TESIS PER SE MIGUEL VIVAR ULTIMO.pdf1.pdf

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN
PRESENTADA A LA COMISIÓN INTERNA DE LA FACULTAD PREVIO A LA
OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
TEMA
“ESTRATEGIA EN LA CONSERVACIÓN DE CADÁVERES A
BASE DE GLICERINA PARA LA ANATOMÍA PRÁCTICA
VETERINARIA”
AUTOR
MIGUEL ÁNGEL VIVAR GARCÍA
TUTOR ACADÉMICO
DR. AMÍLCAR CÁRDENAS DUQUE, MG. SC.
Guayaquil, Octubre 2014
CERTIFICACIÓN DE TUTORES
En calidad de tutores del trabajo de titulación:
CERTIFICAMOS
Que hemos analizado el trabajo de Titulación como requisito previo para optar por el
Título de Tercer Nivel de Médico(a) Veterinario(a) Zootecnista.
El trabajo de titulación se refiere a:
“ESTRATEGIA EN LA CONSERVACIÓN DE CADÁVERES A
BASE DE GLICERINA PARA LA ANATOMÍA PRÁCTICA
VETERINARIA”
Presentado por:
Miguel Ángel Vivar García
Cédula # 0924310410
TUTORES
_________________________
__________________________
Dr. Amílcar Cárdenas Duque, Mg. Sc.
Blgo. Cristóbal Antonio Freire Lascano
TUTOR ACADÉMICO
TUTOR METODOLÓGICO
Guayaquil, Octubre 2014
II
La responsabilidad por las ideas,
investigaciones, resultados y conclusiones
sustentadas en éste trabajo de titulación,
corresponden exclusivamente al autor.
MIGUEL ÁNGEL VIVAR GARCÍA
III
Dr. Roberto Cassís Martínez, PhD.
RECTOR.
Dra. María de Lourdes Salazar Mazamba, PhD.
DECANA
Abgdo. Evert Vidal Arteaga Ramírez
SECRETARIO
Dr. Amílcar Cárdenas Duque, Mg. Sc.
TUTOR ACADÉMICO
IV
“ESTRATEGIA EN LA CONSERVACIÓN DE CADÁVERES A
BASE DE GLICERINA PARA LA ANATOMÍA PRÁCTICA
VETERINARIA”
MIGUEL ÁNGEL VIVAR GARCÍA
TRABAJO DE TITULACIÓN
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA.
Los miembros del Tribunal de Sustentación designados por la Comisión Interna de la
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, damos por Aprobada la presente
investigación con la Nota de ---- (----), Equivalente a ----------------.
PRESIDENTE
EXAMINADOR PRINCIPAL
EXAMINADOR PRINCIPAL
EXAMINADOR SUPLENTE
V
DEDICATORIA
A Dios por regalarme tan maravillosa vida y brindarme salud para la culminación del
presente trabajo.
A mi hijo Miguel Arturo, la razón de mi superación profesional y mi felicidad.
A mis padres, Vicente y Karol, por su ayuda incondicional en todo momento.
A mi abuela Graciela, mi tío Nicolás, mis primos Marcelo y Jimmy, y mi hermano
Andrés, cada uno dando ánimos e infinito amor para estar donde estoy.
A mis amigos Antonio, Gabriel y Gino.
A mi compañera Eliana González, los quiero mucho a todos.
A los Médicos Veterinarios; Marco Véliz, Fabricio Zamora, Raúl Granda y Alfredo
Mite, personas imborrables.
VI
AGRADECIMIENTO
A Dios por regalarme tan maravillosa vida y brindarme salud para la culminación del
presente trabajo.
A mi familia, por ser parte de mi ser, por apoyarme sin negativas.
Al Biólogo Antonio Freire, por el asesoramiento para culminar este trabajo.
A mi primo Ing. Qui. Marcelo García Cruz, brindándome las facilidades de las
instalaciones de su empresa y la ayuda en conseguir las sustancias químicas para
realizar este trabajo. Gracias, sin ti nada de esto sería posible.
VII
ÍNDICE DEL CONTENIDO
INTRODUCCIÓN ......................................................................................................................... 1
1.1. OBJETIVOS ................................................................................................................. 3
1.1.1. OBJETIVO GENERAL. ...................................................................................... 3
1.1.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS. ............................................................................. 3
1.2. VARIABLES. ............................................................................................................... 3
1.2.1 VARIABLES DEPENDIENTES......................................................................... 3
1.2.2. VARIABLES INDEPENDIENTES ..................................................................... 3
1.3. HIPÓTESIS. ................................................................................................................. 3
II. MARCO TEÓRICO ................................................................................................................... 4
2.1. Reseña histórica. ........................................................................................................... 4
2.2. Generalidades. .............................................................................................................. 7
2.3. Glicerina. ....................................................................................................................... 9
2.3.1. Descripción............................................................................................................. 9
2.3.2. Datos Físico-Químicos........................................................................................... 9
2.3.3. Propiedades y usos. ............................................................................................... 9
2.3.4. Acción en la conservación. .................................................................................... 9
2.3.5. Efectos secundarios. ............................................................................................ 10
2.4. Alcohol etílico 92%..................................................................................................... 10
2.4.1. Datos físico-químicos........................................................................................... 10
2.4.2. Propiedades y usos. ............................................................................................. 10
2.4.3. Acción en la conservación. .................................................................................. 10
2.5. Ácido Acético. ............................................................................................................. 11
2.5.1. Datos físico-químicos........................................................................................... 11
2.5.2. Propiedades y usos. ............................................................................................. 11
2.5.3. Acción en la conservación. .................................................................................. 11
2.6. Procesos post mortem. ............................................................................................... 11
III. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................................................... 13
3.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO. ............................................... 13
3.1.1. Localización del Ensayo. ..................................................................................... 13
VIII
3.1.2. Ubicación Geográfica y Política. ........................................................................ 13
3.1.3. Climatología. ........................................................................................................ 13
3.2. MATERIALES. .......................................................................................................... 14
3.2.1. Materiales de campo ........................................................................................... 14
3.2.2. Materiales de laboratorio ................................................................................... 15
3.2.3. Materiales de escritorio ...................................................................................... 16
3.3. METODOLOGÍA. ..................................................................................................... 17
3.3.1. Proceso de la conservación. ................................................................................ 17
3.3.2. Cuadros y fórmulas de conservación. ................................................................ 20
IV. RESULTADOS EXPERIMENTALES ........................................................................................ 26
V. DISCUSIÓN........................................................................................................................... 30
VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES............................................................................. 32
6.1. CONCLUSIONES ...................................................................................................... 32
6.2. RECOMENDACIONES ............................................................................................ 33
VII. RESUMEN .......................................................................................................................... 34
VIII. SUMMARY ........................................................................................................................ 35
IX. BIBLIOGRAFÍA ..................................................................................................................... 36
X. ANEXOS. FOTOS................................................................................................................... 38
IX
ÍNDICE DE CUADROS
CUADRO
TÍTULO
#
PÁGINA
#
1
Fórmula 1. Bovino 1.
24
2
Fórmula 2. Bovino 2.
25
3
Fórmula 3. Bovino 3.
27
4
Fórmula 4. Canino 1.
28
5
Fórmula 5. Canino 2.
29
6
Fórmula 6. Canino 3.
30
7
Fórmula 7. Bovino 1.
31
8
Fórmula 1. Felino 1.
32
9
Fórmula 8. Felino 2.
33
10
Evaluación
de
los
cadáveres animales en
conservación.
41
X
ÍNDICE DE FIGURAS
FIGURA
TÍTULO
#
1
PÁGINA
#
Rangos calificativos de los cadáveres en
conservación.
XI
39
INTRODUCCIÓN
La excelencia profesional comienza con un buen estudio. Encasillándonos en la
carrera de Medicina Veterinaria, no debemos descartar una de las materias más
importantes de la misma, la Anatomía Veterinaria.
Lo que el cerebro no sabe, los ojos no lo pueden ver. La ciencia avanza a pasos
agigantados y tanto docentes como estudiantes deben tratar de mejorar sus métodos
de enseñanza-aprendizaje. Enfocándonos en la materia de Anatomía Veterinaria, al
estudiarla se debe tocar, palpar los cadáveres animales para conocer y entender lo
más similar al tejido vivo, lo cual nos brinda esta técnica.
Estos cadáveres merecen sin duda el respeto, admiración y afecto, recordando que los
animales domésticos en muchas ocasiones son más nobles que los mismos humanos,
sin embargo, nos brindarán su maravillosa estructura anatómica.
Viviendo para
siempre en nuestros conocimientos.
En técnicas pasadas y aún desarrolladas, existe el uso del formol para mantener
tejidos u órganos por su gran poder de fijación, pero éste, tiene efectos secundarios
como irritación de mucosas, dificultades respiratorias, sensibilización alérgica y su
clasificación como probable carcinógeno humano. Por lo cual fue incluido por parte
del Instituto Nacional de Cancerología en dicha lista. (MUÑETON & ORTIZ, 2013)
(FONSECA, 2013) Dice que “Un ensayo realizado en ratas para estudiar el efecto de
la exposición al formaldehído sobre el riñón reveló que produce daño renal. Este
efecto adverso del formaldehído fue evaluado mediante la observación de cambios
morfológicos de la nefrona; pero también por la medición de diferentes marcadores
como la NAcetyl- b-(D)-Glucosaminidasa, que determina el daño en el túbulo
contorneado proximal, los anticuerpos antidesmina, que aumentan cuando existe daño
en los podocitos, la nefrina y podocina cuya distribución y expresión se ve alterada
cuando existe injuria en los podocitos y la membrana basal, así como la
desoxinucleotidil transferasa dUTP terminal, que determina la presencia de apoptosis
celular”.
La técnica de conservación de cadáveres a base de glicerina, no produce vapores
nocivos, su costo es bajo, de fácil adquisición, mantiene tejidos y órganos sin posibles
infecciones primarias, mantiene piezas anatómicas por largos periodos y al tacto, da
una sensibilidad muy parecida al tejido vivo.
La anatomía es uno de los saberes más antiguos de la medicina y su aprendizaje ha
sido pilar fundamental en la formación de los estudiantes y como tal, ha sido
abordada con muchos detalles.
Se considera que esta asignatura desarrolla
habilidades para solucionar problemas en un espacio tridimensional. (COELLO,
2013)
Proporciona un pilar inmenso en el entendimiento de otras materias de la carrera tales
como; fisiología, reproducción, terapéutica, cirugía, semiología, imageneología,
medicina interna, zootecnia, nutrición, oftalmología, neurología, cardiología,
traumatología, etc.
Esperando que la presente técnica de conservación sea utilizada por los docentes
universitarios, particularmente en la Práctica Veterinaria, que si bien en otros países
ya ha sido utilizada, en Latinoamérica se ha comenzado a desarrollarla; el caso más
cercano, como el primer taller de preparaciones anatómicas es el de la Facultad de
Ciencias Médicas de la Universidad de Guayaquil, anhelando lo mismo para la
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la misma universidad.
Con ese único propósito podemos culminar así, las innumerables dudas de los
estudiantes, brindando una excelencia académica y una mejor confianza en el
desarrollo profesional.
2
1.1. OBJETIVOS
1.1.1. OBJETIVO GENERAL.
Evaluar la conservación en cadáveres a base de glicerina para anatomía
práctica veterinaria.
1.1.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS.
1.1.2.1 Demostrar el protocolo y técnica, para la conservación de
cadáveres.
1.1.2.2 Determinar efectividad en la conservación de cadáveres a base de
glicerina.
1.2. VARIABLES.
1.2.1 VARIABLES DEPENDIENTES
Olor, color, textura, putrefacción de los cadáveres
1.2.2. VARIABLES INDEPENDIENTES
Glicerina en diversas fórmulas
1.3. HIPÓTESIS.
Hi: La conservación de cadáveres a base de glicerina es eficaz.
Ho: La conservación de cadáveres a base de glicerina no es eficaz.
3
II. MARCO TEÓRICO
2.1. Reseña histórica.
Desde hace miles de años y con otros propósitos que van desde lo religioso hasta
lo científico, el hombre ha trabajado, valiéndose de diversas metodologías la
preservación de cuerpos. (BELTRÁN, 2009)
Los comienzos de la momificación en Egipto se deben a las condiciones
climáticas y orográficas de sus tierras. En tiempos prehistóricos se sepultaba a
los muertos en la arena del desierto envueltos en pieles de animales o en esteras.
El ambiente, seco y ardiente, atraía el agua de los tejidos en los cuerpos, que así
se conservaban transformándolos en momias naturales. Cuando al principio de la
historia se empezaron a construir tumbas y a enterrar a los muertos en ataúdes,
dejaron de existir estas condiciones naturales de conservación y los cadáveres se
descomponían. Pero según las ideas religiosas del antiguo Egipto, para que se
diera vida en el más allá era indispensable la conservación del cuerpo terrenal,
por lo que se empezó a experimentar de qué forma se podía preservar de la
descomposición natural. (MUÑETON & ORTIZ, 2013)
Los Incas tuvieron victoria en la momificación de cadáveres humanos, pero los
procedimientos utilizados no son conocidos totalmente. Se piensa, sin embargo,
que los cuerpos fueron disecados antes del entierro, probablemente por el clima
caluroso y seco de la región. Para el efecto, los Incas reemplazaban los tejidos
blandos con arcillas y el esqueleto se guardaba con materiales de refuerzo y se
efectuaba la desecación por fuego, luego se curaba el cuerpo con humo, se ungía
con betún, bálsamo y otras resinas, procediéndose a rellenar el cuerpo con
hierbas de propiedades antisépticas.
En Babilonia, se dice que las conservaciones se efectuaban mediante la
inmersión de los cuerpos en miel; se supone que los restos de Alejando Magno
fueron preservados de esa forma.
4
En Brasil, el pueblo Jibaro y también en nuestro oriente (Ecuador), se sumergía
la cabeza – trofeo en agua con jugo de Chichipe y se producía la cocción de la
misma, que luego era presentada al humo, pero previamente a este paso se
extirpaba el cerebro por medio de incisiones en la región antero-posterior del
cráneo, en forma de Y invertida. En realidad lo único que preservaban era la
piel, por lo tanto no solo se extraía al cerebro, en realidad sacaban todo y
guardaban la piel.
En 1773, por dar otro caso, se encontró el cuerpo bien preservado de un
comandante naval mojado en ron.
En Siberia, se extraían el cerebro y las
vísceras, se llenaban las cavidades corporales con hierbas, musgos y sustancias
aromáticas y posteriormente se procedía a la congelación gradual del cuerpo.
(COELLO, 2013)
En el siglo XVIII las técnicas de conservación del cuerpo humano observaron un
importante desarrollo debido principalmente a los siguientes investigadores:
• Guillermo Hunter (1718-1783) utilizó el alcohol como medio de fijación y
conservación.
• Pierre Dionis (1643-1718) empleó el ácido tánico con el fin de evitar el
crecimiento de hongos.
• François Chaussier (1746-1828) se sirvió del sublimado o bicloruro de mercurio
para impedir la putrefacción y beneficiar la momificación.
• Johann Jacob Ritter (1714-1784) utilizó el arsénico.
• Karl Wilhelm Scheele (1742-1786) empleó la glicerina para la conservación de
cadáveres.
Con el tiempo, el salto definitivo se dio con el descubrimiento del formaldehído
(1859), por parte del científico alemán William Hoffman. Este es un gas de olor
perspicaz, soluble en agua, con eficaces acciones conservantes ya que tiene un
amplio espectro microbicida. Desgraciadamente se le reconoce como probable
carcinógeno humano, por lo cual fue incluido por parte del Instituto Nacional de
Cancerología en dicha lista. Así, a partir del hallazgo del formaldehído se
5
empieza a pensar en la conservación de cadáveres y piezas anatómicas con fines
didácticos y académicos.
Con este descubrimiento se produce una innovación en las técnicas de fijación de
tejidos, tanto que hasta la actualidad ha sido la base de la conservación y fijación
de piezas anatómicas tanto en las salas de disección en Facultades de Medicina
Humana y Veterinaria.
Actualmente, en las salas de disección se utiliza el formol como medio químico
básico de las incontables fórmulas de conservación de cadáveres y piezas
anatómicas, agrupado a otras sustancias como: la glicerina, el alcohol, el fenol, el
timol, el arsénico, el cloruro de sodio, el cloruro de zinc, el sulfato de potasio, el
hidrato de cloral, el ácido acético, el bicarbonato de sodio, por mencionar los más
importantes. A lo anterior se aumentan otras técnicas de conservación con
excelentes resultados. Entre ellas se debe mencionar al profesor Gunther Von
Hagens con su técnica de plastinación con base en el empleo de la acetona y la
silicona. (MUÑETON & ORTIZ, 2013)
6
2.2. Generalidades.
La anatomía es una ciencia descriptiva y objetiva, por ende, se debe poseer un
número adecuado de piezas anatómicas didácticas para el proceso enseñanzaaprendizaje, lo que hace necesario buscar técnicas de conservación que aseguren
una excelente docencia.
Una de estas soluciones está compuesta por vinagre blanco, glicerina, etanol,
citrato de sodio y verde malaquita. Los tejidos de los animales preparados con
esta solución conservan características muy similares al tejido vivo, durante la
disección no se aprecia diferencias con respecto a las piezas animales preparados
con soluciones que tienen formaldehído. (FONSECA, 2013)
Para impedir la Putrefacción, que lleva a la pérdida del cadáver es necesario
someter al mismo a ciertos procedimientos que modifican las propiedades
químicas de la materia orgánica, esto se logra por diversos medios ya sean físicos
o químicos.
A- Medios Físicos: son el frío (Congelación) y la Desecación.
B- Medios Químicos: se usan diversas sustancias químicas que efectúa una
fijación de los tejidos.
Las más generalmente usadas son el Formaldehído (formol) al 40%, Ácido
fénico (fenol), Nitrato potásico, Ácido Bórico, Alcohol 95º, Glicerina.
(CARRASCO, 1998)
7
Algunas técnicas empleadas por otros autores:
Solución conservadora:
Glicerina......................................................45 %
Acetato de potasio.......................................10 %
Agua............................................................40 %
Timol.............................................................5 %.
(CORREA, 2005)
En el desarrollo del presente trabajo se han combinado diversas técnicas, para lo
cual se realizó en primera instancia la aplicación por vía arterial (arteria carótida
común) de una mezcla en partes iguales de formol (10 L) y de etanol (10 L)
Diluidos en agua (80 L), previo lavado del lecho capilar (heparina y agua). Las
piezas se almacenaron por espacio de siete días, tras lo cual se efectuaron
disecciones en diferentes capas. Durante este tiempo (cuatro semanas) se
conservaron los cuerpos en recipientes con la misma mezcla. A continuación, las
piezas fueron sumergidas en glicerina (400 L) por un espacio de setenta días. En
último término, los cuerpos fueron retirados de la glicerina y se les realizó un
proceso de curado por medio del aire circundante, impidiendo los rayos solares y
la humedad por un tiempo de treinta días. MUÑETON, ORTIZ. (2013).
Tomado de (COELLO, 2013)
COMPUESTO
CANTIDAD
GLICERINA
6 LITROS
ACCIÓN
FIJADORA
Y
CONSERVADORA.
ALCOHOL 96%
CLORURO
BENZALCONIO
DE
(50%
4 LITROS
DESHIDRATA.
2 LITROS
ANTIMICÓTICO.
MEDIO LITRO
PARA
O
60%)
ESENCIA DE EUCALIPTO
MEJORAR
ENTORNO AMBIENTAL.
FORMALINA (100%)
MEDIO LITRO (O
MENOS)
8
FIJADORA.
EL
En la presente técnica de conservación se darán generalidades de los químicos por
usar.
2.3. Glicerina.
2.3.1. Descripción.
La glicerina se obtiene principalmente de aceites y grasas como producto
intermedio en la fabricación de jabones y ácidos grasos.
Puede ser
conseguida de fuentes naturales por fermentación, o por ejemplo melaza de
remolacha azucarera con la presencia de grandes cantidades de sulfito de
sodio. Sintéticamente, la glicerina se puede preparar mediante la cloración
y saponificación de propileno.
2.3.2. Datos Físico-Químicos.
Líquido siruposo, untuoso al tacto, incoloro o casi incoloro, límpido muy
higroscópico. Miscible con agua y etanol al 96%, poco soluble en acetona,
usualmente insoluble en aceites grasos y en aceites esenciales. Densidad:
1,256 - 1,264 g/ml.
Formula química: C3H8O3 (1, 2,3-propanotriol).
2.3.3. Propiedades y usos.
La glicerina es un agente deshidratante osmótico con propiedades
higroscópicas y lubricantes. Por vía oral es demulcente y laxante débil. Es
un buen disolvente de sustancias orgánicas y minerales. (ACOFARMA,
s.f.)
2.3.4. Acción en la conservación.
Fijadora y conservadora.
(COELLO, 2013)
9
2.3.5. Efectos secundarios.
Sus reacciones adversas corresponden principalmente a su acción
deshidratante. Por vía oral puede causar dolor de cabeza, náuseas, vómitos
y menos frecuentemente diarrea, sed, mareos y confusión mental. Se han
observado casos de arritmias cardíacas. Por vía intravenosa puede producir
hemolisis, hemoglobinuria e insuficiencia renal aguda. Por vía tópica o
rectal puede causar prurito e irritación. (ACOFARMA, n.d.)
2.4. Alcohol etílico 92%.
2.4.1. Datos físico-químicos.
Estado físico líquido, de apariencia incolora. Olor característico fragante.
Temperatura de ebullición: 78.3ºC.
Temperatura de Fusión: -114.0ºC.
Soluble en todas proporciones en Agua a 20ºC. Soluble en Cetonas,
Esteres, Éteres, Glicoles y otros Alcoholes.
Fórmula química: C2H6O
2.4.2. Propiedades y usos.
El etanol se utiliza industrialmente para obtener acetaldehído, vinagre,
butadieno, cloruro de etilo y nitrocelulosa, entre otros. Es utilizado como
disolvente en síntesis de fármacos, plásticos, lacas, perfumes, cosméticos,
etc. También se utiliza en mezclas anticongelantes, como combustible,
como antiséptico en cirugía, como materia prima en síntesis y en la
preservación de especímenes fisiológicos y patológicos. (UNAM, n.d.)
2.4.3. Acción en la conservación.
Microbicida. Deshidrata. (COELLO, 2013)
10
2.5. Ácido Acético.
2.5.1. Datos físico-químicos.
El ácido acético es un líquido higroscópico. Incoloro de olor acre. Punto
de ebullición: 118°C. Punto de fusión: 16.7°C. pH: 2.4. Solubilidad en
agua: miscible.
Fórmula Química: CH3COOH
2.5.2. Propiedades y usos.
Son conocidas sus propiedades como mordiente en soluciones fijadoras,
para la conservación de tejidos, donde actúa empíricamente como fijador
de nucleoproteínas, y no así de proteínas plasmáticas, ya sean globulares o
fibrosas.
Otros de sus usos en la medicina es como tinte en las colposcopias para
divisar la infección por virus de papiloma humano, cuando el tejido se tiñe
de blanco es positivo para infección de virus, a esta tinción se le conoce
como aceto blanco positivo.
También para usos de cocina como vinagre y también de limpieza.
(QUIMINET, s.f.)
2.5.3. Acción en la conservación.
Antimicótico. (COELLO, 2013)
2.6. Procesos post mortem.
Los cadáveres animales o humanos tienen etapas de muerte biológica:
Livideces: la sangre del espacio intersticial se dirige a las zonas declives,
esto sucede a las 3 – 24 horas.
Enfriamiento: Pierde capacidad de conservar la temperatura corporal
adaptando la del medio, proceso a las 12 horas en adelante.
Rigidez: Se basa en la retracción de las porciones más pequeñas del cuerpo,
empieza a las 3 horas, acabándose con la putrefacción.
11
Espasmo: Es la actitud que adopta el cuerpo por alguna patología previa.
Desaparece a las 24 horas con la putrefacción.
Deshidratación: Sequedad de las mucosas. (COELLO, 2013)
Se tomó en cuenta la etapa que llegó el cadáver animal, dependiendo de aquello
se realizaron los procedimientos adecuados para la conservación del mismo,
recalcando que en la etapa de putrefacción es muy difícil el trabajo de
conservación y hasta no recomendable por seguridad en la salud del personal que
realizó el trabajo.
12
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.
3.1.1. Localización del Ensayo.
Esta investigación se realizó en el laboratorio cosmético “DETERQUIM
S.A.” ubicado en la parroquia La Aurora km. 10.5, del Cantón Daule,
Provincia del Guayas.
3.1.2. Ubicación Geográfica y Política.
La parroquia La Aurora es parte de las parroquias urbanas del Cantón
Daule, ubicada en la Provincia del Guayas.
Latitud 01° 51' 58, 79" S
Longitud 79° 58' 55, 16" W
Altura 10 msnm. (RENSSNATURE, 2011)
3.1.3. Climatología.
3.1.3.1. Clima
La temperatura media anual en la Cabecera Cantonal es de 25.5ºC,
con variaciones anuales en la estación lluviosa o la seca,
registrándose una temperatura máxima absoluta promedio anual
de 33,5 C y una mínima absoluta promedio anual de 18.9ºC.
3.1.3.2. Precipitación
La precipitación anual es de 901.0 mm, con una media mensual
máxima de 64.8 mm.
3.1.3.3. Humedad
El área geográfica tiene un alto índice de evaporación y la
humedad relativa registra valores del orden del 80%, que se
incrementa en temporada lluviosa.
13
3.1.3.4. Evaporación
La evaporación anual es de 1647.0 mm, presentando su máximo
anual de (8.2 mm).
3.2. MATERIALES.
3.2.1. Materiales de campo
3.2.1.1. Biológicos
Cadáveres animales de la ciudad de Guayaquil
3.2.1.2. Físicos
Guantes de goma #8
Guantes de examinación
Botas plásticas
Cofia
Casco de protección
Mandil
Jeringas
Agujas # 20
Torniquete elástico
Fundas plásticas
Cinta de empaque
Gaveta de plástico
Mascarilla
3.2.1.3. Químicos
Alcohol antiséptico
Ketamina
Acepromacina
Pentotal sódico.
14
3.2.2. Materiales de laboratorio
3.2.2.1. Físicos
Guantes de examinación
Guantes de goma #8
Cofia
Botas plásticas
Aguja # 20
Nylon 0.25 mm
Pulverizador capacidad 10 litros
Mesa plástica
Tachos plásticos capacidad 20 litros
Tachos plásticos capacidad 30 litros
Tachos plásticos capacidad 50 litros
Fundas de desechos biológicos
Mandil
Mascarillas
Soga
Cámara fotográfica
3.2.2.2. Químicos
Glicerina
Ácido acético
Alcohol Etílico 92%
Agua
Cloruro de sodio
Formol 38%
3.2.2.3. Materiales de disección
Hoja de bisturí #22.
Mango de bisturí #4.
Tijera Metzembaum recta.
Tijera Mayo recta.
15
Pinza anatómica.
Pinza Kelly curva.
Pinza Kelly recta.
Pinza porta aguja
3.2.3. Materiales de escritorio
Laptop
Impresora
Hojas de papel A4
Esferos
Resaltadores
3.2.4. Personal
Egresado
1 ayudante
16
3.3. METODOLOGÍA.
Esta investigación se realizó con el método experimental.
Para la realización del presente trabajo se conservaron 3 bovinos nonatos
procedentes del camal municipal de la ciudad de Guayaquil, 3 caninos con
traumas y/o enfermedades terminales que se le practicó la eutanasia y 2 felinos
adultos con similares características. Con tiempo de conservación de 4 meses.
3.3.1. Proceso de la conservación.
Se procedió a realizar en las siguientes etapas.
3.3.1.1. Recepción.
Para la recepción de los bovinos nonatos procedentes del camal
municipal de la Ciudad de Guayaquil, se pidió previamente el
permiso correspondiente para poder ingresar al faenamiento de los
bovinos y así poder elegir el de mejor características refiriéndose
al peso.
Una vez elegido se lo introdujo en una funda plástica, sellado con
cinta de empaque para su transporte en una gaveta plástica.
Para la recepción de los caninos se tuvo la ayuda de la
“Veterinaria Zamora” que me brindó la facilidad de conseguir un
animal con trauma severo en la región lumbar por atropellamiento
sin dueño específico.
También un can con distemper canino o
enfermedad de Carré en etapa terminal que se le practicó la
eutanasia. Por ultimo dos felinos de diferentes patologías que se
les practicó la eutanasia.
En el norte de la Cuidad de Guayaquil se obtuvo al tercer canino
con caquexia sin dueño específico.
Todos los animales que se transportaron hacia el laboratorio donde
se practicó la conservación de animales se tuvieron todos los
cuidados biológicos, introduciéndolos en fundas plásticas bien
selladas con cinta de empaque y en gaveta tanto para el cuidado
del personal como de otros animales domésticos.
17
3.3.1.2. Sangrado.
Para todo animal que se conservó se le hizo un corte parasagital
del cuello para encontrar la vena yugular externa, de ambos lados,
se cortó longitudinalmente aproximadamente 2 centímetros en los
bovinos y caninos, 1 centímetro en los felinos.
En los bovinos y caninos con la ayuda de una soga de unos 5
metros de longitud se hizo un nudo en la articulación tibio-tarsiana
así colgándolos y procedió a hacer el sangrado, recolectando la
misma en un recipiente de plástico de capacidad 20 litros.
La sangre tiende a acumularse en la región craneana por la
posición en que se tenía al animal, por ende en lapsos de 3 a 5
minutos se movía la cabeza hacia arriba y los lados tratando de
expulsar la sangre lo más posible.
No se practicó el lavado intraarterial con agua destilada y heparina
para evitar la existencia de coágulos, por falta de éxito en su
aplicación dicha por distintos autores.
El tiempo estimado de sangrado demoró de 30 a 45 minutos.
Con agua potable se limpió la sangre de la piel del animal.
La sangre fue expulsada por el drenaje.
3.3.1.3. Inyección.
Una vez realizado el sangrado, con nylon 0.25 mm (hilo de
pescar) se hizo dos nudos simples tanto en la parte superior e
inferior del corte longitudinal de la vena yugular externa derecha e
izquierda.
Con la ayuda del equipo de disección se procedió a encontrar el
paquete vasculonervioso del cuello conformado por la arteria
carótida común o primitiva, la vena yugular interna y el décimo
nervio par craneal o neumogástrico.
18
Se llenó con la solución conservadora el pulverizador de
capacidad de 10 litros, este ya modificado con una aguja #20
insertada en la manguera.
La aguja era insertada en la arteria carótida común en dirección
craneal y sujetada con nylon dándole un nudo simple o
sujetándolo con una pinza Kelly.
Una vez sujeta la aguja se bombeó lo más posible la solución
verificando que no se escape la misma por los cortes
longitudinales de las venas yugulares externas
Luego de unos 15 minutos que era efectiva la introducción de la
solución repetimos el procedimiento introduciendo la aguja con el
pulverizador en la vena yugular externa en dirección caudal del
lado opuesto, previamente haciendo los nudos simples con la
ayuda del nylon en la arteria carótida común que ya se hizo el
procedimiento.
La cantidad de solución introducida al animal dependía del peso y
tamaño del mismo.
Para verificar el éxito de la introducción de la solución se procedió
a hacer un pequeño corte con una hoja de bisturí de unos 5
centímetros aproximadamente a nivel del miembro posterior
llegando al musculo más superficial y mediante el olfato
determinar su llegada.
También se podía determinar la efectividad de la introducción de
la solución de conservación, cuando esta salía levemente por las
fosas nasales del animal.
3.3.1.5. Disección de piel.
Se extrajo la piel del cadáver luego de dos a tres horas de hacer la
inyección de la fórmula conservadora.
19
3.3.1.6. Inmersión.
Consistió en sumergir el cadáver en la solución conservadora, en
un lugar fresco, sin exposición al sol.
3.3.1.7. Evisceración.
Se retiró las vísceras de los cadáveres luego de dos semanas de
estar en inmersión, esto se realizó para conservar y guardar los
órganos para su futuro estudio. Al cadáver se lo mantiene en
inmersión nuevamente.
3.3.2. Cuadros y fórmulas de conservación.
3.3.2.1. Cuadro 1. Fórmula 1. Bovino 1
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
45
ALCOHOL POTABLE 92%
45
ÁCIDO ACÉTICO
10
TOTAL
100
3.3.2.2. Cuadro 2. Fórmula 2. Bovino 2:
Para la siguiente fórmula se añadió 2000 g de sal (NaCl) en 6 litros
de agua. Para poder sacar su porcentaje de concentración se usó la
fórmula P/v.
% 𝑚𝑎𝑠𝑎/𝑣𝑜𝑙 =
masa de soluto (g. )
. 100
volumen de disolucion (mL)
20
Convirtiendo;
% 𝑁𝑎𝐶𝑙/𝐻2𝑂 =
2000 g NaCl
. 100 = 33.3 %
6000 mL H2O
Ahora tenemos una solución salina al 33.3% añadida a la fórmula
de concentración.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
33.9
ALCOHOL POTABLE 92%
33.9
ÁCIDO ACÉTICO
5.1
SOLUCIÓN NACL+H2O 33.3%
27.1
TOTAL
100
3.3.2.3. Cuadro 3. Fórmula 3. Bovino 3.
Para la siguiente fórmula se añadió 1000 g. de sal (NaCl) en 6 litros
de agua. Para poder sacar su porcentaje de concentración se usó la
fórmula P/v.
% 𝑚𝑎𝑠𝑎/𝑣𝑜𝑙 =
masa de soluto (g)
. 100
volumen de disolucion (ml)
21
Convirtiendo;
% 𝑁𝑎𝐶𝑙/𝐻2𝑂 =
1000 g NaCl
. 100 = 16.67 %
6000 ml H2O
Ahora tenemos una solución salina al 16.67% añadida a la fórmula de
concentración. Este cambio de salinidad se lo hizo para demostrar si
tiene alguna variación de mejora en la conservación del cadáver.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
35.1
ALCOHOL POTABLE 92%
35.1
ÁCIDO ACÉTICO
5.3
SOLUCIÓN NACL+H2O 16.7%
24.5
TOTAL
100
3.3.2.4. Cuadro 4. Fórmula 4. Canino 1.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
38.8
ALCOHOL POTABLE 92%
38.8
ÁCIDO ACÉTICO
5.9
FORMOL
0.9
AGUA
15.6
TOTAL
100
22
3.3.2.5. Cuadro 5. Fórmula 5. Canino 2.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
34.8
ALCOHOL POTABLE 92%
34.8
SOLUCIÓN NACL+H2O 16.7%
24.3
ÁCIDO ACÉTICO
5.2
FORMOL
0.9
TOTAL
100
3.3.2.6. Cuadro 6. Fórmula 6. Canino 3.
Para la fórmula 6, en principio se escogió la fórmula 5 que contiene
formol, se lo conservo por 168 horas. Luego de la espera se retiró la
fórmula 5 y se procedió a conservar con la fórmula 6. Verificando si
el formol al inicio de la conservación nos daba un mejor resultado.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
37.7
ALCOHOL POTABLE 92%
37.7
ÁCIDO ACÉTICO
5.7
AGUA
18.9
TOTAL
100
23
3.3.2.7. Cuadro 7. Fórmula 7. Bovino 1.
Luego de haber conservado al bovino 1 en la fórmula 1, se procedió a
realizar el glicerinado.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
81.8
ALCOHOL POTABLE 92%
13.6
ÁCIDO ACÉTICO
4.6
TOTAL
100
3.3.2.7. Cuadro 8. Fórmula 1. Felino 1.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
45
ALCOHOL POTABLE 92%
45
ÁCIDO ACÉTICO
10
TOTAL
100
24
3.3.2.7. Cuadro 9. Fórmula 8. Felino 2.
Este cadáver no se realizó la inyección, solo la inmersión del
cuerpo.
SUSTANCIA
PORCENTAJE
GLICERINA
40
ALCOHOL POTABLE 92%
50
ÁCIDO ACÉTICO
10
TOTAL
100
25
IV. RESULTADOS EXPERIMENTALES
La presente investigación consistió en hallar la mejor fórmula conservadora de
cadáveres animales a base de glicerina para la práctica veterinaria, por medio de
estrategias de observación y experimentación progresiva y así, poder brindarla a los
docentes y estudiantes de las diferentes Facultades de Veterinaria una herramienta
para un mejor proceso enseñanza-aprendizaje, obteniendo los siguientes resultados:
4.1. La fórmula conservadora 1 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. El olor sui géneris del alcohol se percibe
levemente, con un tiempo determinado de presencia y trabajando al cadáver
conllevó a una leve molestia en la mucosa respiratoria.
4.2. La fórmula conservadora 2 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. La solución de NaCl al 33.3% añadida a
la fórmula no desempeñó un papel relevante ni en la conservación ni en la
textura del cadáver, solo se percibió menos el olor del alcohol potable dando
menos molestia a nivel de las mucosas respiratorias.
4.3. La fórmula conservadora 3 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. Al igual que en la fórmula 2 la solución de
NaCl al 17.6% añadida a la fórmula no desempeñó un papel relevante ni en la
conservación ni en la textura del cadáver.
4.4. La fórmula conservadora 4 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. A pesar de tener un porcentaje mínimo, el
uso del formol se percibió afectando las mucosas tanto oculares como de vías
respiratorias.
4.5. La fórmula conservadora 5 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. A pesar de tener un porcentaje mínimo, el
26
uso del formol se percibió afectando las mucosas tanto oculares como de vías
respiratorias. La solución de NaCl al 16.7% añadida a la fórmula, no desempeñó
un papel relevante ni en la conservación ni en la textura del cadáver, esto
comparándolo con la fórmula conservadora 4.
4.6. La fórmula conservadora 6 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. Luego de las 168 horas de conservación
con la fórmula 5, se la retiró y se usó la fórmula 6, esta a pesar de ya no tener
formol se mantiene el olor del mismo. Esperando tener algún cambio positivo en
la conservación usando en primera instancia el uso del formol para luego
retirarlo, se observó que no desempeñó un papel relevante ni en la conservación
ni en la textura del cadáver.
4.7. La fórmula conservadora 7 dio buenos resultados, no se visualizó estado de
putrefacción ni presencia de hongos. Luego de haber conservado el cadáver con
la fórmula 1, se procedió a realizar el glicerinado, dándole un mayor porcentaje
de glicerina a la fórmula, la textura se mantiene y el olor del alcohol potable
disminuye considerablemente.
4.8. La conservación del felino 1 se utilizó la fórmula 1, en este no hubo cambio en
la formulación, solo se experimentó la complejidad de realizar la inyección de
la fórmula conservadora en el cadáver por el pequeño calibre de los vasos
sanguíneos. A pesar de la dificultad, no se visualizó estado de putrefacción ni
presencia de hongos, aunque hubo rigidez en articulaciones.
4.9. La técnica de inmersión del felino 2 sin la previa inyección de la formulación
intraarterial, no dio buenos resultados, aunque no se visualizó presencia de
hongos, se percibió olores fétidos, rigidez en músculos y articulaciones, y
estado de putrefacción en vísceras.
27
4.10. Rangos calificativos de los cadáveres de acuerdo a la formulación aplicada:
figura 1.
Rangos calificativos de los cadáveres en conservación.
4,5
4
3,5
3
2,5
MUY BUENO
2
BUENO
REGULAR
1,5
MALO
1
0,5
0
4.10. Evaluación de los cadáveres animales que estuvieron en conservación.
En el
cuadro 10 se determinó la efectividad de las diferentes fórmulas, que se evaluó
juzgando con el percibir, observar y tocar su textura.
28
Cuadro 10.
Evaluación de los cadáveres animales en conservación.
BUENA
MALA
NO SE OBSERVA
SE OBSERVA O
OLOR
OLOR
AL
AL
CONSERVACIÓN
CONSERVACIÓN
O PERCIBE
PERCIBE
ACEPTABLE
DESAGRADABLE
TACTO
TACTO
TRAS 4 MESES EN
TRAS 4 MESES EN
PUTREFACCIÓN
PUTREFACCIÓN
TIENE
NO TIENE
INMERSIÓN
INMERSIÓN
BUENA
BUENA
TEXTURA
TEXTURA
FORMULA 1
X
X
FORMULA 2
X
X
X
X
FORMULA 3
X
X
X
X
FORMULA 4
X
X
X
X
FORMULA 5
X
X
X
X
FORMULA 6
X
X
X
X
FORMULA 7
X
X
FORMULA 8
X
X
X
X
29
X
X
X
X
V. DISCUSIÓN
5.1. En el presente trabajo se realizó la conservación de cadáveres empleando
formol como primera instancia para fijar, tal como menciona COELLO.
(2013).
y MUÑETON, ORTIZ. (2013). pero, comparando con los
cadáveres que no se usó el formol, no se observó una diferencia
significante en la conservación, ya que el alcohol cumple la función
fijadora y antimicrobiana.
5.2. El lavado intraarterial con heparina y agua que menciona MUÑETON,
ORTIZ. (2013). no posee significancia, ya que en el presente trabajo no
se presentaron coágulos de sangre luego del sangrado, tampoco hubo
impedimento que la fórmula de conservación llegue a todo el cuerpo del
cadáver. Siendo innecesario.
5.3.
El verde malaquita mencionado por FONSECA-MATHEUS. (2013).
que se lo utiliza como colorante verde activo frente a una gran variedad
de parásitos externos, agentes patógenos como hongos, bacterias y su
principal aplicación es para el tratamiento contra parásitos protozoos de
agua dulce.
Puede ser de igual función que las que cumple el Ácido
Acético como antimicótico y el alcohol etílico como bactericida, aunque
su función contra parásitos protozoos de agua dulce puede ser de gran
ayuda, recalcando que microscópicamente no se han observado
parásitos, protozoos ni bacterias.
5.4. El medio litro de esencia de eucalipto mencionado por (COELLO).
2013. Para mejorar el entorno ambiental, es de gran ayuda para evitar
las leves afecciones en mucosas respiratorias que ocasiona el alcohol
etílico en trabajos de tiempo extendido en la conservación, pero, siendo
este un poco costoso no brindaría la ventaja que la presente fórmula de
conservación sea económica.
30
Para resolver este inconveniente con
agregarle un porcentaje de agua a la fórmula disipamos un poco el olor
del alcohol.
5.5. CORREA. (2005). usa el citrato de sodio como conservante y
antimicrobiano, donde este principio sería óptimo agregarlo en la
fórmula de conservación para asegurarnos el no crecimiento microbiano
de la fórmula conservadora de cadáveres. En el presente trabajo no se
encontró diferencia al agregarle cloruro de sodio en sus diferentes
concentraciones a la fórmula de conservación.
31
VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
6.1. CONCLUSIONES
6.1.1. Podemos concluir que, una fórmula conservadora con 45% glicerina, 45%
alcohol etílico 92ᵒ y ácido acético 10% por vía intraarterial previamente
realizado el sangrado y poniendo en inmersión al cadáver ya extraída la
piel aproximadamente de 7 a 14 días, para luego usar una fórmula
conservadora con 60% glicerina, 20% alcohol etílico, 15% agua destilada
y 5% de ácido acético da muy buenos resultados en la conservación de
cadáveres animales.
6.1.2. Pueden ser varias las sustancias químicas para conservar cadáveres
animales, pero, en principio deben tener, compuestos; higroscópicos,
desinfectantes tantos bacterianos como virales, fijadores y antimicóticos.
6.1.3. Solo la inmersión de cadáveres animales o piezas anatómicas no es
suficiente para la conservación de los mismos, se debe aplicar la solución
conservadora por vías sanguíneas para su efectividad.
6.1.4. No es necesario el uso del formol para la conservación de cadáveres, no
hubo diferencia alguna en las que se lo usó y en las que no. Recordando
que es un carcinógeno humano mencionado por el Instituto Nacional de
Cancerología.
32
6.2. RECOMENDACIONES
6.2.1. El formol, como agente nocivo para la salud humana y no teniendo
significancia en la conservación de cadáveres, recomiendo evitarlo en
todo momento.
6.2.2. Concienciar a docentes y estudiantes de las Facultades de Veterinaria, la
importancia de la práctica con cadáveres animales para un seguro éxito
profesional.
6.2.3. Realizar la evisceración de los cadáveres unos días después de la inyección
de la fórmula de conservación, para poder tener estudio de todos los
órganos del animal y disfrutar de su anatomía.
6.2.3. Mantener al cadáver en inmersión luego de cada estudio. No dejarlo
exponer al sol ni al ambiente por varios días.
33
VII. RESUMEN
En la parroquia la Aurora, cantón Daule, provincia del Guayas, se realizó la presente
investigación que, por medio de estrategias se emplearon diferentes fórmulas
conservadoras.
Los objetivos de este trabajo fueron: Demostrar el protocolo y
técnica, para la conservación de cadáveres y determinar efectividad en la
conservación de cadáveres a base de glicerina.
Se conservaron 8 animales; tres bovinos nonatos, tres caninos y dos felinos variando
su formulación. Se usaron principalmente tres sustancias químicas; glicerina, alcohol
etílico 92% y ácido acético.
A pesar de los varios cambios en los porcentajes de las diferentes sustancias y/o
añadiendo formol al comienzo de su conservación o usando NaCl no se obtuvo
mejoría en el procedimiento.
Concluyendo que, una fórmula conservadora con 45% glicerina, 45% alcohol etílico
92° y ácido acético 10% por vía intraarterial previamente realizado el sangrado y
poniendo en inmersión al cadáver ya extraída la piel aproximadamente de 7 a 14 días,
para luego usar una fórmula conservadora con 60% glicerina, 20% alcohol etílico,
15% agua destilada y 5% de ácido acético dio muy buenos resultados.
34
VIII. SUMMARY
In the parish The Aurora, Daule canton, Guayas Province, the present investigation
was realized that, through strategies different formulas are employed conservative
The objectives of this study were: to demonstrate the protocol and technique for the
preservation of corpses and to determine effectiveness in preserving corpses glycerin
based conservation.
Were retained at eight animals; three unborn cattle, three dogs and two cats varying
its formulation. Three chemicals were mainly used; glycerin, 92% ethyl alcohol and
acetic acid.
Despite several changes in the percentages of the different substances and / or adding
formalin preservation start using NaCl or no improvement was obtained in the
procedure.
Concluding that, a conservative formula with 45% glycerin, 45% ethyl alcohol 92o
and 10% acetic acid previously performed intraarterially bleeding and putting the
corpe in immersion already extracted the skin approximately 7 to 14 days, and then
use a conservative formula with 60% glycerol, 20% ethyl alcohol, 15% distilled water
and 5% acetic acid gave very good results.
35
IX. BIBLIOGRAFÍA
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AUTONOMA DE MEXICO. HOJA DE SEGURIDAD XII, ETANOL.:
http://www.quimica.unam.mx/IMG/pdf/12etanol.pdf
37
X. ANEXOS. FOTOS.
Foto 1. Bovino 1. Paquete vasculonervioso del cuello y vena yugular externa. Antes
de realizar el sangrado.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 2. Bovino 3. Tiempo transcurrido de conservación, 4 meses.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
38
Foto 3. Bovino 3. Extremidad posterior sin rigidez, buena textura muscular. Tiempo
transcurrido de conservación, 4 meses
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 4. Bovino 2. Tiempo transcurrido de conservación, 4 meses.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
39
Foto 5. Bovino 2. Extremidad posterior. Sin presencia de putrefacción. Luego de 4
meses de conservación.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 6. Bovino 1. Tiempo transucrrido de conservación. 4 meses.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
40
Foto 7. Bovino 1. Extremidad posterior. Sin presencia de putrefacción. Luego de 4
meses de conservación.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 8. Canino 2. Tiempo de conservación. 4 meses. Sin presencia de putrefacción.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
41
Foto 9. Canino 2. Miembro anterior y cuello. Tiempo de conservación, 4 meses.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 10. Felino 2. Tiempo de conservación 2 meses. Presenta rigidez en miembros y
olores fétidos de putrefacción.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
42
Foto 11. Felino 2. Miembro anterior, cabeza y cuello. Presenta rigidez en
extremidades, tiempo de conservación, 2 meses.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 12. Sangrado. Corte longitudinal de vena yugular externa.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
43
Foto 13. Sangrado del cadáver.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
44
Foto 14. Introducción de la solución conservadora vía intraarterial con el
pulverizador capacidad 10 litros.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 15. Disección en cuello.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
45
Foto 16. Fijación de la aguja en la arteria carótida primitiva para la introducción de la
fórmula conservadora.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 17. Extracción de piel previa inmersión del cadáver.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
46
Foto. 18. Canino 3. Disección cuello y miembro anterior, luego de 4 meses de
conservación. Presenta buena textura muscular.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
Foto 19.canino 3. Disección del plexo braquial.
Vivar-García. (2014). Trabajo de Titulación.
47