0140200022BIOMO ecular- P12- A13

Facultad de Ciencias
Exactas y Naturales
Programa Analítico
Nombre de la Asignatura:
Biología Molecular
Plan de Estudios:
2012
Carrera:
Lic. en Ciencias Biológicas
Profesor Responsable:
Dra. Silvia González
I-OBJETIVOS:

Proveer al alumno de los conocimientos, conceptos y fundamentos de tópicos esenciales de
la Biología Molecular. Se dará especial énfasis a los aspectos básicos de los mecanismos
moleculares, celulares y fisiológicos que dirigen y controlan la expresión génica, la biosíntesis
de proteínas y las funciones celulares. De este modo se logrará que el alumno tenga un
panorama actualizado de los recientes avances en el conocimiento en el campo de la Biología
Molecular.

Proveer al alumno de los conocimientos, conceptos y fundamentos de las estrategias
utilizadas para el clonado, aislamiento de genes así como de sus transcriptos, y los
polipéptidos codificados por éstos.

Adiestrar al alumno en las técnicas de ADN recombinante que se utilizan actualmente para el
estudio y análisis de los genes y de sus productos.
II-CONTENIDO:
Mínimos:
Estructura de los ácidos nucleicos y mecanismos de replicación y transcripción. Técnicas de ADN
recombinante: enzimas de restricción, clonado, librerías genómicas y de ADN copia. Secuenciación
de ADN y bioinformática. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR): aplicaciones en diagnóstico,
estudios de filiación, y medicina forense. Sistemas recombinantes de expresión de proteínas:
sistemas procariotes y eucariotes. Genómica, proteómica, metabolómica y farmacogenómica.
Mecanismos epigenéticos de silenciamiento génico. ARNs interferentes y microARNs. Impronta
genómica. Animales transgénicos. Clonado de animales por transferencia nuclear. Virus.
Aplicaciones de la biología molecular. Conceptos de Biotecnología. Células madre ("stem cells") y
aplicaciones terapéuticas. Bioética.
Unidades:
Unidad 1:
Estructura del ADN y su rol en la célula. Mecanismos de replicación y de reparación del ADN.
Topoisomerasas y girasas. ADN polimerasas: estructura, funciones y actividades de las mismas.
Mutaciones en el ADN, consecuencias. Mecanismos que involucran interacciones ADN-proteína.
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Unidad 2:
Estructura y función de las distintas clases de ARN. ARN polimerasas: estructura, función y
propiedades. Ciclo de la transcripción: iniciación, elongación y terminación de las cadenas.
Regulación de la transcripción en procariotas y eucariotas. Promotores y “enhancers”. Acción de
inhibidores.
Unidad 3:
Síntesis de proteínas: rol de los distintos componentes. ARN de transferencia, ARN ribosomal. ARN
mensajero. Ciclo ribosomal: iniciación, elongación y terminación de las cadenas peptídicas.
Inhibidores de la síntesis de proteínas en eucariotes y procariotes, acción de antibióticos. Regulación
de la síntesis proteica por quinasas de proteínas.
Unidad 4:
Tecnología de ADN recombinante: enzimas de restricción; enzimas modificadoras del ADN y ARN;
plásmidos; fagos; etc.
Unidad 5:
Clonado de genes: librerías genómicas y de ADN copia. estrategias para el análisis de la
organización y expresión génica: Southern, Northern, Western blotting, Northwestern, reacción en
cadena de la polimerasa (PCR), y RT-PCR. Aplicaciones de la metodología de PCR en tiempo real.
Unidad 6:
Sistemas recombinantes para la expresión de proteínas: sistemas bacterianos y eucariotas. Sistemas
de expresión basados en los virus vaccinia y baculovirus.
Unidad 7:
Genoma, transcriptoma, proteoma, y metaboloma: Microchips de ácidos nucleicos ("microarrays");
estrategias para estudiar las interacciones proteína-proteína; sistema del doble híbrido; "phage
display", ensayos de captura específica de proteínas y de coinmunoprecipitación.
Unidad 8:
Epigenética y regulación de la expresión genómica a través de los mecanismos de silenciamiento
postranscripcional de los genes: ARN interferentes, microARNs, y ARN no codificantes largos.
Remodelación de la cromatina y el código de histonas: su relevancia para el tratamiento de algunas
enfermedades.
Unidad 9:
Modificación del genoma de los organismos. Animales transgénicos. Modificación y corrección de
genes mediante las nucleasas “dedos de zinc”. Clonado de animales mediante transferencia nuclear.
III- BIBLIOGRAFÍA:
Básica:
 Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Water P. (2010). “Biología molecular de la
célula”; 5ta. edición (ed. Omega)
 Becker, Wayne M.;Kleinsmith, Lewis J.;Hardin, Jeff. (2007). “El mundo de la célula”. (ed.
Pearson Educación).
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



De Robertis E (h), Hib J, Ponzo R. (2000). “Biología celular y molecular de De Robertis”; 15ª
edición (ed. El Ateneo)
Lodish H , Berk A (2006).” Biología celular y molecular”, 5ta edición
Singer M., Berg P. (1993) “Genes y genomas”. Ediciones Omega, Barcelona
Griffiths AF, Miller JH, Suzuki DT, Lewontin RC, Gelbart WM (2002). “Genética”. 7ta edición
(ed. McGraw-Hill Interamericana)
Adicional:
 Libros y artículos científicos de libre acceso en el sitio Library of Medicine, National Center for
Biotechnology Information: http://www.ncbi.nih.gov/entrez
IV-METODOLOGÍA
El curso se desarrollará a través de clases teóricas (48 horas) y prácticas (48 horas) combinadas con
la lectura y discusión de artículos científicos.
Todos los temas irán acompañados de una serie de problemas y cuestionarios guía con el objetivo
de afianzar los conocimientos adquiridos en las clases teóricas y prácticas. Se dedicarán 30 horas a
la realización de prácticas experimentales en el laboratorio, y 30 horas a la resolución de problemas,
y discusión de trabajos científicos por parte de los alumnos.
Para los tópicos de Biología Molecular relacionados al área de la bioinformática, se trabajará en la
sala de computación utilizando los programas de análisis de secuencias nucleotídicas y proteicas
disponibles en GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/) y en Expasy (expasy.org/tools/).
Para la realización de las actividades prácticas, se cuenta con el siguiente equipamiento:
micropipetas; fuentes de poder; cubas de electroforesis para ácidos nucleicos y para proteínas;
microcentrífugas y centrífugas de mesa; incubadoras y agitadores para la incubación de cultivos
bacterianos; bloques térmicos para la incubación de reacciones enzimáticas; transiluminador
ultravioleta para la visualización de ácidos nucleicos; termociclador para las reacciones de PCR;
equipo de flujo laminar vertical para la manipulación de soluciones y productos biológicos.
V-CRITERIOS DE EVALUACIÓN
El trabajo de los alumnos se evaluará mediante:





una evaluación diagnóstica al inicio de las clases para conocer el nivel de conocimiento
promedio de los alumnos
un examen parcial con su correspondiente examen recuperatorio, de acuerdo a la
reglamentación establecida por la Universidad de Belgrano
la resolución de los cuestionarios así como la lectura y exposición de trabajos originales
el grado de participación en las discusiones generales
la realización de los trabajos prácticos experimentales, el examen parcial correspondiente a
los trabajos prácticos, y la presentación de los informes correspondientes
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ANEXO I
A1 - Carga Horaria - Modalidad de Enseñanza
Modalidad
Teóricas
Act. Prácticas
Evaluaciones
Total del curso
Horas cátedra
38
48
10
96
A2 – Carga Horaria de Actividades Prácticas
Tipo Actividad
1.- Resolución de Problemas
2.- Prácticas de Laboratorio
Horas cátedra
20
18
3.- Prácticas de Simulación
4.- Diseño de productos académicos
5.- Presentaciones orales o escritas de Alumnos
10
6.- Salidas, trabajos de Campo y Visitas
Total Actividades Prácticas
48
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