Splicing en el citoplasma pre-mRNA splicing in platelet cytoplasm acts as a key regulatory event in the production of IL-1ß during platelet activation. Cell (2005) 122: 317–325 Escaping the Nuclear Confines: Signal-Dependent Pre-mRNA Splicing in Anucleate Platelets Cell (2005) 122: 379–391 Hematopoyesis normal Hematopoietic Stem Cell CD34+ Sangre Periférica U1 70K Protein is localized in the cytoplasm of megakaryocytes and in proplatelets that extend from megakaryocytes Cell (2005)122: 379–391 Critical spliceosome factors are present in the cytoplasm of: megakaryocytes megakaryocytes with proplatelet extensions circulating platelets Cell (2005)122: 379–391 Localization of U snRNAs in Megakaryocytes, Megakaryocytes with Proplatelet Extensions, and Circulating Platelets Ab anti-TMG (cap) para detectar U snRNA nuclear citoplasmatico Cell (2005)122: 379– 391 Activated platelets splice endogenous IL-1β pre-mRNA into mature message and translate the mRNA into protein actina Il-1ß Cell (2005)122: 379–391 Platelet extracts splice in vitro transcribed IL-1β pre-mRNA A) immunolocalization of U1 70K protein in mature platelets (B) Platelet lysates were left unfractionated (total plts) or were separated into six fractions on sucrose gradients. U1 70K : Western analysis (C) In vitro-transcribed IL-1β premRNA was incubated with unfractionated platelet lysates (total plts), fractions 1–6, without platelet lysates (unspliced control) or with HeLa cell nuclear extracts (last lane). In vitro-transcribed intronless IL-1β mRNA (spliced control) was analyzed on the same gel as a positive control for spliced message. Cell (2005)122: 379–391 Extensión del repertorio genético regulatorio de las células eucariotas 9 Megacoriocitos y plaquetas han desarrollado un sistema para poder distribuir al cistoplasma el precursor de Il-1ß sin procesar Seguridad: los mensajeros con intrones son degradados en el núcleo para evitar que se traduzcan rindiendo productos indeseables Clases de intrones Auto - splicing √ Grupo I: genes nucleares, mitocondriales y cloroplásticos que codifican para ARNr, ARNt y ARNm √ Grupo II: transcriptos primarios de ARNm mitocondrial o cloroplástico en hongos, algas y plantas No auto - splicing √ Splicing de transcripto primario de ARNm: spliceosoma √ Splicing de ARNt de levaduras Reacciones de transesterificación Mecanismo de Splicing: intrones grupo I Intrones grupo I Gen de 26S ARNr + ARN Pol de E. coli • Splicing del ARN • Circularización del intrón • AUTOSPLICING no requiere proteína extra Cech y col., 1982 Intrones grupo I Autociclización del intrón 1 Intrón lineal 2 + alta T, Mg2+, sales 3 Marcador de intrón C intrón L Cech y col., 1982 intrón C Intrones grupo I Clonación de ARNr 26S en vector Transcripción con P*-ATP Autosplicing dependiente de GTP Incubación con y sin GTP Cech y col., 1982 Intrones grupo I • Autosplicing ocurría en ausencia de proteína Precusor de spl + [α-32P]GTP + condiciones de spl Seph G50, electroforesis, producto* Intrón incorporaba * • Marcación del extremo 5’ del intrón con [α-32P]GTP y secuenciación del producto Secuencia del intrón lineal con extra G en 5’ • Tratamiento con RNasa T1 G unida a extremo 5’ por enlace fosfodiester 3’-5’ Cech y col., 1982 Modelo de autosplicing Intrón dentro de 26S Circularización y re-linealización del intrón Modelaje molecular Ribozimas Son ARNs catalíticos M1ARN es el componente catalítico de RNasa P (Altman, 1983) Mecanismo de Splicing: intrones grupo II: intermediario lazo Primera reacción de transesterificación Consensus Group II intron Structure 6 domains, “Helical Wheel” Domain I contains binding sites for the 5’ exon (keeps the 5’ exon from floating away after the first splicing step) Mecanismo de Splicing: intrones grupo II: intermediario lazo La unión de los exones libera el lazo (intrón) Group II Splicing Pathway (1) The 2’ OH of a special internal A attacks the 5’ splice site creating a branched intron structure. (2) The 3’ OH of the 5’ exon attacks the 3’ splice site, ligating the exons and releasing the intron as a lariat structure. Mecanismo de splicing de los ARNt Mecanismo clásico 1. Ataque al sitio 5’spl por nt del intrón o por nt libre 2. Ataque del primer exón sobre el segundo exón Conservación de uniones fosfodiester ARNt 1. tARN endonucleasa 2. ARN ligasa Para lograr el splicing del ARNt se necesitan las dos enzimas + ATP Clases de intrones Auto - splicing √ Grupo I: genes nucleares, mitocondriales y cloroplásticos que codifican para ARNr, ARNt y ARNm √ Grupo II: transcriptos primarios de ARNm mitocondrial o cloroplástico en hongos, algas y plantas No auto - splicing √ Splicing de transcripto primario de ARNm: spliceosoma √ Splicing de ARNt de levaduras Splicing: intrones grupo I y II Reacciones de transesterificación Mecanismo de Splicing: intrones grupo I Intrones grupo I Gen de 26S ARNr + ARN pol de E. coli • Splicing del ARN • Circularización del intrón • AUTOSPLICING no requiere proteína extra Cech y col., 1982 Intrones grupo I Autociclización del intrón 1 Intrón lineal 2 + alta T, Mg2+, sales 3 Marcador de intrón C intrón L Cech y col., 1982 intrón C Intrones grupo I Clonación de ARNr 26S en vector Transcripción in vitro con P* Autosplicing dependiente de GTP Incubación con y sin GTP Cech y col., 1982 Intrones grupo I • Autosplicing ocurría en ausencia de proteína Precusor de spl + [α-32P]GTP + condiciones de spl Seph G50, electroforesis, producto* Intrón incorporaba * • Marcación del extremo 5’ del intrón con [α-32P]GTP y secuenciación del producto Secuencia del intrón lineal con extra G en 5’ • Tratamiento con RNasa T1 G unida a extremo 5’ por enlace fosfodiester 3’-5’ Cech y col., 1982 Modelo de autosplicing Intrón dentro de 26S Ciclización y linealización del intrón Modelaje molecular Ribozimas Son ARNs catalíticos M1ARN es el componente catalítico de RNasa P (Altman, 1983) Mecanismo de Splicing: intrones grupo II: intermediario lazo Primera reacción de transesterificación Consensus Group II intron Structure 6 domains, “Helical Wheel” Domain I contains binding sites for the 5’ exon (keeps the 5’ exon from floating away after the first splicing step) Mecanismo de Splicing: intrones grupo II: intermediario lazo La unión de los exones libera el lazo (intrón) Group II Splicing Pathway (1) The 2’ OH of a special internal A attacks the 5’ splice site creating a branched intron structure. (2) The 3’ OH of the 5’ exon attacks the 3’ splice site, ligating the exons and releasing the intron as a lariat structure. Mecanismo de splicing de los ARNt Mecanismo clásico 1. Ataque al sitio 5’spl por nt del intrón o por nt libre 2. Ataque del primer exón sobre el segundo exón Conservación de uniones fosfodiester ARNt 1. tARN endonucleasa 2. ARN ligasa Para lograr el splicing del ARNt se necesitan las dos enzimas + ATP Mecanismo de splicing de los ARNt Procesamiento adicional de los ARNm eucariotas ARNm maduros de eucariotas tiene características estructurales en ambos extremos • extremo 5´: cap • extremo 3´: colita de poli (A) Estructura del cap Marcación de Cap con [β,γ-32P]ATP primer nt del ARN No removible por fosfatasa alcalina protegido • Cuál es el agente bloqueante? 7-metil-guanosina Capping Su función principal es prevenir la hidrólisis del enlace fosfodiéster 7-methylguanosine 7-methyl G5’ppp5’N m7G Tipos de cap Capping Capping ocurre co-transcripcionalmente enseguida después de la iniciación • Guanililtransferasa (nuclear) transfiere residuos G al extremo 5´ • Metiltransferasa (nuclear y citoplasmática) agrega grupos metilo a la G 5´ terminal y en la posición 2´ de ribosas de nt próximos Capping γ (GT) (S-adenosylmethionine) Estructura del Cap ¿Cuándo se agrega el Cap? • • Transcripción depende del capping (en CPV) Transcripción no depende del capping (en vaccinia) • En adenovirus capping ocurre temprano en el proceso de transcripción 1. [3H]A marca m7GpppA y otras A de pre ARNm 2. Separación de precursores por gradiente de centrif 3. Hibridiz de ARNs a fragmento de restricción pequeño incluyendo sitio de iniciación de la transcripción Fragmentos hibridizados tenían CAP Capping en eucariotas ocurre antes que el pre-ARNm llegue a 30nt Función del Capping • Protege el extremo 5´ del ARNm Estabilidad del ARNm • Aumenta la transducibilidad del ARNm Requerido para la iniciación de la síntesis de proteínas • Aumenta el transporte del ARNm desde el núcleo al citoplasma • Aumenta la eficiencia del splicing de ARNm Protección 1. ARN viral con cap, bloqueado o libre inyectados en oocitos 2. Purif y análisis de sedimentación grad glicerol Degradación por incubación 8hs Decapping por Β-eliminación pppGm-ARN, pppG-ARN sin inc pppGm-ARN, pppG-ARN con inc Incubación en extracto de germen de trigo ARN sin cap menos estables Furuichi y col. 1977 Transducibiliadad • ARNm accede al ribosoma vía proteína de unión al cap ARNm desnudo • Cap en ARNm poliadenilado 297 veces traducción traducción Transporte • Cap facilita el transporte del ARN maduro fuera del núcleo X U1 snARN bajo promotor de hU6snARN (pol III no cap) inyectado en oocitos con [α-32P]GTP + 5S ARNr + α-amanitina Pol III U1 P o l I Pol II U1 I I U 1 Hamm y Mattaj, 1990 ¿Como protege el cap al extremo 5’ de la degradación? ¾ Por unión del complejo CBP ¾ CBP consiste de 2 subunidades CBP 80 y CBP 20 ¾ CBP acompaña al ARNm al poro nuclear y ayuda a su marcación para la exportación CBP 80 RNAP II CBP 20 CBP 80 CBP 20 RNAP II Segunda función del cap ¾ Marca a los pre-mRNAs para otros procesamientos ¾ RNA sin cap a) no poliadenilación b) no splicing in vitro e in vivo Tercera función del cap ¾ Iniciación de la traducción ¾ Los factores de iniciación de la traducción eIF4E y eIF4F son proteínas de “unión al cap” ¾ Los ARNs sin cap no son traducidos Las enzimas del capping se unen a la CTD fosforilada GT is released in conjunction with Ser5 dephosphorylation MT remains associated with the CTD Bentley, D. Curr. Op. Cell Biol. 14, 336-342 (2002) mRNA capping enzyme is recruited to the transcription complex by phosphorylation of the RNA polymerase II carboxy-terminal domain GENES & DEVELOPMENT(1997) 11:3319–3326 Capping enzyme binds to phosphorylated RNAP II. Purified RNAP II was phosphorylated in vitro with TFIIH and [γ-32P]ATP. Capping enzyme was added and the mixture was precipitated with preimmune serum (lane 1) or anti-Capping enzyme antibodies (lanes 2–5). As competitors for binding to the capping enzyme, parallel reactions contained GST (lane 3), GST–CTD (lane 4), or phosphorylated GST–CTD (lane 5). Solamente GST-CTD(P) compitió por el binding anticapping enzyme Ab RNAP II O Competition experiment La enzima de capping se une directamente al CTD fosforilado Purified capping enzyme was incubated with glutathione–agarose beads carrying GST, GST–CTD, or phosphorylated GST–CTD protein. The beads were pelleted and washed extensively. RNA turnover Decapping / Deadenilación Wilutz, C. J. et al. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2, 237-246 (2001)