XVI FÓRUM DE CIENCIA Y TÉCNICA SEGUNDA ETAPA CIENFUEGOS, 2006-10-20

XVI FÓRUM DE CIENCIA Y TÉCNICA SEGUNDA ETAPA
Autores: Lic. Yadira González Suárez.
Dra. Dayamí García Torres.
CIENFUEGOS, 2006-10-20
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Introducción
El autoanalizador químico Hitachi 902 de tecnología japonesa es utilizado para reportar datos de test
de muestras de varios fluidos corporales para una amplia gama de analitos. Utiliza reactivos producidos
por la Roche diagnóstics, Mannhein, Alemania. Realiza 200 test fotométricos por hora. Tiene
capacidad para 35 muestras y 25 posiciones para calibradores, controles y soluciones de lavado.
El operador, ya sea profesional ó técnico que trabaja en el equipo debe estar capacitado en cuanto a:
• Manejo de operaciones necesarias para el trabajo diario en el autoanalizador.
• Calibración y control de la calidad de los analitos.
• Programación de los analitos en existencia.
• Programación de nuevos analitos ó modificación de los existentes.
• Guía de valores de controles (Elitroles), de Roche normal y patológico, así como el pool.
• Modelos de control de calidad interna.
• Modelos de estadística.
Dada la falta de entrenamiento disponibles para el personal, en cuanto a técnicas automatizadas, la
necesidad de implantar nuevas técnicas rápidas y confiables, la escasez de reactivos Roche se hace
necesario una guía, cuyo contenido abarque todos los aspectos antes mencionados así como respuestas
a las problemáticas que con mayor frecuencia se presentan en el trabajo diario.
Propósito
Hacer extensivo el uso de las programaciones, con reactivos cubanos, a otros sitios que utilicen el
autoanalizador químico y que han tenido que interrumpir el trabajo por el déficit de reactivos de la
Roche así como desconocimiento de operaciones fundamentales del mismo.
La utilidad y necesidad de un folleto de este estilo, organización y contenido han sido incrementados
por:
− La implementación en Laboratorios Clínicos de atención Secundaria de Salud de
autoanalizadores Hitachi 902.
− La falta de entrenamiento del personal profesional y técnico en cuanto a técnicas automatizadas
de química clínica.
− La escasez de reactivos de Roche (Reactivos comerciales distribuidos para el autoanalizador),
lo que hace necesario sustituir estos por los reactivos de la Finlay.
− La necesidad de implementar nuevas técnicas que sean más rápidas y confiables.
− La necesidad del conocimiento del manejo de calibradores y controladores en el laboratorio.
− Modelaje del control de calidad interno en cada Dpto. de Química automatizada para brindar
confiabilidad en los resultados.
− Llevar el control del consumo y necesidades de los reactivos a través del modelaje de
estadísticas diarias.
El contenido de este folleto esta organizado para responder a las problemáticas que con mas frecuencia
se le presentan a los profesionales y técnicos que trabajan con autoanalizadores Hitachi 902, en cuanto
a operaciones en el equipo, calibraciones de técnicas, como manejar los valores de referencia en cada
analito, la disposición de reactivos en el equipo, y como llevar el control de calidad interno y el registro
de los K factores en las calibraciones.
Los datos brindados aquí fueron obtenidos en las condiciones de trabajo de la Sección de Química
automatizada del Laboratorio Clínico Central del Hospital GAL de la provincia de Cienfuegos,
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con la colaboración del Dr. Celso Cruz del Laboratorio Clínico del hospital “Hermanos Ameijeiras”,
los compañeros del Dpto. de Investigaciones y el Dpto. Comercial de la EPB “Finlay”, empresa que
produce los reactivos para el sistema de salud cubano, así como la aprobación de Dr. Ariel Colina
Rodríguez (Director Nacional de especialidades del MINSAP).
Objetivo
1.- Confeccionar una guía metodológica que facilite el trabajo en autoanalizadores Hitachi 902.
Partes de la guía
1. Procedimientos generales.
• Operaciones de inicio del equipo.
• Calibración
• Control.
2. Procedimientos específicos.
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GUIA DE OPERACIÓN
DIARIA PARA EL
AUTOANALIZADOR
HITACHI 902
Autores: Lic. Yadira González Suárez.
Dra. Dayamí García Torres.
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Índice.
Guía de operación diaria.
Preparación de reactivos.
Posiciones de reactivos
Posiciones en el plato de muestras.
Calibradores y controles
Guía de analitos y valores de referencia
Modelo para anotar programaciones
Modelo de control de la calidad
Modelo de estadísticas.
Tabla de programaciones de analitos para EPB Finlay.
Bibliografía.
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Guía de operación diaria.
1- INICIO DEL DIA.
1.1- COMPROBAR EL VOLUMEN DE HITERGENT: que se encuentra en posición 40 del Plato
de reactivos. Rellenar el frasco.
1.2- COMPROBAR EL VOLUMEN DE MULTICLEAN: que se encuentra en posición 39 del
plato de Reactivos. Rellenar el frasco. Poner copilla con Multiclean en posición W1 y W2 del plato de
muestras.
1.3-COMPROBAR EL SUMINISTRO DE AGUA DESIONIZADA.
1.4- COMPROBAR EL NIVEL DEL FRASCO DE DESECHOS: Eliminar desechos de ser
necesario.
1.5-COMPROBAR LOS DISQUETES: Revisar que en el drive 1 este el disquete de parámetros y
que en la drive 2 este el disquete de datos.
1.6- COMPROBAR EL SUMINISTRO DE PAPEL.
1.7- ENCENDER EL ANALIZADOR: Colocar en On el interruptor localizado en la parte frontal
derecha del analizador.
En este paso el equipo se toma 7 min., al menos, para cambiar el agua del baño de incubación, resetear
todos los mecanismos y chequear todos los parámetros de control.
Si se genera una ALARMA revisar el folleto de ALARMAS o ver (alarmas en el manual del
operador).
En caso de que el analizador este encendido por más de 24 horas se debe de realizar el Cambio de agua
de Incubación Manual al inicio del día según el siguiente procedimiento:
1. Tocar MANTENIM en la pantalla inicial HOME.
2. Tocar AGUA INCUB. En la pantalla Mantenimiento.
3. Tocar START, para iniciar el procedimiento.
4. Tocar STATUS. Cuando el procedimiento finaliza, la pantalla STATUS muestra STAND BY.
5. Tocar Pg Up dos veces para regresar a la pantalla Mantenimiento.
1.8- REALIZAR LAVADO DE CELDAS.
Este forma parte del mantenimiento diario del equipo. Se lleva a cabo en él la limpieza de celdas,
pipeta de muestras, pipeta de reactivos, unidad de lavado y agitador.
1. Se debe colocar copilla con Multiclean en posición W1 en plato de muestras.
2. Rellenar el frasco con Multiclean que se encuentra en posición 39 del plato de reactivos.
3. Seleccionar MANTENIMIENTO desde el menú HOME.
4. Seleccionar WASH. Elegir ALL si incluye sistema ISE, o CELL, si es solo celdas.
5. Presionar START. Este procedimiento dura aproximadamente 15 a 20 min.
1.9- REALIZAR CELL BLANK: (UNA VEZ POR SEMANA).
Este procedimiento se realiza para actualizar los valores de Blanco de celda.
1. Seleccionar MANTENIMIENTO, desde el menú HOME.
2. Seleccionar CELL BLANK y pulse START.
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El equipo realizara un blanco en las 48 celdas de reacción. Analizar la impresión de los resultados, las
lecturas de la primera celda no debe superar 13 000 a ninguna de las longitudes de onda, y la diferencia
entra las lecturas debe ser siempre inferior a +/ - 800.
Salvar el CELL BLANK en:
1. Ir a pantalla MANTENIMIENTO y tocar PARÁMETROS, MODO: WRITE, tocar
START.
1.10- COMPROBACION DEL FOTOMETRO:
Se debe hacer diariamente. Este procedimiento verifica que la emisión de la lámpara del fotómetro este
en el nivel aceptable. Verificar que el reporte de la impresión da valores de longitud de onda primaria y
secundaria menores de 13 000. Verificar que la diferencia de valores de Absorbancia entre los datos
actuales y anteriores no debe ser mayor de 500 para cada una.
1. Tocar MANTENIMIENTO desde pantalla HOME.
2. Tocar PHOTOMETER.
3. Tocar START.
4. Tocar STATUS para observar si se emite alguna alarma, hasta que el equipo caiga en STAND
BY.
5. Tocar dos veces PgUp para regresar a Mantenimiento.
2- BORRAR RESULTADOS DEL DISCO DE DATOS.
2.1- ELIMINACION DE RESULTADOS DE MUESTRAS DE RUTINA:
1. Tocar MONITOR.
2. Tocar SAMPLE RUTINE y seleccionar DELETE.
3. Ingresar el número de secuencia 1 hasta 400 y dar aceptar.
4. Presionar START, START.
5. Tocar Pg Up, PgUp hasta entrar en pantalla MONITOR.
2.2- ELIMINACION DE RESULTADOS DE MUESTRAS DE URGENCIA O STAT:
1. Tocar STAT y seleccionar DELETE.
2. Ingresar el número de secuencia 1 hasta 50 y dar aceptar.
3. Presionar START, START.
4. Tocar Pg Up, PgUp hasta entrar en pantalla MONITOR.
2.3- ELIMINACION DE RESULTADOS DE MUESTRAS DE CONTROLES:
1. Tocar CONTROL SAMPLES y seleccionar DELETE.
2. Ingresar el número de secuencia 1 hasta 5 y dar aceptar.
3. Presionar START, START.
4. Tocar Pg Up, PgUp hasta entrar en pantalla MONITOR.
3- COMPROBACION DEL VOLUMEN DE REACTIVOS:
Se confirma mediante la impresión, lo siguiente:
• Canales activados de analitos.
• Volumen de reactivo disponible expresado en cantidad de determinaciones disponibles para
cada analito.
Se sigue el siguiente procedimiento:
1. Tocar BATCH MODE desde pantalla de inicio HOME.
2. Tocar OK/?, tocar IMPR REAGENT.
Luego determinar lo siguiente:
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•
•
Qué analitos se van a dejar activados.
Cuales analitos se van a inactivar, para activar otros de pruebas especiales que coincidan en la
misma posición en el plato de reactivos.
3.1- ANOTAR LOS ANALITOS QUE SE ACTIVARAN, LOS QUE SE VAN A ACTIVAR
TEMPORALMENTE.
(Los datos del # de canal de cada analito y posición del plato de reactivos, verificarlos en el file
preparado para estos propósitos)
Ejemplo:
-Tengo los reactivos de calcio y de IgM e la misma posición en el plato de reactivos o sea:
El R1 de Calcio esta en posición 16; al igual que el R1 de IgM.
El R2 de Calcio esta en la posición 17, al igual que el R2 de IgM.
-Extraigo los reactivos de calcio del plato de reactivos y ubico en las mismas capacidades los de IgM.
- Busco en el File de datos de Calibraciones y Controles el # de canal asignado para el Calcio y el IgM,
ellos son el 10 y el 30 respectivamente.
1. Por tanto voy a la pantalla de inicio y tocar PARÁMETROS.
2. Poner en No. Canal: 10 y doy aceptar.
3. Poner en Parámetro: 58
4. Poner en Contenido: 0 (Este tiene el # de tecla asignado al analito ó 0 para inactivarlo).
5. Vuelvo a ubicarme con la en No Canal. Pongo 30 y doy aceptar.
6. Poner en Parámetro: 58
7. Poner en Contenido: 30 (Para activar este canal de IgM).
3.2-SALVAR LOS CAMBIOS DE PARAMETROS REALIZADOS.
1. Ir a MANTENIMIENTO desde la pantalla de inicio HOME.
2. Tocar PARAMETROS.
3. Tocar MODO: WRITE y luego tocar START.
3.3- COMPROBAR EL VOLUMEN DE REACTIVOS DEL PLATO DE REACTIVOS.
1. Tocar BATCH MODE en la pantalla HOME.
2. Tocar OK/_ de la pantalla batch.
3. Tocar IMPR REAGENT en la pantalla de OK y observar en la impresión la cantidad de
pruebas disponibles para cada test. Utilizar este reporte impreso para determinar que reactivos
deben colocarse, teniendo en cuenta las características de cada cual según el prospecto de cada
analito. (libro azul).
4- PROGRAMACION DE LA CALIBRACION.
Apoyarnos para este procedimiento del file de recalibraciones para cada analito.
4.1- CALIBRACION DE TEST FOTOMETRICOS.
1. Tocar CAL desde la pantalla HOME.
2. Tocar STD TYPE para seleccionar la calibración adecuada: BLANK para realizar un blanco de
reactivo o FULL para obtener un nuevo factor con una calibración completa.
3. Tocar las teclas de cada test por individual, y esta se pondrá azul. Tocar flechas abajo y arriba
para buscar a través de todo el menú de test.
4. Tocar aceptar, para registrar solicitud de calibración.
5. Repetir los dos últimos pasos para programar otros tipos de calibración.
6. Salir de calibración presionando HOME.
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5- PROGRAMACION DE CONTROLES.
Apoyarnos para este procedimiento del file de Calibraciones y Controles.
Los controles deben ser procesados luego de que un test ha sido calibrado o bien cada 24 horas.
5.1- ASIGNAR LAS POSICIONES DEL DISCO DE MUESTRAS QUE SERAN OCUPADAS
POR LOS CONTROLES (36 a 57) en MENU/PARAMETROS/ POS. CONTROL. Estas
posiciones se determinaran una vez y luego quedaran fijas según necesidades del operador, deben
quedar plasmadas en un file para uso diario.
1. Tocar CONTROL en la pantalla MENU.
2. Tocar en la tecla No. CONTROL, para seleccionar el control a programar (1-5). Para cambiar
de control presionar la tecla No. CONTROL.
3. Tocar las teclas de tests individuales para seleccionar el test, esta se pondrá en azul. Tocar
flechas abajo y arriba para buscar a través de todo el menú de test.
4. Tocar aceptar, para registrar solicitud de test del control para el numero seleccionado de control.
5. Repetir los últimos tres pasos para cada numero de control.
6. Salir presionando HOME.
Se pueden programar 5 niveles diferentes de control.
Luego de esto se debe ubicar en el plato de muestras los calibradores y controles a utilizar en el lugar
adecuado (Observar en el File posiciones de muestras en el plato de muestras).
6- INDICAR AL EQUIPO QUE CALIBRE Y CONTROLE EN PANTALLA DE
CONDICIONES INICIALES.
1. Ir a la pantalla BATCH MODE desde la pantalla de inicio HOME.
2. Tocar OK y tocar en él CALIBRACION, tocar CONTROL, estas teclas se resaltaran en azul
lo cual indicara que están activadas.
3. Luego tocar PgUp., para tocar tecla TS y borrar el, protocolo de muestras de rutina del día
anterior.
4. Poner en SAMPLE No. 1 y aceptar. El cursor avanza al campo SAMPLE ID, tocar la flecha
abajo I para mover el cursor al segundo campo de SAMPLE No.
5. Ingresar el numero secuencial de la ultima muestra (400) y luego tocar ACEPTAR.
6. Tocar la tecla DELETE, luego START, START. Al final tocar Pg Up.
7. Ir a pantalla BATCH donde me dice que empiece desde muestras numero 1, poner en
SAMPLE No: 1 aceptar
8. En BATCH: Poner 30 o el número de lote que tenga determinado para cada corrida en este
modo batch.
9. Tocar la tecla START para que comience la operación.
10. Luego tocar STATUS para observar cualquier ALARMA emitida por el equipo durante la
operación.
11. Terminado este proceso comprobar si los controles estan en rango apoyándonos en el file de
calibraciones y valores de controles. De no estar en rango los controles tomar conductas en
dependencia de las alarmas de calibraciones emitidas, etc.
12. Luego salvar las calibraciones en: MANTENIM/PARAMETROS/MODO: WRITE, START.
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7- MODOS DE OPERACIÓN E INTRODUCCION DE RUTINA.
7.1- LECTOR DE CODIGO DE BARRAS DESHABILITADO.
En el modo batch, el analizador procesa un numero de muestras predeterminado y siempre empieza en
la posición numero 1. Cuando el análisis se completa, el analizador retorna a STAND BY. Las
muestras adicionales deben ser programadas como un nuevo lote (batch).
1. Tocar BATCH MODE en la pantalla HOME.
2. Tocar TS para seleccionar perfiles y test.
3. Ingresar el número secuencial de la muestra en el campo No. Muestra y luego tocar aceptar.
4. Ingresar la ID de la muestra, luego tocar aceptar.
5. Tocar test o perfil a correr en esta muestra. Tocar los test y estos se resaltaran en azul,
movernos flecha arriba y abajo para escoger otros.
6. Tocar aceptar para guardar test o perfiles seleccionados. El cursor se posicionara nuevamente
en el campo SANPLE ID: para ingresar el siguiente número secuencial. Repetir los últimos tres
pasos hasta que la información se introduzca completamente.
Cuando toda la lista haya sido programada salvar las peticiones.
1. Tocar la flecha hacia abajo dos veces para mover el cursor al campo NO.MUESTRA. Poner en
SAMPLE No. 1 y aceptar. El cursor avanza al campo SAMPLE ID, tocar la flecha abajo I
para mover el cursor al segundo campo de SAMPLE No.
2. Ingresar el numero secuencial de la ultima muestra ( ) y luego tocar ACEPTAR.
3. Tocar la tecla WRITE, luego START, START. Al final tocar Pg Up.
Luego iniciar la corrida de muestras en modo BATCH.
1. Tocar dos veces PgUp para mostrar la pantalla BATCH MODE.
2. Cargar las muestras en el orden en que fueron programadas, comenzando por la posición 1.
3. Tocar la flecha hacia abajo para mover el cursor al campo BATCH, e ingresar el número total
de muestras en el campo BATCH, luego aceptar.
4. Tocar tecla START para iniciar la corrida.
5. Tocar STATUS para comprobar la presencia de Alarmas , y de haber referirnos al capitulo de
Alarmas en el manual del operador
7.2-COMO INDICAR PAUSA.
Para esto presionar tecla S. STOP, en la pantalla de Batch mode, el instrumento dejara de pipetear
muestras, pero continuara pipeteando los reactivos que correspondan para terminar las determinaciones
que ya están en proceso.
7.3-COMO DETENER EL INSTRUMENTO.
Presionar STOP, en la pantalla Batch Mode, de esta forma se detendrá y se perderá todas las
determinaciones en proceso.
8- MODO DE PROGRAMACION DE MUESTRAS DE EMERGENCIA.
Las posiciones asignadas para este propósito en el plato de muestras en nuestro caso son las 31, 32, 33,
34, 35, se asignaran desde PARAMETROS/SISTEMA/STAT POS. Esto se dejara fijo según lo
planificado por el operador.
1. Seleccionar BATCH MODE.
2. Presionar el botón con la ambulancia.
3. Ingresar el ID del paciente en el campo SAMPLE ID, luego aceptar.
4. Cargar la muestra en el plato en la posición indicada por el campo POSICION.
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5. Tocar perfil o test que se le asignara a la muestra, luego aceptar. Se muestra la pantalla de
emergencia otra vez, el campo POSICION se incrementa a la siguiente posición STAT
disponible.
6. Las muestras STAT registradas son procesadas con prioridad.
7. Repetir el procedimiento para programar otras muestras STAT.
9-RESULTADOS.
Los resultados de muestras de rutina, controles y stat, son impresos cuando REALTIME PRINT esta
activado en la segunda pagina de la pantalla OK.
Los resultados de la calibración solo pueden imprimirse cuando IMPR>CALIB esta en azul en la
misma pagina de OK. Los resultados de muestras también pueden imprimirse cuando el equipo esta en
STAND BY:
1. Tocar MONITOR en la pantalla HOME.
2. Tocar RUTINE SAMPLE para resultados de muestras de rutina, Tocar CONTROL para
controles y STAT para emergencias.
3. Tocar IMPR para mostrar la pantalla imprimir resultados.
4. Ingresar el numero secuencial de la primera muestra a imprimir, y aceptar
5. Ingresar el número secuencial de la última muestra a imprimir, y aceptar.
6. Tocar START para imprimir.
7. Tocar dos veces Pg Up para ir a la pantalla MONITOR.
8. Repetir los últimos 6 pasos para imprimir cada informe: Rutinas, stat y controles
10-CONCLUSION DEL TRABAJO DIARIO.
1. Realizar lavado de celdas.
2. Realizar alineación de pipetas.
3. Realizar limpieza de pipetas y agitador
4. Realizar limpieza de la superficie externa del equipo.
5. Realizar limpieza de discos de reactivos y muestra
Este mantenimiento se hará según sección de mantenimiento del manual del operador.
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PREPARACION DE REACTIVOS.
1- Creatinina, Helfa.
R1, viene en el kit, en un frasco de 60ml, echar el contenido en probeta de 500ml y llevar
hasta 370ml con agua destilada, quedando NaOH 0,20 Mol/L.
R2, se mantiene tal y como está.
2- Proteínas Totales.
R1, Preparar NaOH 0,4N, o utilizar solución valorada de NaOH 0,4N de Helfa.
R2, Utilizar el Biuret de Helfa .
3- Bilirrubina Total.
R1, es el R1b de la presentación de Helfa.
R2, es el R2 de helfa, pero como trae muy poco, preparar con NaNO2 ppa: Pesar 6 gr de
NaOH ppa y llevar a 1litro con agua destilada, quedando 0.289 Mol/L.
4- Bilirrubina Directa.
R1, es el R1a de la presentación de Helfa.
R2, es el R2 de helfa, pero como trae muy poco, preparar con NaNO2 ppa: Pesar 6 gr de
NaOH ppa y llevar a 1litro con agua destilada, quedando 0.289 Mol/L.
5- Monoreactivos listos para Usar, que son de Helfa.
-Glicemia.
-Amilasa
-Verde de Bromocresol (Albumina).
-Colesterol
-Trigliceridos.
-Ac.Urico: Reconstituir con el liofilizado.
6- Bireactivos de helfa que utilizamos como R1 y R2.
-Urea (Pto Final).
Reconstituir el liofilizado para obtener el R1.
El R2 esta listo para usar.
-ASAT o TGO:
El R1 y R2 estan listos para usar.
-ALAT o TGP:
El R1 y R2 estan listos para usar.
-Ck Total:
El R1 y R2 estan listos para usar.
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-FAL:
El R1 y R2 están listos para usar.
-GGT:
El R1 y R2 están listos para usar.
-Hierro:
El R1 se le adiciona el ac. Ascórbico según dice el fabricante y R2 esta listo para usar.
-Calcio:
El R1 y R2 están listos para usar.
-LDH:
Preparar R1+R2 según el fabricante y utilizar monoreactivo.
Nota:
El fósforo UV es nueva presentación, y viene monoreactivo.
La HDL/C se puede utilizar la presentación de CENTIS.
No tenemos manera de sustituir: Magnesio, CPR ni Factor Reumatoideo, Transferrinas, IGA,
IgG, IgM, C3, C4.
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POSICIONES DE REACTIVOS.
POSICION
ANALITO I
1
GLICEMIA
2
CREATININA
3
CREATININA
4
UREA
5
UREA
6
TGP
7
TGP
8
TGO
9
TGO
10
COLESTEROL
11
TRIGLICERIDOS
12
HDL-C
13
HDL-C
14
FOSFORO
15
FOSFORO
16
CALCIO
17
CALCIO
18
MAGNESIO
19
MAGNESIO
20
PROTEINAS TOTALES
21
PROTEINAS TOTALES
22
ALBUMINA
23
ALBUMINA
24
AMILASA
25
AMILASA
26
BIL-TOTAL
27
BIL-TOTAL
28
FOSFATASA ALC.
29
FOSFATASA ALC.
30
FE
31
FE
32
TRANSFERRINA
33
TRANSFERRINA
34
CK
35
CK
36
GGT
37
GGT
38
SMS
39
HITERGENT
40
MULTICLEAN
REACTIVO
R1
R1
R2
R1
R2
R1
R3
R1
R2
R1
R1
R1
R3
R1
R3
R1
R2
R1
R3
R1
R2
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R2
CARRY OVER
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ANALITO II
REACTIVO
CRP
CRP
IgA-2
IgA-2
IgM-2
IgM-2
IgG-2
IgG-2
R1
R3
R1
R3
R1
R3
R1
R3
C4
C4
R1
R3
C3
C3
R1
R3
POSICIONES EN EL PLATO DE MUESTRAS.
ANILLO INTERNO
W1
W2
W3
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
NaOH
NaOH (ISE)
SMS
NaCl 0.9%
CFAS
C1 NORMAL
C2 PATOLOGICO
C3
C4
C5
CFAS LIPIDOS
PRECISET S1
“ S2
1 a 30
Muestras de Rutina
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
56
57
S3
S4
S5
31 a 35
Muestras STAT
ANILLO EXTERNO
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CALIBRADORES Y CONTROLES.
No. ANALITO
1
Glicemia
2
3
Urea
Creatinina
4
TGP/ALAT
5
TGO/ASAT
6
7
8
9
Amilasa
Colesterol
Trigliceridos
HDL-C
10
11
12
13
14
15
Proteínas
Totales
Albumina
GGT
Bil-Directa
Bil-Total
Calcio
16
17
Fósforo
Magnesio
18
19
20
Fosfatasa
Alcalina
CK
Fe liq.
21
METODO
HK GGPDH/GOD-PAD
Ureasa/UV liq
Jaffe con
compensación
Liq
optim/DGKC
Liq
optim/DGKC
IFCC liq, ver.2
CHOD-PAP
GPO-PAP
HDL-C plus 2
generac.
Biuret
CALIBRADOR
Nombre Valores
CONTROLES
Control normal Control Patológico
U/ M
cfas
10.9
4.38-5.16-5.94
11.3-13.4-15.5
Mmol/l
cfas
cfas
16.7
399
5.67-6.66-7.65
83.0-101-119
21.5-25.4-29.3
277-337-397
Mmol/l
Umol/l
cfas
107
37.6-46.0-54.4
115-142-169
U/L
cfas
102
32.1-39.3-46.5
102-126-150
U/L
cfas
cfas
cfas
Cfas
lipidos
cfas
190
4.04
1.45
1.45
66.2-80.9-95.6
2.17-2.56-2.95
1.13-1.34-1.55
152-185-218
4.17-4.92-5.67
1.92-2.25-2.58
0.708-0.930-1.152
U/L
Mmol/L
Mmol/l
Mmol/l
52.4
45.7-52-58.3
44.4-50.4-56.4
g/l
BCG Alb plus
Liq.stand Szasz
Jendrassik-Grof
DPD
o-cresolftaleina
complexona
Molibdato UV
Método azul de
silidil
Optim. DGKC
cfas
cfas
cfas
cfas
cfas
36.0
93.7
39.0
83.6
2.09
26.6-32.3-38.0
31.3-38.2-45.1
10.6-13.9-17.2
14.3-17.6-20.9
1.96-2.23-2.50
25.0-30.4-35.8
161-197-233
30.9-40.5-50.1
59.6-72.8-86
3.26-3.71-4.16
g/l
U/L
Umol/l
Umol/l
Mmol/l
cfas
cfas
1.53
1.11
1.05-1.23-1.41
0.870-0.990-1.11
1.75-2.05-2.35
1.59-1.80-2.01
Mmol/l
Mmol/l
cfas
441
`149-182-215
363-441-519
U/L
cfas
cfas
353
37.8
144-171-210
17-20.6-24.2
388-472-556
24.6-30.0-35.4
U/L
Umol/l
Transferrina
IFCC liq
Fe sin
desproteiniz
Tina quant,
ver.2.
Inmunoturbidimetrico
Preciset
Protei-nas.
2.08-2.53-2.98
3.09-3.78-4.47
g/l
22
CRP
Tina quant,
1.73-2.15-2.57
3.19-4.18-5.17
Mg/dl
23
IgA-2
Tina quant, 2da
Preciset
generacion
Protei-nas.
S1: NaCl
0.9%
S2:0.340
S3:0.730
S4:1.370
S5:2.740
S6:5.420
S1: NaCl
0.9%
S2:0.700
S3:1.100
S4:4.100
S5:10.90
S6:27.20
S1: NaCl
0.9%
S2:0.460
S3:0.990
S4:2.010
S5:3.990
S6:7.890
1.50-1.98-2.46
2.52-3.30-4.08
g/l
24
IgM-2
Tina quant, 2da
S1: NaCl
0.580-0.763-0.946
0.91-1.21-1.51
g/l
Preciset
Protei-nas.
Preciset
Pág. 16 de 35
generacion
Protei-nas.
25
IgG-2
Tina quant, 2da
Preciset
generacion
Protei-nas.
26
C3c
Tina quant,
Preciset
Protei-nas.
27
C4c
Tina quant,
Preciset
Protei-nas.
28
RF II
Tina quant,
Preciset
RF
0.9%
S2:0.230
S3:0.470
S4:0.970
S5:1.880
S6:3.700
S1: NaCl
0.9%
S2:1.280
S3:3.460
S4:7.510
S5:14.84
S6:29.02
S1: NaCl
0.9%
S2:0.450
S3:0.880
S4:1.900
S5:4.000
S1: NaCl
0.9%
S2:0.072
S3:0.142
S4:0.290
S5:0.576
S6:1.104
S1: NaCl
0.9%
S2:10.2
S3:20.6
S4:40.8
S5:80.6
S6:123
7.47-9.12-10.77
12.6-15.3-18
g/l
0.89-1.16-1.43
1.53-2.01-2.49
g/l
0.135-0.177-0.219
0.203-0.269-0.335
g/l
16.1-20.3-24.5
42.6-50.1-57.6
UI/ml
Pág. 17 de 35
CALIBRADORES Y CONTROLES.
Canal ANALITO
1
Glicemia
2
Creatinina
3
4
Urea
TGP/ALAT
5
TGO/ASAT
6
7
8
Colesterol
Triglicerids
HDL-C
9
10
Fosforo
Calcio
11
Magnesio
12
13
Proteínas T.
Bil-Directa
14
Bil-Total
15
16
17
18
19
Albumina
Amilasa
Uratos
CK
GGT
20
21
22
Fosfatasa
Alcalina
LDH
Fe liq.
23
Transf.
METODO
HK GGPDH/GOD-PAD
Jaffe con
compens.
Ureasa/UV liq
Liq
optim/DGKC
Liq
optim/DGKC
CHOD-PAP
GPO-PAP
HDL-C plus 2
generac.
Molibdato UV
o-cresolft.
complexona
Método azul
de silidil
Biuret
JendrassikGrof
DPD
BCG Alb plus
IFCC liq, ver.2
IFCC liq
Liq.stand
Szasz
Optim. DGKC
Fe sin
desproteiniz
Tina quant,
ver.2.
Inmunoturbidimetrico
CALIBRADOR
CONTROLES (ELITROL)
Nombre Valores Elitrol I( normal) Elitrol II( Patológico)
CV
%
U/ M
cfas
10.9
4.63-5.55-6.48
11.29-13.54-15.79
5.1
Mmol/l
cfas
399
79.72-100.7-121.7
256-323.5-390.93
6.3
Umol/l
cfas
cfas
16.7
107
4.71-6.60-8.50
30.31-42.11-53.90
11.94-16.73-21.53
99.69-138.46-177.24
8.8
8.6
Mmol/l
Uds/L
cfas
102
22.58-31.41-40.24
90.59-126-161.47
8.9
Uds/L
cfas
cfas
Cfas
lípidos
cfas
cfas
4.04
1.45
1.45
2.07-2.52-2.96
0.90-1.25-1.60
4.40-5.34-6.28
1.60-2.21-2.83
5.4
6.5
Mmol/l
Mmol/l
Mmol/l
1.53
2.09
0.85-1.10-1.36
1.25-2.08-2.90
1.52-1.98-2.44
2.15-3.56-4.97
7.3
12.4
Mmol/l
Mmol/l
cfas
1.11
0.73-1.03-1.34
1.16-1.64-2.13
6.2
Mmol/l
cfas
cfas
52.4
39.0
38.3-53.4-68.6
7.57-10.8-14.03
34.5-48.2-61.9
35.6-50.8-66.0
6.9
9.4
g/l
Umol/l
cfas
83.6
8.4-17.0-25.6
41.0-83.0-125.1
cfas
cfas
cfas
cfas
cfas
36.0
190
309
353
93.7
24.3-35.5-46.6
64.08-77.7-91.46
207.6-253-298.5
104.6-147.3-190
30.7-40.3-49.9
22-32.2-42.4
149.5-181.5-213.4
500-609.4-718.7
242.9-342-441.1
154.1-202.1-250.2
cfas
441
131.6-171.1-210.6
315.9-410.6-505.3
7.2
cfas
cfas
461
37.8
200.2-282.5-364-8
333.5-470.7-607.8
9.2
Preciset
Proteinas.
S1: NaCl
0.9%
S2:0.340
S3:0.730
S4:1.370
S5:2.740
S6:5.420
Pág. 18 de 35
E1= Umol/l
9.4
E2=1
6
9.6
g/l
5.4
Uds/l
5.7
Umol/l
9.1
Uds/l
7.4 Uds/l
Uds/l
Uds/L
GUIA DE ANALITOS Y VALORES DE REFERENCIA.
1-GLICEMIA.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN TIETZ
Suero/plasma
Adultos:
70-105 mg/dl o 3.89-5.83 mmol/l
Mayor de 60 años: 80-115 mg/dl o 4.44-6.38mmol/l
Mayor de 70 años: 83-110 mg/dl o 4.61-6.11 mmol/l
Niños:
60 a 110 mg/dl o 3.33-6.11 mmol/l
Neonatos:
1 día:
40-60 mg/dl o 2.22- 3.33 mmol/l
Mas de un día:
50 – 80 mg/dl o 2.78-4.44mmol/l
2- CREATININA
VALORES DE REFERENCIA.
Suero/plasma
Adultos:
Hombres:
0.70- 1.20mg/dl o 62 -106 umol/l
Mujeres:
0.50-0.90 mg/dl o 44-80 umol/l
Niños:
Neonatos (prematuros):0.29-1.04 mg/dl o 25-91 umol/l
(a término) : 0.24-0.85 mg/dl o 21-75 umol/l
3- UREA.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero/plasma.
10-50 mg/dl o 1.7-8.3 mmol/l
4- TGP/ALAT.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero/plasma A 37 C.
Hombres: hasta 41 U/L
Mujeres: hasta 31 U/L
5- TGO/ASAT.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero/plasma A 37 C.
Hombres: hasta 38 U/L
Mujeres: hasta 32 U/L
6- GGT.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero/plasma A 37 C.
Hombres: 8 - 61 U/L
Pág. 19 de 35
Mujeres: 5 - 36 U/L
7- TRIGLICERIDOS.
INTERPRETACION CLINICA SEGÚN SOCIEDAD EUROPEA DE ATEROSCLEROSIS:
Trastorno del metabolismo de lípidos
Colesterol < 200mg/dl o 5.2 mmol/l
No
Triglicéridos <200 mg/dl o 2.3 mmol/l
Colesterol 200-300mg/dl o 5.2-7.8mmol/l Sí, si la concentración de Colest. HDL es
<
35mg/dl o 0.9 mmol/l
Colesterol > 300mg/dl o 7.8 mmol/l
Sí
Triglicéridos > 200mg/dl o 2.3 mmol/l
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN NCEP (NATIONAL CHOLESTEROL EDUCATION
PROGRAM).
Suero/plasma
< 200 MG/DL o 2.3 mmol/l
8- COLESTEROL.
INTERPRETACION CLINICA SEGÚN SOCIEDAD EUROPEA DE ATEROSCLEROSIS:
Trastorno del metabolismo de lípidos
Colesterol < 200mg/dl o 5.2 mmol/l
No
Triglicéridos <200 mg/dl o 2.3 mmol/l
Colesterol 200-300mg/dl o 5.2-7.8mmol/l Sí, si la concentración de Colest. HDL es
<
35mg/dl o 0.9 mmol/l
Colesterol > 300mg/dl o 7.8 mmol/l
Sí
Triglicéridos > 200mg/dl o 2.3 mmol/l
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN NCEP (NATIONAL CHOLESTEROL EDUCATION
PROGRAM).
Suero
Intervalo ideal de colesterol: < 200 mg/dl o 5.2 mmol/l
Intervalo límite para Colesterol elevado: 200- 239 mg/dl o 5.2-6.21 mmol/l
Colesterol alto: > 240 mg/dl o 6.24 mmol/l
9-HDL-COLESTEROL.
Hombres.
Mg/dl
Mmol/l
Mujeres.
Mg/dl
Mmol/l
Sin riesgo
Riesgo Moderado
Riesgo Alto
> 55
> 1.45
35-55
0.90-1.45
< 35
< 0.90
> 65
> 1.68
45-65
1.15-1.68
< 45
<1.15
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN NCEP (NATIONAL CHOLESTEROL EDUCATION
PROGRAM).
< 40 mg/dl o 1.04 mmol/l: Colesterol HDL bajo (principal factor de riesgo para enfermedades
cardiovasculares).
Pág. 20 de 35
>/= 60 mg/dl o 1.56 mmol/l: Colesterol HDL alto (factor de riesgo “negativo” para enfermedades
cardiovasculares).
10- ALBUMINA.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN TIETZ.
Adultos:
3.4-4.8 g/dl o 34-48 g/l
Recién nacidos 0-4 días
2.8-4.4 g/dl o 28-44 g/l
Niños de 4 días – 14 anos
3.8-5.4 g/dl o 38-54 g/l
11- PROTEINAS TOTALES.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN JOSEPHSON.
Adultos:
6.6-8.7 g/dl o 66-87 g/l
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN TIETZ.
Cordón umbilical:
4.8-8.0 g/dl
Prematuros:
3.6-6.0 g/dl
Neonatos:
4.6-7.0 g/dl
1 Semana:
4.4-7.6 g/dl
12- BILIRRUBINA DIRECTA.
VALORES DE REFERENCIA.
Billirrubina directa: </= 0.30 mg/dl o </= 5.1 umol/l
13- BILIRRUBINA TOTAL.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN THOMAS.
Billirrubina Total: hasta 1.1mg/dl o 18.8 umol/l
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN SHERLOCK Y MEITES.
Adultos y niños: hasta 1.0mg/dl o 17.1 umol/l
Neonatos:
Edad:
Nacimiento prematuro
24 horas
1.0 – 6.0 mg/dl o 17.1 – 102.6 umol/l
48 horas
6.0 – 8.0 mg/dl 0 102.6 – 136.8 umol/l
3 – 5 días
10.0 – 15.0 mg/dl o 171 – 256.5 umol/l
Edad:
24 horas
48 horas
3 – 5 días
Nacimiento a término.
2.0 – 6.0 mg/dl o 34.2 – 102.6 umol/l
6.0 –7.0 mg/dl 0 102.6 – 119.7 umol/l
4.0 – 12.0 mg/dl o 68.4 – 205.2 umol/l
14- AMILASA.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 28 – 100 U/L.
15- FOSFATASA ALCALINA.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN ROSALKI.
Recalculados para 37 C.
Pág. 21 de 35
Hombres: < 270 U/L
Mujeres: < 240 U/L
16- CALCIO.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 2.15 – 2.55 mmol/l
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN TIETZ.
Niños: 0 – 10 días
7.6-10.4 mg/dl
10 – 2 anos
9.0 – 11 mg/dl
Adultos: 12 – 60anos 8.4-10.2 mg/dl
60 – 90 anos 8.8-10.2 mg/dl
> 90 anos
8.2- 9.6 mg/dl
17- FOSFORO.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 2.7 – 4.5 mg/dl o 1.45 mmol/l
18- MAGNESIO.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 1.58 -2.55 mg/dl o 0.65 – 1.05 mmol/l
19- HIERRO.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma:
Hombres: 10.6 – 28.3 umol/l
Mujeres: 6.6 – 26.0 umol/l
La concentración de hierro en suero y plasma depende de la dieta y está sujeta a variaciones
circadianas.
20- TRANSFERRINA.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma:
2 – 3.6 g/l o 200 – 360 mg/dl
Observaciones:
Bajo la CTFH se entiende la fijación inespecífica de iones de hierro a diferentes proteínas séricas
y no sólo a la transferían. Por lo tanto, el factor de conversión de la transferían a CTFH no se
basa en el peso molecular de la transferían, si no que se obtuvo experimentalmente. Entre el
contenido de transferían de la muestra (peso molecular de la transferrina =79 570 dalton) y la
capacidad total de fijación del hierro (CTFH) se pueden efectuar las siguientes conversiones):
1 mg de transferrina = 1,41ug de Fe
mg transferrina /dl x 1.27 = ug de CTFH/ dl
mg transferrina /dl x 0.2275 = umol de CTFH/ dl
21- CRP.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: < 0.5 mg/dl o < 0.005 g/l
Pág. 22 de 35
Intervalo elevado de CRP:
Las concentraciones < 1 mg/dl o < 0.01 g/l excluyen muchas enfermedades inflamatorias agudas,
pero no excluyen específicamente un proceso inflamatorio.
Concentraciones elevadas < 5 mg/dl o < 0.05 g/l en enfermedades agudas aparecen en procesos
inflamatorios leves o moderados.
Valores mayores > 5 mg/dl o 0.05 g/l en enfermedades agudas son indicio de una actividad
inflamatoria de gran magnitud e intensidad.
ES IMPORTANTE CONTROLAR LA EVOLUCION DE LA CONCENTRACION DE CRP
DURANTE LA FASE AGUDA DE UNA ENFERMEDAD.
22- FACTOR REUMATOIDEO.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: <14 UI/ml
23- IgA.
VALORES DE REFERENCIA SEGÚN LA ESTANDARIZACION DE PROTEINAS CRM 470.
Adultos: 0.7 - 4 g/l o 70 – 400 mg/dl.
Niños 0 – 1 ano: 0.00-0.83 g/l o 0 -83 mg/dl.
24- IgM.
VALORES DE REFERENCIA.
Adultos: 0.4 – 2.3 g/l o 40 -230 mg/dl.
Niños 0 – 1 ano: 0.00-1.45g/l o 0 – 145 mg/dl
25- IgG.
VALORES DE REFERENCIA.
Adultos: 7 -16 g/l o 700 – 1600 mg/dl.
Niños 0-1 ano: 2.32 -14.11g/l o 232 – 1411mg/dl
26- C3c.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 90-180 mg/dl o 0.9 – 1.8 g/l
27- C4c.
VALORES DE REFERENCIA.
Suero o plasma: 10 – 40 mg/dl o 0.1 – 0.4 g/l
Pág. 23 de 35
MODELO PARA ANOTAR PROGRAMACIONES.
No.
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
<Test>
Nombre Test
Tipo Ensayo (Método)
Twin
Tiempo Reacción
Punto Ensayo 1
Punto Ensayo 2
Punto Ensayo 3
Punto Ensayo 4
Long. Onda (SEC)
Long. Onda (PRAL)
Volumen Muestra
Volumen R 1
Pos. R 1
Tamaño Frasco R 1
Volumen R 2
Pos. R 2
Tamaño Frasco R 2
Volumen R 3
Pos. R 3
Tamaño Frasco R 3
Tipo Calib. (Tipo)
Tipo Calib. (Peso)
Conc. Calib. 1
Pos. Calib. 1
Conc. Calib. 2
Pos. Calib. 2
Conc. Calib. 3
Pos. Calib. 3
Conc. Calib. 4
Pos. Calib. 4
Conc. Calib. 5
Pos. Calib. 5
Conc. Calib. 6
Pos. Calib. 6
S1 ABS
Factor K
Factor K 2
Factor K 3
Factor K 4
Factor K 5
Factor A
Factor B
Factor C
Limite SD
Limite Duplicado
Limite Sens.
Limite ABS S1 (B)
Limite ABS S1 (A)
Limite ABS
Limite ABS (D/C)
Limite Prz.
Limite Prz. (I/S)
Prz. (Punto Final)
Valores Ref. (B)
Valores Ref. (A)
Factor Instr. (a)
Factor Instr. (b)
Asign. Tecla
Pág. 24 de 35
CONTROL DE CALIDAD HITACHI 902
P
GLUC
C1 C2
P
CREA
C1 C2
P
UREA
C1 C2
P
TGP
C1 C2
P
TGO
C1 C2
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
25.
26.
27.
28.
29.
30.
Pág. 25 de 35
P
FAL
C1 C2
P
GGT
C1 C2
P
BT
C1
C2
P
BD
C1
C2
CONTROL DE CALIDAD HITACHI 902
P
PT
C1
C2
P
ALB
C1
C2
P
COL
C1
C2
P
TRI
C1
C2
P
HDL
C1
C2
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Pág. 26 de 35
P
AMIL
C1
C2
P
CK
C1 C2
P
PCR
C1
C2
P
LDH
C1
C2
CONTROL DE CALIDAD HITACHI 902
P
Fe
C1
C2
P
Transf..
C1 C2
P
AU
C1
C2
P
Na K
C1 C2
P
Mg
C1
C2
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Pág. 27 de 35
P
FR
C1
C2
P
C3/C4
C1 C2
P
Ca
C1
C2
P
F
C1
C2
ESTADISTICAS HITACHI 902
GLUC
CREA
UREA
TGP
TGO
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Pág. 28 de 35
FAL
GGT
BT
BD
ESTADISTICAS HITACHI 902
PT
ALB
COL
TRI
HDL
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Pág. 29 de 35
AMIL
CKLDH
PCR
FETransf.
ESTADISTICAS HITACHI 902
RA Cloro
Ac.Urico
NA
K
FR
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
Pág. 30 de 35
C3
C4
CA Fosf
Urgencias
Tabla de
programaciones de
analitos para EPB
Finlay
Pág. 31 de 35
No.
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
<Test>
Nombre Test
Tipo Ensayo (Método)
Twin
Tiempo Reacción
Punto Ensayo 1
Punto Ensayo 2
Punto Ensayo 3
Punto Ensayo 4
Long. Onda (SEC)
Long. Onda (PRAL)
Volumen Muestra
Volumen R 1
Pos. R 1
Tamaño Frasco R 1
Volumen R 2
Pos. R 2
Tamaño Frasco R 2
Volumen R 3
Pos. R 3
Tamaño Frasco R 3
Tipo Calib. (Tipo)
Tipo Calib. (Peso)
Conc. Calib. 1
Pos. Calib. 1
Conc. Calib. 2
Pos. Calib. 2
Conc. Calib. 3
Pos. Calib. 3
Conc. Calib. 4
Pos. Calib. 4
Conc. Calib. 5
Pos. Calib. 5
Conc. Calib. 6
Pos. Calib. 6
S1 ABS
Factor K
Factor K 2
Factor K 3
Factor K 4
Factor K 5
Factor A
Factor B
Factor C
Limite SD
Limite Duplicado
Limite Sens.
Limite ABS S1 (B)
Limite ABS S1 (A)
Limite ABS
Limite ABS (D/C)
Limite Prz.
Limite Prz. (I/S)
Prz. (Punto Final)
Valores Ref. (B)
Valores Ref. (A)
Factor Instr. (a)
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Asign. Tecla
1
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10000
10000
10000
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0
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-32000
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0
I
0
D
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4.1
6.1
1
0.0
1
2
CREA
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10
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2
L
0
0
S
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S
Linear
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10000
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I
0
D
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UREA
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TGP
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D
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TGO
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-32000
32000
5500
D
0
D
35
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38
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0.0
5
Pág. 32 de 35
6
COL
1pto
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S
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TRIG
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HDL/C
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o
S
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S
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32000
I
32000
U
35
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8
9*
PHOS*
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o
S
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Linear
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U
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CA
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I
3200
U
35
2.15
2.55
1.0
0.0
10
No
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
<Test>
Nombre Test
Tipo Ensayo (Método)
Twin
Tiempo Reacción
Punto Ensayo 1
Punto Ensayo 2
Punto Ensayo 3
Punto Ensayo 4
Long. Onda (SEC)
Long. Onda (PRAL)
Volumen Muestra
Volumen R 1
Pos. R 1
Tamaño Frasco R 1
Volumen R 2
Pos. R 2
Tamaño Frasco R 2
Volumen R 3
Pos. R 3
Tamaño Frasco R 3
Tipo Calib. (Tipo)
Tipo Calib. (Peso)
Conc. Calib. 1
Pos. Calib. 1
Conc. Calib. 2
Pos. Calib. 2
Conc. Calib. 3
Pos. Calib. 3
Conc. Calib. 4
Pos. Calib. 4
Conc. Calib. 5
Pos. Calib. 5
Conc. Calib. 6
Pos. Calib. 6
S1 ABS
Factor K
Factor K 2
Factor K 3
Factor K 4
Factor K 5
Factor A
Factor B
Factor C
Limite SD
Limite Duplicado
Limite Sens.
Limite ABS S1 (B)
Limite ABS S1 (A)
Limite ABS
Limite ABS (D/C)
Limite Prz.
Limite Prz. (I/S)
Prz. (Punto Final)
Valores Ref. (B)
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Factor Instr. (a)
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Asign. Tecla
11*
MG
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S
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I
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U
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PT
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Linear
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I
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U
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U
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ALB
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Pág. 33 de 35
16*
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CK
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19
No
1
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3
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14
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20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
<Test>
Nombre Test
Tipo Ensayo (Método)
Twin
Tiempo Reacción
Punto Ensayo 1
Punto Ensayo 2
Punto Ensayo 3
Punto Ensayo 4
Long. Onda (SEC)
Long. Onda (PRAL)
Volumen Muestra
Volumen R 1
Pos. R 1
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Tamaño Frasco R 2
Volumen R 3
Pos. R 3
Tamaño Frasco R 3
Tipo Calib. (Tipo)
Tipo Calib. (Peso)
Conc. Calib. 1
Pos. Calib. 1
Conc. Calib. 2
Pos. Calib. 2
Conc. Calib. 3
Pos. Calib. 3
Conc. Calib. 4
Pos. Calib. 4
Conc. Calib. 5
Pos. Calib. 5
Conc. Calib. 6
Pos. Calib. 6
S1 ABS
Factor K
Factor K 2
Factor K 3
20
FAL
RateA
0
10
26
35
0
0
546
450
7.0
250
28
L
0
0
S
50
29
S
Linear
0
0
36
441
37
0
0
0
0
0
0
0
0
2
13653
10000
10000
21
LDH
RateA
0
10
25
32
0
0
546
340
5.0
250
18
L
0
0
S
50
37
S
Linear
0
0
36
461
37
0
0
0
0
0
0
0
0
-1
-9878
10000
10000
22
Fe
2pto
0
10
17
20
0
0
700
570
20.0
250
30
L
0
0
S
50
31
S
Linear
2
0.0
36
37.8
37
0
0
0
0
0
0
0
0
222
8425
10000
10000
23
T.FER
2pto
0
10
15
31
0
0
700
505
3.0
270
32
S
0
0
S
100
33
S
logit5P
0
0.0
36
0.34
44
0.73
45
1.37
46
2.74
47
5.42
48
-2
3069
10000
10000
24
CPR
2pto
0
10
17
35
0
0
700
340
20.0
350
32
S
0
0
S
50
33
S
logit4P
0
0.0
36
0.7
44
1.1
45
4.1
46
10.9
47
27.2
48
12326
-12232
10000
10000
39 Factor K 4
10000
10000
10000
10000
10000
40 Factor K 5
10000
10000
10000
10000
10000
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
0
0
0
0.1
30
240
-32000
32000
14000
I
0
D
35
0
270
1.0
0.0
20
0
0
0
0.1
45
450
-32000
32000
5500
D
32000
U
35
200
400
1.0
0.0
21
0
0
0
0.1
50
100
0
4000
0
I
0
D
35
6.6
28.3
1.0
0.0
22
-1.475
0.8564
0.3845
150
230
2400
-32000
32000
0
I
32000
U
35
2.0
3.6
1.0
0.0
23
83.241
1.3375
0
80
200
2500
-32000
32000
0
I
32000
U
35
0
0.5
1.0
0.0
24
Factor A
Factor B
Factor C
Limite SD
Limite Duplicado
Limite Sens.
Limite ABS S1 (B)
Limite ABS S1 (A)
Limite ABS
Limite ABS (D/C)
Limite Prz.
Limite Prz. (I/S)
Prz. (Punto Final)
Valores Ref. (B)
Valores Ref. (A)
Factor Instr. (a)
Factor Instr. (b)
Asign. Tecla
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26
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28
Bibliografía:
1- Documentación de Roche Diagnostic.
2- Department of Labor, Occupational Safety and Health Standart: blood borne pathogens (29 CFR
1910.1030). Federal Register. July 1,1998,6:267-280.
3- Directiva del Consejo (2000/54/CE). Diario Oficial de Comunidades europeas, N L262 del 17 de
Octubre pad 21-45.
4- Tietz NW (ed.) Clinical Guide to Laboratory Test, 3 edicion:Philadelphia, Pa:WB Sanders
Company, 1990:246-250.
5- Manual del operador para autoanalizador Hitachi-902.
6- Glick MR, Ryder KW, Jackson S A. Graphical Comparisons of interferences in Clinical Chemistry,
Instrumentation. Clin. Chem 1986,32,470-474.
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