Con Pipeta de Cassou

PLAN TOROS 2006
RUTINA DE TRABAJO A CAMPO1
1- Identificación del animal con caravana botón MAA, entregada por el Área de
Producción Municipal.
2- Examen clínico del toro.
En el Anexo A se agrega un ejemplo de esquema de trabajo.
3- Completar en la Planilla de Control de Toros entregada por el Área de
Producción Municipal si es apto o no apto clínicamente. En el caso de detectarse
anomalías y declararlo no apto, completar la parte inferior de la planilla con el detalle
de la anomalía.
4- Tomar la muestra de sangre para control de Brucelosis (se recomienda yugular).
Tener en cuenta:
Tubo limpio, descargar sobre la pared de tubo sin aguja.
Dejar reposar a 22°C de temperatura o menor para que coagule
Refrigerar.
5- Realizar el raspado
En el Anexo B se detallan cuidados y recomendaciones para la toma de muestras.
6- Llevar las muestras al laboratorio.
7- En 72 horas debe llevar al Área de Producción Municipal la Planilla de Control
de Toros con los datos relevados en la primera visita.
8- Realizar los raspados subsiguientes con un intervalo de 7 a 12 días.
1
Realizado en base a Carlos M. Campero, MV, DMV, PhD, Grupo de Sanidad Animal
INTA, CC 276, (7620) Balcarce, [email protected]
PLAN TOROS 2006
Anexo A
RUTINA DE TRABAJO A CAMPO- REVISACIÓN CLÍNICA DE TOROS
(en base a Campero, C. M,1985, Boletín Veterinario Nº 33, INTA, Balcarce)
A. Examen físico general
1. Visión (U: unilateral, B: bilateral)
- Queratitis crónica (nube)
-menor a 3 mm
-mayor a 3 mm
2. Dentadura
- Edad
- Queratitis aguda (pink eye)
- Ulcera córneal
- Carcinoma ocular (SCC)
- Desgaste
3. Aparato locomotor (U-B)
- Artrosis tarso
- Artrosis carpo
- Luxación coxo-femoral
- Artrosis lumbar
- Displasia cadera
- Sinovitis
- Bursitis
- Fractura
- Aplomos
Pie (U-B)
- Ulcera plantar
- Hematoma en suela
- Pezuñas en pico de loro
- Pezuña en guadaña
- Callo interdigital
- Pododermatitis verrugosa
- Absceso coronario
- Absceso interdigital
- Laminitis
4. Otras condiciones
- Temperamento agresivo ?…….
B. Examen de los genitales
1. Genitales externos
1.1. Pene
- Desviación: lateral…ventral…tirabuzón…
- Anillos de pelo
- Adherencias (persistencia frenillo)
- Balanitis
- Fibropapiloma:
Único (tamaño)… Múltiple (tamaño)…
- Hematoma (tamaño y ubicación)
- Caudal o anterior a S peniana?
- Absceso en hematoma
- Fimosis (no extrae el pene)
- Parafimosis (no lo puede introducir)
1.2. Prepucio
- Ulcera prepucial
- Fibrosis y estenosis de abertura (menos
de 2 dedos)
- Prolapso de prepucio
- Absceso adyacente abertura
- Postitis
- Adherencias
- Otros: describir……….
1.3. Testículos (U-B)
- Escasa CE (menor 30 cm)
- Hipoplasia
- Orquitis: aguda… crónica….
- Fibroplasia testicular
- Atrofia
- Degeneración (mal tono)
- Monorquido
- Otros: describir……..
PLAN TOROS 2006
1.4. Epidídimo (U-B)
(Ubicar lesión cola/cabeza/cuerpo)
- Aplasia
- Inflamación: aguda…………..crónica………
1.5. Escroto
- Adherencias e inmovilidad testicular
- Hernia inguinal
- Hematocele
- Hidrocele
- Rotación anterior-posterior (más de 60º)
- Otros: describir
2. Glándulas accesorias (U-B)
Vesículas seminales
- Hipoplasia
- Aplasia
- Vesiculitas: crónica……………aguda…………………
C. Control enfermedades
1. Diagnóstico serológico de Brucelosis
2. Diagnostico de Tricomoniasis
3. Diagnostico de Campylobacteriosis
4. Diagnostico de Tuberculosis
5. Sarna
6. Otras: paratuberculosis, …
PLAN TOROS 2006
Anexo B
RECOLECCIÓN DE MUESTRAS PREPUCIALES
Cuidados
 Especial
énfasis se deberá poner en cuidar la seguridad personal al trabajar con toros.
Si la manga no tiene verijero, atar suavemente la pata del lado de donde se trabaja al
último crucero de la tranca posterior.
 Realizar
la doble identificación de los toros (doble juego de caravanas, número a fuego y
caravana, tatuaje y caravanas).
 Cortar
los pelos de orificio prepucial con tijera
Materiales
 Raspadores
 Pipetas
metálicos o de plástico descartables
IA o bien Jeringa de Cassou con Vainas azules
1
botella x 500 ml de Solución fisiológica
2
jeringas x 60 ml
 Varias
pipetas de IA para eventual lavaje de cavidad prepucial
 Varios
prolongadores de goma de latex o siliconados de 70/80 cm para conectar jeringa
con pipeta de IA para hacer lavajes prepuciales si fuera necesario (muestras sucias).
 Toallas
de papel descartable.
 Guantes
de latex descartables
 Material
para desinfectar los raspadores metálicos ya sea mediante fue directo (mechero) o
inmersión en agua a ebullición
 Medios
de cultivo para diagnóstico de Tricomoniasis: (Caldo infusión hígado, medio de
Plastridge, etc),
 Solución
fisiológica formolada al 1% para diagnóstico de Campylobacteriosis por IF.
 Si
se intenta extraer una muestra prepucial para aislamiento de Campylobacter sp, utilizar
el medio para transporte de Cary-Blair y extraer la muestra en la forma más higiénica
posible, colocarla en el medio mencionado y enviarla refrigerada debiéndose subcultivar
dentro de las 24 hs en atmósfera y medios adecuados.
 Siempre
llevar un 10% más de medios que el número de toros por accidentes, o bien toros
“agregados” a la lista original.
Procedimiento
Con Pipeta de Cassou
 Montar
jeringa y vaina estéril abriendo el paquete en el extremo adecuado (opuesto a la
punta de la pipeta!), no contaminar la parte media-anterior de la pipeta
 Cargar
la jeringa de Cassou con 3-5-ml de solución fisiológica del frasco estéril
 Descargar
dentro de la cavidad prepucial, masajear en sentido antero-posterior unas 20
veces ocluyendo la abertura prepucial con la otra mano
PLAN TOROS 2006
 Recolectar
la muestra extrayendo en forma lenta la jeringa y haciendo vacío con el émbolo
desde el fondo de la cavidad prepucial hacia la abertura.
 Descargar
el material recolectado, primero en el medio de Tricomoniasis (unas 4 gotas, no
exceder de 1 ml de inóculo como máximo) y luego en la solución formolada al 1% para
diagnóstico de Campylobacteriosis (nunca en orden inverso!).
 Si
la muestra está contaminada con barro o heces, descartar el material. Cargar jeringa de
60 ml con 30-40 ml de sol. fisiológica, anexarle el tubo de goma y montar la pipeta de IA
para hacer un lavaje, infundir la solución con la ayuda de un operario, cerrar la cavidad
prepucial, masajear y eliminar el líquido de lavado
 Repetir
el muestreo utilizando una vaina de Cassou nueva como ya se explicó
Con raspador
 Introducir
el raspador hasta el fondo de la cavidad prepucial, realizar en forma suave no
menos de 20-30 movimientos tratando de llegar a la zona del glande. Luego de extraído
colocar el raspador en el tubo con medio de cultivo.
 Se
deberá repetir esta operación para recolectar muestra para el diagnóstico de
Campylobacteriosis colocando luego del muestreo el raspador en el tubo con solución
fisiológica formolada al 1%.
 Se
puede ingresar también en la cavidad prepucial con dos raspadores al mismo tiempo
colocando luego uno en el medio para tricomoniasis y el otro en la solución formolada,
respectivamente.
Cuidados
 Los
raspadores metálicos deberán lavarse con agua y sumergirse en agua en ebullición por
unos minutos o bien unos segundos a la llama directa, luego enfriar en solución fisiológica.
 Se
deberá cambiar frecuentemente el agua en ebullición al ensuciarse y concentrarse por
la evaporación.
 Los
raspadores de plásticos si son reciclables deberán lavarse y desinfectarse según
sugerencias del fabricante.
Consideraciones finales
 Tanto
la recolección de muestras con pipeta como con raspador permiten obtener muestras
de similar calidad si el mismo se hace a conciencia y la muestra está limpia
 Ni
el mejor laboratorista podrá obtener un resultado positivo si la muestra está sucia con
heces o tierra