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Rev. PeRu. entomol. 52 (1): 9-26. 2017.
Morfología de huevos y larvas de primer estadio de
Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
ELIZABETH YOLANDA NÚÑEZ SACARÍAS DE DIOSES1 MARIVEL PEREYRA COLCHADO2
RESUMEN. ELIZABETH YOLANDA NÚÑEZ SACARÍAS DE DIOSES, MARIVEL PEREYRA
COLCHADO. 2017. Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones
de espárrago peruano. Rev. peru. entomol. 52 (1): 9-26. Entre la variedad de plagas que afectan
al espárrago, son los huevos y primeros estadios larvales de algunos Lepidóptera ubicados
en los turiones que afectan la exportación del producto peruano, así se propuso establecer las
diferencias morfológicas de estados inmaduros de especies colectadas durante los años 2013 al
2015, se identificaron como adultos y se criaron para el estudio de los inmaduros. Se establece
el número y forma de las estructuras del área micrópilar de los huevos y coloración, tamaño
de las pináculas, chalazas, patas y propatas del primer estadio larval. Los resultados presentan
detalles en la descripción de cada especie de Noctuidae: Copitarsia corruda Pogue & Simmons
2008, Chloridea (Heliothis) virescens (Fabricius 1777), Spodoptera frugiperda (J.E. Smith
1787), Spodoptera ochrea (Hampson 1909), Spodoptera eridania (Cramer 1782), Spodoptera
latifascia (Walker 1856), Agrotis subterránea (Fabricius 1974), Agrotis malefida (Guenée,
1852) y Peridroma saucia (Hübner 1808) y del Pyralidae: Elasmopalpus lignosellus (Zeller,
1848), procedentes de Ica, Lima, Ancash y La Libertad.
Palabras clave: Espárrago, Huevo, Larva de primer estadio, Lepidóptera.
SUMMARY. ELIZABETH YOLANDA NÚÑEZ SACARÍAS DE DIOSES, MARIVEL PEREYRA
COLCHADO. 2017. Morphology of eggs and first instar larvae of Lepidoptera in Peruvian
asparagus shoots. Rev. peru. entomol. 52 (1): 9-26. Among the variety of pests recording affecting
the asparagus, there are lepidopteran eggs and first instar larvae located in the asparagus spears
that affect the export of the Peruvian product, thus, it is proposed to establish the morphological
differences of immature stages species collected during the years 2013 to 2015, there were
identify as adults and mass breeding nucleus for the immature stages study. We stablish the
number and shape of primary cells, secondary cells and radial coast from the micropilo area
eggs and larvae colour, size, pinnacula, chalazas, legs and prolegs. Results present details in
each specie description of Noctuidae Copitarsia corruda Pogue & Simmons 2008, Chloridea
(Heliothis) virescens (Fabricius 1777), Spodoptera frugiperda (J.E. Smith 1787), Spodoptera
ochrea (Hampson 1909), Spodoptera eridania (Cramer 1782), Spodoptera latifascia (Walker
1856), Agrotis subterránea (Fabricius 1974), Agrotis malefida (Guenée, 1852) and Peridroma
saucia (Hübner 1808). It is included the description of Elasmopalpus lignosellus (Zeller, 1848)
Lep: Pyralidae coming from Ica, Lima, Ancash and La Libertad.
Keywords: Asparagus, Egg, first instar larvae, Lepidoptera, Perú.
Introducción
El espárrago, Asparagus officinalis Linnaeus,
es la principal hortaliza en el Perú, tanto por
su alto rendimiento como por la calidad e
inocuidad del producto. Se puede producir
durante todo el año, incrementar el número
de exportaciones y obtener vegetales de alta
calidad. Según el MINAGRI e INEI (2014)
se procesó más del 50 % de la producción
nacional, equivalente a 191 TM solamente en
el Proyecto Especial CHAVIMOCHIC, según
La República (2015) las principales regiones
1
2
SDCB - SENASA
Museo de Historia Natural UNMSM, Perú
productoras son La Libertad alcanzando 191
mil TM (52 %), seguida de Ica con 148 mil
TM (39 %), Lima en tercer puesto con 19 mil
TM (5 %), Ancash en cuarto lugar con 12 mil
TM (3 %) y Lambayeque con 5 mil TM (1 %).
La Libertad cuenta con 8 000 ha de espárrago
blanco. Recientemente Piura ha incursionado
en la producción de este cultivo de acuerdo
el INEI (2014). Estas ventajas han permitido
que nuestro País se ubique como el Segundo
exportador mundial de espárragos blancos
en conservas, con el 43 % del volumen total
exportado en el 2013 y el Primer exportador
mundial de espárrago fresco, con el 40 % del
10
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
volumen total exportado en el 2013 siendo
Estados Unidos de Norte América el principal
país de destino de las exportaciones peruanas
(Perú 21, 2017).
Copitarsia sp., es considerada la principal
plaga del espárrago por el interés cuarentenario
que presenta para la agro exportación, no está
permitido que turiones frescos con la plaga,
(huevos o larvas de primer estadio) ingresen
a los países de destino, Núñez et al (2008),
motivo por el cual debe ser fumigado con
bromuro de metilo, ocasionando una reducción
de la vida útil del producto. Inicialmente,
es la especie es reportada erróneamente en
los géneros: Mamestra, Polia, Spaelotis,
Graphiphora. Como Copitarsia es reconocida
a partir de 1974. Tuvo varias sinonimias
como C. consueta (1974), C. incommoda
(2002), C. nr. turbata (2003) y C. decolora
(2004). Recientemente es descrita como una
nueva especie Copitarsia corruda (Pogue y
Simmons 2008). Se comprende porque no se
pudo realizar un manejo efectivo contra esta
plaga.
Además de C. corruda, posturas o larvas
pequeñas de otras especies de Lepidoptera son
reportadas, por diversos autores, en turiones
verdes de exportación, procedentes de costa
norte, centro y sur. Entre los Noctuidae se
presentan, Chloridea (Heliothis) virescens,
Spodoptera ochrea, y Spodoptera eridania
“Masticadores de follaje “, Spodoptera
frugiperda, Spodoptera latifascia y Peridroma
saucia “Gusanos cortadores “, Agrotis
subterranea. Agrotis malefida, “gusanos
de tierra”. Se incluye a Elasmopalpus
lignosellus. Lepidoptera: Pyralidae “Cortador
de los tallos de la planta” y otros más. Todos
ellos se presentan también en otros cultivos
de importancia económica (Angulo y Weigert
1975; Sánchez y Apaza 2000).
Se considera que las estructuras del área
micropilar de los huevos y características de
setas, propatas y patas del primer estadio larval
son diferentes en cada una de las especies que
se colectarán en las campañas propuestas., de
este modo se pueden reconocer y diferenciar.
El objetivo del estudio es dar a conocer la
morfología de huevos y larvas de primer estadio
de las especies de los lepidópteros colectados
en diversas localidades de las regiones del
Perú, aprendizaje del reconocimiento y
diferenciación en turiones infestados, debido
a que constituyen un factor de riesgo para las
exportaciones.
El presente es parte del Proyecto “Mejora de
las Condiciones Fitosanitarias del Espárrago
Verde de Exportación, para Acceder con
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
Mejores Ventajas al Mercado Internacional”
del SENASA IPEH MEF Ica, Lima, Ancash
y La Libertad.
Materiales y métodos
Metodología
Para una mejor comprensión de la metodología
se ha dividido en: 1. Colección del material
Biológico, 2. Montaje y preparación, 3.
Identificación y 4. Análisis estadístico
del número de celdas primarias, celdas
secundarias y costas radiales de Copitarsia
corruda, Spodoptera frugiperda y Spodoptera
ochrea según la localidad de procedencia.
1. Colección: Tabla 1. Material biológico
(huevos, larvas, pupas y adultos vivos de
Noctuidae y Pyralidae sea de campo o
capturados en diversos tipos de trampas) de
las 10 especies a estudiar fueron colectadas
en forma semanal. Cada parcela se dividió
en 05 bloques, en cada bloque se hace un
aspa con 05 plantas. De cada planta se toman
10 brotes o 10 turiones. Las colecciones
se efectuaron desde agosto 2013 a agosto
2015, en las 4 regiones esparragueras del
Perú: Ica, Lima, Ancash y La Libertad.
El total de muestras y procedencia de los
especímenes está expresado en la Tabla
1 y 2. Los tejidos vegetales infestados
con los diversos estados de las plagas y
que pertenecían a un bloque determinado
fueron confinadas en cada bolsa de papel
kraft, con el borde libre doblado dos veces,
engrampado repetidas veces para evitar la
fuga de los especímenes y rotuladas con la
información correspondiente. Las bolsas
fueron colocadas junto con formatos de
registro de procedencia, dentro de cajas
de tecnoport y estas selladas con cinta de
embalaje para su envío a la Subdirección
de Control Biológico (SCB) del Servicio
Nacional de Sanidad Agraria SENASA,
en Ate-Vitarte, Lima, donde se procedió
a la recuperación de las muestras
recibidas. Este material previo examen
entomológico y microbiológico y descarte
de especímenes enfermos y desinfección de
los sanos (Área de Cuarentena) fue criado
hasta la recuperación del adulto. Parte de
los adultos obtenidos de una muestra son
procesados para montaje en alfileres y
extracción de genitalia tanto masculina
como femenina para la determinación de
la especie (Área de Caracterización). El
resto de especímenes fue empleado en la
formación de núcleos de crianza de las diez
especies en estudio, separados por fecha de
ingreso y procedencia. Para la crianza se
utilizaron dietas desarrolladas para cada
una de las 10 especies estudiadas, tanto
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
para la alimentación de larvas como de
adultos. En general la dieta para larvas tiene
como componentes principales: germen de
trigo, agar, vitaminas y antibióticos. De
acuerdo a la alimentación de cada especie,
a la dieta se les adiciona plántulas de frijol
o raíces de maíz, ambas desarrolladas en
invernadero o turiones procedentes de
campo sin aplicación de plaguicidas. La
dieta para adultos está preparada a base
de sustancias azucaradas: miel de abeja,
azúcar diluida en agua, en proporción 1:1
(Área de Producción).
11
Microscopía y en el MUSEO de la SCBSENASA.
Parte de los huevos y larvas de primer estadio
separadas por especie y procedencia fueron
destinados a la realización de micropreparados
para su observación, microfotografías e
identificación. Los micropreparados de
estructuras de huevos y larvas de primer estadio
se realizaron siguiendo un procedimiento que
comprende la maceración, evisceración y
deshidratación de las muestras en diferentes
Tabla 1. Procedencia de las especies estudiadas.
Latitud
Longitud
Ica
Paiján
Huaura
Cañete
Santiago
7°43’58”S
11°04’12”S
13°04’32”S
14°11’08”S
79°18’05”O
77°35’57”O
76°23’07”O
75°42´53”O
Altitud
m.s.n.m.
93
72
45
378
Ancash
Casma
09°28´27”S
78°18’38”O
40
Rázuri
Virú
Casma
Huarmey
Barranca
Ate
Santiago
Pisco
Chao
Virú
Santa
Huarmey
Barranca
Cañete
Santiago
Chincha
07°42’07”S
08°25’30”S
09°28´27”S
10°04´36”S
10°43’20”S
10°00’37”S
14°11’08”S
14°04’00”S
08°32’15”S
08°25’30”S
09°02’54”S
10°04´36”S
10°43’20”S
13°04’32”S
14°11’08”S
13°24’51”S
79°26´16” O
78°°46’47”O
78°18’38”O
78°07’56”O
77°41’22”
76°52’12”O
75°42´53”O
75°44’00”O
78°40’48”O
78°°46’47”O
78°33’18”O
78°07’56”O
77°41’22”
76°23’07”O
75°42´53”O
76°07’42”O
110
100
40
18
252
450
378
15
120
100
30
18
252
45
378
95
Tacna
Tacna
18°02’33”S
70°14’42”O
562
Spodoptera latifascia
Lima
Huacho
11°06’24”S
77°36’18”O
41
Agrotis subterranea
Ica
Santiago
14°11’08”S
75°42´53”O
378
Agrotis malefida
La Libertad
Chao
Rázuri
07°42’07”S
79°26´16” O
110
78°40’48”O
120
Peridroma saucia
Ancash
Casma
09°28´27”S
78°18’38”O
40
Elasmopalpus lignosellus
La Libertad
Virú
08°25’30”S
78°°46’47”O
100
Especie
Región
La Libertad
Copitarsia
corruda
Chloridea
virescens
Lima
La Libertad
Spodoptera
frugiperda
Ancash
Lima
Ica
La Libertad
Spodoptera
ochrea
Ancash
Lima
Ica
Spodoptera
eridania
Localida
08°32’15”S
Nota: Detalles de Longitud, latitud y altitud de las localidades de colecta en Ica, Lima, Ancash y La Libertad.
2. Montaje
y
Preparación:
Los
procedimientos de montaje, disección,
micropreparados, etiquetado, medición y
catalogación de los datos, fueron realizados
en el Laboratorio de Micromontaje-
concentraciones de alcohol y el montaje en
Hoyers o Euparal (BIOQUIP 1985). En la
Tabla 2 se muestra el número total de huevos
y larvas de primer estadio utilizados para el
estudio.
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
12
Tabla 2. Número de especímenes utilizados
para el estudio.
Especie
Copitarsia corruda
Chloridea virescens
Spodoptera frugiperda
Spodoptera ochrea
Spodoptera eridania
Spodoptera latifascia
Agrotis subterranea
Agrotis malefida
Peridroma saucia
N° de
huevos
60
30
100
85
30
30
30
60
30
Elasmopalpus lignosellus
30
N° de
larvas
100
30
100
75
30
30
30
60
30
30
Nota: Cantidad de especímenes utilizados para el estudio de
caracterización de las 10 especies
3. Identificación: Para la identificación de
especies adultos se utilizaron parcialmente
las claves y/o descripciones de Todd & Poole
(1980), Pogué & Passoa (2000) y Pogué &
Simmons (2008). En la descripción de los
huevos se siguió la terminología propuesta por
Angulo & Weigert (1975). Para la descripción
de las larvas y la terminología empleada en
la quetotaxia larval se siguió a Stehr (1987).
Todas las observaciones morfológicas,
patrones de coloración, medidas y fotografías
de macro y micro estructuras de huevos y
larvas de primer estadio se registraron con
Microscopio estereoscopio marca Zeiss
Modelo DV20 y Microscopio DIC marca
Zeiss Modelo AXIO SCOPE A1 con cámara
fotográfica para microsccopia modelo MRC5
ZEISS.
4. Análisis estadístico: Se aplicó el análisis
estadístico “F” de Fisher o “Método de análisis
de varianza” (de Excel) para comprobar si la
variabilidad del número de celdas primarias,
celdas secundarias y costas radiales son
influenciadas por las condiciones de las
localidades de procedencia. Este análisis fue
aplicado a la data obtenida de 3 especies:
Copitarsia corruda de dos localidades
(Santiago y Paiján), Spodoptera frugiperda
de seis localidades (Santiago Pisco Barranca
Casma, Huarmey y Rázuri) y Spodoptera
ochrea de cuatro localidades (Santiago Pisco
Barranca y Chao). No se pudo realizar el
análisis de las siete especies restantes por
que procedían de una sola localidad. La data
analizada fueron números enteros, motivo
por el cual se realizó la transformación con la
fórmula √x .
Resultados
Se presentan dos grupos de resultados
importantes.
Primero:
la
descripción
morfológica de huevos y larvas de primer
estadio de 10 especies procedentes de las
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
regiones de Ica, Lima, Ancash y La Libertad y
segundo: los resultados del análisis estadístico
de la variabilidad en el número de celdas
primarias, celdas secundarias y costas radiales
del área micropilar de los huevos de Copitarsia
corruda, Spodoptera frugiperda y Spodoptera
ochrea según la localidad de procedencia.
Primero: Morfología de diez especies de
lepidópteros, colectados en turiones de
espárrago verde
1. Copitarsia corruda Pogue & Simmons,
2008. Noctuidae:Cucullinae
Huevos, Figuras 1a, 3a, 3b, 3c, 3d
Características generales: Lateralmente es
semiesférico, con base amplia, diámetro de
0.60 ±0.10 mm, altura de 0.43±0.050 mm, color
blanco. Son depositados individualmente en
el extremo superior del turión. La coloración
varía de acuerdo al desarrollo embriológico
que dura de 4 a 5 días, al momento de la
ovoposición son blanquecinos, luego forman
manchas rojas que rodean la parte central
que se oscurece poco a poco. Las manchas se
ordenan hasta formar un anillo continuo que
rodea la zona central del huevo, además, se
observa una mancha redonda en la zona polar.
Finalmente vira a gris antes de la eclosión
debido a que el corion se hace transparente y
se trasluce la larva.
Área micropilar: La roseta primaria es de
forma circular, formada por 15 a 21 celdas
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo, 2 veces la longitud
de su región más ancha. La roseta primaria
se ubica en una proyección con respecto a
las celdas secundarias. La roseta secundaria
posee 21 a 26 celdas, dispuestas en un ciclo,
finalizando en forma de cuña, débilmente
marcadas lo que dificulta su visualización.
Relación de longitud entre roseta primaria y
roseta secundaria 1:1.5. Costas radiales en
número de 30 a 36. Costas transversales no
son notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2a
Descripción: Longitud 2.50± 0.50 mm y ancho
0.30±0.50 mm, color blanquecino o crema.
Cabeza: 0.30 – 0.35 mm de ancho. Tórax: L2
ventral a L1, MSD2 ventrocaudal a MSD1,
seta L2 y L3 ausente en mesotórax y metatórax
Abdomen: Porción distal de las propatas
anchas, Crochets uniseriales arreglados en
mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos. Propatas del mismo color del
cuerpo reducidas en los segmentos A3 y A4
a la mitad del largo de las propatas de los
segmentos A5 y A6. Cabeza, escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Cada segmento presenta setas simples
de color gris oscuro 1/3 del ancho del cuerpo
y pinaculas 1/2 del largo de las setas, de color
marrón.
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
a
b
c
d
e
f
g
h
i
13
j
Figura 1. Área micropilar de los huevos de diez especies de lepidóptera a) Copitarsia corruda, b)
Chloridea virescens, c) Spodoptera frugiperda, d) Spodoptera ochrea, e) Spodoptera eridania, f)
Spodoptera latifascia, g) Agrotis subterránea, h) Agrotis malefida, i) Peridroma saucia, j) Elasmopalpus
lignosellus.
14
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
2. Chloridea (Heliothis) virescens (Fabricius,
1777). Noctuidae: Heliothinae
Huevos, Figuras 1b, 4a, 4b, 4c, 4d
Características generales: Visto lateralmente
es subpiramidal, el punto de fijación al
tejido vegetal es menor que el de Copitarsia
corruda, con un diámetro de 0.45±0.15 mm,
altura de 0.45±0.20 mm, color amarillo. Son
depositados individualmente en el extremo
superior del turión. El color varía de acuerdo
al desarrollo embriológico, que dura de 3
a 4 días, al momento de la ovoposición son
amarillos luego se observa la formación de
una línea rosada en la zona central del huevo
que aumenta hasta dividirlo en 2 zonas, la zona
superior roja y la inferior amarilla, antes de la
eclosión la zona superior vira a gris porque el
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
corion se hace transparente y se transluce la
cabeza y el escudo cefálico de la larva recién
formada.
Área micropilar: La roseta primaria es de
forma circular, formada por 12 a 16 celdas
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo y 2 veces la longitud
de su región más ancha. La roseta primaria
se ubica en una proyección con respecto a
las celdas secundarias. La roseta secundaria
posee 20 a 25 celdas, dispuestas en un ciclo,
finalizando en forma de cuña, débilmente
marcadas lo que dificulta su visualización.
Relación de longitud entre roseta primaria
y roseta secundaria 1:1. Costas radiales en
número de 22 a 26. Costas transversales no
son notorias.
a
b
c
d
e
f
g
h
i
j
Figura 2. Larvas de primer estadio de 10 especies de lepidóptera a) Copitarsia corruda, b) Chloridea
virescens, c) Spodoptera frugiperda, d) Spodoptera ochrea, e) Spodoptera eridania, f) Spodoptera
latifascia, g) Agrotis subterránea, h) Agrotis malefida, i) Peridroma saucia, j) Elasmopalpus
lignosellus.
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
a
b
c
15
d
Figura 3. Secuencia del desarrollo embrionario de Copitarsia corruda, a) Huevos recién
ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) 4° día de desarrollo. Barra de
escala = 0.2 mm.
a
b
c
d
Figura 4. Secuencia del desarrollo embrionario de Chloridea virescens, a) Huevos recién
ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Huevo antes de la eclosión; Barra
de escala = 0.2 mm.
Larvas de primer estadio, Figura 2b
Descripción: Longitud de 2.60 ±0.20 mm,
ancho 0.25±0.05 mm, color amarillo. Cabeza:
0.25 – 0.35 mm de ancho, marrón oscuro.
Tórax: L2 ventral a L1, MSD2 ventrocaudal
a MSD1, Seta L2 y L3 ausente en mesotórax
y metatórax. Abdomen: porción distal de las
propatas anchas. Crochets uniserial arreglados
en mesoserie. Seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos. Escudo torácico, patas
torácicas y escudo anal color marrón oscuro.
Propatas color marrón oscuro, todas del
mismo tamaño. Cada segmento presenta setas
simples de color marrón oscuro 1/3 del ancho
del cuerpo. Pináculas y chalazas 1/3 del largo
de las setas, de color marrón.
a
b
3. Spodoptera frugiperda (J.E. Smith, 1787).
Noctuidae: Acronyctinae
Huevos, Figuras 1c, 5a, 5b, 5c, 5d
Características
generales:
De
color
blanquecino, visto lateralmente es suboval
con un diámetro de 0.50± 0.10 mm, altura
de 0.40±0.10 mm. Son depositados en
masas de aproximadamente 200 huevos, en
varios niveles y con una cubierta de escamas
filamentosas blanquecinas. Varían de color
conforme avanza el desarrollo embriológico,
3 a 4 días, al momento de la ovoposición son
blanquecinos luego viran a gris, el corión se
trasluce y se puede observar la larva.
c
d
Figura 5. Morfología y secuencia del desarrollo de los huevos de Spodoptera frugiperda, a)
Huevos recién ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Vista lateral del
huevo. Barra de escala = 0.2 mm.
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
16
Área micropilar: La roseta primaria es de
forma rectangular, formada por 09 a12 celdas
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo, 2 veces la longitud de
su región más ancha. La roseta secundaria
posee 18 a 23 celdas, dispuestas en un ciclo,
irregular, de forma poligonal. Relación
de longitud entre roseta primaria y roseta
secundaria 1:2. Costas radiales en número de
48-56. Costas transversales notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2c
Descripción: Longitud de 1.90 ±0.15 mm,
ancho 0.29± 0.04 mm, color blanquecino o
crema. Cabeza marrón oscuro, 0.25 – 0.30
mm de ancho. Tórax: L2 ventral a L1, MSD2
ventrocaudal a MSD1, seta L2 y L3 ausente
en mesotórax y metatórax. Abdomen: Porción
distal de las propatas con banda oscura,
crochets uniserial arreglados en mesoserie,
seta L3 y SV3 ausente en todos los segmentos,
propatas del mismo color del cuerpo y todas
del mismo tamaño. Escudo torácico, patas
torácicas y escudo anal color marrón claro.
Cada segmento presenta setas simples de
color gris oscuro 1/3 del ancho del cuerpo.
Chalazas 1/3 del largo de las setas y pinaculas
1/4 del largo de las setas ambas estructuras de
color marrón.
4. Spodoptera ochrea (Hampson, 1909).
Noctuidae: Acronyctinae
Huevos, Figuras 1d, 6a, 6b, 6c, 6d
Características generales: De color gris claro,
lateralmente es suboval con un diámetro de
0.50 ± 0.05 mm, altura de 0.40±0.05mm. Son
depositados en masas de aproximadamente
280 huevos, en varios niveles y con una
cubierta de escamas filamentosas color gris.
La coloración varía según el desarrollo, de 3 a
4 días, al momento de la ovoposición son color
gris claro luego viran a color rosado oscuro
y posteriormente a gris oscuro, el corión se
trasluce y se puede observar la larva.
Área micropilar: La roseta primaria es de
forma circular, formada por 09 a 11 celdas
a
b
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo y 2 veces la longitud
de su región más ancha. La roseta secundaria
posee 17 a 21 celdas, dispuestas en un ciclo,
irregulares, de forma poligonal. Relación
de longitud entre roseta primaria y roseta
secundaria 1:2. Costas radiales en número de
48 a 56. Costas transversales notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2d
Descripción: Longitud de 1.90 ±0.20 mm,
ancho 0.29± 0.04 mm, color blanquecino o
crema. Cabeza: 0.25 – 0.30 mm de ancho,
marrón oscuro. Tórax: L2 ventral a L1.
MSD2 ventrocaudal a MSD1. Seta L2 y L3
ausente en mesotórax y metatórax. Abdomen:
Porción distal de las propatas anchas, con
banda oscura, crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos, propatas gris oscuro y todas
del mismo tamaño. Escudo torácico, patas
torácicas y escudo anal color marrón oscuro.
Cada segmento presenta setas simples de
color gris oscuro 1/3 del ancho del cuerpo,
Chalazas 1/3 del largo de las setas y pináculas
1/4 del largo de las setas ambas estructuras de
color marrón.
5. Spodoptera eridania (Cramer, 1782).
Noctuidae: Acronyctinae
Huevos, Figuras 1e, 7a, 7b, 7c, 7d
Características generales: De color verde claro,
lateralmente es suboval con un diámetro de
0.50 ±0.05 mm, altura de 0.40 ±0.15 mm. Son
depositados en masas de aproximadamente
200 huevos, en uno o dos niveles y con una
cubierta de escamas filamentosas color gris
oscuro. La coloración varía de acuerdo al
desarrollo, de 3 a 4 días, al momento de la
ovoposición son verde claro viran al verde
oscuro y posteriormente a gris oscuro, el
corión se trasluce y se puede observar la larva.
Área micropilar: El corión es delgado y las
celdas están débilmente marcadas. La roseta
primaria es de forma hexagonal, formada por
09 a 12 celdas primarias. Cada celda es de
c
d
Figura 6. Secuencia del desarrollo de los huevos de Spodoptera ochrea, a) Huevos recién ovipuestos,
b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Vista lateral del huevo. Barra de escala = 0.2 mm.
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
forma petaloide con extremo redondo y 2 veces
la longitud de su región más ancha. La roseta
secundaria posee 19 a 21 celdas, dispuestas
en un ciclo, irregulares, de forma poligonal.
Relación de longitud entre roseta primaria
y roseta secundaria 1:2. Costas radiales en
número de 48 a 54. Costas transversales
notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2e
Descripción: Longitud de 1.60± 0.10 mm,
ancho 0.29±0.01 mm, color blanquecino o
crema. Cabeza marrón oscuro, 0.25 – 0.30
mm de ancho, Tórax: L2 ventral a L1, MSD2
ventrocaudal a MSD1, Seta L2 y L3 ausente
en mesotórax y metatórax. Abdomen: Porción
distal de las propatas anchas, con banda
gris oscura, crochets uniserial arreglados en
mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos, propatas gris oscuro y todas
del mismo tamaño. Escudo torácico, patas
torácicas y escudo anal color marrón oscuro.
Cada segmento presenta setas simples de
color gris oscuro 2/3 del ancho del cuerpo.
Chalazas 2/3 del largo de las setas y pináculas
1/3 del largo de las setas, ambas estructuras de
color marrón oscuro.
6. Spodoptera latifascia (Walker, 1856)
Noctuidae: Acronyctinae
Huevos, Figuras 1f, 8a, 8b, 8c, 8d
a
b
17
Características generales: Blanquecinos,
lateralmente son de forma suboval con un
diámetro de 0.50 ±0.10 mm, altura 0.40±
0.15 mm. Son depositados en masas de
aproximadamente 200 huevos, en varios
niveles en forma irregular, con una cubierta
de escamas filamentosas grises oscuras, el
color varía por el desarrollo embriológico, 3
a 4 días, al momento de la ovoposición los
huevos son blanquecinos, viran al color gris
por el color de la cabeza oscura de la larva que
se trasluce a través del corion.
Área micropilar: con la roseta primaria
rectangular, formada por 08 a10 celdas
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo, 2.5 veces la longitud
de su región más ancha. La roseta secundaria
posee 15 a 16 celdas, dispuestas en un ciclo,
son irregulares, de forma poligonal. Relación
de longitud entre roseta primaria y roseta
secundaria 1:2. Costas radiales en número de
48 a 52. Costas transversales notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2f
Descripción: Longitud de 2.50± 2.80 a
3.00, ancho 0.29±0.04 mm. Inicialmente es
blanquecino o crema. Cabeza: marrón oscuro,
0.25 – 0.30 mm de ancho. Tórax: L2 ventral
a L1, MSD2 ventrocaudal a MSD1, seta
L2 y L3 ausente en mesotórax y metatórax.
c
d
Figura 7. Secuencia del desarrollo de los huevos de Spodoptera eridania, a) Huevos recién
ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Vista lateral del huevo. Barra de
escala = 0.2 mm.
a
b
c
d
Figura 8. Secuencia del desarrollo de los huevos de Spodoptera latifascia, a) Huevos recién
ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Vista lateral del huevo. Barra de
escala = 0.2 mm.
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
18
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
Abdomen: Porción distal de las propatas con
banda oscura, crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos, propatas cortas marrón oscuro
y todas del mismo tamaño. Escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Cada segmento presenta setas simples
de color gris oscuro 2/3 del ancho del cuerpo.
Chalazas 1/3 del largo de las setas y pinaculas
1/4 del largo de las setas, ambas estructuras de
color marrón.
cada una de ellas tiene una longitud tres veces
que su región más ancha. Cada celda es de
forma petaloide con extremo redondo. La
roseta secundaria que continua a la primaria
posee 23 a 25 celdas. Dispuestas en un ciclo,
algo irregulares, unas son más anchas que
otras, finalizando en forma de cuña. Existe
una relación entre la longitud de la roseta
primaria y roseta secundaria de 1:2.5. Las
costas radiales en un rango de 38 a 40, presenta
costas transversales notorias.
7. Agrotis subterranea (Fabricius, 1794)
Noctuidae: Noctuinae
Huevos, Figuras 1g, 9a, 9b, 9c, 9d
Características Generales: De color crema, en
plano lateral es semiesférico. Al momento de
la ovoposición mide 0.60 mm de diámetro por
0.30 mm de altura. Depositados irregularmente,
sea individual o en grupos pequeños de 5 a 10
huevos, de color crema o amarillo, al segundo
día de desarrollo se observa la formación de
un anillo rojo rodeando una mancha roja en la
parte central, al tercer y cuarto día las manchas
rojas se van oscureciendo a gris y cubren la
mitad superior del huevo, el corion se hace
transparente y se trasluce la larva.
Larvas de primer estadio, Figura 2g
Descripción: Recién emergidas miden 2.503.00 mm, son de color crema. Cabeza: marrón
oscuro y mide 0.25 – 0.30 mm de ancho.
Tórax: Escudo torácico marrón. Abdomen:
Propatas del mismo color del cuerpo,
reducidas en los segmentos A3 y A4 a 1/3 del
largo de las propatas de los segmentos A5 y
A6. Cada segmento del cuerpo presenta setas
capitadas hialinas, largas (longitud más de 2/3
del ancho del cuerpo), pinaculas y chalazas
pequeñas (1/4 del largo de las setas) de color
marrón, escudo anal color marrón.
Área micropilar: está formada por una roseta
primaria circular con 14 a 16 celdas primarias,
a
b
8. Agrotis
malefida
(Guenée,
1852)
Noctuidae: Noctuinae
Huevos, Figuras 1h, 10a, 10b, 10c, 10d
Características
generales:
De
color
c
d
Figura 9. Secuencia del desarrollo de los huevos de Agrotis subterranea, a) Huevos recién
ovipuestos, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Huevo antes de la eclosión. Barra
de escala = 0.2 mm.
a
b
c
d
Figura 10. Secuencia del desarrollo de los huevos de Agrotis malefida, a) Huevo recién ovipuesto,
b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Huevo antes de la eclosión. Barra de escala =
0.2 mm.
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
blanquecino, en vista lateral es semiesférico,
mide 0.60 mm de diámetro y 0.40 mm de
altura. Son depositados irregularmente,
individualmente o en grupos pequeños de 5 a
10 huevos, al momento de la ovoposición son
blanquecinos o crema, el segundo día varía
por la formación de un anillo rojizo al borde
del área polar y una mancha también rojiza
en la parte central, el tercer día las manchas
rojizas cubren toda el área polar, finalmente
viran a gris antes de la eclosión de la larva
visible a través del corion.
Área micropilar: está formada por una roseta
primaria circular con 14 a 16 celdas primarias
2 veces la distancia de su región más ancha.
Cada celda es de forma petaloide con extremo
redondo. La roseta secundaria posee 22 a 23
celdas. Dispuestas en un ciclo, algo irregulares,
unas son más largas que otras, finalizando
en forma de cuña, relación de longitud entre
roseta primaria y roseta secundaria es 1:1.5
y 1:2.5. Costas radiales en número de 39-40.
Costas transversales: notorias.
19
50 huevos, en una sola capa ordenada. La
coloración varía de acuerdo al desarrollo, de
3 a 4 días, al momento de la ovoposición los
huevos son color crema luego se observa la
formación de una mancha roja en la zona polar
y un anillo rojo delgado rodeando el huevo y
posteriormente viran a gris oscuro, el corión
se trasluce y se puede observar la larva.
Área micropilar: La roseta primaria es de
forma circular, formada por 10 a 13 celdas
primarias. Cada celda es de forma petaloide
con extremo redondo y 2.5 veces la longitud
de su región más ancha. La roseta secundaria
posee 15 a 17 celdas, dispuestas en un ciclo,
de forma rectangular. Relación de longitud
entre roseta primaria y roseta secundaria 1:1.
Costas radiales en número de 34 a 36. Costas
transversales notorias.
Larvas de primer estadio, Figura 2h
Descripción: Recién emergidas miden 2.503.00 mm, son de color crema. Cabeza: marrón
oscuro y mide 0.25 - 0.30 mm de ancho. Tórax:
Escudo torácico marrón. Abdomen: Propatas
del mismo color del cuerpo, reducidas en
los segmentos A3 y A4 a 1/3 del largo de las
propatas de los segmentos A5 y A6. Cada
segmento del cuerpo presenta setas capitadas
hialinas, de tamaño mediano (longitud 2/3
del ancho del cuerpo), pináculos y chalazas
pequeñas (1/4 del largo de las setas) marrones,
escudo anal color marrón claro.
Larvas de primer estadio, Figura 2i
Descripción: Longitud de 2.50 ± 0.50 mm,
ancho 0.29 ± 0.04 mm. Color blanquecino o
crema. Cabeza: marrón oscuro, 0.25 – 0.30
mm de ancho. Tórax: L2 ventral a L1. MSD2
ventrocaudal a MSD1. Seta L2 y L3 ausente
en mesotórax y metatórax. Abdomen: porción
distal de las propatas delgadas, crochets
uniserial arreglados en mesoserie, seta L3 y
SV3 ausente en todos los segmentos, propatas
del mismo color del cuerpo reducidas en los
segmentos A3 y A4 a la mitad del largo de las
propatas de los segmentos A5 y A6. Escudo
torácico, patas torácicas y escudo anal color
marrón oscuro. Cada segmento presenta setas
simples largas de color gris oscuro 3/4 del
ancho del cuerpo. Pináculas grandes 1/3 del
largo de las setas de color marrón.
9. Peridroma saucia (Hübner, 1808).
Noctuidae: Noctuinae
Huevos, Figuras 1i, 11a, 11b, 11c, 11d
Características generales: Visto lateralmente
es semiesférico con un diámetro de 0.50 ±0.05
mm, altura de 0.40± 0.15 mm. Son depositados
en masas pequeñas de aproximadamente
10. Elasmopalpus lignosellus (Zeller,
1848). Pyralidae: Phycitinae
Huevos, Figuras 1j, 12a, 12b, 12c, 12d
Características
generales:
Blanquecino,
elíptico de largo 0.60±0.10 mm y ancho 0.40
±0.10 mm. Son depositados individualmente o
en grupos de 4 a 10 huevos separados. El color
a
b
c
d
Figura 11. Secuencia del desarrollo de los huevos de Peridroma saucia, a) Huevo recién
ovipuesto, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) masa de huevos. Barra de escala =
0.2 mm.
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
20
varía de acuerdo al desarrollo, de 3 a 4 días,
al momento de la ovoposición los huevos son
color blanquecino luego viran a naranja claro
y posteriormente rojo, el corión se trasluce y
se puede observar la larva ya formada.
Área micropilar: Ubicado lateralmente,
formado solo por la roseta primaria con 19 a
22 celdas primarias, cada celda es de forma
petaloide con extremo en forma de cuña y
de 1.5 a 2 veces la longitud de su región más
ancha, el resto del corión está débilmente
marcado por reticulaciones que forman celdas
poligonales.
Larvas de primer estadio, Figura 2j
Descripción: Longitud de 1.60 ±0.40 mm,
ancho0.29± 0.04 mm, color crema con anillos
de color rojo. Cabeza: marrón oscuro, 0.25 –
0.30 mm de ancho. Tórax: L2 ventral a L1.
MSD2 ventro caudal a MSD1. Seta L2 y L3
ausente en mesotórax y metatórax. Abdomen:
Porción distal de las propatas reducidas.
Crochets uniserial arreglados en un círculo
completo. Seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos. Propatas poco desarrolladas,
muy cortas y todas del mismo tamaño.
Escudo torácico color marrón. Cada segmento
presenta setas simples de color crema 2/3 del
ancho del cuerpo.
Segundo: Análisis estadístico del número
de tres estructuras de huevos en Copitarsia
corruda, Spodoptera frugiperda y Spodoptera
ochrea, según localidades de procedencia
(Tabla 3).
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
Los resultados del Análisis de varianza a un
nivel de significancia de α 0.05, considerando
las estructuras de huevos: número de celdas
de la roseta primaria o celdas primarias
(1), celdas de la roseta secundaria o celdas
secundarias (2) y costas radiales (3) en
relación a las localidades de procedencia de
las especies Copitarsia corruda, de Santiago
y Paiján. Spodoptera frugiperda de Santiago,
Pisco Barranca, Casma, Huarmey y Rázuri
y Spodoptera ochrea de Santiago, Pisco,
Barranca y Chao. En la Tabla 3 se indica que
los valores para las diferencias por localidades
para Copitarsia corruda en referencia al
Número de celdas secundarias y Costas
radiales presentan diferencias significativas,
no así para el número de celdas primarias.
Los tres caracteres no muestran diferencias
significativas para las especies: Spodoptera
frugiperda y Spodoptera ochrea, en las
diferentes localidades.
Discusión
Morfología de huevos y larvas de primer
estadio de 10 especies localizadas en Ica,
Lima, Ancash y La Libertad
Durante el estudio, desde la campaña del 2013
a la del 2014 Spodoptera eridania y Peridroma
saucia no fueron recuperadas de campos
de producción de espárrago. La primera
fue recuperada en plantas de espárrago (50
plantas) y tomate en el campo experimental
de Ate Vitarte y en alfalfa. Posturas de la
Tabla 3. Análisis de varianza del número de celdas primarias, secundarias y costas radiales de las
especies de Copitarsia corruda, Spodoptera frugiperda y Spodoptera ochrea según su procedencia.
Especies Analizadas
Copitarsia corruda
Spodoptera frugiperda
Spodoptera ochrea
Celdas Primarias
gl1 gl2 Fc Ft α
1
5
3
58
54
36
0.05%
1.17 4
NS
0.11 2.37 NS
0.15 2.84 NS
Celdas Secundarias
Ft α
gl1 gl2 Fc
1
5
3
58
54
36
4.63
1.34
1.9
0.05%
4
2.37
2.84
Costas Radiales
gl1 gl2 Fc Ft α
S
NS
NS
1
5
3
0.05%
58 9.19 4
S
54 0.78 2.37 NS
36 0.03 2.84 NS
gl1=Grados de libertad 1 (localidades); gl2=Grados de libertad 2 (repeticiones); Fc=F calculado (según formula de análisis de varianza); Ft=F
tabulado (según Tabla de valores de F de Fisher.); S=Significativo; NS=No significativo.
a
b
c
d
Figura 12. Secuencia del desarrollo de los huevos de Elasmopalpus lignosellus, a) Huevo recién
ovipuesto, b) 2° día de desarrollo, c) 3° día de desarrollo, d) Vista polar del huevo. Barra de
escala = 0.2 mm.
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
segunda fueron colectadas en tela plástica
negra usada en trampas de ovoposición y en
las paredes de casetas negras. Sin embargo en
reportes de Angulo A.,Weigert, G. en (1975).
Sanchez, G., Vergara, C. (1995). Núñez et al
(2008) reportan a ambas especies en cultivos
de espárrago.
Para la especie Copitarsia corruda se
encuentra la descripción inicial de Pogue
y Simmons en el año 2008, cuando dan a
conocer a Copitarsia corruda a como una
nueva plaga para el cultivo de espárrago
en la región neotropical. Anteriormente en
el Perú la nueva especie fue considerada
como Copitarsia decolora, debido a que se
tratan de especies crípticas, cuya morfología
interna (genitalia) y a nivel molecular, son
diferentes. En el mismo artículo los autores
indican que los huevos poseen 19 celdas
primarias, lo cual está dentro del rango de los
especímenes de C. corruda estudiados (15 a
21 celdas primarias). Las larvas del primer
instar de la especie alcanzan una longitud de
2.50± 0.50 mm y ancho 0.30±0.50 mm, color
blanquecino o crema. Cabeza: 0.30 – 0.35
mm de ancho. Tórax: L2 ventral a L1, MSD2
ventrocaudal a MSD1, seta L2 y L3 ausente
en mesotórax y metatórax Abdomen: Porción
distal de las propatas anchas, Crochets
uniseriales arreglados en mesoserie, seta L3 y
SV3 ausente en todos los segmentos. Propatas
del mismo color del cuerpo reducidas en los
segmentos A3 y A4 a la mitad del largo de las
propatas de los segmentos A5 y A6. Cabeza,
escudo torácico, patas torácicas y escudo anal
color marrón oscuro. Cada segmento presenta
setas simples de color gris oscuro 1/3 del
ancho del cuerpo y pináculos 1/2 del largo de
las setas, de color marrón. , coinciden con los
tamaños indicados en la descripción original.
El Instituto Peruano del espárrago y hortalizas
(IPEH), La Universidad Peruana Cayetano
Heredia (UPCH) y EL Servicio Nacional
de Sanidad Agraria (SENASA) a través de
un Proyecto Especial en el año 2012 dan
como resultado del análisis molecular de
556 especímenes de Copitarsia plagas del
espárrago peruano que todas corresponden
a la especie C. corruda. En ese entonces
varios autores solo se refieren a Copitarsia
decolora y otras especies de Copitarsia.
Artigas y Angulo (1973) estudian la biología
e importancia económica de Copitarsia
consueta en cultivo de Colza. T., Angulo, A.
(2004) efectúan la descripción de los huevos
de Copitarsia turbata. Angulo y Olivares
(2005) estudian los caracteres larvales: forma
del spinereter y la pinnacula del primer y
segundo segmento abdominal para diferenciar
larvas de últimos estadios de C. decolora y C.
incommoda, además realizan un inventario
bibliográfico de la Subfamilia Noctuinae de
Chile. Zúñiga, Rodriguez y Olivares (2006)
21
describen la hembra, huevo y larva en primer
estadio de Copitarsia clavata, obtenidas de
cámaras de crianza y analizadas con ayuda
del microscopio SEM, e indican que son
semejantes a C. decolora. Gonzales, L. (2008)
da a conocer una guía fotográfica de posturas
de Copitarsia decolora. Andaur-Arenas,
D., Olivares, T. (2009) y Korycinska (2012)
definen la ultraestructura de huevos en cinco
especies de macrolepidópteros con una clave
de los huevos de Copitarsia, sin incluir a
C. corruda. Angulo, A., Olivares. T. (2010)
efectúan la revisión del complejo de especies
en base en la morfología genital masculina y
de los huevos de Copitarsia decolora.
En referencia a Chloridea virescens, segunda
plaga problema del Espárrago no hay mucha
información. Neunzig (1964) da a conocer
los morfología de huevos y estadios larvales
iniciales de Helicoverpa zea y Heliothis
virescens. Angulo, A., Weigert, G. (1975)
describen a los huevos de Helicoverpa zea
con 13 celdas primarias y 18 secundarias. En
el presente trabajo no se colectó la especie por
lo que no se tiene con que comparar. Passoa
(2007) presenta una guía de identificación
para larvas de Heliothinae cuarentenarias para
el USDA APHIS PPQ. Pogue (2013) Revisa
el estado del género Chloridea mediante
estudios morfológicos y de tres genes del
género y refiere que Chloridea virescens es
reportada comúnmente en Haití, México y
Perú como Heliothis. Las identificaciones en
Perú son tentativas por su complejidad puede
estar confundida con otro Heliothinae como
C. tergemina, cuya larva es poco conocida.
Además cita que Angulo et al (2006) en
una publicación incluye la presencia de C.
virescens mas no de C. tergemina. Finalmente
concluye que C. tergemina y C. subflexa son
oligofagos la primera en tabaco en Venezuela
y Colombia y la segunda en tomatillo de
Mexico. C. virescens es polífago, presente en
varios cultivos.
Las especies de Spodoptera (S, frugiperda, S.
ochrea, S. eridania y S. latifascia) descritas
en el presente artículo Passoa (1991) publica
un patrón de coloración en la identificación
de larvas de Spodoptera de importancia
económica en Honduras. Villa y Catalán
(2004) determinan los estadios larvales de
Spodoptera frugiperda para la construcción
de un modelo de predicción. Skudlik, J.,
Poprawa, I., Rost, M. (2005) observan la
cápsula del huevo de Spodoptera exigua.
Skudlik, Poprawa y Rost (2005) estudian la
morfología y ultra estructura de la cápsula
del huevo de Spodoptera exigua. Valverde,
L. (2007). Define la microestructura del
huevo de Spodoptera eridania (Lepidoptera:
Noctuidae). Passoa (2008) da a conocer una
22
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
clave para larvas de Spodoptera de América
del Norte de México Olivares,
Acerca de las tres especies (Agrotis subterranea,
A. malefida, y Peridroma saucia) se encuentra
literatura sobre ciclo biológico, identificación
de larvas maduras por quetotaxia, los cuales
no tienen resultados para comparar: Amate,
Barranco y Cabello (1998) identifican por
quetotaxia larvas maduras de la principales
especies de Noctuidae: Spodoptera exigua,
Spodoptera littoralis, Chrysodeixis chalcites,
Autographa gamma, Trichoplusia orichalcea,
Sesama nonagrioides, Helicoverpa armígera,
Agrotis segetum, Agrotis ípsilon, Agrotis
exclamations, Peridroma saucia procedentes
de España. Specht, A., Angulo, A., Olivares,
T., Fronza E., Roque-Specht, V., Valdulaga,
E., Albrecht, F.,
Poletto, G., Barros, N.
(2013) reportan el estudio del ciclo biológico
de Agrotis malefida. . Specht, A., Angulo,
A., Olivares, T., Fronza E., Roque-Specht,
V., Valdulaga, E., Albrecht, F., Poletto, G.,
Barros, N. (2013) definen el ciclo biológico de
Agrotis malefida..
Sobre Elasmopalpus lignosellus, Rázuri
(1974) estudia la biología y comportamiento
de Elasmopalpus lignosellus. Neunzig (1979)
publica la sistemática de inmaduros de los
Phycitines (Pyralidae). Huertas (2007) estudia
los estados inmaduros de tres especies del
Género Ephestia (Pyralidae: Phycitinae) en
Huelva España.
En general según la clasificación de Tipos
de posturas, Angulo, A. y Weigert, G. se han
diferenciado las especies en:
1. C. corruda, algo grandes (0.60 ±0.10 mm,
altura de 0.43±0.050 mm.). Semiesféricos,
individual
2. C. virescens, pequeños (diámetro de
0.45±0.15 mm, altura de 0.45±0.20 mm.).
Subpiramidal, individual.
3. S. frugiperda, (diámetro 0.50± 0.10 mm,
altura de 0.40±0.10 mm.), en masa
4. S. ochrea, (diámetro de 0.50 ± 0.05 mm,
altura de 0.40±0.05mm.), suboval, en masa
5. S. eridania (diámetro de 0.50 ±0.05 mm,
altura de 0.40 ±0.15 mm.), suboval, en
masa
6. S. latifascia (diámetro de 0.50 ±0.10 mm,
altura 0.40± 0.15 mm.), suboval, en masa
7. A. subterranea (0.60 mm de diámetro
por 0.30 mm de altura). Depositados
irregularmente, sea individual o en grupos
pequeños de 5 a 10 huevos.
8. A. malefida (0.60 mm de diámetro y 0.40 mm
de altura). Son depositados irregularmente,
individualmente o en grupos pequeños de 5
a 10 huevos, al momento.
9. P. saucia (diámetro de 0.50 ±0.05 mm,
Vol. 52 N° 1. Junio 2017
altura de 0.40± 0.15 mm). Son depositados
en masas pequeñas de aproximadamente
50 huevos. Visto lateralmente son
semiesféricos.
10.
E.- lignosellus (largo 0.60±0.10 mm
y ancho 0.40 ±0.10 mm.). Son elípticos y
depositados individualmente o en grupos
de 4 a 10 huevos separados.
Las larvas de primer estadio se han
diferenciado por:
1. C. corruda, Crochets uniseriales arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos. Propatas del mismo
color del cuerpo reducidas en los segmentos
A3 y A4 a la mitad del largo de las propatas
de los segmentos A5 y A6. Cabeza, escudo
torácico, patas torácicas y escudo anal color
marrón oscuro. Cada segmento presenta
setas simples de color gris oscuro 1/3 del
ancho del cuerpo y pinaculas 1/2 del largo
de las setas, de color marrón.
2. C. virescens Crochets uniserial arreglados
en mesoserie. Seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos. Escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Propatas color marrón oscuro,
todas del mismo tamaño. Cada segmento
presenta setas simples de color marrón
oscuro 1/3 del ancho del cuerpo. Pináculas
y chalazas 1/3 del largo de las setas, de
color marrón.
3. S. frugiperda Crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos, propatas del mismo
color del cuerpo y todas del mismo tamaño.
Escudo torácico, patas torácicas y escudo
anal color marrón claro. Cada segmento
presenta setas simples de color gris oscuro
1/3 del ancho del cuerpo. Chalazas 1/3 del
largo de las setas y pinaculas 1/4 del largo
de las setas ambas estructuras de color
marrón.
4. S. ochrea crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos, propatas gris oscuro y
todas del mismo tamaño. Escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Cada segmento presenta setas
simples de color gris oscuro 1/3 del ancho
del cuerpo, Chalazas 1/3 del largo de las
setas y pináculas 1/4 del largo de las setas
ambas estructuras de color marrón.
5. S. eridania crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en
todos los segmentos, propatas gris oscuro y
todas del mismo tamaño. Escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Cada segmento presenta setas
simples de color gris oscuro 2/3 del ancho
del cuerpo. Chalazas 2/3 del largo de las
setas y pináculas 1/3 del largo de las setas,
Núñez & Pereyra: Morfología de huevos y larvas de primer estadio de Lepidoptera en turiones de espárrago peruano
ambas estructuras de color marrón oscuro.
6. S. latifascia (crochets uniserial arreglados
en mesoserie, seta L3 y SV3 ausente
en todos los segmentos, propatas cortas
marrón oscuro y todas del mismo tamaño.
Escudo torácico, patas torácicas y escudo
anal color marrón oscuro. Cada segmento
presenta setas simples de color gris oscuro
2/3 del ancho del cuerpo. Chalazas 1/3 del
largo de las setas y pinaculas 1/4 del largo
de las setas, ambas estructuras de color
marrón.
7. A. subterranea Propatas del mismo color
del cuerpo, reducidas en los segmentos A3
y A4 a 1/3 del largo de las propatas de los
segmentos A5 y A6. Cada segmento del
cuerpo presenta setas capitadas hialinas,
largas (longitud más de 2/3 del ancho del
cuerpo), pinaculas y chalazas pequeñas
(1/4 del largo de las setas) de color marrón,
escudo anal color marrón.
8. A. malefida Propatas del mismo color del
cuerpo, reducidas en los segmentos A3 y
A4 a 1/3 del largo de las propatas de los
segmentos A5 y A6. Cada segmento del
cuerpo presenta setas capitadas hialinas, de
tamaño mediano (longitud 2/3 del ancho
del cuerpo), pinaculas y chalazas pequeñas
(1/4 del largo de las setas) marrones, escudo
anal color marrón claro.
9. P. saucia crochets uniserial arreglados en
mesoserie, seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos, propatas del mismo color
del cuerpo reducidas en los segmentos A3
y A4 a la mitad del largo de las propatas de
los segmentos A5 y A6. Escudo torácico,
patas torácicas y escudo anal color marrón
oscuro. Cada segmento presenta setas
simples largas de color gris oscuro 3/4 del
ancho del cuerpo. Pináculas grandes 1/3
del largo de las setas de color marrón.
10.
E.- lignosellus, Seta L2 y L3 ausente
en mesotórax y metatórax. Abdomen:
Porción distal de las propatas reducidas.
Crochets uniserial arreglados en un círculo
completo. Seta L3 y SV3 ausente en todos
los segmentos. Propatas poco desarrolladas,
muy cortas y todas del mismo tamaño.
Escudo torácico color marrón. Cada
segmento presenta setas simples de color
crema 2/3 del ancho del cuerpo.
Análisis Estadístico de la variabilidad de
tres estructuras de los huevos de Copitarsia
corruda, Spodoptera frugiperda y Spodoptera
ochrea en relación a la procedencia de la
muestra.
Comparando la variabilidad del número de
celdas primarias, celdas secundarias y costas
radiales de las especies Copitarsia corruda,
Spodoptera frugiperda y Spodoptera ochrea
en 12 localidades. Los valores obtenidos
23
para el número de celdas primarias de los
huevos de C. corruda (Fc=1,17; gl1= 1, gl2=
58 y Ft=4.00) nos indica que las variaciones
numéricas son mínimas para especímenes de
Santiago (Ica) y de Paiján (La Libertad) (no
hay diferencia significativa), asumiéndose que
las variaciones de las condiciones climáticas
del norte y sur peruano no influye en el número
de este parámetro. Los valores obtenidos para
el número de celdas secundarias (Fc=4,63;
gl1= 1, gl2= 58 y Ft=4.00) y número de costas
radiales (Fc=9,19; gl1= 1, gl2= 58 y Ft=4.00)
de los huevos de C. corruda, presentan
variaciones numéricas considerables entre
individuos de una localidad u otra (hay
diferencia significativa). Se asume que las
condiciones de estas localidades influyen en
el número de estos parámetros.
Los valores obtenidos para S. frugiperda
según las medias de sus seis localidades
(Santiago Pisco Barranca Casma, Huarmey y
Rázuri) y para S. ochrea de cuatro localidades
(Santiago Pisco Barranca y Chao) en los tres
parámetros analizados, número de celdas
primarias(Fc=0,11; gl1= 5, gl2= 54 y Ft=2.37),
número de celdas secundarias (Fc=1,34; gl1=
5, gl2= 54 y Ft=2.37), número de costas radiales
(Fc=0,78; gl1= 5, gl2= 54 y Ft=2.37) para S.
frugiperda y el número de celdas primarias
(Fc=0,15; gl1= 3, gl2= 36 y Ft=2.84), número de
celdas secundarias (Fc=1,90; gl1= 3, gl2= 36 y
Ft=2.84), número de costas radiales(Fc=0,03;
gl1= 3, gl2= 36 y Ft=2.84) para S. ochrea
presentan variaciones numéricas mínimas
entre individuos de una localidad u otra (no
hay diferencia significativa) asumiéndose
que las condiciones de las localidades de
procedencia no influyen en el número de estos
parámetros.
La Tabla 3 presenta un resumen de los resultados
del ANVA, con los valores obtenidos para los
Grados de Libertad1 (gl 1) localidades; grados
de Libertad 2 (gl2) repeticiones; F calculado
(Fc) acorde a fórmula ANVA; F Tabulado (Ft)
acorde a valores Fisher.
Agradecimientos
.Al personal del SENASA SCV, en especial
al personal del proyecto Espárrago: Blgo
Denys Meza Cornejo y Blg. María Luisa Bull
Fernández por la gestión, colección, envío de
muestras biológicas y producción de núcleos
de las especies en forma oportuna. A la Blg
Elizabeth Dioses Núñez por el apoyo en la
toma de fotografías y aportes en la revisión del
trabajo. Al Ing. Forestal Jack Lennon Macedo
por el apoyo en el análisis estadístico.
24
REVISTA PERUANA DE ENTOMOLOGÍA
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