 2 gotas de diluyente en% un%Concordancia tubo. Insertar una Tira de Prueba Factorde muestra LF (REF 10 GLF025) 0 98% 94% CrAg LF en los tubos y leerla luego de 10 minutos. Dos líneas (Prueba y Control) indican un resultado positivo, 99.5% y reumatoide (0/10) (116/118) negativa una línea (Control), un resultado negativo. 99.2% 97% %Concordancia (237/239) 99.8% total Interpretación de los Por otra parte, se evaluó la reactividad cruzada analizando los filtrados de cultivo d resultados rango de concentraciones utilizando la Prueba de Flujo Lateral CrAg. con En concentra Comparación del método antígenos de Paracoccidioides brasiliensis cierta reactividad cruzada el demostraron ensayo EIA Meridian Para que la prueba sea válida, la Línea de Control debe estar presente. La presencia de dos bandas (una banda de control y una banda en la zona de la prueba) indica un resultado Antígenos de los siguientespositivo. organismos fueron probados y no mostraron reactividad Suero y LCR EIA Mridian Aspergillus terreus Pos Neg Limitaciones del Aspergillus fumigatus Ensayo Pos 116 7 procedimiento Aspergillus nige Aspergillus flavus CrAg LFA Neg 0 116 El análisis de las muestras de suero hemolizadas puede darevaluó resultados negativos falsos debido al fuerte color deorganismos Esta prueba no se para reactividad cruzada contra los siguientes Suero & LCR Calculado fondo de la tira. Esta prueba no fue evaluada para potencial interferencia relativa al pretratamiento de la muestra95% CI con 2-mercaptoetanol. Candida dubliniensis 97% %Concordancia 100% Pneumocystis carinii (116/116) positiva 100% Candida tropicales Análisis de reactividad 89% %Concordancia 94% Trichosporon beigelii (116/123) cruzada negativa Candida parapsidosis 2 97% %Concordancia total 97% (232/239) 94% 99% Concentración 0,50 ng/mL 0,75 ng/mL 1,00 ng/mL 1,25 ng/mL # Positivo 0 0 4 12 % Positivo Negativo Bajo Positivo Moderado Positivo 2/30 100% 30/30 100% 30/30 0/30 100% 30/30 100% 30/30 0/15 100% 15/15 100% 15/15 2/75 100% 75/75 100% 75/75 0% (0/24) 0% (0/24) 17% (4/24) 50% Comparación del método Panel de Sitio Sitio 2 Sitio 3 General (12/24) LCR 1 % Pos % Pos % Pos semicuantitativo 1,50 ng/mL 21 88% % (21/24) Pos 1,75LCR ng/mLy 62 sueros) 24 100% analizadas utilizando Por otra parte, 79 de estas muestras (17 fueron el procedimiento de Negati 0% 0% 0% 0% (24/24) titulación semicuantitativo tanto en la Prueba de Flujo Lateral CrAg como en el Sistema de detección de antígeno vo 0/30 0/30 0/15 0/75 2,00 ng/mL 24 100% criptocócico en látex Immy Alto 10% 0% 0% 4% (24/24) Negati 0/30 0/15 3/75 2,50 ng/mL 24 arrojó un 100% (REF CR1003). El análisis de regresión lineal de los datos valor R 2 de 0,890. 3/30 vo (24/24) Bajo 100% 100% 100% 100% 3,00 ng/mL 24 100% Límite de detección positivo 30/30 30/30 15/15 75/75 (24/24) Moderado 100% 100% 100% 100% La Prueba de Flujo Lateral CrAg se evaluó para reproducibilidad y precisión positivo 30/30) (30/30)criptocócico (15/15) (75/75) Para establecer el límite de detección, se llevó a cabo un experimento C5-C95 diluyendo antígeno salpi con antígeno criptocócico para producir un panel consistente en una muestra neg purificado en diluyente de muestra LF (REF GLF025), y analizando 24 réplicas por concentración la dos veces positiva baja y una muestra positiva moderada. Este panel fueusando evaluado Prueba de Flujo Lateral CrAg. Los resultados de esta prueba se demuestran en la siguiente tabla: total de 5 operadores durante un período de 5 días a fin de determinar la reprod intra-ensayo. Los resultados de este estudio figuran en la siguiente tabla: Intervalo C5 – C95 1.0 -1.5ng/ml Reproducibilidad y precisión Panel de suero Negativo Alto Sitio 1 % Pos 0% 0/30 7% Sitio 2 % Pos 0% 0/30 0% Sitio 3 % Pos 0% 0/15 0% General % Pos 0% 0/75 3% Referencias 1. 2. 3. 4. 5. 6. Doering, T. L. 2009. Annu. Rev. Microbial. 63:223-247. Goodman, J. S., L. Kaufman, and M. G. Koening. 1971.. N. Engl. J. Med. 285:434-436. Kozel, T. R. 1995. Trends Microbial. 3:295-299. Lin, X. and J. Heitman. 2006. T. Annu. Rev. Microbial. 60:69-105. Park, B. J., K. A. Wannemuehler, B. J. Marston, N. Govender, P. G. Pappas, and T. M. Chiller. 2009.. AIDS 23:525-530. Zhou, Q. and W. J. Murphy. 2006. Immunol. Res. 35:191-208. Immuno-Mycologies, Inc. 2700 Technology Place Norman OK 73071 EE.UU. (405) 360-4669/(800) 654-3639 Fax: (405) 364-1058 E-mail: [email protected] Web: www.immy.com CE EC REP MDSS Schiffgraben 41 30175 Hannover, Alemania Conservar a 20º-25º C Número de lote Fabricado por Código Fecha de vencimiento Para uso diagnóstico in vitro 3 De Conformidad con las normativas europeas Contenido suficiente para < n > ensayos Proteger de la humedad 4