TEMA 18. EFECTO DE LOS XENOBIÓTICOS SOBRE PROTEÍNAS Y ADN Una extensa variedad de xenobióticos (Xbs) pueden ejercer efectos primarios o secundarios sobre los ácidos nucleicos. Es interesante identificar los efectos directos ó indirectos y los procesos bioquímicos implicados. En este tema veremos los aspectos básicos, algunos ejemplos de tóxicos específicos, fundamentalmente del ADN y algún método de estudio. Como ya se ha comentado en otros temas, muchos Xbs (en su mayoría carcinógenos) actúan en el organismo mediante la formación de especies reactivas de oxígeno (ROS) o a través de la formación de aductos con las proteínas y con el ADN (ver el tema 16). La formación de aductos requiere la existencia de grupos electrofílicos (deficientes en electrones) en el Xb (ó carcinógeno) y de centros nucleofílicos (ricos en electrones) tales como grupos amino, sulfhidrilo, hidroxilo, presentes en otras moléculas (proteínas, ARN y ADN). Estos aductos distorsionan la estructura de Las proteínas y/o ácidos nucleicos y, por tanto, su función o replicación en su caso. En el caso del ADN, normalmente el daño producido puede ser reparado, pero si no lo es, se introduce una base inapropiada en la nueva cadena de ADN, lo que originaría una mutación. UNION COVALENTE DE INTERMEDIARIOS REACTIVOS A BIOMOLECULAS La principal fuente de intermediarios reactivos derivados de los Xb es el hígado, ya que es el lugar principal de su metabolismo. La unión covalente a proteínas celulares (del citoplasma, retículo endoplásmico o núcleo), así como a ácidos nucleicos u otras macromoléculas, causa un daño que dependerá, fundamentalmente, de: - La reactividad del compuesto y su vida media - La extensión de la unión - La molécula a la que se une. - Límite de tolerancia. En el tema 16 veremos con más detalle la formación de aductos con proteínas y ác. Nucleicos. A continuación se muestran, únicamente, algunos ejemplos. Curso 08/09 1 EJEMPLO de compuestos que inducen toxicidad mediante su unión covalente a moléculas biológicas. Xenobiótico Metabolito reactivo propuesto Bromobenceno Órgano blanco y sitio de unión 3,4-epóxido y/o orto-quinona Hígado Acetaminofen N-acetil-p-benzo quinonimina Hígado Cl4C radical triclorometil y/o fosgeno Hígado p-aminofenol quinonimina Riñón H Ipomeanol epóxido Pulmón PROTEINAS La modificación covalente de proteínas puede tener profundos efectos sobre su estructura y actividad biológica. Algunos efectos bien conocidos incluyen la fosforilación, carboxilación, metilación, glicosilación y unión a ácidos grasos. Todo ello puede afectar a la estructura de membranas, metabolismo energético, transporte de metabolitos e iones, etc. La disminución de la incorporación de aminoácidos radiactivos en proteínas es con frecuencia secundario a los efectos de los tóxicos sobre la producción de energía o sobre la síntesis de mARN. Muy pocos tóxicos inhiben la síntesis de proteínas por inhibición de etapas implicadas en su síntesis. Entre ellos están la cicloheximida, que bloquea la peptidil transferasa, la puromicina, que produce la terminación prematura de la cadena y liberación de la recien sintetizada. Otros inhibidores (CCl4 y tolueno) producen la disgregación de poliribosomas en monoribosomas y a veces en subunidades ribosómicas. Algunos tóxicos pueden inducir la síntesis específica de proteínas. La metalotioneína, por ejemplo, es una proteína que une metales (Zn2+, Cd2+, Hg2+, MeHg1+ y otros metales pesados catiónicos). Esta capacidad se debe al alto contenido en cisteinas (33%) y grupos SH. La administración de éstos metales hace que aumente la síntesis de metalotioneína al aumentar, previamente, la síntesis del mARN correspondiente. Así, la metalotioneína del tejido renal aumenta por exposición repetida Curso 08/09 2 al mercurio. Otros agentes que inducen la síntesis de metalotioneina son los corticosteroides y el CCl4. REACCIONES CON PROTEÍNAS. Entre los intermediarios reactivos que pueden unirse de forma covalente a las proteínas se encuentran los siguientes: : ALDEHIDOS CARBONILOS Y : HALUROSDE ALQUILO EPÓXIDOS ACIL GLUCURÓNIDOS Curso 08/09 3 FORMACION DE ADUCTOS DE ADN Un gran número de Xbs pueden dañar el ADN. En el siguiente esquema se observa la conversión de un carcinógeno en un aducto de ADN y las posibles consecuencias. C arcin ógen o C arcin ógen o p ró xim o C arcin ógen o ú ltim o A d u cto d e ADN D etoxificación R ep aración M u tación N orm a l M u erte C án cer Existen 4 grandes clases de compuestos que ejercen sus efectos mediante la formación de aductos covalentes con bases del ADN (carcinógenos genotóxicos, sus efectos se estudian en el tema 19): a) hidrocarcuros aromáticos policíclicos (PAH), b) aminas aromáticas, c) nitrosaminas d) otros agentes alquilantes. Todos ellos tienen grupos electrofílicos o grupos que se pueden convertir en electrofílicos metabólicamente (epóxidos, hidroxilaciones). Estos grupos forman enlaces covalentes con nucleófilos presentes en el ADN, lo que origina la acción cancerígena. a) HIDROCARBUROS AROMATICOS POLICICLICOS Se forman como productos de la combustión de petróleo y material biológico, también se generan en el tabaco, whisky, carnes a la brasa y por combustión incompleta de combustibles fósiles (carbón y gasolina). Forman aductos con bases púricas, especialmente guanina, pero solamente tras la activación enzimática a carcinógeno próximo o último. Curso 08/09 4 Región bahíabahía bahía Carcinógeno Carcinógeno próximo Carcinógeno último Fenantreno inactivo b) AMINAS AROMATICAS Se usan en la industria del tinte ó del caucho (goma). Un ejemplo es el 2acetilaminofluoreno (AAF) que causa en animales múltiples cánceres (vejiga, hígado, intestino, oído, tiroides y pecho) (en ratas necesita del orden de g). Se ha usado como insecticida y algunos compuestos relacionados se encuentran en las carnes cocinadas (millonésima de g). Carcinógeno Carcinógeno próximo Carcinógeno último Curso 08/09 . 5 c) NITROSAMINAS Se forman en las carnes y pescados ahumados por interacción entre aminas naturales y nitritos añadidos como conservantes, pero su presencia mayoritaria está en el tabaco y sus productos. Actualmente se sabe que los efectos carcinógenos de las nitrosaminas están relacionados con los mecanismos bioquímicos que las activan (por ej. las oxidasas microsomales de función mixta). Espontánea N-Methylnitrosourea La mayoría de las nitrosaminas requieren la activación enzimática para formar el carcinógeno último. El mecanismo bioquímico por medio del cual se produce el cáncer se cree que tiene relación con la metilación de algunas bases nitrogenadas en el ADN, probablemente con la escisión (eliminación) de las bases nitrogenadas alquiladas más que con el nivel de alquilación. d) OTROS AGENTES ALQUILANTES Entre los carcinógenos químicos más significativos en la iniciación del cáncer destacan los agentes alquilantes (metilo, etilo). Estos atacan grupos nucleofílicos del ADN y pueden iniciar la secuencia de sucesos que dan lugar al crecimiento y replicación de células neoplásicas (cancerosas). Curso 08/09 6 Un ejemplo es el cloruro de vinilo (gas descubierto en 1817, usado en la industria del plástico como PVC): Agente monofuncional CH2=CH-Cl Grupos metilo unidos a N (izqda) u O (derecha) en Guaninas contenidas en el ADN Cloruro de vinilo Unión al resto de la molécula de ADN Otro ejemplo de este grupo es el gas mostaza, con grupos suficientemente electrófilos que no requieren activación (carcinógeno directo). El término mostaza se refiere a las ampollas que producen estos agentes en la piel. En agua, los compuestos originarios forman un electrófilo que reacciona con nucleófilos biológicos. Las mostazas nitrogenadas reaccionan con las bases de los ácidos nucleicos La reacción del N7 de la guanina con la mecloretamina se ilustra en la figura. La base modificada puede aparearse anormalmente durante la replicación (3) e inducir mutaciones, pero tambien puede ser eliminada del ADN (4), lo que produce escisión de la cadena, o producir la fragmentación del ADN (5) al romperse el anillo. También puede haber entrecruzamiento de cadenas de ADN (6). Puesto que los agentes alquilantes modifican el crecimiento celular, la mitosis, la diferenciación y la función de la célula, las células que se están dividiendo más rápido, son las más susceptibles a la acción de estos agentes. En células que se dividen lentamente, los procesos de Curso 08/09 7 reparación del ADN pueden revertir los efectos de la modificación del ADN. Las mostazas nitrogenadas son, por tanto, mutágenas y carcinógenas. Sin embargo, y debido a la propia acción de estos agentes sobre las células en división, muchos de ellos se usan en el tratamiento contra el cáncer. Finalmente, la estructura de las ADN polimerasas también influye en la inhibición de las mismas por tóxicos. La polimerasa- contiene uno o más grupos SH críticos, por lo que es muy sensible a sustancias que reaccionan con estos grupos, como es el caso de la N-etilmaleimida. La polimerasa- no tiene grupos SH críticos por lo que no es sensible a tales sustancias. EFECTO DE LOS XENOBIOTICOS SOBRE EL ARN La acción sobre el ARN no es tan importante como en el caso del ADN. Aunque un tóxico puede inhibir la síntesis de todas las especies de ARN (mARN, tARN y rARN), el mARN es el que exhibe las manifestaciones más tempranas de la toxicidad, lo que implica una disminución de los niveles de enzimas y proteínas de vida media corta. En muchos casos la inhibición de la síntesis de mARN es secundaria a otros mecanismos. Por ej. la actinomicina D (antibiótico, inhibidor específico de la síntesis de ARN), se une a la desoxiguanosina del ADN (se intercala entre 2 pares G-C adyacentes) y bloquea el movimiento de la ARN polimerasa (ARNp) sobre el molde de ADN. A bajas dosis se inhibe la síntesis de rARN y a altas dosis la de mARN. Otro ej. es la inhibición de la síntesis de mARN secundaria a la interferencia en la producción de energía (inhibición de la fosforilación oxidativa o alteraciones en la estructura mitocondrial). La estructura de las ARNp también influye en la inhibición de las mismas por tóxicos. Así, las ARNp muestran distinta sensibilidad a la -amanitina, toxina de la amanita faloides (ver tema 17). Curso 08/09 8 TEST DE GENOTOXICIDAD (TEST DE AMES) Se han desarrollado muchos tests de genotoxicidad para medir la capacidad de mutágenos y carcinógenos de producir cambios cuantificables en el genotipo de células procariotas y eucariotas detectables mediante cambios en el fenotipo. Normalmente se utiliza para ello la mutación de genes, daño cromosómico, daño y reparación del ADN y transformación celular. Se han desarrollado ensayos en bacterias, hongos, células de roedores, humanas, etc. La mayoría de los ensayos de transformación en mamíferos miden la aparición de células alteradas morfológicamente por el agente mutágeno o carcinógeno. Suelen usarse células derivadas de fibroblastos de ratón, que son células muy uniformes tanto en su crecimiento como en la morfología. Sin embargo, si el efecto es mediante un mecanismo no-genotóxico o epigenético, como ocurre con los promotores de tumores, no se detecta mediante estas técnicas. Ello se refleja parcialmente en la pérdida de relación entre mutagénesis y carcinogénesis. Hasta el momento se dispone de pocos ensayos para la identificación de promotores tumorales, y la mayoría de ellos han sido identificados a través de experimentos de iniciación-promoción en roedores. Una de las pruebas que se utilizan para correlacionar la capacidad carcinogénica con la capacidad de afectar al ADN celular es el denominado TEST de AMES. Se realiza añadiendo a cultivos de Salmonella typhimurium el carcinógeno cuya mutagenicidad se pretende analizar. Estos cultivos se realizan en un medio carente de histidina, de forma que solamente crecen bactaerias con mutaciones en alguno de los genes que metabolizan este aminoácido. A mayor número de colonias mayor capacidad mutagénica del carcinógeno. El mayor problema de este Test es la utilización de bacterias, las cuales no son capaces de activar metabólicamente muchos carcinógenos como ocurre en humanos y animales. Ello llevó a la adición al medio de cultivo de extractos de hígado de animales. Así se consigue reproducir, con bastante fiabilidad, la correlación observada en los ensayos con animales, ahorrando tiempo y dinero. Curso 08/09 9 SITIOS DE ACCIÓN DE FÁRMACOS SELECCIONADOS USADOS EN EL TRATAMIENTO DEL CÁNCER Síntesis de Pirimidinas Mercaptopurina Tioguanina Inhibe la síntesis del anillo Síntesis de purinas de purina Inhibe las interconversiones de nucleótidos Ribonucleótidos Hidroxiurea Metotrexato Inhibe la reductasa de Inhibe la síntesis del Ribonucleótido anillo de purina Inhibe la formación de dTMP Fluorouracilo Inhibe la formación de dTMP Arabinósido de C Daunorrubicina Doxorrubicina Bleomicinas Etopósido Dañan al ADN y previenen su reparación Desoxirribonucleótidos Mostazas nitrogenadas Agentes alquilantes Modifica el ADN ADN Actinomicina D Inhibe la síntesis de ARN ARN CCl4 Tolueno Disgregación de polirribosomas Vinblastina Vincristina Inhibe la función Asparaginasa Desamina a la asparagina e inhibe la síntesis de proteínas Proteína Microtúbulos Enzimas, factores, etc. Curso 08/09 10