1 TAMIZAJE FITOQUIMICO DE HOJAS Y SEMILLAS DE (Bixa Orellana) UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES Av. Universitaria S/n Telef.: 561647, E-mail [email protected] TANIA GUERRERO VEJARANO 1/ JOSE LUIS PAREDES SALAZAR 2/ 1/ Ingeniero Químico, Docente Asociado de la Facultad de Recursos Naturales Renovables 2/ Ingeniero Quimico Jefe de Control de Calidad de MTC Internacional RESUMEN En el presente trabajo de investigación se ha realizado el reconocimiento de Metabolitos Secundarios (Tamizaje Fitoquimico) de hojas y semillas de Bixa Orellana, utilizando la metodología descrita por (Miranda, 2003) en donde se encontró que las hojas presentaron escasos alcaloides, cantidad moderada de flavonoides, abundantes leucoantocianidinas,y una cantidad moderada de tainos; no se encontró cardiotónicos, saponinas y quinonas, presento una reacción dudosa para esteroles y/o triterpenos. En las semillas se encontraron escasos flavonoides, moderada cantidad de leucoantocianidinas y escasos taninos, presento una reacción dudosa frente a la prueba de alcaloides y de esteroles y/o triterpenos no se encontró saponinas, quinonas y cardiotónicos ABSTRACT In the present work of investigation the recognition of Secondary Metabolitos (Tamizaje Fitoquimico) of leaves and seeds has been made of Bixa Orellana, using the methodology described by (Miranda, a 2003) in where was that the leaves presented displayed little alkaloids, moderate amount of flavonoides, abundant leucoantocianidinas, and moderate amount of taninos; one was not 2 cardiotónicos, saponinas and quinonas, I present/display a doubtful reaction for esteroles and/or triterpenos. In the seeds were little flavonoides, moderate amount of leucoantocianidinas and little tannins, I present/display a doubtful reaction forehead to the test of alkaloids and of esteroles and/or triterpenos it was not saponinas, quinonas and cardiotónicos PALABRAS CLAVE: Metabolitos Secundarios, flavonoides, alcaloides, leucoantocianidinas, cardiotónicos, esteroles, triterpenos, taninos, Bixa orellana I. INTRODUCCION: La medicina tradicional, una de las expresiones mas importantes de la memoria ancestral de los pueblos amazónicos, hace uso, entre otras prácticas, de gran número de especies vegetales para curar enfermedades y síndromes. El achiote es una de las plantas medicinales utilizadas en la medicina popular para infecciones en la piel, infecciones respiratorias, desinflamación de la próstata, etc. Su uso esta restringido a las personas que creen en la medina natural, de tal manera que un estudio fitoquimico contribuye a validar la especie sobre los metabolitos secundarios presentes, los cuales ayudarían a posteriores estudios farmacológicos, toxicológicos, preclínicos y clínico de la especie. Para el presente trabajo de investigación se presento la siguiente interrogante ¿Cuáles son los metabolitos secundarios que presenta en tamizaje fitoquimico de la especie Bixa orellana?, con los siguientes objetivos: 3 OBJETIVO GENERAL: Encontrar que tipo de metabolitos secundarios contiene la especie Bixa Orellana. OBJETIVOS ESPECIFICOS: Determinación de la presencia de alcaloides Determinación de la presencia de flavonoides Determinación leucoantocianidinasy cardiotónicos Determinación de saponinas y triterpenos Determinación de quinonas y taninos Determinación de antocianidinas II. REVISION DE LITERATURA: 2.1 GENERALIDADES: El achiote es un árbol originario de la América Tropical donde crece en forma espontánea, es de rápido desarrollo y alcanza de 3 a 4 metros de altura y tiene 20 a 30 cm. de diámetro en la base del tallo. Su raíz es pivotante y bien desarrollada, las hojas son cordiformes y las flores hermafroditas de un color rosado a blanco, dispuestas en panojas terminales. El fruto es una cápsula que contiene de 30 a 60 semillas, las mismas que están cubiertas de una pulpa rojiza y cerosa que constituye el tinte llamado achiote. Este árbol se lo cultiva bien entre los 300 a 1.000 metros de altura, aunque se adapta bien desde el1 nivel del mar. El achiote crece en óptimas condiciones en un amplio margen de suelos, desde los francos arenosos hasta los arcillosos; pero, los mejores 4 resultados se han conseguido en suelos francos con un marcado índice de fertilidad y si bien es cierto que crece en todo tipo de suelo, también es cierto que es muy exigente en cuanto al drenaje, ya que su desarrollo en suelos mal drenados es deficiente y aún improbable. En lo que se refiere al agua, el achiote es muy resistente a las sequía, y se ha observado que a pesar que durante el periodo seco sufre ciertos trastornos fisiológicos como es la fuerte defoliación, se repone rápidamente después de caer las primeras lluvias. Las plantaciones establecidas en buenas condiciones de humedad durante todo el año, producen excelentes rendimientos. La temperatura varía de los 24 a los 30 grados centígrados. (MOSQUERA,1989) Básicamente tiene la siguiente clasificación: (VILLA, 1995) Subdivisión : agiosperma Clase : dicotiledoneas Orden : parietales Familia : Bixaceas Genero : bixa Especies: Bixa orellana linneo, B. sphaerocarpa Triana, B. urucurana willd, B. purpurea hort, etc. 2.2 COMPOSICION QUIMICA: Las investigaciones fitoquímicas anteriores han revelado presencia de varios derivados del carotenoides incluyendo el bixina y norbixina (Satyanarayana y otros., 2003), algunos terpenoides, tocotrienoles, y flavonoides (luteolina incluyendo y apigenina) en Orellana de Bixa semillas (Jondiko y Pattenden, 1989; Frega y otros., 1998; Pino y Correa, 2003), citado por Ahmad et.al., Otras 5 investigaciones han revelado que las hojas Orellana de Bixa presentan flavonoides bisulfatos (Harborne, 1975) y de abarcar del aceite esencial principalmente sesquiterpenes con el ishwarane como el compuesto principal (Lorenzo y Hogg, 1973). Se han encontrado las raíces para contener el ácido tomentosico del triterpeno Contiene dos principios colorantes, uno de los cuales es la "bixina". - rojo-anaranjado -, una sustancia algo cristalina de color rojo oscuro. El otro, que también es un elemento colorante, es la "nor-bixina" (orellina) amarillo -. La bixina es soluble en alcohol, más lo es en alcohol hirviente, éter y cloroformo, aceites y grasas; es poco soluble en agua. La nor-bixina, en cambio, es insoluble en éter, pero soluble en agua y alcohol. El principal constituyente colorante de la semilla del achiote es la bixina, que se encuentra en la cubierta exterior de la semilla de l fruto, representa mas del 80% de los pigmentos presentes, lo cual facilita su extracción los componentes principales de la semilla del achiote son(Córdoba,1987; Mosquera, 1989; Jaramillo, 1992; CNP, 2001; SDIC,2001). Resina Orellina (materia colorante amarilla) Bixina(materia colorante roja)(80%) Aceite volátil y aceite graso. Según diferentes fuentes, la composición tanto química como nutricional de la semilla del achiote es muy variada, como puede observarse en las tablas 1 y 2 (Córdoba,1987; ; Jaramillo, 1992; CNP, 2001; SDIC,2001). 6 Tabla1. Composición química de la semilla del achiote Composición química (%) Humedad 8.00 -13.00 Proteína 13-14.24 Celulosa 13.8 Fibra Cruda 18.48 Almidones 11.45 Carbohidratos totales 39.91 Ceniza 4.50-7.97 Energía 54 Kcal Tabla 2. Composición nutricional de la semilla del achiote Composición( mg/100g) Calcio 7 Fósforo 10 Hierro 1.4 Vitamina A 45 mg Riboflavina 0.2 Niacina 1.46 Tiamina 0.39 Ácido Ascórbico 12.5 Tabla 3. Composición del pigmento del achiote 7 Composición (g/100g) Proteínas 12.3-13.2 Pectina 0.23 Carbohidratos 39.91-47.90 Ceniza 5.44-6.92 Taninos 0.33-0.91 Pentosanos 11.35-14.97 Carotenoides 1.21-2.30 β- Carotenos 6.8-11.30 mg El colorante. El principal componente colorante de la semilla es la bixina, de color rojo oscuro. Químicamente es un ácido caretonoico de fórmula empírica C25H30O4, que se presenta como isómero geométrico del tipo cis, pero que puede convertirse a su forma trans, mas estable(Jaramillo, 1992). Es insoluble en y en cloroformo, aceites vegetales, acetato de etilo y propilenglicol. En la figura 1 aparece su formula estructural (Mosquera, 1989; Kalsec, 2001). El pigmento de la semilla de achiote, que se encuentra en la parte más externa, tiene diferentes compuestos según se muestra en la Tabla 3 (Cordoba,1987; Bernal, 1989; Jaramillo, 1992). Al hervir la bixina en una solución de álcali, se forma una molécula de metanol y una sal dipotásica que por acidificación, produce el ácido dibásico norbixina, C24H26O4 (Figura 2), pigmento carotenoide agua(Bernal,1989; Jaramillo,1992) Figura 1. Acido cis-polieno monometilester dicarboxilico soluble en 8 CH3 CH3 CH3 H3COOCHC CHCOOH CH3 Figura 2. Estructura de la norbixina (Kalsec, 2001) CH3 CH3 CH3 HOOC HC CHCOOH CH3 III- MATERIALES Y METODOS: 3.1 MATERIALES Y REACTIVOS: 3.1.1 Materiales para colectar la muestra: Bolsas de papel Registro de campo 3.1.2 Materiales del laboratorio: Material de uso común de laboratorio 3.1.3 Equipos utilizados Balanza analítica Estufa Molino Centrífuga Espectrofotómetro UV- Visible 3.1.4 Reactivos y soluciones Agua destilada Metanol Ferrocianuro de potasio Cloruro de Fierro Acido Clorhidrico Cloroformo Diclorometano Etanol 9 Sulfato de sodio anhidro Hidroxido de amonio cc. Cloruro de Sodio Acetato de Plomo Limaduras de Magnesio Alcohol amilico Cloruro férrico Acido Tánico Acido Sulfurtico Anhidrido acético Benceno Tolueno Agua oxigenada Hidroxido de Sodio Hidroxido de potasio Reactivo de Dragendorff Reactivo de Mayer Reactivo de Malser Reactivo de Reineckato de amonio Sulfato de quinina Reactivo de ninhidrina 3.2 METODOLOGIA: Se va utilizar la metodología descrita por (MARTINEZ, et.al, 2003 y MIRANDA, 2000) a) Recolectar y preparar las muestras frescas b) Reconocimiento de Alcaloides: Desmenuzar finamente unos 10 g de muestra fresca y colocarlos en un erlemeyer. Añadir un volumen suficiente de HCl al 5% para que toda la 10 muestra este en contacto con la solución ácida. Calentar con agitación al baño Maria durante 5 minutos. Enfriar y Filtrar. Colocar en 4 tubos de ensayo 2 ml de filtrado ácido. Añadir a cada uno dos gotas de los reactivos de Dragendorff, Mayer, Valser y Reineckato de amonio. Si observa turbidez o precipitados por lo menos en tres tubos, se considera que la muestra contiene alcaloides. c) Reconocimiento de Flavonoides, leucoantocianidinas y Cardiotónicos: En un erlemeyer colocar 10 g de muestra fresca finamente desmenuzada. Añadir un volumen suficiente de alcohol etílico que cubra toda la muestra y le confiera fluidez. Calentar al baño maria durante 5 minutos, con agitación. Enfriar, Filtrar. Al filtrado añadirle un volumen igual de solución de acetato de plomo al 4 % que contenga ácido acético al 0.5 %. Agitar. Dejar en reposar 15 minutos. Filtrar. Con el filtrado realizar ensayos de reconocimiento de flavonoides, leucoantocianidinas y cardiotónicos. Ensayo para flavonoides: Colocar varias limaduras de magnesio en un tubo de ensayo. Añadir 2ml del filtrado y por la pared del tubo, gota a gota dejar caer varias gotas de HCl cc. La aparición de colores naranja, rosado, rojo, o violeta es prueba positiva para la existencia de flavonoides en la muestra. Ensayo para leucoantocianidinas: colocar 2ml del filtrado en un tubo de ensayo.Añadir 1 ml de ácido clorhídrico cc. calentar en baño de agua hirviendo durante 15 minutos. La aparición de coloraciones rojas es prueba positiva de la existencia de leucoantocianidinas en la muestra. 11 Ensayo para cardiotónicos: en un tubo de ensayo colocar 1 ml del filtrado. Añadir 0.5 ml de reactivo de Kedde (mezclar 1 ml de solución A con 1 ml de solución B, para preparar el reactivo antes de su uso). La aparición de coloraciones violetas o púrpuras es prueba positiva de la existencia de carditónicos. d) Reconocimiento de Saponinas, Taninos, Esteroles y/o Triterpenoides y quinonas: En un erlemeyer colocar unos 75 g de muestra fresca finamente desmenuzada. Añadir un volumen suficiente de alcohol. Calentar al baño maría durante unos 10 minutos con agitación. Filtrar en caliente. Concentrar hasta la mitad del volumen en el filtrado. Trasvasar a un embudo de separación. Extraer con dos porciones de 20 ml c/u de diclorometano. Si es necesario, añadir un volumen de agua para que se formen las dos fases. Recuperar ambas fases. La fase acuosa se filtra y con el filtrado obtenido se realizan ensayos para taninos, saponinas y quinonas. La fase orgánica se recupera, se seca con sulfato de sodio anhidro y se filtra, con el filtrado realizar el ensayo para triterpenoides o esteroides. Ensayo para saponinas: agitar en un tubo de ensayo tapado, unos 4 ml del filtrado acuoso, vigorosamente durante 1 minuto. La formación de espuma abundante y estable es prueba presuntiva de la presencia de saponinas en la muestra. Ensayo para Taninos: Tomar 1 ml del filtrado acuoso en un tubo de ensayo, añadir 1 ml del reactivo de gelatina-sal. Si se forma un precipitado, centrifugar a 2000 RPM durante 5 minutos. Desechar el 12 sobrenadante. Redisolver el precipitado en 2 ml de urea 10 M. añadir 2-3 gotas de cloruro ferrico al 10 %. La formación de un precipitado al agregar el reactivo de gelatina, y la aparición de colores o precipitados verdes, azules o negros es prueba positiva de la presencia de taninos en la muestra. Ensayo para Triterpenos y/o esteroides: En un tubo de ensayo limpio y completamente seco, colocar 1 ml del filtrado orgánico. Añadir 1 ml de anhídrido acético. Por la pared del tubo y con mucha precaución, dejar rebalsar 1-2 gotas de ácido sulfúrico concentrado. La formación de colores azules, violetas, rojos o verdes es prueba positiva de que la muestra contiene esteroidesy/o Triterpenoides. Ensayo para quinonas: ENSAYO CON UNA FRACCION: Colocar en un tubo de ensayo unos 5 ml de filtrado acuoso. Añadir 1 ml de peróxido de hidrógeno al 20 % y 1 ml de ácido sulfúrico al 50 %. Calentar la mezcla en un baño de agua hirviendo durante 15 minutos. Enfriar. Añadir 5 ml de tolueno. Agitar sin emulsionar. Recuperar la fase toluénica. Trasvasar 2ml fase toluenica a un tubo de ensayo. Añadirle 1 ml de una solución de NaOH al 5 % con amoniaco. Agitar sin emulsionar. Si la capa acuosa toma una coloración rosada a roja a roja intensa es prueba positiva de la presencia de quinonas en la muestra. ENSAYO DIRECTO: colocar g demuestra fresca (o 1 g de muestra seca y molida), en un sistema de reflujo, agregar 5 ml de HCl al 5%. Reflejar 5 minutos. dejar enfriar y filtrar. Con el filtrado acuoso proceder como se describe para el ensayo con una fracción acuosa 13 e) Reconocimiento para Antocianinas: En un erlemeyer colocar unos 100 g de muestra fresca finamente desmenuzada. Añadir unos 200 ml de agua. Calentar a ebullición durante unos 5 minutos, filtrar. Ensayo: en un tubo de ensayo colocar 2 ml de filtrado. Añadir 1 ml de NaOH diluido. Observar el color formado. En otro tubo de ensayo colocar 2 ml de filtrado. Añadir unas gotas de acido mineral diluido. Observar el color formado. Las antocianinas se reconocen por formar diferentes colores a diferentes pH. IV.- RESULTADOS Cuadro N⁰4: Determinación de Metabolitos Secundarios presentes en las hojas y semillas de Bixa Orellana Metabolito Secundario Hojas Semillas Alcaloides + ± Flavonoides ++ + ++++ ++ Cardiotonicos - - Saponinas - - ++ + Esteroles y/oTripernos ± ± Quinonas - - Antocianidinas + + Leucoantocianidinas Taninos ++++ Abundante ++ Moderado + Escaso ± Dudoso 14 V.- DISCUSIÓN: Como se muestra los resultados en el cuadro N⁰1 las hojas presentan escasos alcaloides, ya que dio un escaso precipitado con los reactivos de Mayer, Wagner y Dragendorf, presentando reacción positiva con los tres reactivos: y para las semillas la reacción fue dudosa, debido a la gran cantidad de colorante presente en las semillas. Para la determinación de Flavonoides en las hojas se Bixa orellana se utilizo la reacción de Shinoda, la cual presento reacción positiva dando una coloración rosado claro, este resultado es un indicativo de que puede tener una buena capacidad antioxidante, dependiendo de la concentración de flavonoides y de otros polifenoles presentes en la especie; y en las semillas también s encontró una escasa presencia de flavonoides. Como reporta (Harbone JB 1975, Li PV 1999) la especie Bixa orellana contribuye al efecto antiinflamatorio por contener flavonoides, taninos, esteroides, lo cual esta corroborado en el presente análisis Tanto las hojas como las semillas de Bixa Orellana presentaron leucoantocianidinas, aunque las hojas en una cantidad abundante y las semillas en cantidad moderada tal como lo reporta (Harbone, 1975) La presencia de taninos fue tanto en hojas como en semillas, presentando reacción positiva con el reactivo gelatina-sal y cloruro ferrico, lo cual esta corroborado por (Harbone, 1975 y Ahmad. et.al., 2006) 15 VI. CONCLUSIONES 1. Se encontró escasa presencia de alcaloides en hojas y dudoso en semillas 2. Presenta cantidad moderada de flavonoides en hojas y en semillas escaso. 3. Presenta una cantidad abundante de leucoantocianidinas en hojas y moderado en semillas 4. No se encontró cardiotónicos tanto en semillas como en hojas 5. No se encontró saponinas tanto en hojas como semillas 6. Presenta taninos en cantidad moderada en hojas y escaso en semillas 7. Presento una reacción dudosa para los metabolitos de esteroles y/o triterpenos. 8. No se encontró quinonas. VI.- REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS: 1. Li PV Actividad biológica del extracto acuoso atomizado de hojas de Bixa orellana L (Achiote) en animales de experimentación. 2. Harborne, J.B., 1975. Flavonoid bisulfates and their co-occurrences with ellagicacid in the Bixaceae, Frankeniaceae, and related families. Phytochemistry 14, 1331–1337. 3. Lawrence, B.M., Hogg, J.W., 1973. Ishwarane in Bixa orellana leaf oil. Phytochemistry 12, 2995. 4. CORDOVA v., J.A. (1987). “El Achiote”: Cultivo, Beneficio y posibilidades de Exportación”. Revista ESSO Agrícola vol 34 N°1 pp. 3-7 16 5. JARAMILLO MORENO, C.A. Y MUÑOZ MORENO, O.A. (1992). Extracción de colorantes de Achiote. Trabajo de Grado (ingeniero Químico). Medellín. Universidad de Medellín. Facultad de Mina. Departamento de Procesos Químicos 6. MARTINEZ, A. ; OSPINA, F; VALENCIA,G; JIMENEZ, N. (2003). Manual de Practicas de Laboratorio de Farmacognosia y Fitoquímica 2003. Universidad de Antioquia. Facultad de Química Farmacéutica. Departamento de Farmacia. Medellín. Colombia