Tesis Katiuska Rubira 131212.pdf

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
MAESTRÍA EN CIENCIAS: MANEJO SUSTENTABLE DE
RECURSOS BIOACUÁTICOS Y MEDIO AMBIENTE
Tesis de Grado para la obtención del título de Magíster en Ciencias con Énfasis en
Manejo Sustentable de Recursos Bioacuáticos y Medio Ambiente
“DIVERSIDAD, ABUNDANCIA Y DISTRIBUCIÓN
DE LAS MACROALGAS EN LA ZONA
INTERMAREAL ROCOSO EN LAS PLAYAS DE
SALINAS, LA LIBERTAD Y BALLENITA
(PENÍNSULA DE SANTA ELENA – ECUADOR
OCTUBRE – NOVIEMBRE 2009)”
BIOL. KATIUSKA RUBIRA CARVACHE
GUAYAQUIL – ECUADOR
2012
i
CERTIFICACIÓN DEL TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN
Dra. Matilde Velasco Mayor MSc
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL
Dr. Luis Muñiz Vidarte MSc
MIEMBRO DEL TRIBUNAL
Dra. Carmita Bonifaz de Elao MSc
MIEMBRO DEL TRIBUNAL
Dr. Luis Muñiz Vidarte MSc
DIRECTOR DE MAESTRÍA
Dra. Carmita Bonifaz de Elao MSc
DECANA
ii
DEDICATORIA
A Dios, por darme la oportunidad de vivir y por estar conmigo en cada paso
que doy, por fortalecer mi corazón e iluminar mi mente y por haber puesto en mi
camino a aquellas personas que han sido mi soporte y compañía durante todo el
periodo de estudio.
Mi madre Betty Carvache, por darme una carrera profesional, ser un ejemplo
a seguir.
A mi amado esposo Xavier Ruiz por su comprensión. A mis hijas Amira y
Astrid por ser mi alegría y la razón de seguir esforzándome cada día.
iii
AGRADECIMIENTOS
A la Dra. Matilde Velasco Mayor, tutora de tesis, por sus conocimientos
invaluables para llevar a cabo esta investigación. Y por facilitar las instalaciones del
Laboratorio de Ficología de la Facultad de Ciencias Naturales, para la identificación
taxonómica de las especies.
A los biólogos Genoveva Torres Muñoz MSc., y Jaime Salas Zambrano MSc.,
por la revisión al manuscrito y comentarios para la elaboración de esta tesis.
Finalmente a la Dra. Carmita Bonifaz de Elao y Dr. Luis Muñiz Vidarte,
miembros del tribunal, por las valiosas contribuciones que hicieron al trabajo final y por
el tiempo que dedicaron para revisarlo.
iv
CONTENIDO
1. Introducción………………………………………………………………..……
1
2. Revision de literatura………………………………………………....................
6
2.1. Diversidad de las macroalgas…………………………………………….
6
2.2. Abundancia y distribución de las diferentes especies…………………...
7
2.3. Relación de la diversidad de especies con los parámetros de temperatura
y salinidad………………………………………………………………..
8
3. Materiales y Metodos..…………………………………...……………………..
10
3.1 Área de Estudio……………………………………………...………….....
10
3.2 Método de campo…………………………………………………..………
12
3.3 Método de laboratorio……………………………………………………...
13
3.4 Tratamiento estadístico………………………………………………….…
13
Diversidad…………………………………………………………...
13
3.4.1.1 Índice Shannon-Weaver……………………………………………..
13
3.4.1.2 Índice de Equitatividad……………………………………………...
14
3.4.2
Similaridad…………………………………………………………..
14
3.4.3
Curva de rango – abundancia………………………………………..
14
4. Resultados……………………………………………………………………….
15
4.1.Resultados físicos químicos………………………………………………...
15
3.4.1
4.1.1. Datos obtenidos en las zonas de muestreo durante los meses de
octubre y noviembre del 2009………………………………………….
15
4.1.2. Análisis comparativo entre las especies de macroalgas en las tres
estaciones y los parámetros físicos químicos en los meses de octubre y
noviembre del 2009…………………………………………………….
17
4.2.Resultados biológicos………………………………………………………
20
4.2.1. Salinas…………………………………………………………………
22
4.2.2. La Libertad…………………………………………………………....
24
4.2.3. Ballenita……………………………………………………………….
26
4.3.Resultados estadísticos……………………………………………………..
28
4.3.1 Diversidad……………………………………………………………....
28
4.3.1.1 Diversidad de Shannon-Weaver…………………………………….
28
v
4.3.1.2 Equitatividad………………………………………………………...
28
4.3.2. Similaridad……………………………………….…………………….
29
4.3.3. Curva de Rango – abundancia………………………………………….
30
4.3.4. Densidad………………………………………………………………..
31
4.3.5. Distribucion………………………………………………………….…
32
4.4.Descripcion las especies de macroalgas en la zona intermareal rocosa en
las playas de Salinas, La Libertad y Ballenita ……………………………..
36
5. Discusiones……………………………………………………………………...
64
6. Conclusiones…………………………………………………………………….
70
7. Recomendaciones……………………………………………………….............
71
8. Bibliografía…………………………………………………………….………..
72
9. Anexos……………………………………………………………..……………
76
vi
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla No. 1 Coordenadas de las Estaciones de muestreo ………………………..
11
Tabla No. 2 Consolidado de la identificación y numero de especies encontradas
en las 3 estaciones de muestreo durante los meses de octubre y noviembre del
2009. (Expresado en Individuos /m)………………………………………………
76
Tabla No. 3 Consolidado de la identificación y numero de especies encontradas
en las 3 estaciones de muestreo durante los meses de octubre y noviembre del
2009. (Expresado en Individuos m2)..…………………………………………….
77
Tabla No. 4 Temperaturas Superficiales del mar (TSM) en las estaciones de
muestreo…………………………………………………………………………...
16
Tabla No. 5 Salinidad Supercial del mar (UPS) en las estaciones de
muestreo………......................................................................................................
17
Tabla No. 6 Especies identificadas por División en las 3 estaciones de muestreo
entre octubre y noviembre del 2009 ………………………………….…………..
21
Tabla No. 7 Especies identificadas por División en la Estación Salinas entre
octubre y noviembre del 2009 ……………………………….…………………...
23
Tabla No. 8 Especies identificadas por División en la Estación La Libertad entre
octubre y noviembre del 2009 …………………...…………..…………………...
25
Tabla No. 9 Especies identificadas por División en la Estacion Ballenita entre
octubre y noviembre del 2009 ……………………….………….………………..
27
Tabla No. 10 Índice de diversidad Shannon-Weaver con un rango de
confiabiliadad de ± 95% por estaciones de muestreo …………………………….
Tabla No. 11 Índice de diversidad de Equitatividad por estaciones de muestreo
……………………………………………………….........................................….
28
28
Tabla No. 12 de letras de la figura No. 16 Curva rango – abundancia Asignación
……………………………………………………………………………………..
Tabla No. 13. Escala de abundancia relativa Individuo/m2 ……………………..
30
32
Tabla No. 14 Clasificacion taxonómica de las especies encontradas en la zona de
Salinas, La Libertad y Ballenita entre octubre y noviembre 2009…………….…..
vii
78
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura No. 1. Ubicación geográfica de las estaciones de muestreo en la Peninsula de
Santa Elena (Provincia Santa Elena – Ecuador). Tomado del Google eart………………..
11
Figura. No. 2. Registro de anomalías mensuales de la Temperatura superficial del mar
(TSM) en la región Niño 1+2, para el periodo comprendido de diciembre 2008 a
noviembre del 2009. Se observa anomalías negativas para el mes de octubre y anomalías
positivas en el mes de noviembre en el Océano Pacifico oriental. Las unidades están °C
(NOAA, 2009)..……………………………………………………………………………. 15
Figura No.3. Temperaturas Superficiales del mar (TSM) en las estaciones de
muestreo…………………………………………………………………………................
16
Figura No.4.Salinidad Superficial del Mar (UPS) Octubre 2009.(Tomado de CPPS
2010)……………………………………………………………………………………….. 16
Figura No.5. Salinidad Superficial del mar (UPS) en las estaciones de muestreo………... 17
Figura N° 6 Distribución de las especies identificadas en las 3 zonas de muestreo para el
mes de Octubre del 2009. Expresado en I/m2……………………………………………..
18
Figura N° 7 Distribución de las especies identificadas en las 3 zonas de muestreo para el
mes de noviembre del 2009. Expresado en I/m2……………………….………………….. 19
Figura
No.
8
Porcentaje
de
la
División
Chlorophyta,
Heterocontonphyta y Rhodophyta………………………………………………………….
20
Figura No. 9 Abundancia de especies identificadas en Salinas, La Libertad y
Ballenita……………………………………………….…………………………………...
20
Figura No. 10 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la Estación
de Muestreo de Salinas…………………………………………………………………….. 22
Figura 11. Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación de
Salinas……………………………………………………………………………………… 23
Figura No. 12 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la Estación
de Muestreo de La Libertad...…...…………………………………………………………. 24
viii
Figura 13. Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación de La
Libertad..…………………………………………………………………………………..
25
Figura No. 14 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la Estación
de Muestreo de Ballenita.…………………………………………………………………..
26
Figura 15 Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación de
Ballenita.………………………………………………………………………………........ 27
Figura No. 16 Similaridad entre las 3 estaciones de muestreo. (Salinas, La Libertad y
Ballenita)…………………………………………………………………………………..
29
Figura No. 17 Curva de rango - abundancia desde la más abundante a la menos
abundante en las tres estaciones de muestreo. (Las letras se explican en la Tabla No.
12)………………….……………………………………………………………………..... 30
Figura No. 18 Promedio de las densidades de macroalgas obtenidas en las 3 estaciones
de muestreo. Expresado en individuo/m2……………………….………………………....
31
Figura No. 19 Distribución de la División Cholorophyta en el mes de octubre del 2009
en las 3 estaciones de muestreo………………………………………….…………………
33
Figura No. 20 Distribución de la División Cholorophyta en el mes de noviembre del
2009 en las 3 estaciones de muestreo………………………………………………………
33
Figura No. 21 Distribución de la División Heterocontonphyta en el mes de octubre del
2009 en las 3 estaciones de muestreo………………………………………………..……..
34
Figura No. 22 Distribución de la División Heterocontonphyta en el mes de noviembre
del 2009 en las 3 estaciones de muestreo…………………………………………………..
34
Figura No. 23 Distribución de la División Rhodophyta en el mes de octubre del 2009 en
las 3 estaciones de muestreo……………………………………………………….............
35
Figura No. 24 Distribución de la División Rhodophyta en el mes de noviembre del 2009
en las 3 estaciones de muestreo…………………………………………………………….
35
Figura. No. 25 Aspecto general de Ulva lactuca.……………………………………........
36
Figura. No. 26 Aspecto general de Ulva fasciata……………………………………........
38
Figura. No. 27 Aspecto general de Cladophora prolifera ………..………………………
39
ix
Figura. No. 28 Aspecto general de Codium capitatum…………………………………… 40
Figura. No. 29 Aspecto general de Codium cervicornis..………………………………… 41
Figura. No. 30 Aspecto general de Codium faveolatum……..…………………………...
42
Figura. No. 31 Aspecto general de Codium fragile…………..…………………………...
43
Figura. No. 32 Aspecto general de Codium tomentosum………………………………… 44
Figura. No. 33 Aspecto general de Codium spp…………………...……………………… 45
Figura. No. 34 Aspecto general de Padinna durvillaei…………………………………… 46
Figura. No. 35 Aspecto general de Padinna pavonica.…………………………………… 48
Figura. No. 36 Aspecto general de Colpomenia sinuosa…………………………………
50
Figura. No. 37 Aspecto general de Sargassum ecuadorianum……...…………………… 51
Figura. No. 38 Aspecto general de Gelidium pusillum…………………………………… 52
Figura. No. 39 Aspecto general de Gracilaria veleroae..…………………………………
54
Figura. No. 40 Aspecto general de Gracilaria textorii.…...………………………………
55
Figura. No. 41 Aspecto general de Gracilariopsis spp.…...………………………………
56
Figura. No. 42 Aspecto general Champia compresa……....………………………..........
58
Figura. No. 43 Aspecto general de Phyllophora spp.……..………………………………
60
Figura. No. 44 Aspecto general de Ceramium pacificum...………………………………
62
Figura. No. 45 Aspecto general de Centroceras clavulatum………...…………………..
63
x
RESUMEN
El presente trabajo es el resultado del análisis de muestras de macroalgas en la
Peninsula de Santa Elena (Ecuador) en 3 estaciones del área rocosa en la zona
intermareal que corresponde a las playa de Salinas (Base Naval de Salinas), La Libertad
(Puerto Pesquero) y Ballenita (Balneario), las cuales fueron colectadas mediante la
técnica propuesta por Dawes (1991), utilizando una combinación de transepto lineal y
del cuadrante, realizado para octubre y noviembre del 2009. Se aplico la estadística de
Shannon-Weaver para diversidad y Bray Curtis para Similaridad.
Se identificaron una total de 21 especies de algas marinas bénticas, de las cuales
9 corresponde a la División Chlorophyta, 8 especies a Rodophyta y 4 especies a
Heterocontonphytas. Las Chlorophytas son las mejor representadas con 9 especies. Se
obtuvo su mayor abundancia en la zona de La Libertad, en cambio las
Heterocontonphytas su mayor abundancia predomino en la Zona de Ballenita, para la
zona de Salinas se mantuvo una abundancia media baja.
En cuanto a la diversidad de especies obtenida, se determinó que fue mayor para
la playa de Salinasd con (H’ 2.68), seguida de La Libertad co (H’ 2.51) y Ballenita con
(H’ 2.42).
Y la Similaridad entre las Playas muestreadas indica que Salinas y Ballenita
tienen una Similaridad de 55% aproximadamente, mientras que La Libertad presenta
Similaridad con las otras dos estaciones en un 52%.
Palabras claves: Macroalgas, Ecología, Intermareal.
xi
ABSTRACT
This work is the result of the analysis of samples of macroalgae in the Peninsula
de Santa Elena (Ecuador) on 3 stations in the area rocky intertidal zone corresponding to
the Beach Salinas (Salinas Naval Base), La Libertad (Fishing Port ) and Ballenita (Spa),
which were collected by the technique proposed by Dawes (1991), using a combination
of linear and quadrant transept, conducted in October and November 2009. Statistic was
applied to Shannon-Weaver diversity and Bray Curtis similarity
We identified a total of 21 species of marine benthic algae, 9 of which
corresponds to the Division Chlorophyta, 8 species and 4 species Rodophyta
Heterocontonphytas. The Chlorophytas are the best represented with 9 species. was
obtained for the most abundant in the area of La Libertad, however the most abundant
Heterocontonphytas predominance in Ballenita Area, Salinas area for a mean abundance
remained low.
As for the diversity of species obtained, was determined to be greater for
Salinasd beach with (H '2.68), followed by La Libertad co (H' 2.51) and Ballenita with
(H '2.42).
And the similarity between the beaches sampled indicates Ballenita Salinas and
have a similarity of 55%, while that freedom has similarity with the other two stations
by 52%.
Keywords: Macroalgae, Ecology, Intertidal.
xii
1. INTRODUCCIÓN
Las macroalgas son vegetales que viven debajo del agua, cuyos procesos vitales
están regidos por el equilibrio entre los procesos de fotosíntesis y respiración (Ríos,
1972; Wynne, 1998). La existencia de estas comunidades o poblaciones macroalgales
son materia prima para la producción de diferentes ficocoloides (agar, alginato,
carragenano),
de
elevado
interés
comercial;
para
producción
de
fármacos
anticancerígenos a partir de las macroalgas. (Gómez, 1982). Otros usos importantes que
se dan a las macroalgas son la elaboración de forraje, fertilizantes, agares, ácido algínico
y engrudo para la industria textil. En la década del 80, China cosechó sobre el millón de
toneladas para alimentación y otras industrias (Arellano, 2004).
Las macroalgas se desarrollan abundantemente en la zona intermareal de las costas
templadas, subtropicales, constituyen un importante recurso marino costero, ya que
además de ser las principales productores primarios en el medio ambiente costero, son
fuente directa de alimento para el hombre y de una forma muy amplia son utilizadas
dentro de la industria como medicinales, harina de algas, fertilizante, farmacia y
cosmetología, combustible, para tratamiento de algas residuales (Velasco, 2008).
Las algas marinas bentónicas forman complejas estructuras multicelulares; su
tamaño varía desde algas microscópicas unicelulares, como algas filamentosas o
laminares, hasta complejas estructuras multicelulares como las de las algas pardas, que
pueden llegar a medir más de 20 metros de longitud, viven sobre los fondos marinos y
pertenecen a cuatro categorías taxonómicas. Se diferencian principalmente por el tipo de
pigmento predominante, clasificándose como algas Cyanophyceae o algas verdeazules,
Chlorophytas o algas verdes, Heterocontonphytas o algas pardas, Rhodophytas o algas
rojas. (Velasco, 2008).
Entre los grupos reconocidos de macroalgas, se sabe que la división
Heterocontonphyta, agrupa alrededor de 1,500 especies, las cuales son exclusivamente
marinas. Se consideran las algas más grandes y se encuentran en diferentes latitudes.
Las Heterocontonphyta son algas eucariotas, pluricelulares y morfológicamente muy
1
diversificadas, encontrándose sólo en agua de mar y con formas que van desde algas
filamentosas de estructura sencilla hasta algas que ya tienen tejidos diversificados por
los que se realiza transporte de nutrientes dentro de la planta (Cortez et al., 2004).
Poseen clorofila a y c, carotenos α y β, y como sustancias de reserva contienen
laminarina, algina y manitol, así como abundante fucoxantina, que le dan la coloración
parda que las caracteriza (Dawes, 1991).
La mayoría de algas Rhodophyta son filamentosas, ramificadas y otras formas
costrosas. Además hay formas membranosas o carnosas más conspicuas. Sus paredes
celulares contienen celulosa, y grandes cantidades de polisacáridos como xilan, mannan,
galactasa sulfatada y almidón de las florídeas; estos polisacáridos son la fuente de agar y
carragenanos; el color característico de estas algas es debido a pigmentos llamados
ficoeritrinas, que cubren la clorofila a y d presentes en la célula (Gómez, 1998). Las
algas rojas son organismos eucarióticos que están presentes sobre todo en el medio
marino, la mayoría son pluricelulares aunque también hay especímenes unicelulares, y
constituyen uno de los grupos más diversos entre las algas, con alrededor de 4.000
especies; a pesar que estas algas rojas se encuentran en todos los mares del mundo su
abundancia disminuye del ecuador a las aguas polares en comparación con algas verdes
y pardas; algunas especies pueden vivir a gran profundidad (200 m) como ciertas algas
calcáreas. (García et al., 2002).
La División Chlorophyta agrupa más de 7.000 especies de algas, la mayor parte
son microscópicas y viven en el suelo, el 10% en ambientes marinos y un 90% en agua
dulce. Existen órdenes exclusivamente marinos y abundantes en las áreas submarinas
superiores, especialmente en aguas tropicales y subtropicales. Se caracterizan por
presentar pigmentos fotosintéticos como clorofila a y b, así como los carotenos α y β y
sustancias de reserva como almidón, amilosa y amilopectina. Se cree que las plantas
superiores evolucionaron de las algas verdes, debido a que ambos grupos tienen los
mismos pigmentos fotosintéticos, tienen paredes de celulosa y además almacenan su
alimento en forma de almidón (Gónzalez, 1977).
2
Uno de los grupos muy sensibles en la biota marina son las macroalgas (Calva y
Torres, 2008; Castellanos et al., 2005; Páez et al., 2000), la flora marina es capaz de
indicar la calidad del agua gracias a su sensibilidad a los cambios del medio en que
viven, como los físico-químicos, (temperatura, salinidad, pH, turbidez y oxígeno
disuelto), hidráulicas tales como (velocidad de la corriente, el caudal), y se las pude
medir con las variables biológicas, como abundancia, diversidad, clorofila, distribución
etc, (Ardito, 1993; Ardito et al., 1995).
Los blooms de macroalgas costeros encajan adecuadamente como elementos de
perturbación, por ser perfectamente tangibles e identificables por los observadores, ya
que físicamente por su tamaño pueden contemplarse sin el menor esfuerzo; así mismo
diversas especies protagonizan estas explosiones reproductivas con incremento
exponencial de biomasa, que sólo puede ser explicable por un exceso de nutrientes que,
circunstancialmente, se introduce en el sistema, fertilizándolo en demasía, de lo que se
aprovechan algunas algas que se reproducen y crecen con extremo vigor (García, 2008).
Esta diversidad se ve afectada, principalmente en los países en desarrollo, debido
a contaminación de aire, suelo y agua (Buschmann y Fortt, 2005). De tal forma, las
comunidades biológicas reducen su abundancia y riqueza de especies. Se pueden
monitorear estos efectos sobre sus poblaciones, para describir su estado de conservación
y grado de alteración de su hábitat (Buschmann y Fortt, 2005).
Ecuador se encuentra entre los países más ricos en biodiversidad de especies,
asociada a la diversidad de los ecosistemas, con una superficie de 2.561.370 km2 es uno
de los países con mayor diversidad de especies del mundo por unidad de superficie.
Esto le ha valido para ser considerado como parte de los 17 países biológicamente más
diversos del planeta (Mittermeier et al., 1997).
Por su sensibilidad a presiones antropogénicas y su uso como indicadores de la
calidad de agua en zonas marino-costeras, las macroalgas pueden ser muy útiles para
caracterizar zonas geográficas de la costa que deben priorizarse para manejo paisajístico
3
y medio ambiente, así como conocer y monitorear el impacto que las poblaciones
costeras producen sobre este tipo de ecosistemas.
En este contexto, una de las zonas más afectadas por alta afluencia de turismo,
presencia de pescadores artesanales, incremento de la población local y demás
actividades productivas en la Península de Santa Elena, ya que es también fuertemente
influenciada por factores de temperatura y salinidad de los diferentes tipos de corrientes,
con la característica de ser el extremo más saliente de las costas ecuatorianas.
De esta situación problema, surge la siguiente pregunta de investigación:
¿Existe relación entre la diversidad, abundancia y distribución de la comunidad
de macroalgas, con los factores físicos químicos en la Península de Santa ElenaEcuador?.
La hipótesis en la cual se basa esta investigación es:
“Las macroalgas son sensibles a los componentes físicos químicos como la
temperatura y salinidad en los diferentes tipos de hábitat en la zona intermareal rocoso
en las playas Salinas, La Libertad y Ballenita, en la Península de Santa Elena”.
Como objetivo general se planteó: Determinar la diversidad, abundancia y
distribución de las macroalgas en la zona intermareal rocoso en las playas de Salinas, La
Libertad y Ballenita de la Península de Santa Elena -Ecuador.
Los objetivos específicos fueron:
A) Identificar taxonómicamente las especies de macroalgas.
B) Establecer la diversidad, abundancia y distribución de las diferentes especies.
C) Determinar la relación de la diversidad de especies con los parámetros de
temperatura y salinidad, en los meses de octubre y noviembre del 2009.
Este trabajo de investigación, a más de proveer una lista taxativa de las especies
de las macroalgas en las playas de Salinas, La Libertad y Ballenita de la Península de
Santa Elena, nos permite comparar estudios realizados a lo largo de la costa ecuatoriana
4
para determinar el incremento o disminución del macrofitobento en dichas playas, ya
que el ritmo en que aumenta la población, y la degradación del ecosistema, llegaremos a
un momento en que se verá afectada o deje de existir la diversidad de las macroalgas y
con ella la flora y fauna acompañante.
5
2. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1 Diversidad de las macroalgas.
Hinojosa (2007), durante la segunda etapa del crucero CIMAR 8 Fiordos realizado
en noviembre del 2002 en los fiordos y canales de la XI Región, se cuantificó la
abundancia de macroalgas flotando a la deriva y la fauna de crustáceos peracáridos
asociada a ellas. Las macroalgas Macrocystis spp., y Durvillaea antarctica fueron las
más abundantes. Asociadas a estas macroalgas se encontró 20 especies de peracáridos.
El mayor número de especies se registró en algas del género Macrocystis spp., y la
abundancia de macroalgas y de peracáridos en la zona norte del área de estudio (44° 00’
S; 74°00’ W) fueron más altas que en el resto de las zonas monitoreadas. Los resultados
muestran que en los canales de XI Región existe una cantidad importante de macroalgas
a la deriva que albergan una fauna diversa de peracáridos. Esto sugiere una eficiente
dispersión de las especies asociadas a estas macroalgas, especialmente en la zona norte
del área de estudio (canal Tuamapu).
Moreira (2003). La Laguna Guanaroca, unida a la bahía de Cienfuegos, recibe aguas
del Río Arimao. Gran parte del litoral está ocupado por mangle rojo (Rhizophora
mangle L.). Durante el período Noviembre/2001- Agosto/2002, se realizó un estudio de
la flora de macroalgas de esta laguna, seleccionándose cinco estaciones de colecta. Las
muestras se tomaron de las raíces de mangle y del fondo del acuario. En total se
identificaron 14 especies: 4 Rhodophyceae y 10 Chlorophyceae. Dentro de las
Rhodophyceae asociadas al mangle, todas las especies pertenecían al orden Ceramiales,
predominando los géneros Bostrychiamontagne y Caloglossa (Harvey) J. Agardh. B.
moritziana (fue la especie dominante. Dentro las Chlorophyceae, las Ulvales y
Cladophorales fueron las más numerosas. Los valores de cobertura de macroalgas en el
fondo de la laguna fueron bajos, sin embargo especies de Enteromorpha y
Chaetomorpha presentaron los principales valores. La estación más cercana a la Bahía
registró los más altos valores de riqueza de especies, en cuanto a la cobertura de
macroalgas sobre el fondo y a la abundancia en las raíces de mangle y fondo.
6
Muller et al., (1996) describe en las playas de La Libertad es una zona de oleaje
moderado, de aguas claras. Es aquí en donde encontramos las algas de mayor tamaño.
La longitud de este banco algal de 250 m por 20 m. Se reportan un total de 21 géneros
cuantitativamente predominando las Phaeophytas (5 géneros), luego en orden de
importancia encontramos a las Rhodophytas (11 géneros) y por último a las
Chlorophytas (5 géneros).
Se observa además una mayor cantidad de algas
pertenecientes a la familia Corrallinaceae.
Valverde (1979) reporta para las playa de Ballenita un total de 13 familias, que
corresponde a las Chlorophytas 5 familias, 7 géneros y 12 especies, para las Phaeophtas
2 familias, 3 géneros y 3 especies y para la las Rhodophyas 6 familias, 11 géneros y 16
especies.
2.2 Abundancia y distribución de las diferentes especies.
Mittermeier et al., (1997) describe que en el Ecuador se encuentra entre los países
más ricos en biodiversidad de especies, asociada a la diversidad de los ecosistemas, con
una superficie de 2.561.370 km2 es uno de los países con mayor diversidad de especies
del mundo por unidad de superficie. Esto le ha valido para ser considerado como parte
de los 17 países biológicamente más diversos del planeta.
Flachier (1997), durante las prospecciones submarinas, realizadas a lo largo de la
línea de costa del Parque Nacional Machalilla, encontró que en las localidades de
muestreo pertenecientes al norte del parque, como fueron los islotes El Islote, La Viuda,
Sucre y Horno de Pan, presentaron una mayor diversidad de individuos vegetales que en
las otras áreas. Estas macroalgas se encontraron sobre un sustrato rocoso y arenoso a
profundidades no superiores a los 20 metros. El grupo que presentó una mayor
dominancia en estas localidades fueron las algas pardas o feofíceas con un 60%,
mientras que el grupo menos dominante fueron las algas verdes o clorofíceas. Estas
estuvieron representadas en un 5%, aunque se encontraron poblaciones bastante densas
en los sectores observados.
7
Muller (1996), en su estudio realizado en las costas ecuatoriana reporta un total de
345 especies identificadas de las cuales 49 especies corresponde a la división
Chlorophytas que equivales al 13,9%, 51 especies de la división Phaeophtytas con el
14,4% y 253 especies de la división Rhodophyatas con el 77,7%, de totas esta especies
identificadas solo el 6 son reportadas para el continente en la península de Santa Elena
con el 2% y para la región Galápagos se identificó 347 especies que corresponde al
98%, se observó que la mayor diversidad alcanzada fue registrada para la región insular.
Valverde (1979) comenta par la zona de Ballenita, que después de hacer un recuento
de la distribución de la flora dedujo que la mayoría de
los organismos están
influenciados por el factor marea, se observa vegetación más abundante y variada en las
más irrigadas del litoral medio y más pobres las piletas escasamente influenciada por la
marea. Se registró que las Rhodophyas obtuvieron la mayor abundancia de especies
identificadas con el 51% seguidas de las Chlorophytas con el 39% y por últimas la
Phaeophytas con el 10%
2.3 Relación de la diversidad de especies con los parámetros de temperatura y
salinidad.
Tejada (2007). Describe los principales mecanismos anatómicos y fisiológicos que
las algas de manglar han desarrollado para adaptarse, propagarse y distribuirse
exitosamente dentro de un ambiente en el que se dan marcados gradientes estacionales y
diarios de temperatura, humedad y salinidad. Así mismo, se destaca el importante papel
de estas poblaciones, en la introducción de energía y producción de detritos. También se
dan a conocer las cinco regiones biogeográficas en las que se distribuyen las especies de
manglar en América Latina y las especies que se han informado para la región
centroamericana y El Salvador.
Valverde (1979), describe que la zona de Ballenita comprende lugares de variadas
condiciones afectadas por movimientos de las mareas, la salinidad del agua sufre
cambios durante el año, su promedio es de 34,76%; la temperatura superficial del agua
es de 27°C. En piletas de marea las variaciones de temperatura están de acuerdo a la
8
insolación recibida, por otro lado en estos lugares la desecación hace que e concentre la
salinidad.
9
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1.Área de Estudio
El área de estudio comprendió 3 estaciones de muestreo, en el área rocosa de la
zona intermareal a lo largo de la Península de Santa Elena. (Figura 1) (Tabla No. 1).
Santa Elena, es una provincia de la costa de Ecuador que consta de 3 cantones o
municipios: La Libertad, Salinas y Santa Elena.
Salinas, está ubicada en el extremo occidental de la provincia, en el accidente
geográfico más saliente de la zona costera del Ecuador. Tiene una Altitud de 1 msnm,
Latitud: 02º 13' S, Longitud: 80º 58' O.
La Libertad, cuenta con un área de 25,6 km², su Latitud: 2°14′S, Longitud:
80°54′O.
Ballenita, su playa tiene una longitud de 1600 metros incluidos 200 metros de
zona rocosa y 300 metros de arena y roca. Latitud: 2° 12' 10.60" S, Longitud: 80° 52'
05.85" O.
Los muestreos en la Península de Santa Elena se realizó en dos fechas distintas
que son: 18 de Octubre del 2009 y 29 de Noviembre del 2009.
Se determinó tres estaciones de muestreo las que estuvieron conformadas por:
1.
Zona rocosa del Balneario Ballenita.
2.
Zona rocosa del Puerto Pesquero en La Libertad.
3.
Zona rocosa del muelle de la Base Naval de Salinas.
10
Tabla No. 1 Coordenadas de las estaciones de muestreo
Salinas
50°08’36.07” E
97°58’60.20” S
La Libertad
50°94’23.04” E
97°54’57.56” S
Ballenita
51°43’37.93” E
97°56’88.67” S
En las zonas determinadas se realizó dos clases de muestreos:
1.
Muestreo de transepto.- En el que se usó una línea de 20m.
2.
Muestreo de cuadrante.- En el que se utilizó un cuadrante de 1 m a cada
lado.
Los muestreos fueron realizados en la zona intermareal, durante la baja mar.
Además se determinó los parámetros físicos – químicos (salinidad, temperatura).
Figura No. 1. Ubicación geográfica de las estaciones de muestreo en la Peninsula de
Santa Elena (Provincia Santa Elena – Ecuador). Tomado del Google eart
11
3.2.Método de Campo.
Para la recolección de las muestras en el campo se utilizó guantes, escarbador o
palanca, espátula, cuchillo, recipientes, bolsas de basura, bolsas de plásticos con cierre y
etiquetas resistentes al agua, un cuaderno de registro; para la toma de los parámetros
físicos se utilizó termómetro de mercurio, y en frascos de polietileno se colecto
muestras de agua donde se determinó a nivel del laboratorio, la salinidad por medio del
salinómetro REFRACTOMETER y para medir el nivel de pH se utilizó el peachimetro
PCE-PH 22.
En cada muestreo se aplicó la metodología propuesta por Dawes (1991); para
estudios de poblaciones de macroalgas, la cual consiste en la combinación de los
métodos del transepto lineal y del cuadrante. El método de transepto se basa en utilizar
estacas, formando una línea recta perpendicular a la costa, y se ata una piola medida a
las estacas con distancia de 20 metros entre cada una.
En la región intermareal se inicia el transepto a un nivel por arriba del nivel más
alto de la marea. Dependiendo de qué tan inclinada este el área intermareal, se efectuó
la colecta a la distancia señalada, las muestras fueron guardadas en bolsas plásticas
debidamente rotuladas. El método de cuadrante utiliza áreas físicamente uniformes,
donde el cuadrante será de un metro por cada lado subdividido en unidades de 10 cm
por cada lado; es recomendable cubrir un área de 360° en el área de superficie de la
zona de muestreo.
Por cada punto de sub-muestreo se recogieron muestras de tres sub-cuadrantes,
con la finalidad de obtener mejor resultado estadístico. Estos métodos de muestreo
fueron empleados en las 3 estaciones. Se muestreo un promedio de 340 metros de playa
rocosa por cada estación.
12
3.3. Método de laboratorio
Las muestras fueron colectadas en fundas plásticas previamente rotuladas. Luego
preservadas con formol al 10%, neutralizado con tetraborato de sodio hasta llegar a un
pH neutro. Para la identificación taxonómica de las especies (análisis cualitativo) se
utilizó claves y libros especializados. Y para el análisis cuantitativo se aplicó paquetes
estadísticos.
En el Laboratorio de Ficología de la Facultad de Ciencias Naturales de la
Universidad Guayaquil, se procedió al análisis cualitativo de las especies de las
macroalgas, se emplearon para ello claves taxonómicas (Taylor 1945); (Dawes 1991);
(Acleto 1973); (Fischer 1995); (Galvin, 1976). (Tabla No.2)
Para estimar el valor cuantitativo de las muestras biológicas se las expreso el valor
final en individuos /m2. (Tabla No 3).
3.4.Tratamiento estadístico.
3.4.1 Diversidad
3.4.1.1 Índice Shannon-Weaver
En el análisis de diversidad se empleó el índice de diversidad de ShannonWeaver (Moreno, 2001), mediante el software Diversity and Richnness Species, cuya
fórmula es:
Este índice mide el grado promedio de incertidumbre en predecir a qué especie
pertenecerá un individuo escogido al azar en una colección (Magurran 1988, Moreno
2001). Adquiere valores entre cero cuando hay una sola especie, y el logaritmo de S
cuando todas las especies están representadas por el mismo número de individuos.
13
3.4.1.1 Índice de Equitatividad
Se calculó el Índice de Equitatividad de Pielou, en el se mide la proporción de la
diversidad observada con relación a la máxima diversidad esperada. Su valor va de 0 a
1, su fórmula es:
3.4.2 Similaridad
En el análisis de afinidad se empleó el Índice de Similaridad de Bray Curtis,
mediante el software Biodiversity Profesional (1997). cuya fórmula es:
3.4.3 Curva de rango - abundancia.
En el análisis de curva de rango – abundancia, se ordenan los datos de abundancia
relativa de la muestra más abundante a la menos abundante y se elabora una línea
aplicando el logaritmo en base 10 de la proporción de ese valor. Esto se aplica para cada
estación de muestreo. Ayuda a visualizar la diversidad por tipo de comunidad o estación
muestreada, para su análisis, a más del valor neto del índice de Shannon- Weaver.
14
4. RESULTADOS
4.1. Resultados físicos químicos.
4.1.1. Datos obtenidos en las zonas de muestreo durante los meses de octubre y
noviembre del 2009.
En las diferentes zonas de muestreo se registró las temperaturas superficiales del
mar (TSM), para Salinas fue de 22.5°C, La Libertad de 22.0°C y Ballenita de 21.0°C
para el mes de Octubre evidenciando bajas temperaturas, en cambio para el mes de
Noviembre en Salinas fue de 23.5°C, La Libertad de 23.6°C y Ballenita de 23.2°C,
donde se observó un incremento en la temperatura registrando anomalías positivas.
(Figura. N°2 y 3) (Tabla No. 4).
Figura. No. 2. Registro de anomalías mensuales de la Temperatura superficial del mar
(TSM) en la región Niño 1+2, para el periodo comprendido de diciembre 2008 a
noviembre del 2009. Se observa anomalías negativas para el mes de octubre y
anomalías positivas en el mes de noviembre en el Océano Pacifico oriental. Las
unidades están °C (NOAA, 2009).
15
Tabla. N° 4.
Temperaturas Superficiales del mar (TSM)
en las estaciones de muestreo
Estaciones de
Temperatura °C
muestreo
Octubre 2009
Noviembre 2009
22.5 °C
23.5 °C
Salinas
21.0 °C
23.2 °C
La Libertad
22.0 °C
23.6 °C
Ballenita
25,00
Temperatura (TSM)
24,00
23,00
22,00
21,00
23,80
22,50
Octubre
23,00
22,00
20,00
22,00
21,00
Noviembre
19,00
Salinas
La Libertad
Ballenita
Estaciones
Figura No.3. Temperaturas Superficiales del mar (TSM) en las estaciones de muestreo.
Se registró la Salinidad Superficial del mar (UPS), Salinas fue de 33.7 UPS, La
Libertad 33.7 UPS y Ballenita 33.6 UPS para el mes de Octubre, en cambio para el mes
de Noviembre fueron para Salinas de 32.0, La Libertad de 31.8 y Ballenita de 31.6
(Figura No. 4 y 5) (Tabla No. 5).
Figura No.4.Salinidad Superficial del Mar (UPS) Octubre 2009.(Tomado de CPPS
2010)
16
Tabla. N° 5.
Salinidad Superficial del mar
(UPS)en las estaciones de muestreo
Estaciones de
Salinidad (UPS)
muestreo
Octubre 2009
Noviembre 2009
33.8 UPS
32.0 UPS
Salinas
33.7
UPS
31.8 UPS
La Libertad
33.6 UPS
31.6 UPS
Ballenita
Figura No.5. Salinidad Superficial del mar (UPS) en las estaciones de muestreo.
4.1.2. Analisis comparativo entre las especies de macroalgas en las tres estaciones
y los parámetros físicos químicos en los meses de octubre y noviembre 2009.
Realizando un análisis cualitativo, se pudo determinar que la mayor abundancia
de organismo se registro para el mes de octubre mayormente en la zona de La Libertad
predominando especies como Ulva lactuca, U fasciata y Gracilariopsis spp , en la
zona de Ballenita Padina durvillaei, P. pavonica y Sargassum ecuadoreanum,
influenciadas por las bajas temperaturas donde se registraron temperaturas hasta 21.1 C°
y salinidades ligeramente elevadas hasta 33.8 UPS, en cambio para el mes de noviembre
se registró un incremento de la temperatura hasta 23.6 C° predominaron las misma
especies pero su biomasa disminuyo, al igual que la salinidad hasta 31.6 UPS. (Figura
No. 6 y 7).
17
Ballenita
La Libertad
Salinas
Gracilariaopsis spp
Gracilaria veleroae
Gracilaria textorii
Phyllophora spp.
Gelidium pusillum
Centroceras clavulatum
Ceramium pacificum
Champia compressa
Sargassum ecuadoreanum
Corpomenis sinuosa
Padina pavonica
Padina durvillaei
Ulva fasciata
Ulva lactuca
Cladophora prolifera
Codium capitatum
Codium faveolatum
Codium spp.
Codium tomentoso
Codium fragile
Codium cervicornis
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
Figura N° 6 Distribución de las especies identificadas en las 3 zonas de muestreo para
el mes de Octubre del 2009. Expresado em I/m2.
18
Ballenita
La Libertad
Salinas
Gracilariaopsis spp
Gracilaria veleroae
Gracilaria textorii
Phyllophora spp.
Gelidium pusillum
Centroceras clavulatum
Ceramium pacificum
Champia compressa
Sargassum ecuadoreanum
Corpomenis sinuosa
Padina pavonica
Padina durvillaei
Ulva fasciata
Ulva lactuca
Cladophora prolifera
Codium capitatum
Codium faveolatum
Codium spp.
Codium tomentoso
Codium fragile
Codium cervicornis
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
Figura N° 7 Distribución de las especies identificadas en las 3 zonas de muestreo para
el mes de noviembre del 2009. Expresado em I/m2.
19
4.2. Resultados biológicos.
Se identificaron una total de 21 especies de macroalgas marinas bénticas, de las
cuales 9especies corresponde a la División Chlorophyta (43%), 8 especies a la División
Rhodophyta (38%) y 4 especies a la División Heterocontonphyta (19%). (Figura No.8 y
9) (Tabla N. 6).
Chorophyta
Heterocontonphyta
Rhodophyta
43%
9 spp
38%
8 spp
19%
4 spp
Figura No. 8 Porcentaje de la División Chlorophyta, Heterocontonphyta y Rhodophyta.
Salinas
La Libertad
Ballenita
120
100
No. de Individuos/m
80
60
40
20
0
Especies
Figura No. 9 Abundancia de especies identificadas en Salinas, La Libertad y Ballenita.
20
Tabla 6.
Especies identificadas por División en las 3 estaciones de muestreo entre octubre y
noviembre del 2009
Chlorophytas
Especie
Heterocontonphytas
I/m
Especie
Rhodophytas
I/m
Especie
I/m
Codium cervicornis
36 Padina durvillaei
157 Champiacompressa
11
Codium fragile
66 Padina pavonica
106 Ceramiumpacificum
12
Codium tomentosum
80 Colpomenia sinuosa
64 Centroceras clavulatum
45
Codium sp.
38 Sargassumecuatorianun 89 Gelidiumpusillum
56
Codium faveolatum
50
Phyllophora spp.
9
Codium capitatum
14
Gracilaria textorii
37
Cladophora prolifera
92
Gracilaria veleruae
19
Ulva lactuca
179
Gracilariopsis spp.
127
Ulva fasciata
136
691
416
21
316
4.2.1 Salinas
Se colectaron 336 individuos que corresponden a un total de 18 especies, de la
División Chlorophyta con 9 especies (50%), Rhodophyta con 6 especies (33%) y
Heterocontonphyta con 3 especie (17%). (Figura No. 10).
Salinas
33%
6 spp
50%
9 spp
17%
3 spp
Clorophyta
Heterocontonphyta
Rhodophyta
Figura No. 10 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la
Estación de Muestreo de Salinas.
En la División Chlorophyta se identificó un total de 185 individuos; Ulva
lactuca con 45, Ulva fasciata con 29, Cladophora prolifera con 26, Codium fragile con
19, Codium faveolatum con 18, Codium capitatum con 14, Codium cervicornis con 13
individuos, Codium tomentosum con 12, y Codium sp con 9.
División Heterocontonphyta se identificó un total de 85 individuos;
Padinadurvillaeicon
54
individuos,
Colpomenia
sinuosa
con
22
y
Sargassumecuadoreanum con 9.
Para la División Rhodophyta se identificó un total de 66 individuos; Centroceras
clavilatum con 26, Gracilariopsis spp con 10, Gracilaria textorii con 9, Gracilaria
veleruae con 9, Champia compressa con 7 y Ceramium pacificumcon 5. (Tabla No. 7).
22
Tabla 7.
Especies identificadas por División en la Estación de Salinas
entre octubre y noviembre del 2009
Chlorophytas
Heterocontonphytas
Rhodophytas
Especie
I/m
Especie
I/m
Especie
Codium cervicornis
13 Padina durvillaei
54 Champia compressa
Codium fragile
19 Colpomenia sinuosa
22 Ceramium pacificum
Codium tomentosum
12 Sargassum ecuadoreanun 9 Centroceras clavulatum
Codium sp.
9
Gracilaria textorii
Codium faveolatum
18
Gracilaria veleruae
Codium capitatum
14
Gracilariopsis spp.
Cladophora prolifera 26
Ulva lactuca
45
Ulva fasciata
29
185
85
I/m
7
5
26
9
9
10
66
La mayor abundancia relativa es para Padina durvillaei de la división
Heterocontonphyta, con 54 individuos y Ulva lactuca de la división Chlorophyta con 45
individuos. (Figura No. 11).
Número individuos/m
60
50
Salinas
54
45
40
30
20
29
26
26
22
19
18
14
13
10
12
10
9
9
9
9
7
5
0
Especies
Figura 11. Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación de Salinas
23
4.2.2 La Libertad
Se colectaron 564 individuos que corresponden a un total de 16 especies, de la
Division Chlorophyta con 8 especies (50%), Rhodophyta con 6 especies (38%) y
Heterocontonphyta con 2 especie (12%). (Figura No. 12).
La Libertad
38%
50%
12%
Clorophyta
Heterocontonphyta
Rhodophyta
Figura No. 12 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la
Estación de Muestreo de La Libertad.
En la División Chlorophyta se identificó un total de 347 individuos; Ulva
lactuca con 84, Ulva fasciata con 73, Codium tomentosum con 53, Cladophora
proliferacon 42, Codiumfragile con 32, Codiumsp con 25, Codiumfaveolatum con 24 y
Codiumcervicornis con 14.
División Heterocontonphyta se identificó un total de 31 individuos;
Padinadurvillaeicon 19 individuos y Colpomenia sinuosa con 12.
División Rhodophyta se identificó un total de 186 individuos; Gracilariopsisspp
con 92, Gelidium pusillum con 38, Gracilaria textorii con 25, Centroceras clavilatum
con 17, Gracilaria veleruae con 10 y Champia compressa con 4 individuos. (Tabla No.
8).
24
Tabla 8.
Especies identificadas por División en la Estación La Libertad
entre octubre y noviembre del 2009
Chlorophytas
Heterocontonphytas
Rhodophytas
Especie
I/m
Especie
I/m
Especie
Codium cervicornis
14 Padina durvillaei
19 Champia compressa
Codium fragile
32 Colpomenia sinuosa
12 Centroceras clavulatum
Codium tomentosum
53
Gelidium pusillum
Codium sp.
25
Gracilaria textorii
Codium faveolatum
24
Gracilaria veleruae
Cladophora prolifera 42
Gracilariopsis spp.
Ulva lactuca
84
Ulva fasciata
73
347
31
La mayor abundancia relativa es para Gracilariopsis spp de la división
Rhodophyta con 92 individuos y Ulva lactuca de la división Chlorophyta con 84
individuos. (Figura 13).
100
Número individuos/m
90
80
La Libertad
92
84
73
70
60
50
40
30
53
42
38
32
25
25
20
10
24
19
17
14
12
10
4
0
Especie
Figura 13. Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación La
Libertad
25
I/m
4
17
38
25
10
92
186
4.2.3 Ballenita
Se colectaron 523 individuos que corresponden a18 especies, de la División
Chlorophyta con 8 especies (45%), Rhodophyta con 6 especies (33%) y
Heterocontonphyta con 4 especie (22%). (Figura No. 14)
Ballenita
Clorophyta
Heterocontonphyta
33%
Rhodophyta
45%
22%
Figura No. 14 Porcentaje y Número de especies identificadas por División en la
Estación de Muestreo de Ballenita.
En la División Chlorophyta se identificó un total de159 individuos; Ulva lactuca
con 50, Ulva fasciata con 34, Cladophora prolifera con 24, Codiumfragile con 15,
Codium tomentosum con 15, Codiumcervicornis con 9 individuos, Codiumfaveolatum
con 8 y Codiumspcon 4.
División Heterocontonphyta se identificó un total de 300 individuos; Padina
pavonica con 106, Padina durvillaei con 84, Sargassum ecuadoreanum con 80 y
Colpomenia sinuosa con 30.
División Rhodophyta se identificó un total de 64 individuos; Gracilariopsisspp
con 25, Gelidiumpusillum con 18, Phyllophora spp con 9, Ceramium pacificum con 7,
Gracilariatextorii con 3 y Centrocerasclavilatum con 2. (Tabla No. 9).
26
Tabla 9.
Especies identificadas por División en la Estación de Ballenita
entre octubre y noviembre del 2009
Chlorophytas
Heterocontonphytas
Rhodophytas
Especie
I/m
Especie
I/m
Especie
Codium cervicornis
9 Padina durvillaei
84 Ceramium pacificum
Codium fragile
15 Padina pavonica
106 Centroceras clavulatum
Codium tomentosum
15 Colpomenia sinuosa
30 Gelidium pusillum
Codium sp.
4 Sargassum ecuadoreanun 80 Phyllophora spp.
Codium faveolatum
8
Gracilaria textorii
Cladophora prolifera 24
Gracilariopsis spp.
Ulva lactuca
50
Ulva fasciata
24
159
300
I/m
7
2
18
9
3
25
523
La mayor abundancia relativa es para Padina pavonica con 106 individuos y
Padina durvilae con 84 individuos de la división Heterocontonphyta. (Figura No. 15).
Número de individuos
120
100
Ballenita
106
84 80
80
60
40
20
50
34 30
25 24
18 15 15
9
9
8
7
4
3
2
0
Especie
Figura No. 15 Abundancia relativa de las especies de macroalgas en la Estación de
Ballenita
27
4.3. Resultados estadísticos.
4.3.1 Diversidad.
4.3.1.1 Diversidad de Shannon-Weaver, mediante el software Diversity and
RichnnessSpecies.
Índice de Diversidad, con un rango de confiabilidad de ± 95%.
En el muestreo, la Estación de Salinas presentó la mayor diversidad (H'= 2.68),
seguido de La Libertad (H'= 2.515), y Ballenita (H'= 2,42). Estos valores se consideran
medios, pues rara vez el índice supera valores de diversidad de H'=4 (Magurran, 1988).
(Tabla No. 10).
Tabla No. 10. Índice de diversidad Shannon-Weaver con un rango
de Confiabilidad de ± 95% Por estaciones de muestreo.
Estación
Diversidad (H’)
Lower 95%
Upper 95%
2.681
2.582
2.724
Salinas
2.515
2.443
2.554
La Libertad
2.427
2.328
2.477
Ballenita
4.3.1.2 Equitatividad.
En cuanto la Equidad, el índice mostró valores superiores a 0.8, para las
estaciones muestreadas, por lo que se considera entre las muestras existe una alta
equitatividad (Tabla N. 11)
Tabla No. 11. Índice de Equitatividad
Por estaciones de muestreo.
H’ max
e
2,89
0,92
Salinas
2,77
0,91
La Libertad
2,89
0,83
Ballenita
28
4.3.2 Similaridad
Para el análisis del Índice de Similaridad de Bray Curtis se ha empleado los
valores cuantitativos de las 21 especies identificadas en las 3 estaciones de muestreo.
Los clados muestran que las estaciones de Salinas y Ballenita tienen una
similaridad de aproximadamente 55%, mientras que el clado de la Libertad presenta
menor similaridad con los otras dos estaciones en un 52%. Estó se encuentra expresado
en bits/organismo m2. (Figura No. 16).
Figura No. 16 Similaridad entre las 3 estaciones de muestreo. (Salinas, La Libertad y
Ballenita).
29
4.3.3 Curva de rango - abundancia.
Se muestra la curva de rango y abundancia para las 21 especies distribuidas en las 3
estaciones de muestreo. (Figura No. 17) (Tabla No. 10).
Figura No. 17 Curva de rango - abundancia desde la más abundante a la menos
abundante en las tres estaciones de muestreo. (Las letras se explican en la Tabla No.
12).
Tabla 12.
Asignación de letras de la figura No. 16 Curva rango - abundancia
Chlorophytas
Heterocontonphytas
Rhodophytas
Especie
Especie
Especie
Letra
Letra
Codium cervicornis
a Padina durvillaei
j Champia compressa
Codium fragile
b Padina pavonica
k Ceramium pacificum
Codium tomentosum
c Colpomenia sinuosa
l Centroceras clavulatum
Codium sp.
d Sargassum ecuadoreanun
m Gelidium pusillum
Codium faveolatum
e
Phyllophora spp.
Codium capitatum
f
Gracilaria textorii
Cladophora prolifera
g
Gracilaria veleruae
Ulva lactuca
h
Gracilariopsis spp.
Ulva fasciata
i
30
Letra
n
o
p
q
r
s
t
u
4.3.4 Densidad
La mayor densidad alcanzada de individuos /m2 fue en la Estación de La Libertad,
en ella predominaron 3 especies; Gracilariopsis spp con 5,41 I/m2, Ulva lactuca con
4,94 I/m2 y Ulva fasciata con 4,29 I/m2. Para la estación de Ballenita predominaron las
siguientes 3 especies; Padina pavonica con 6,24 I/m2, Padina durvilleai con 4,94 I/m2,
Sargassum ecuadorianum con 4,71. Para la estación de Salinas predominaron las
siguientes especies; Padina durvilleai con 3,18 I/m2 y Ulva lactuca con 2,65 I/m2.
(Figura No. 18).
7,00
Codium cervicornis
Codium spp.
Cladophora prolifera
Padina durvillaei
Sargassum ecuadoreanum
Centroceras clavulatum
Gracilaria textorii
Codium fragile
Codium faveolatum
Ulva lactuca
Padina pavonica
Champia compressa
Gelidium pusillum
Gracilaria veleroae
Codium tomentoso
Codium capitatum
Ulva fasciata
Corpomenis sinuosa
Ceramium pacificum
Phyllophora spp.
Gracilariaopsis spp
6,00
Individuo m2
5,00
4,00
3,00
2,00
1,00
0,00
Salinas
La Libertad
Ballenita
Estaciones de muestreo
Figura No. 18 Promedio de las densidades de macroalgas obtenidas en las 3 estaciones
de muestreo. Expresado en individuo/m2.
31
4.3.5 Distribución
La abundancia relativa se encuentra expresada en Individuos /m2, representada en
la siguiente escala; donde se asigna escaso a 0.00 a 2.50 I/m2, poco abundante de 2.51 a
5.00 I/m2, medianamente abundante de 5.01 a 7.50 I/m2, abundante de 7.51 a 10.00
I/m2 y Muy Abundante de 10.01 a 12.50 I/m2. (Tabla No. 13).
Tabla 13.
Escala de abundancia relativa Individuos /m2
Escala
Individuos
Denominación
Numérica de Individuos /m2
Contabilizados
0.00 a 2.50
00.00 a 40.00
Escaso
2.51 a 5.00
40.01 a 80.00
Poco abundante
5.01 a 7.50
80.01 a 120.00
Medianamente abundante
7.51 a 10.00
120.01 a 160.00
Abundante
10.01 a 12.50
160.01 200.
Muy Abundante
En la División Cholorophyta la estación con mayor densidad fue para La
Libertad registrando para el mes de octubre la mayor concentración con 11,41 I/m2,
seguido la estación de Salinas con 7,18 I/m2 y de 5,24 I/m2 para Ballenita. De igual
manera para el mes de noviembre se registró una alta concentración en la zona de La
Libertad con 9,00 I/m2, seguido de la zona de Ballenita con una abundancia de 4,12
I/m2 y la zona de Salinas con 3,71 I/m2. (Figura No. 19 y 20).
En la División Heterocontonphyta la zona de Ballenita se registró la mayor
densidad con 9,47 I/m2 en cambio para la zona de Salinas y La Libertad se obtuvo una
baja densidad de 2,88 I/m2 y 1,24 I/m2 respectivamente, para el mes de Octubre. Para el
mes de noviembre Ballenita sigue registrando la más alta densidad de organismos con
8,18 I/m2, en Salinas con 2,12 I/m2 y para La Libertad la más baja densidad con 0,59
I/m2. (Figura No. 21 y 22).
En la División Rhodophyta la mayor biomasa alcanzada fue en la estación de
La Libertad con 7,47 I/m2 con relación a Ballenita con 2,41 I/m2 y Salinas con 1,61
I/m2 siendo estas la más baja densidad para el mes de octubre. Para el mes de
noviembre La Libertad registro 3,47 I/m2, y para las zonas de Salinas y Ballenita su
biomasa descendió a 2,24 I/m2 y 1,35 I/m2 respectivamente. (Figura No. 23 y 24).
32
Figura No. 19 Distribución de la División Cholorophyta en el mes de octubre del 2009
en las 3 estaciones de muestreo.
Figura No. 20 Distribución de la División Cholorophyta en el mes de noviembre del
2009 en las 3 estaciones de muestreo.
33
Figura No. 21 Distribución de la División Heterocontonphyta en el mes de octubre del
2009 en las 3 estaciones de muestreo.
Figura No. 22 Distribución de la División Heterocontonphyta en el mes de noviembre
del 2009 en las 3 estaciones de muestreo.
34
Figura No. 23 Distribución de la División Rhodophyta en el mes de octubre del 2009
en las 3 estaciones de muestreo.
Figura No. 24 Distribución de la División Rhodophyta en el mes de noviembre del
2009 en las 3 estaciones de muestreo.
35
4.4 Descripción de las especies de macroalgas en la zona intermareal rocosa en las
playas de Salinas, La Libertad y Ballenita.
Especies de macroalgas identificadas en las estaciones de muestreo.
REINO PROTISTAS
División: CHLOROPHYTAS
Clase: Bryopsidophyceae
Orden: Ulvales
Familia: Ulvaceae
Género: Ulva
Ulva lactuca Linnaeus, 1753
Figura. No. 25 Aspecto general de la planta
Morfología
Alga lobulada, lanceolada, color verde oscuro, 14,52 cm de largo, adherida al
sustrato por un disco córneo del cual emergen una o varias láminas de 7,69 cm de
ancho, divididas varias veces; células rizoidales claviformes de (12,3) 15,89 (20,5) (DS
= 3,42) µm de ancho. Margen liso y ondulado. Células superficiales, ovaladas y
cuadradas. Talo formado por dos capas de células ovaladas de (8,2) 12,23 (16,2) (DS =
3,57) µm de ancho y (4,1) 6,83 (12,3) (DS = 3,34) µm de largo, separadas por un
espacio intercelular menor de 8,2 µm, el cual se evidencia sólo en la parte basal.
Lóbulos de (48,6) 56,93 (64,8) (DS = 7,25) µm de espesor en la parte media y de
(113,2) 127,41 (139,4) (DS = 11,89) µm en la parte basal. Creciendo sobre sustrato
rocoso y arenoso en el mesolitoral e infralitoral, epífita sobre Thalassia testudinum.
36
García (1999), Ardito et al., (1995), Aponte (1985), Ríos (1972) y Taylor (1960)
separan a Ulva lactuca y U. fasciata solamente por la forma de los frondes; sin
embargo, en este estudio se observó similaridad en la forma, mientras que internamente
se pudieron diferenciar por la forma de las células y por la presencia de un espacio
intercelular entre las dos capas que poseen las láminas; éste es claramente visible en
Ulva fasciata mientras que en U. lactuca el espacio no supera los 8,20 µm de ancho.
Hábitat
En zona intermareal, en charcas, rocas o sublitoral hasta 20 m. Al tolerar
salinidades bajas puede encontrarse en estuarios, y también frecuentemente en zonas
donde existen aportes nitrogenados.
Distribución
Presente en casi todos los mares.
37
Ulva fasciata Delile, 1813
Figura. No. 26 Aspecto general de la planta,
Morfología
Alga cintiforme, color verde brillante, 22,84 cm de alto, adherida al sustrato por
un háptero córneo de 3 mm de ancho; células rizoidales alargadas, claviformes, de (8,2)
16,40 (20,52) (DS = 5,02) µm de ancho. Láminas extendidas, lobulares, de las cuales
emergen las ramificaciones, algunas veces dicótomas o tricótomas en la parte apical;
láminas sin perforaciones. Margen entero y ligeramente ondulado. Células superficiales
circulares y ovaladas. Talo formado por dos hileras de células rectangulares de (8,2)
11,79 (16,41) (DS = 3,42) µm de ancho y (32,8) 37,41 (41) (DS = 3,42) µm de largo, las
cuales se encuentran separadas por un espacio intercelular de (8,2) 11,13 (16,4) (DS =
3,1) µm de ancho. Láminas de (90,21) 106,9 (129,62) (DS = 15,02) µm de espesor.
Creciendo sobre sustrato arenoso, fangoso y rocoso, en la zona mesolitoral e
infralitoral.
Ulva fasciata es una especie distinguible por presentar láminas cintiformes
largas y amplias en algunos casos, características que fueron utilizadas por García
(1999), Aponte (1985), Richardson (1975) y Taylor (1960) para separarla de otras
especies de Ulva.
38
Orden: Cladophoralescladales
Familia: Cladophoraceae
Género: Cladophora
Cladophora prolifera (Roth) Kutzing
Figura No. 27 Aspecto general de la planta
Morfología
Plantas de color verde oscuro, miden 8 cm de altura, y s encuentran formando
densos tufos. Abundantemente ramificaciones en el centro. El diámetro del filamento
varía de 320 um en la base a 140 um en los últimos ramos formando, los ápices de las
células son un poco cónicos.
Distribución
Archipiélago de Colón: I. Santa María, Blacka Beach Anchorage, I Fernandina.
Punta Espinosa, I Española; Bahía Gardner. I. Santa Cruz; Bahía Tortuga, Punta
Estrada.
39
Orden: Bryopsidales
Familia: Codiaceae
Género: Codium
Codium capitatum P.C.Silva 1959
Figura No. 28 Aspecto general de la planta (Tomado de
http://www.algaebase.org/search/species/detail/?species_id=21623)
Morfología
Esta es una especie marina. Distribución por localidad tipo: UmhlangaRocks,
Durban, Sudáfrica (Silva, Basson y Moe 1996: 852). África: Kenia (Silva, Basson y
Moe 1996, Bolton, Oyieke y Gwanda 2007), Madagascar (Silva, Basson y Moe 1996),
Mozambique (Silva, Basson y Moe 1996), Sudáfrica (Silva, Basson y Moe 1996,
Coppejans ,Leliaert y Verbruggen 2005).
40
Codium cervicornis Setchell & Grardner
Figura No. 29 Aspecto general de la planta
Morfología
Plantas en forma de arbusto, de color verde oscuro, midiendo 4.5 cm de alto, de
consistencia esponjosa. Dicotómicamente ramificada, los segmentos levemente
cuneados, los segmentos inferiores más delgados que los inferiores, los ápices son
obtusos; los utrículos periféricos tienen forma de clavo y miden entre 180-240 um de
diámetro. El corte presenta una región compuestos de filamentos finos irregulares,
incoloros.
Distribución
Archipiélago de Colón, I. Española, Puerto Villamil, Bahía Gardnes, I. Isabela
41
Codium faveolatum Howe
Figura No. 30 Aspecto general de la planta
Morfología
Plantas gruesas, pero pequeñas, se color verde oscuro, de 7.5 cm de alto,
ramificación dicotómicas, Decumbentes presentan adherencias secundarias al substrato,
ramas cilíndricas. Utrículos periféricos truncados y redondeados de 300 – 500 um de
diámetro.
Distribución
Archipiélagos de Colón, U. Floreana, Black Beach Anchorrage. I. Isabela;
Caleta Tagus, Puerto Villamil
42
Codium fragile Hariot, 1889
Figura No. 31 Aspecto general de la planta
Morfología
Talo erguido y esponjoso, de color verde oscuro, con ramificaciones erectas que
emergen de un disco basal, en su mayoría dicotómico. Talo constituido enteramente por
sifones diferencias en utrículos que pueden o no estar provisto de densos cabellos.
Médula filamentosa y corteza constituida por utrículos terminados en punta
(mucronados). Utrículos con densos granos de almidón en los cloroplastos, tamaño de la
planta de 10 a 30 cm de longitud
Hábitat y ecología
Crece en la zona meso litoral, pro puede localizarse en el infra litoral, sobre
sustrato rocoso (especie saxicola), en áreas de fuerte oleaje. Puede ser utilizada en la
alimentación humana y en farmacología por sus cualidades antibacterianas, antibióticas
y antihelmínticas
43
Codium tomentosum Taylor
Figura No. 32. Aspecto general de la planta
Morfología
Fronde de color verde claro a verde oscuro, ramificada dicotómicamente y que
está fijada al sustrato por un disco esponjoso; alcanza hasta 25 cm, tiene textura
aterciopelada y esponjosa, y está formada por muchos filamentos anastomosados, que
en conjunto pueden tener un diámetro de hasta 1 cm. Cada rama tiene sección
redondeada, pero es plana en la dicotomía. Los utrículos, que son las células de la parte
externa, son lisos, de clavados a piriformes y con el ápice redondeado. El gamentangio,
de oblongo a fusiforme se forma sobre pequeños pedúnculos que surgen en la mitad del
utrículo, fijada al sustrato por un disco esponjoso. Habitad en charcas, rocas, arena y
fango y en sublitoral hasta los 20 m
Distribución
Desde las islas británicas a cabo Verde Mediterráneo, este de África, sur de
Asia, California
44
Codium spp Stackhouse, 1797
Figura No. 33 Aspecto general de la planta
Morfología
Planta con frecuencia incrustada, lobadas o ramificadas y decumbentes, o más
comúnmente erectas y en forma de arbusto, con un grampón pequeño en forma de
costra, de tamaño moderado o grane, verde oscuras, flexibles y algunas veces
esponjosas; cenotricas.
Alga verde con forma esferoide aplanada, de textura aterciopelada y que alcanza
los 30 cm de diámetro; está fijado al sustrato por una maraña de filamentos entretejidos.
El interior de la esfera está formada por filamentos ramificados no muy densamente
dispuestos que en el corte se disponen de forma más apretada y finalizan en utrículos
clavados, de hasta 550 micras de ancho y 4.5 mm de largo y con pelos, especialmente
concentrados en su apice. El talo, con la edad, se hace hueco o se llena de agua. Los
gametos se forman en gametangios fusiformes u ovoides en ramas laterales al
utrículo.Vive fijado a conchas y rocas en el sublitoral hasta los 10 m de profundidad,
generalmente en pequeños grupos en zonas calmadas.
Distribución
Desde la costa de Bélgica y las Islas Britanicas a Portugal, el Mediterraneo,
Canarias.
45
División: HETEROCONTONPHYTAS
Clase: Isogeneratae
Orden: Dictyotales
Familia: Dictytaceae
Género: Padina
Padina durvillaei Bory
Figura No. 34 Aspecto general de la planta
Morfología
Talo de una o varias láminas aplanada en forma de abanico, de color café
oscuro, membranoso o coriáceo. Lámina no calcificada, ya sea enteras o divididas a
consecuencia de la ruptura de la fronda. Superficie de las láminas con áreas pelosas que
pueden formar bandas concéntricas, márgenes ampliamente enrollados.
Frondas de espesor muy variable, discromáticas en los márgenes y
polistromáticas (con 18 capas de célula) en la base, pero fluctuando entre 8 y 12 células
en la mayor parte de su superficie., la reproducción es por esporangios y oogonios
distribuidos sobre ambas superficies de la lámina, con una leve tendencia a la formación
de zonaciones concéntricas. No se conocen los anteridios.
La planta mide de 10 a 20 cm de longitud.
Las bases de esta planta son perennes, mientras que las láminas son anuales.
Estas últimas comienzan a desarrollarse a fines del otoño (principios de diciembre) y
alcanzan valores máximos de biomasa entre eneros y febrero; durante el verano, las
laminas se dividen y epifitan. Esta especie tiene potencial como alimento humano y es
46
factible que pueda ser utilizada en farmacología, tal como muchas otras especies del
género Padina.
Distribución
Crece en zonas rocosas de la región meso litoral o en el infra litoral, hasta 12 m
de profundidad. Después de Sargassum, es la especie más común en el Golfo de
California y su área de distribución es muy amplia.
47
Padina pavonica Thivy
Figura No. 35 Aspecto general de la planta (Tomada de
http://www.icpconcepts.com/padina-pavonica-extract.aspx)
Morfología
Talo laminar de consistencia rígida y color blanquecino o pardo amarillento en
forma de abanico formado a veces por varias láminas superpuestas. Tamaño de unos 15
cm. El talo está constituido por ejes polísticos con crecimiento simultaneo lo que
origina su morfología característica en forma de abanico. Está calcificado con carbonato
cálcico lo que le da la textura rígida y el color blanquecino.
La superficie de la lámina se caracteriza por la presencia de pequeños pelos
oscuros, formando filas horizontales y concéntricas que se destacan mas por las
deposiciones cálcicas.
Las especies se reproducen en verano, y los órganos
reproductores están situados sobre las bandas concéntricas de los pelos. Suelen haber
varios individuos agrupados que han crecido a partir de un estolón.
La especie tolera muy bien el calentamiento del agua y la luz muy intensa, pero
es sensible a las variaciones de nivel, y sólo soporta emersiones muy cortas.
Distribución
Rocas superficiales de zonas poco batidas por las olas, junto a otras algas y
poríferos. Alga parda que forma volutas de color blanco con bandas marrones,
semejante a los volantes de los vetidos de gitana. Crece a finales del verano y en otoño.
Es utilizada por los erizos como método de camuflaje. Alcanza su máximo desarrollo
entre julio y septiembre. Litoral oriental de Granada
48
Está presente en mares cálidos y tropicales, aparece en las regiones cálidas del
Océano Atlántico; zona nororiental desde las islas Británicas hasta Mauritania, y zona
noroccidental; en el mar Mediterráneo, mar Negro. Habita sobre sustratos rocosos o
duros. En zonas protegidas y bien iluminadas, en las zonas mareales e infra mareales,
desde la superficie hasta unos 20 m de profundidad.
49
Clase: Heterogeneratae
Sub clase: Polystichineae
Orden: Dictysiphonales
Familia: Punctariaceae
Género: Colpomenia
Colpomenia sinuosa (Roth) Derbés et Solier 1856
Figura No. 36 Aspecto general de la planta
Morfología
Planta con talo globoso de 3-9 cm de diámetro, hueco, de aspecto cerebral, de
color pardo verdoso a café oscuro. En corte presenta una región cortical formada por
células mayores de aproximadamente 14 um, las células de la región medular tiene entre
17 y 40 um.
Distribución
Archipiélago de Colón, I. Florena: Black Beach Anchorage; I. Santa Cruz Bahía
Academia; I: Isabela: Caleta Tagus, centro y norte de Bahía Urbina; I. Fernandina:
Punta Espinoza; Canal Bolívar.
50
Clase: Cyclosporeae
Orden: Fucales
Familia: Sargassaceae
Género: Sargassum
Sargassum ecuadoreanum Taylor
Figura No. 37 Aspecto general de la planta
Morfología
Planta de 23 a 27.5 cm de alto, de color café claro del talo principal se elevan
algunas ramas lisas que tienen hojas delgadas de color café claro, de 4-5 cm de longitud
y 3-5 mm de ancho, las bases un poco alargadas y levemente cónicas hacia el peciolo,
que es corto. Márgenes fuertemente aserrados, con dientes de 1 mm de longitud. La
nervadura central es evidente cerca del ápice de las hojas. Vesículas esféricas lisas de 4
mm de diámetro.
Distribución
Archipiélago de Colón, I. Isabela, Caleta, Tagus, sur de Bahía Urbina
51
División: RHODOPHYTAS
Clase: Bangiophyceae
Orden: Gelidiales
Familia: Gelidiaceae
Género: Gelidium
Gelidium pusillum Stackhouse
Figura No. 38 Aspecto general de la planta
Morfología
Ejes erguidos, aplanados en los ápices y cilíndricos y de sección circular
(tereetes) en las bases. Ramificación típicamente dística, frecuentemente irregular.
Esta alga se adhiere al sustrato por un órgano de fijación discoidal, pero también
por las partes erectas que funcionan como órgano de fijación secundarias en los puntos
de crecimientos secundarios.
Filamentos rizoidales escasos abundantes, ya sea esparcidos o congestionados.
La
reproducción
es
por
cistocarpos
biloculares,
soros
espermatangiales
y
tetrasporangiales situados cerca de los ápices. Soros tetrasporangiales normalmente de
forma oval. El tamaño del talo normalmente de 1 a 2 cm de altura, pero puede alcanzar
10 cm de longitud.
52
Distribución
Es una especie que crece en cualquier tipo de habitad. Es abundante sobre rocas
y conchas de moluscos, desde la región media del litoral hasta el infra litoral. Se la ha
registrado en el Archipiélago de Colón.
53
Orden: Gigartinales
Familia: Gracilariaceae
Género: Gracilaria
Gracilaria veleroae Dawson, 1944
Figura N. 39 Aspecto general de la planta
Morfología
Consiste en un talocomplanado, membranoso, con láminas flabeladas de
ramificaciones irregularmente dicotómica, estrecho hacia las parte bajas de la planta y
cuneado en la base. Se encuentra adherido al sustrato por un órgano de fijación pequeño
y discoidal. Lámina de 5 a 7 mm de ancho con márgenes enteros y suaves y ápices
redondeados.
Espesor del talo en un corte transversal usualmente 250 um, aunque puede
alcanzar 400 um. Médula no bien descrita. Corteza constituida por una sola capa de
célula delgadas, de 12 por 5 um, dispuestas en sentido periclinal. El tamaño alcanza
hasta 8 cm de altura.
Distribución
Especie saxicola (vive sobre rocas) distribuidas en el infra litoral a 30 m o mas
de profundidad, raramente se encuentra en la región litoral, se la puede utilizar en la
industria por su contenido de agar.
54
Gracilaria textorii Dawson , 1961
Figura N. 40 Aspecto general de la planta
Morfología
Talo foliáceo, formado por una o pocas láminas flabeladas de 5 cm de anchura,
irregularmente dicotómico. Plantas adheridas al sustrato por un órgano de fijación
discoidal. Láminas ramificadas en un plano, gruesas membranosas y coriáceas, de
ápices redondeados atenuados, por lo general con márgenes enteros y lisos, pero
ocasionalmente con abundante proliferaciones simples o ramificadas.
El espesor del talo en corte transversal de 250 a 600 (750) um, región medular
constituida por largas células de paredes delgadas y de 2250 a 500 um de diámetro.
Corteza usualmente constituida por una sola capa de células pequeñas, aunque en las
partes viejas de la planta puede ser discromática. Su tamaño alcanza unos 35 cm de
longitud
Distribución
Especie saxicola (crece sobre rocas), común en las región baja del litoral o en la
región somera del intralitoreal. De uso industrial por su contenido en agar
55
Género: Gracilariopsis
Gracilariopsis spp Dawson , 1961
Figura No. 41 Aspecto general de la planta Tomado de
http://www.fotolog.com/nature/8636824/
Morfología
Las plantas de las especies más grandes alcanzan los 40 cm de longitud. Los
talos son cilíndricos y erecto de un disco adhesivo discoide. Ramas carpogonial son
como para la familia, como es la formación de una célula de fusión primaria formada
por la carpogonio y hasta seis células adyacentes gametofíticos estériles.
Una célula de fusión secundaria está ausente, los gonimoblastos derivados de la
fusión de células primario. Conexiones secundarias único pozo vincular las células
basales de la carposporofito con células especialmente modificadas sobre el suelo de la
cavidad cistocarpo, ya que no hay "células tubulares nutrientes" como se producen.
Carposporangios forma en cadenas en la periferia de las gonimoblastos estériles.
Las células madre espermatangiales ocurrir en parejas o en grupos de 3 en exteriores
células portadoras corticales y cada uno corta una espermatangium solo por una división
transversal.
Distribución
La especie ocupa desde la zona intermareal hasta por lo menos 15 m de
profundidad (Abbott y Hollenberg, 1976) desde el sur de la Columbia Británica a Perú.
Como Gracilaria o Gracilariopsiss jostedtii / lemaneiformis, la especie ha sido reportada
56
en muchas regiones del mundo (Hawai, Indonesia, China, África Occidental, el Mar
Caribe, Carolina del Norte, Europa occidental), aunque no todos estos registros se han
verificado (Fredericq y Hommersand , 1989). Otras especies se producen en Japón,
Costa Rica, y el Atlántico occidental desde Cuba a Brasil.
57
Orden: Rhodymeniales
Familia: Lomentariaceae
Género: Champia
Champia compresa (C. Ag.) Harvey
Figura No. 42 Aspecto general de la planta
Morfología
La planta altamente ramificados son pequeñas, erecta forman grupos, de 3-5 cm
de altura; talos son altamente mucilaginosa y en color; frondas se articulan,
comprimidas a aplanados y varían en anchura de 3-5 mm; ramificación es más o menos
en bipinnada la porción inferior, teniendo irregular a verticiladas en la región superior;
ramas son claramente atenuada en el punto de origen y expandido por encima con
puntas obtusos.
Los segmentos en forma de barril son cortos, 1-1.5 mm de largo y 3-5 mm de
ancho; sección transversal del hueco talo muestra un comprimido en capas de una pared
más o menos cuadrada con forma de barril células, 49-60 um x 44-53 um y con una
gruesa vaina mucilaginosa; más pequeños las células corticales 32-37 um de diámetro se
ven aquí y allá; filamento vertical son en su mayoría no ramificado, uniseriada y cerca
de las paredes o en ocasiones se encuentran libres en la cavidad también, las células de
la filamento son 11-19 um de ancho, células de las glándulas derivadas del filamento
vertical son 8-15 um de diámetro, de paredes delgadas y con un contenido denso,
plantas y tetraspóricascistocárpicas son morfológicamente idénticas; tetrasporangios
58
producen agregados de bandas transversales bien marcados, tanto en el principal eje y
ramas; tetrasporangios son ovoides y 80-100 um x 70-75 um; tetrásporas están
dispuestos tetraédrica, de forma piramidal y 55-75 um de diámetro; cistocarpos
prominente que sobresalen son sub-cónica con un ostiolo distinta y son hasta a 1500
umde largo y 1200 um amplio, desde una hasta tres cistocarpos se ven en cada
segmento; carposporas son piriformes en forma, producida en el terminal
carposporangios y medida 44-70 x 30-37 um.
59
Orden: Gigartinales
Familia: Phyllophoraceae
Género: Phyllophora
Phyllophora spp (Hudson) PSDixon
Figura. No. 43 Aspecto general de la planta (Tomado de
http://eol.org/pages/961954/media)
Morfología
Phyllophora crispa (Hudson) PSDixon
Género de algas rojas. El talo es laminosa, simple o ramificado y mide hasta 50 cm de
altura. La reproducción es por medio de carposporas (que se forman sexualmente),
tetrasporas, y fragmentos de talos; en algunos esporofitos especies, en forma de
protuberancias pequeñas, crecen en los gametofitos.
El género comprende unas 15 especies, que habitan en los mares fríos y
templados. En Rusia hay cinco especies. Las algas se utilizan para la producción de la
carragenina sustancia formadora de gelatina.
La situación taxonómica: actualmente reconocido como un género distinto.
Descripción: Las plantas alcanzar 20 cm de altura y se componen de láminas aplanadas,
generalmente subdicotomicos, con o sin proliferaciones marginales, soportados sobre
estípites cilíndricos derivadas individualmente o en grupos de una base discoide.
Espermatangiales soros y procarpos forma bien a los vértices de los ejes primarios o
excrecencias especializadas o en hojitas, los que carecen de un cistocarpos ostiolo.
60
Espermatangios se producen en ampular en forma de pozos (Dixon y Irvine
1977).
Distribución
La mayoría de las especies se encuentran en el Atlántico Norte de Europa y
América, con los demás distribuidos en el Pacífico norte. Especies antárticas se graban
(Neushul 1968), pero se sabe tan bien.
61
Orden: Ceramiaes
Familia: Ceramiaceae
Género: Ceramium
Ceramium pacificum (Collins) Kylin, 1925
Figura No. 44 (a) Aspecto general de la planta, (b) apíces de las ramificaciones
Morfología
Talo de color rojo intenso, totalmente corticado, con ramificaciones dicotómicas
y partes apicales forcipiforme. Ramificaciones con numerosos proliferaciones, algunas
de ápice bifurcado, de longitud inferior a 5mm.
Células cortilcales pequeñas y
angulares, densamente agrupadas en las partes apiclaes y un poco más espaciadas en las
partes bajas de la planta. Tipo de organización uniaxial.
La reproducción es tetrasporangios inmersos en la corteza de las ramificaciones
laterales e irregularmente distribuidos.
Espermatangios distribuidos en parches
continuos en las secciones terminales de las ramificaciones, pero no en las partes
jóvenes. Gonimoblasto terminal o ramificado, rodeado de 5 a 7 ramifiaciones estériles,
formidas y puntisgudas, el tamaño es comunmente entre 5 y 8 cm de logitud
Distribución
Puede ser epilitica o saxicola y crece desde la región media de la zona
intenmareal hasta el infralitoral (10m de profundidad). Muy abundante e el golfo de
California en primavera.
62
Centroceras clavulatum (C, Agardh) Montagne, 1846
Figura No. 45 (a) Aspecto general de la planta, (b) apíces de las ramificaciones
Morfología
Las palntas crecen en densos tufos, miden hast 3 c d ealtura. Los filamentos se
ramifican en forma dicotomica y miden entre 120 – 180 um de diametro, bifurcados, las
últimas bifurcaiones tiene forma d epinza curva; los internodos miden 320 um de largo,
con la corteza constituida por células pequeñas rectangulares de 14 x 17 um, formando
corridas longitudinales. Los nodos poseen verticilos en forma de espinas compuesta de
sos células.
Distribución
Archipieloago de Colón: I Española: bahía Garden; I. fernandina: Punta
Espinosa.; I. Floreana: Black Beach Anchorage; I Isabela: Punta Albemarle; I Rábida. I
Caleta Tagus. I Santa Cruz. I. Fernandina: Canal Bolivar.
63
5. DISCUSIONES
Las investigaciones realizadas en el Ecuador, de acuerdo con los trabajos publicados
sobre la composición y distribución del macrofitobentos en las costas ecuatorianas son
escasas, solo se han referidos a estudios taxonómicos y no se ha podido relacionar o
asociarlos con los cambios climáticos a los que son expuestas constantemente las
macroalgas, tales como el eventos El Niño y La Niña; así como en condiciones
normales, más bien se las ha mencionado superficialmente.
En los boletines del Erfen N°229 2009, se mencionó que durante los meses de
septiembre y octubre del 2009 la estructura térmica en el sector costero del Ecuador
presentó aguas frías provenientes del sur, lo que derivó en anomalías negativas de hasta
-1.0ºC. Este descenso de la temperatura del mar se dio a consecuencia del
fortalecimiento de los vientos del sur y el consecuente arrastre de las aguas frías del sur
hacia aguas nacionales. Esto explica porque, durante los últimos días de octubre y
primeros de noviembre, se aprecia un debilitamiento de los vientos así como, una
recuperación de los valores de la temperatura del mar, lo que podría significar que el
enfriamiento reportado en dichas fechas esté finalizado, iniciando los preparativos para
el cambio estacional hacia la época húmeda de la costa ecuatoriana.
Para el mes de noviembre el Erfen BAC N° 230 2009, mencionó en la región del
Pacífico Oriental (Región Niño 1+2) las anomalías se incrementaron, alcanzando en
esta ocasión un valor de 0.4ºC. En el Ecuador la TSM se encuentra ligeramente sobre
sus promedios normales con valores que varían entre 23.6 y 27.0ºC, los valores más
altos se han registrado en la costa norte del país (27.0 - 26.6ºC), mientras que en la
región sur se registró 23.6°C para La libertad - Salinas.
En esta tesis se confirma las condiciones antes descritas, se registraron
temperaturas bajas para el mes de octubre que oscilan entre 21.0°C y 22.5°C, mientras
que para el mes de noviembre hubo un incremento en la TSM en valores que van entre
22.0°C y 23.8°C. Por lo que en esta época hubo variación de temperaturas un poca más
cálidas que en relación a las tomadas en el mes de Octubre.
64
En cuanto a la salinidad la CPPS 2010, reportó que las isolíneas se ubicaron a
manera de bandas cuasi-zonales con valores de 35 a 33.2 UPS, caracterizando al Frente
Ecuatorial con las isolíneas de 35 a 33.8 UPS, para el mes de octubre.
La salinidad encontrada en el esté estudio, en las diferente zonas de muestreo
fueron entre 33.6 y 33.8 UPS para el mes de octubre y para el mes de noviembre fue
entre 31.8 y 32.0 UPS.
Para el mes de octubre y noviembre del 2009, se determinó que el total de las
macroalgas analizadas, estuvo conformado por 21 especies, distribuidas en tres
divisiones:
Chlorophytas,
Heterocontonphytas
y
Rhodophytas.
Las
especies
predominante y más abundante se registraron para el mes de octubre con temperaturas
entre 21.0°C y 22.5°C.
Entre las Chlrophytas predominantes: fueron Ulva lactuca, especie muy común
en casi todos los mares, con una densidad de 2.65 I/m2 para el mes de octubre y
densidad de 2.29 I/m2 para el mes de noviembre en la zona de La Libertad, en cambio
para las zonas de Salinas y Ballenita se observó una disminución en su biomasa, Ulva
fasciata muestra el mismo patrón concentrándose mayormente en la zona de La
Libertad para ambos meses.
Las especies de Codium cervicronis, C. fragile. C. tomentoso, C. spp y C.
capitatum
son
ampliamente
distribuidas
en
nuestras
costas,
se
mostraron
equitativamente para las tres zonas muestreadas, pero hubo un ligero incremento en la
playa de La Libertad para el mes de octubre. Cladophora prolifera se mostró abundante
para las tres estaciones en el mes de octubre, pero se registro un baja densidad para el
mes de noviembre.
Otras especies fueron reportadas por Muller H 1996. Como Ulva lactuca en la
Libertad, Ulva lobata en la Península de Sta. Elena, Chaetomorpha antennina y
Caulerpa peltata en Salinas y Santa Elena, Codium Isabelae en Santa Elena, Salinas y
La Libertad; solo una especie de Heterocontonphyta Sargassun skottsbergii en Salinas
65
de un total de 353 especie identificadas en el Ecuador de las cuales 345 corresponde al a
Isla Galápagos y solo 6 especies son registradas para el continente.
En el litoral superior de la playa de Ballenita, Valverde 1979 manifiesta en las
piletas se llenas sólo de salpicaduras o grandes marea, tiene aguas límpidas y tranquilas
donde emerge Chaetomorpha santennina y en otras con borde arenoso Monostroma
ecuadoreanum. Las piletas más grandes albergan a Enteromorpha flexuosa y
Cladophora prolijera.
Además Valverde 1979, mencionó en el litoral medio en la playa de Ballenita
describe un sector muy rico cualitativamente, adheridas a las rocas pero sobre animales,
tenemos dos especies Caulerpa racemosa, y en las parte de las grietas se asienta el
Codium santamariae, que alterna con Enteromorpha flexuosa y Derbesia longifructa.
Estos lugares reciben el flujo diario de pleamares, están tapizada íntegramente de
Corallina chilensis, pero se observa piletas verdes de Ulva lobata y Chaetomorpha
antennina, Codium fernandizianum y Codium longiramosun de 60 – 70 cm de longuitud
que alternan con algas rojas. Formando un intricado grupo Boodlea composita y
Centrocera clavulatum se asientan en el fondo de algunas piletas, que en muchas
ocasiones las fuertes mareas las arrancan y son transportadas por las olas.
Dentro de las Rhodophytas se registró 8 especies la más abundante fue
Gracilariopsis spp predominando en la zona de La Libertad con una densidad de 3.18
I/m2 para el mes de octubre y un ligero descenso para el mes de noviembre con 2.24
I/m2, en cambio para la zona de Salinas y Ballenita no fue muy representativa.
Otra especie que fue muy notoria es Gelidium pusilllum predominando en la
zona de La Libertad para el mes de octubre con una densidad de 1.65 I/m2, otra especie
que se encontró y se mostro abundante es Centrocera clavulatum predominando en la
zona Salinas con una densidad de 1.53 I/m2, Gracilaria textorii y Gracilaria veleroue
también se mostraron abundante para la playa de la Libertad, otras especies que se
registraron fueron Champia compresa, Ceramiun pacificum, Phyllophora spp, pero en
pocas cantidades.
66
Con respeto a las Rhodohytas, describió que en el piso medio se encontró una
alfombra de Corallina chilensis, Jania ungulata y J. arborescens, acompañadas de
Gracilaria confervoides, G. brevis, Gelidium sclerophyllum, G. Galapagense,
Pterocladia okamuray donde se destaca tres especie
Hypnea cervicornes, Hypna
califórnica e Hipnea marchantes, que junto con Amphiroa franciscana y Anfeltia
gigartinoides inician el Litoral inferior.
Las Heterocontonphyta, su mayor abundancia fue registrada para la zona de
Ballenita predominando las especie de Padina pavonica con una densidad de 3.18 I/m2
y Padina durvillaei con 2.59 I/m2 para el mes de octubre, para el mes de noviembre se
registro un ligero descenso para Padina pavonica de 3.06 I/m2 y Padina durvillaei
2.35 I/m2, para las otras zonas La Libertad y Salinas su presencia no fue muy
representativa. Otra especie que se mostro muy abundante es Sargassum ecuadoreanum
mostrando un gran biomasa en los dos meses de estudio para la zona de Ballenita con
2.53 I/m2 y 2.18 I/m2, y escasa o nula para las otras dos zonas, se podría decir que este
grupo fue
predomínate en la zona de Ballenita regístrando la mayor biomasa
contabilizada.
Para la zona de Ballenita, Valverde (1976), reportó una predominancias de
Padina durvillaei, adquiriendo mayor tamaño, principalmente cuando está expuesta al
fuerte oleaje, también se encontró Sargassum ecuadoreanum.
Con relación a los datos estadísticos durante los meses de octubre y noviembre
del 2009, las estaciones de Salinas y Ballenita tienen una similaridad de
aproximadamente 55%, mientras que el clado de la Libertad presenta menor similaridad
con los otras dos estaciones en un 52%.
La mayor densidad Inviduos/m2 alcanzada par este estudio se registro para la
estación de La Libertad, predominando 3 especies; Gracilariopsis spp, Ulva lactuca y
Ulva fasciata, seguida de la estación de Ballenita donde predominaron 3 especies;
Padina pavonica, Padina durvilleai, Sargassum ecuadorianum, y para la playa de
Salinas predominaron; Padina durvilleai y Ulva lactuca.
67
La abundancia registrada en la División Cholorophyta fue para La Libertad
registrando para el mes de octubre con una alta concentración, y una moderada para las
estaciones de Salinas y Ballenita. De igual manera para el mes de noviembre se registró
una alta concentración en la zona de la Libertad, decreciendo para las zonas de Ballenita
y Salinas. La División Heterocontonphyta en Ballenita se registró la mayor densidad
para el mes de octubre y noviembre; en cambio para Salinas y La Libertad se registró
una baja densidad. La División Rhodophyta la mayor biomasa alcanzada fue en la
estación de La Libertad con relación a Ballenita y Salinas que obtuvo una baja densidad
para el mes de octubre y en el mes de noviembre la biomasa descendió grandemente
para las tres estaciones.
la diversidad registradas fue de 21 especies, es mucho mayor a lo repasto a lo
reportado por Muller H. 1996 que contabilizada solo 6 especies para la costa
continental, en cambio Valverde 1976 describe una mayor diversidad en la zona de
ballenita con 31 especies, se presume que los cambios ambientales en las diferentes
épocas afectan grandemente en las poblaciones algales durante muchos años,
aumentando o disminuyéndolas.
Muller H 1996. Propone preservar la abundancia y variedad de organismos
marinos de la creciente influencia humana, debe ser la inquietud principal de los
investigadores y de las instituciones encargadas del manejo de los recursos. El
incremento de la actividad humana, principalmente en las áreas costeras, produce
efectos negativos en los productores primarios bénticos (algas marina), por
consecuencia en los herbívoros y finalmente en otra la cadena alimenticia. Por tanto
existe la necesidad de incrementar la información base de este grupo de organismos,
especialmente en áreas donde se proyecta la mayor actividad humana.
Los resultados obtenidos por Muller H 1996, los comparó con los referenciales
existente en esa época, pudo decir que existe una disminución en la cantidad y variedad
de algas. El último reporte cuantitativo data de 1983 es decir con estudios efectuados
antes de la ocurrencia del fenómeno del El Niño en 1982. Por lo que dedujo que este
tuvo un efecto negativo en las algas marinas, que aún no se ha podido recuperar,
68
describe que la presencia de las algas marinas es muy pobre, aunque esto puede deberse
también a la creciente población demográfica en algunos lugares.
El número de especies identificado fue bajo, entre las posibles causas tenemos
las condiciones oceanográficas prevalecientes en esta época del año, se mantuvo un
incremento de temperatura para los meses de febrero hasta los primeras semanas de
septiembre, cuando se colectaron las muestras fue en el mes de octubre registrando
bajas temperaturas, y un incremento para el mes de noviembre, entre otras causas el
fuerte oleaje y los vientos que son expuestas las macroalgas en especial en la zona de
Salinas por lo que se esperaría que el número de algas varíe considerablemente en otras
temporadas del año.
Bajo estas condiciones algunas especies fijas a sustratos duros del fondo marino
en aguas de mayor profundidad se desprenden y derivan en dirección a la orilla. Un
aspecto importante de este proceso es que la presencia de estas especies de algas se
convierte en un componente natural de los ecosistemas arenosos rocosos costeros
durante un tiempo considerable del ciclo anual. De cualquier forma un incremento en el
muestreo seguramente arrojará nuevas especies a la lista.
Las especies halladas son características residentes de playas arenosas y
estructuras duras o naturales ubicadas en estas playas.
También es de considerar que el área de estudio presenta zonas en las que se
puede esperar condiciones diferentes, en función de afectación por actividades
antropogénicas como las actividades pesqueras, industriales y navieras.
Los resultados del trabajo permiten identificar a la mayor parte de las especies
que ocurren en el área, en la época que se tomó el muestreo, y es información básica
para el diseño de estudios comparativos en escala temporal o espacial y relacionado a
perturbaciones naturales como Fenómeno de El Niño y La Niña, o inducidas por el ser
humano.
69
6. CONCLUSIONES
Los parámetros ecológicos de composición, distribución y abundancia del
macrofitobentos en la Península de Santa Elena, se relacionan con las condiciones
oceanográficas de temperatura y salinidad, asociadas e influenciadas para los meses de
octubre y noviembre del 2009.
Las especies que alcanzaron mayor abundancia, se reportaron en el mes de octubre
donde se evidencio bajas temperaturas, observándose un incremento en las especies
debido a los nutriente provenientes de la corriente fría de Humbolt.
Además se registró la abundancia y distribución de las macroalgas encontradas en
este estudio particularizando zonas especificas donde predominaron exclusivamente las
divisiones en determinadas playas, la mayor densidad alcanzadas para las Chlorophytas
se reportó en la zona de La Libertad de igual manera para las Rhodophytas, en cambio
las Heterocontonphytas predominaron casi en su totalidad en la zona de Ballenita, la
zona de Salinas se mantuvo relativamente equitativa en relación a las otras dos playas
muestreadas.
La Biodiversidad de las algas en las localidades de la Península de Santa Elena
tienen un comportamiento dinámico que corresponde a las condiciones de lugar y ciclos
temporales propios del área geográfica.
Presenta una diversidad media con respecto a otros años esto se asume a factores
naturales a las que son expuestas, como los eventos anómalos El Niño y La Niña, pero
en relación al estudio realizado se determinó la mayor diversidad para la playa de
Salinas, seguida de La Libertad y Ballenita.
En cuanto a la Similaridad entre comunidades fue relativamaente mayor para
Salinas y Ballenita, mientras que La Libertad presenta menor similaridad con las otras
dos estaciones.
70
7.
RECOMENDACIONES
 Desarrollar un sistema de información biogeografíca de acuerdo a los factores
ambientales, antropogenicos y físico - químico que influyen en el desarrollo de las
poblaciones de las macroalgas.
 Realizar trabajos similares a esté en las dos épocas marcadas de la costa ecuatoriana,
época lluviosa y época seca.
 Implantar técnicas de policultivos macroalgas y otras especies acuícolas comerciales,
en tratamiento para mejorar la calidad de agua de cultivo.
 Utilización de Algas marinas como biofertilizantes y como alimento para especies
acuáticas comerciales.
 Incluir a las macroalgas, en la alimentación diaria como lo realizan en los países
Asiaticos, especialmente Japón, China y Corea.
71
8. BIBLIOGRAFÍA
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75
9.
ANEXOS
Tabla No. 2 Consolidado de la identificación y numero de especies encontradas en las 3 estaciones de muestreo durante los meses de
octubre y noviembre del 2009. (Expresado en Individuos /m).
octubre
Salinas
noviembre Subtotal
octubre
La Libertad
noviembre
Subtotal
octubre
Ballenita
noviembre Subtotal
TOTAL
Chorophyta
Codium cervicornis
Codium fragile
Codium tomentoso
Codium spp.
Codium faveolatum
Codium capitatum
Cladophora prolifera
Ulva lactuca
Ulva fasciata
6
15
8
6
10
9
18
33
17
7
4
4
3
8
5
8
12
12
13
19
12
9
18
14
26
45
29
185
8
20
25
15
14
0
30
45
37
6
12
28
10
10
0
12
39
36
14
32
53
25
24
0
42
84
73
347
5
6
8
3
5
0
18
26
18
4
9
7
1
3
0
6
24
16
9
15
15
4
8
0
24
50
34
159
36
66
80
38
50
14
92
179
136
691
Heterocontonphyta
Padina durvillaei
Padina pavona
Corpomenis sinuosa
Sargassum ecuadoreanum
27
0
16
6
27
0
6
3
54
0
22
9
85
13
0
8
0
6
0
4
0
19
0
12
0
31
44
54
20
43
40
52
10
37
84
106
30
80
300
157
106
64
89
416
6
5
0
0
0
6
5
6
1
0
26
0
0
3
4
4
7
5
26
0
0
9
9
10
66
336
3
0
17
28
0
17
8
54
1
0
0
10
0
8
2
38
4
0
17
38
0
25
10
92
186
564
0
4
1
10
9
2
0
15
0
3
1
8
0
1
0
10
0
7
2
18
9
3
0
25
64
523
11
12
45
56
9
37
19
127
316
1423
Rhodophyta
Champia compressa
Ceramium pacificum
Centroceras clavulatum
Gelidium pusillum
Phyllophora spp.
Gracilaria textorii
Gracilaria veleruae
Gracilariaopsis spp
TOTALES
76
Tabla No. 3 Consolidado de la identificación y numero de especies encontradas en las 3 estaciones de muestreo durante los meses de
octubre y noviembre del 2009. (Expresado en Individuos/m2).
octubre
Salinas
noviembre Subtotal
octubre
La Libertad
noviembre Subtotal
octubre
Ballenita
noviembre Subtotal
TOTAL
Chorophyta
Codium cervicornis
Codium fragile
Codium tomentoso
Codium spp.
Codium faveolatum
Codium capitatum
Cladophora prolifera
Ulva lactuca
Ulva fasciata
0,35
0,88
0,47
0,35
0,59
0,53
1,06
1,94
1,00
0,41
0,24
0,24
0,18
0,47
0,29
0,47
0,71
0,71
0,76
1,12
0,71
0,53
1,06
0,82
1,53
2,65
1,71
10,88
0,47
1,18
1,47
0,88
0,82
0,00
1,76
2,65
2,18
0,35
0,71
1,65
0,59
0,59
0,00
0,71
2,29
2,12
0,82
1,88
3,12
1,47
1,41
0,00
2,47
4,94
4,29
20,41
0,29
0,35
0,47
0,18
0,29
0,00
1,06
1,53
1,06
0,24
0,53
0,41
0,06
0,18
0,00
0,35
1,41
0,94
0,53
0,88
0,88
0,24
0,47
0,00
1,41
2,94
2,00
9,35
2,12
3,88
4,71
2,24
2,94
0,82
5,41
10,53
8,00
40,65
Heterocontonphyta
Padina durvillaei
Padina pavona
Corpomenis sinuosa
Sargassum ecuadoreanum
1,59
0,00
0,94
0,35
1,59
0,00
0,35
0,18
3,18
0,00
1,29
0,53
5,00
0,76
0,00
0,47
0,00
0,35
0,00
0,24
0,00
1,12
0,00
0,71
0,00
1,82
2,59
3,18
1,18
2,53
2,35
3,06
0,59
2,18
4,94
6,24
1,76
4,71
17,65
9,24
6,24
3,76
5,24
24,47
Rhodophyta
Champia compressa
Ceramium pacificum
Centroceras clavulatum
Gelidium pusillum
Phyllophora spp.
Gracilaria textorii
Gracilaria veleruae
Gracilariaopsis spp
0,35
0,29
0,00
0,00
0,00
0,35
0,29
0,35
0,06
0,00
1,53
0,00
0,00
0,18
0,24
0,24
0,41
0,29
1,53
0,00
0,00
0,53
0,53
0,59
3,88
19,76
0,18
0,00
1,00
1,65
0,00
1,00
0,47
3,18
0,06
0,00
0,00
0,59
0,00
0,47
0,12
2,24
0,24
0,00
1,00
2,24
0,00
1,47
0,59
5,41
10,94
33,18
0,00
0,24
0,06
0,59
0,53
0,12
0,00
0,88
0,00
0,18
0,06
0,47
0,00
0,06
0,00
0,59
0,00
0,41
0,12
1,06
0,53
0,18
0,00
1,47
3,76
30,76
0,65
0,71
2,65
3,29
0,53
2,18
1,12
7,47
18,59
83,71
TOTALES
77
TABLA Nº 14 CLASIFICACION TAXONOMICA DE LAS ESPECIES
ENCONTRADAS EN LA ZONA DE LA LIBERTAD, BALLENITA Y
SALINAS (OCTUBRE Y NOVIEMBRE, 2009)
REINO PROTISTAS
División: CHLOROPHYTAS
Clase: Chorophyceae
Orden: Ulvales
Familia: Ulvaceae
Género: Ulva
Especie: Ulva lactucaLinnaeus, 1753
Ulva fasciataDelile, 1813
Orden: Cladophoralescladales
Familia: Cladophoraceae
Género: Cladophora
Especie: Cladophora prolifera (Roth) Kutzing
Orden: Siphonocladales
Familia: Siphonales
Género: Codium
Especie CodiumcapitatumP.C.Silva 1959
CodiumcervicornisSetchell&Grardner
CodiumfaveolatumHowe
Codium fragile Hariot, 1889
Codium tomentosum Taylor
CodiumspStackhouse, 1797
División: HETEROCONTONPHYTAS
Clase: Isogeneratae
Orden: Dictyotales
Familia: Dictytaceae
Género: Padina
Especie: PadinadurvillaeiBory
78
Padina pavonica Thivy
Clase: Heterogeneratae
Sub clase: Polystichineae
Orden: Dictysiphonales
Familia: Punctariaceae
Género: Colpomenia
Especie: Colpomenia sinuosa(Roth) Derbés et Solier 1856
Clase: Cyclosporeae
Orden: Fucales
Familia: Sargassaceae
Género: Sargassum
Especie: Sargassumecuadoreanum Taylor
División: RHODOPHYTAS
Clase: Bangiophyceae
Orden: Gelidiales
Familia: Gelidiaceae
Género: Gelidium
Especie: GelidiumpusillumStackhouse
Orden: Gigartinales
Familia: Gracilariaceae
Género: Gracilaria
Especie: Gracilariaveleroae Dawson, 1944
GracilariatextoriiDawson , 1961
Género: Gracilariopsis
Especie: GracilariopsissppDawson , 1961
79
Orden: Ceramiaes
Familia: Ceramiaceae
Género: Ceramium
Especie: Ceramiumpacificum(Collins) Kylin, 1925
Centrocerasclavulatum(C, Agardh) Montagne, 1846
Orden: Rhodymeniales
Familia: Lomentariaceae
Género: Champia
Especie: Champia compresa (C. Ag.) Harvey
Orden:
Familia:
Género: Phyllophora
Especie: Phyllophoraspp
80