Subido por Luis Daniel Ramirez Martinez

Infection after fracture fixatio1

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Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
Injury, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
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Injury
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Revisión
Infección después de la fijación de la fractura: Conceptos quirúrgicos y
microbiológicos actuales
Wj. Metsemakersa,*, R. Kuehlb, TF. Moriartyc, RG. Richardsc, M. Verhofstadd, O. Borense,
S. Katesf, M. Morgensterng
DepArtment of Trauma Surgery, University Hospitals Leuven, Bélgica
División de Enfermedades Infecciosas y Epidemiología Hospitalaria, Hospital Universitario de Basilea, Suiza
c Instituto de
Investigación AO Davos, Suiza
d
Departamento de Cirugía de Trauma, Centro Médico de la Universidad Erasmus, Rotterdam, Países Bajos, Países Bajos
e
Unidad Quirúrgica Ptopédica, Departamento del Aparato Locomotor y Departamento de Cirugía y Anestesiología, Universidad de Lausana Hospital,
Lausana, Suiza
f
Departamento de Cirugía Ortopédica, Virginia Commonwealth University, Estados Unidos
g
Departamento de Cirugía Ortopédica y Trauma, Hospital Universitario de Basilea, Suiza
un
b
ARTICLEINFO
Palabras clave:
Infección después de la
fijación de la fractura
Infección infectada Infección
infectada no sindical
Complicaciones no sindicales
Biofilm
Terapia antibiótica
ABSTRACT
Una de las complicaciones más difíciles en la cirugía de traumatismo es la infección después de la fijación
de la fractura (IAFF). IAFF puede resultar en pérdida funcional permanente o incluso amputación de la
extremidad afectada en pacientes que de otra manera se puede esperar que lograr una curación completa
yinestable. En las últimas décadas, el problema de las infecciones óseas relacionadas con implantes ha
atraído cada vez más atención tanto en el ámbito clínico como en el preclínico; sin embargo, esto se ha
centrado principalmente en la infección articular protésica (PJI), rather que en iAFF. Aunque el IAFF
la PJI, existen numerosas diferencias críticas en muchas
facetas, como la prevención, el diagnóstico y el tratamiento. Es cierto que la extrapolación
de datos de la investigación de PJI al IAFF ha sido de valor para el cirujano de trauma, pero también
debemos ser conscientes de los desafíos únicos planteados
por el IAFF que pueden no tenerse en
cuenta en la literatura del PJI.
Esta revisión resume los enfoques clínicos hacia el diagnóstico y tratamiento del IAFF con
comparte muchas similitudes con
énfasis en los aspectos únicos de la atención de fracturas que distinguen al IAFF de la PJI. Por último,
se discutirán brevemente los recientes avances en tecnologías antiinfecciosas que pueden ser
particularmente adecuadas o aplicables para los pacientes con traumatismos en el futuro.
ã 2016 Elsevier Ltd. All rights reserved.
Contenido
Introducción .......................................................................................................................................................................................................................
Definición y clasificación ...............................................................................................................................................................................................
Definición ...................................................................................................................................................................................................................
Clasificación ................................................................................................................................................................................................................
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temprana (<2semanas) ...................................................................................................................................................................
Infección retrasada (2–10 semanas) ...............................................................................................................................................................
Infección tardía (>10semanas) .........................................................................................................................................................................
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Infección
Diagnóstico .........................................................................................................................................................................................................................
Evaluación de la fisiología del huésped .....................................................................................................................................................................
Examen de laboratorio ..............................................................................................................................................................................................
Microbiología ..............................................................................................................................................................................................................
Histología .....................................................................................................................................................................................................................
Imágenes ......................................................................................................................................................................................................................
* Autor correspondiente.
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
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Dirección de correo electrónico: [email protected] (W. Metsemakers).
http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
0020-1383/á 2016 Elsevier Ltd. Todos los derechos reservados.
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Tratamiento ........................................................................................................................................................................................................................ 00
Consideraciones generales ........................................................................................................................................................................................ 00
Consideraciones sobre eltratamiento
de antibióticos
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sistémica ........................................................................................................................................................................ 00
Terapia antibiótica local ................................................................................................................................................................................. 00
Consideracionessobre el tratamiento quirúrgico dependiente del estadio ......................................................................................... 00
Terapia antibiótica
Tratamiento de la infección precoz .....................................................................................................................................................................
Tratamiento de la infección retardada .................................................................................................................................................................
Tratamiento de la infección tardía ....................................................................................................................................................................
Clínically sospecha de infección con y sin consolidación completa ...........................................................................................................
No sindical carente de
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signos clínicos de infección .................................................................................................................................. 00
Directivasfuturas ............................................................................................................................................................................................................ 00
Resumen ............................................................................................................................................................................................................................. 00
Conflicto de intereses ........................................................................................................................................................................................................ 00
Referencias .......................................................................................................................................................................................................................... 00
Introducción
La fijación operativa de las fracturas esqueléticas puede ser
muy compleja debido a la naturaleza impredecible del daño óseo,
la multitud de lesiones concomitantes que pueden necesitar ser
consideradas y la frecuencia de situaciones potencialmente
mortales en la atención de emergencia. Una de las complicaciones
más temidas y desafiantes en el tratamiento de pacientes con trauma
musculoesquelético es la infección después de la fijación de la
fractura (IAFF), que puede retrasar la curación, conducir ala pérdida
funcional permanente, o incluso la amputación de la extremidad affected.
El tratamiento del IAFF también puede dar lugar a costes
socioeconómicos significativos y puede dar lugar a períodos de
recuperación prolongados para los pacientes afectados [1].
Estudios recientes mostraron que la mediana de los costos por
paciente se duplica en más de 108'000 USD por paciente cuando
está infectado [2] con tasas de éxito del tratamiento reportadas de
sólo entre 70 y 90% [3,4]. La incidencia del IAFF ha sido
rastreada en numerosos estudios a pequeña escala, con valores de
los años 1980 y 90 que indican que la tasa de infección puede variar
desde aproximadamente el 1% después de la fijación operativa de
fracturas cerradas de
baja energía, hasta
más del 30% en
fracturas complejas de tibia abierta [5,6]. En las últimas décadas,
parece que se ha producido una reducción constante de la
incidencia global de la infección [7]. Sin embargo,
debe
preguntarse si hemos alcanzado o no una meseta en lo que pueden
lograrlos los protocolos actuales [8]. La persistencia
del
problema, y los resultados del tratamiento algo insatisfactorios,
sugieren que ni la profilaxis ni el tratamiento del IAFF son completamente
eficaces a pesar de las mejores prácticas, y deben buscarse mejoras
adicionales.
Gran parte de los conceptos de tratamiento quirúrgico y médico
aplicados actualmente applied al IAFF se han adoptado a partir
de algoritmos de tratamiento de la infección articular protésica (PJI).
Los datos específicos, adaptados al paciente con trauma
tenesquelético,
son comparativamente escasos. IAFF y PJI
tienen propiedades clínicas similares, sin embargo
hay
distinciones importantes entre el paciente electivo arthroplasty y
el paciente traumatista, tanto en términos de riesgo de infección
en la cirugía primaria, como en las opciones de tratamiento.
Claramente, es probable que haya diferencias significativas en
los tejidos blandos que sobrepasan el sitio quirúrgico: el paciente
fracturado puede tener daño significativo en los tejidos blandos
o vasculatura comprometida secundaria al trauma, que es menos
frecuente en pacientes con artroplastia electiva. Este daño vascular y de
tejidos blandos tissue puede afectar el acceso de las defensas del
huésped y la terapia antibiótica a las zonas afectadas. Las heridas
de fractura abierta también están ciertamente contaminadas con
una variedad desconocida y abundancia de bacterias contaminantes
que no están presentes en pacientes electivos. Además, los pacientes
con traumatismos también pueden requerir
visitas repetidas al
quirófano para la fijación definitiva, segunda mirada o cirugía
plástica para colgajos de tejido blando, que no son rutinarios en la
artroplastia primaria. Entre las diferencias técnicas más obvias en
el IAFF se encuentra la
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presence of a fracture and the need for biomechanical stability
in order for it to heal. Clinical guidelines highlight the fact that
construct stability is important not only for prevention, but also
for treatment of IAFF [9,10]. Furthermore, in contrast to PJI,
fracture fixation devices may be removed after osseous healing
and therefore complete immediate eradication of infection is
not always the primary goal and suppressive antibiotic therapy
may be an option in advance of later implant removal when
treatment outcome and success is likely to be improved.
Finally, identification of infecting pathogens may be possible
by joint puncture prior to surgical intervention in the case of
PJI, however, biopsies are more often taken intraoperatively
for IAFF, which can delay or complicate diagnosis of IAFF.
Los estudios de investigación preclínica que analizan el
riesgo y la progresión de la infección ósea específicamente en
modelos relevantes para el trauma también son escasos [11–13], y
pocas innovaciones específicas se han traducido del ámbito académico y se
han puesto a disposición del cirujano de trauma musculoesquelético
[14–16]. En esta revisión, resumimos las pautas preventivas,
diagnósticas y terapéuticas para el IAFF, haciendo hincapié
en los aspectos únicos de la atención de fracturas que
distinguen al IAFF del PJI. Además, resumimos las últimas
innovaciones de investigación preclínica y clínica en materia de
prevención y tratamiento del IAFF.
Defilaficación fi fini y classi
Desdeelfinal
La estimación precisa del impacto de las complicaciones
relacionadas con las fracturas se ha visto obstaculizada por la
falta de definiciones claras para complicaciones como la no
unión o la infección. Hasta la fecha, no existen criterios
estándar disponibles ni falta de consenso con respecto a la
definición del IAFF. Esto
contrasta con la situación de la
PJI, en la que hay una definición disponible [17]. La literatura
sobre traumas a menudo cita los Centros para el Control y la Prevención de
Enfermedades (CDC) -directrices para la infección en el sitio
quirúrgico (SSI). La definición de CDC divide los SSI en incisiones
superficiales y profundas y órganos/espacio [18]. Además, la litis
osteomidebelitis se indica por separado. Como la fractura ni el
implante se tienen en cuenta, la complejidad de una fractura
traumática infectada no está completamente cubierta por estas
directrices. El problema se hace evidente al revisar la literatura
clínica. Algunos estudios han citado las directrices de los CDC
sin una descripción específica de la osteomielitis [19,20]; otros
utilizan estas pautas, pero incluyen sus propios
criterios
adicionales de inclusión
como el drenaje purulenta u otros
signos clínicos [21]. Tal vez debido a la falta de definiciones
adecuadas para los pacientes con trauma, también hay autores
que no definen la infección [22] y otros que proporcionan una
definición única hecha a medida [23]. Curiosamente, este
número ya fue mencionado por Arens et al. en 1996 [24], enel
que los autores
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3
1. Algoritmo de fisiopatología, clasificación y tratamiento del IAFF.
1
:
la extracción e intercambio de implantes
puede llevar a cabo
en un solo paso (con intercambio de implantes)
Véase la Tabla 4 Factores que favorecen
de la
La reconstrucción se
o en múltiples etapas; después
resección de
tejido blando necrótico y hueso un enfoque multidisciplinario
a menudo será necesario
3
La terapia con antibióticos debe elegirse en colaboración con un especialista en enfermedades infecciosas(especialmente en infecciones polimicrobianas o pruebas de
2
patógenos difíciles
de tratar)
declaró: 'Essorprendente
que en todos los documentos en
los que se menciona lainfección, mentioned, el término 'infección'
no es defined'. Por lo tanto, una mejor comprensión y descripción
de la definición del IAFF es un primer paso necesario para
mejorar la presentación de informes científicos y la
evaluación de los datos clínicos de rutina, así como ayudar en la
evaluación de nuevas estrategias de prevención y tratamiento
referencia a la aparición del IAFF, la formación de biopelículas y, lo
que es más importante para el cirujano de trauma, el estado de
fractura- curación (Fig. 1).
Infección temprana (<2 semanas)
Los FIA Tempranos son a menudo un diagnóstico clínico ya que
el paciente generalmente presenta signos clásicos de infección
(rubor, calor, dolor, tumor y functio laesa), alteraciones cicatrizantes
de heridas,
[25].
Classifification
Aunque faltan definiciones claras, existe un esquema de
clasificación ampliamente aceptado para el IAFF
[26,27].
Willeneger y Roth clasificaron a la IAFF en la década de 1980
según el tiempo de inicio en tres grupos: aquellos con una infección
temprana (menos de 2 semanas), retrasada (2– 10 semanas) y de
inicio tardío (más de 10 semanas) [27]. Esta clasificación ha
sido adoptada ampliamente y es importante porque tiene una
influencia en las decisiones de tratamiento tomadas por los médicos
[26]. Aunque las infecciones con manifestaciones tardías y tardías
pueden combinarse
[26], unatrisección de esta clasificación
parece más apropiada. La frecuencia relativa de infecciones de
cada tipo no está disponible en la literatura publicada, pero
representaría una validación interesante del esquema de
clasificación en caso de que esos datos estén disponibles. En la
siguiente sección, se discutirá esta clasificación, con especial
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hematomas, and accompanying systemic signs of infection such
as fever and lethargy. Highly virulent organisms, like
Staphylococcus aureus, are frequent causative agents of early
infection [26]. Within this timeframe, it is commonly considered
that the causative bacteria may already have formed a biofilm,
although this biofilm may still be in an ‘immature’ phase.
Con respecto a la afectación ósea y la curación, los modelos
preclínicos han demostrado que en una semana después de la
inoculación, el hueso no muestra signos de osteomielitis u
osteolisis (Fig. 2), a pesar de la presencia de bacterias. Además, la
cicatrización ósea está en la 'etapade callo inflamatorio o suave'
[28], por lo que no habrá estabilidad defractura en esta etapa temprana.
Como se discutió más adelante, estas condiciones
fisiopatológicas (infección activa sin signos radiográficos graphic
de estabilidad de la fractura) tienen consecuencias significativas en
el tratamiento debido a la importancia de la cicatrización de
fracturas para obtener resultados exitosos del tratamiento.
Infección retrasada (2–10 semanas)
Los pacientes con infecciones retrasadas pueden presentar
síntomas consistentes con sus infecciones tempranaso tardías. Por
ejemplo, los hematomas, que pueden esperarse en etapas
anteriores, todavía pueden estar presentes después de 3
semanas, o alternativamente, una fístula también puede
presentarse después de 9 semanas, que puede estar más a
menudo asociada con infecciones tardías. infections.
Hay varias distinciones importantes de las infecciones
tempranas. Las infecciones retrasadas suelen deberse a bacterias
menos virulentas, como Staphylococcus epidermidis [26], y a
medida que la duración de la infección se extiende, las biopelículas
maduran y se vuelven más resistentes a la terapia antibiótica y a
las defensas del huésped.
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aureus) osteotomía del húmero del conejo. El panel superior,
que sobrepasan un LCP desde la fase postoperatoria temprana (izquierda) donde
se observan algunos signos tempranos de inflamación sobre la placa, hasta la posición a las 4 semanas, (centro) donde se observa necrosis
significativa. A las diez semanas, la necrosis ha dado lugar a una formación de cápsula que rodea el tejido necrótico adyacente al LCP. La afectación
ósea se retrasa detrás de la afectación del tejido blando, que a la 1 semana (panel inferior, izquierda) es inexistente. A las cuatro semanas (centro),
el hueso está mostrando signos de osteolisis y falta de curación, aunque esto es más pronunciado a las diez semanas (derecha), momento en el que se
ve la no unión incluyendo la secuestro de fragmentos necróticos
uno. (Giemsa Eosin teñido, barra de escala del panel superior 200 micrómetros,
panel inferior, barra de escala 1000 micrómetros).
Fig. 2. Secciones histológicas
que revelan
los cambios dependientes
del tiempo en una (S.
de izquierda a derecha, muestra los cambios en los tejidos blandos
En términos de curación de fracturas, estudios preclínicos
muestran que la cicatrización ósea normal toma hasta 10 semanas
[29], conuna 'etapa decallo duro' que se encuentra entre 3 y 16 semanas
[28,30]. En caso de infección, esto cambia significativamente.
Estudios experimentales han demostrado que S. epidermidis
inoculación en una brecha de fractura en la rata puede conducir a tasas
no sindicales de 83–100% a las 8 semanas [31]. Bilgili et al.
pudieron demostrar, en un enfoque similar, que el IAFF estaba asociado
con una formación más débil del caldo [32]. Estas observaciones, en
combinación con el hecho de que la invasión ósea bacteriana y la
inflamación ('osteomielitis') a menudo ocurrenwitina 2–10 semanas
(Fig. 2), explican por qué las opciones de tratamiento son a menudo diferentes
encomparación con las infecciones de inicio temprano donde la
cicatrización de la fractura puede no haber comenzado, y la afectación ósea
todavía puede ser mínima.
observación frecuente en infecciones tardías y aunque la cicatrización
ósea puede haber tenido lugar en algunos casos, la inflamación grave
y la osteolisis con osteomielitis conducen a la inestabilidad de la
osteosíntesis (Fig. 2). La nueva formación ósea periosteal a la ry
periferia de la zona infectada produce un involucrum que además
de la infección
[35] . Estos cambios a menudo requieren
desbridamientos extensos y repetidos, lo que resulta en defectos
óseos.
Infección tardía (>10wee ks)
Muchos pacientes con infecciones tardías pueden presentar
síntomas sutiles, funcionalidad comprometida y dolor dependiente
del estrés, hinchazón y eritema localizados o un tracto sinusal
drenante, en su mayoría carente de manifestación sistémica
[33,34]. En pacientes que presenten funcionalidad comprometida y
dolor dependiente del estrés, la infección con microorganismos de baja
virulencia siempre debe considerarse una posible causa (una
infección clínicamente silenciosa) [33]. Tarde, como delayed, IAFF
es causada principalmente por microorganismos de baja
virulencia como S. epidermidis [26].
La cicatrización de fracturas comprometidas es una
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Diagnosis
El diagnóstico del IAFF es desafiante y se basa en una
combinación de varios criterios de diagnóstico: historia clínica
pasada, fisiología del huésped, presentación clínica, pruebas de
laboratorio, modalidades de diagnóstico por imágenes y sacrificio de
muestras de tejido
intraoperatorios. Los signos locales de
infección deben considerarse un IAFF hasta que se demuestre
lo contrario. Los signos
como una fístula drenante del
implante o el drenaje del pus se consideran signos definitivos
de infección.
Evaluación de la fisiología
del huésped
El examen detallado de los pacientes con un presunto IAFF
incluye una evaluación clínica y una historia clínica completa, así
como una evaluación de los factores de riesgo locales y sistémicos
del huésped. Lesiones de alto riesgo, incluyendo fracturas
abiertas con daño grave de tejidoblando, antecedentes previos de
infección o una fisiología del huésped comprometida [36]. Las
características de la fisiología del huésped comprometida, tales
como la supresión inmune crónica (diabetes, neoplasia
maligna, enfermedad hepática o renal grave,
alcoholismo),
deterioro de la vascularización local y la integuención de tejidos
blandos o deficiencia en la cicatrización de heridas, no sólo deben
influir en la evaluación de risk para la infección, sino que también
debe influir en los conceptos de tratamiento [37]. Por lo tanto, el
tratamiento de los cirujanos debe ser reacio a realizar procedimientos
reconstructivos complejos en pacientes donde estos factores de
huésped de alto riesgo están idnotificados [33,38].
Examen de laboratorio
El recuento de glóbulos blancos (WBC) con recuento
diferencial y de neutrófilos muestra baja sensibilidad y
especificidad para el diagnóstico de IAFF
[26,39]. La
elevación persistente o un aumento secundario de la proteína
C reactiva (CRP) pueden ser un indicador para el IAFF
[40,41].
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Microbiología
Imagen
El IAFF se debe principalmente a que las comunidades bacterianas
crecen en biopelículas protegidas en el material extraño y en el tejido
óseo necrótico [42]. Estas bacterias agrupadas localizadas son a menudo
metabol- cally quiescente, lo que hace que sea difícil de identificar y el
cultivo [43,44]. Los cultivos tomados de una herida abierta en el
momento de la fijación inicial de la fractura no se correlacionan con una
infección posterior eventual y deben evitarse [45,46]. Del mismo modo,
los cultivos de hisopo en el momento de la cirugía de revisión no
representan de manera fiable los patógenos en el hueso [47,48] y por lo
tanto no se recomiendan. En caso de sospecha de infección, se deben tomar
al menos tres biopsias óseas cerca de la implant y en regiones de
infecciónpercibida macroscópicamente como tejido óseo necrótico o no
uniones [26]. Si el mismo microorganismo se cultiva en al menos dos
biopsias separadas, se cree que es relevante. En el caso de especies
virulentas como S. aureus o E. coli, una sola biopsia positivaya puede
representar suficientemente una infección [17]. Si se sospecha la
participación de una articulación adyacente, se debe aspirar líquido articular
para su análisis (recuento de células, culturas). Siempre que sea posible,
se deben evitar los antibióticos durante al menos 2 semanas antes del
cultivo microbiológico, ya que esto puede transformar especies
bacterianas específicas en formas viables pero no culturables [49] y,
por lo tanto, los cultivos pueden llegar a ser falsamente negativos [50].
Todavía hay un debate en curso sobre la duración de la incubación del
cultivo: de 7 a 14 días de incubación puede ser razonable [51,52],
equilibrando el riesgo de falta rupción de un patógeno de cultivo difícil de
cultivar con el riesgo de cultivar un contaminante irrelevante.
Si se retira el hardware implantado durante la cirugía, estos
deben
ser enviado al laboratorio microbiológico para sonicación y
cultivo de fluido de sonicación,
si es posible. Se cree que la
sonicación se separa las bacterias envueltas en biopelículas del
implante y se interrumpen las biopelículas en sí, haciendo que las
bacterias amenable para sucultivo. Este método ha demostrado
aumentar el rendimiento de los cultivos positivos, especialmente
después del pretratamiento con antibióticos [53–56].
Aunque todavía se cree que el cultivo es el estándar de oro para
la evaluación microbiológica, se añaden cada vez más métodos
moleculares para identificar bacterias difíciles de cultivar o no cultivables.
Especialmente después del pretratamiento antibiótico, la
detección de patógenos con reacción en cadena de la polimerasa
(PCR) ha demostrado ser unacomplementación valorable [57–59].
Sin embargo, la alta resolución y sensibilidad de la PCR viene junto
con el riesgo de resultados falsos positivos de contaminantes
[60,61]. Además,
comúnmente no puede distinguish entre
bacterias vivas o muertas y no proporciona amplia información sobre la
susceptibilidad a los antibióticos, excepto la presencia de genes
de resistencia específicos [62].
Las radiografías en serie son el primer método de elección en
complicaciones después de la fijación de fracturas para obtener una visión
general primaria de la anatomía y juzgar el estado de curación de fracturas,
posicionamiento del implante, posible fallo del implante,
alineación de las extremidades y calidad ósea [64]. Sin embargo, las
radiografías simples no son adecuadas para diferenciar entre
cambios sépticos y asépticos en infecciones activas [26,65]. En
las infecciones crónicas, las zonas con sospecha de infección ósea
pueden mostrar secuestro, irregularidades corticales, resorción ósea y
formación de huesos/callos [33,65]. Para una planificación más
precisa
del
procedimiento
quirúrgico,
la
tomografía
computarizada (TC) proporciona más detalles sobre la
arquitectura ósea para evaluarel patrón de fractura, la formación nueva
bone y el hueso necrótico, así como el aflojamiento del implante
y proporciona evidencia adicional para la infección: reacción ósea
cortical, presencia de secuestro o fistula intraósea y formación de
abscesos en el tejido blando adyacente [33,66,67].
La resonancia magnética (RM) es el método de elección para
evaluar la afectación de los tejidos blandos y proporciona información
adicional sobre la manifestación de la infección intramedular [39]. Sin
embargo, en los casos de IAFF, losal artefactos encontrados
deterioran la correcta evaluación y cicatrización o el edema en
defectos óseos postoperatorios/postraumáticos pueden imitar una
infección [68].
Las modalidades de imágenes nucleares a menudo se
incluyen en la vía de diagnóstico de este tipo de infecciones [69,70].
Las imágenes nucleares utilizan radiofármacos radioactivos para
visualizar y rastrear (patho-) cambios fisiológicos, como la
cicatrización de fracturas, el remodelado óseo y la respuesta tory de
inflamacióna unainfección. La combinación de estos estudios de
imágenes funcionales con imágenes morfológicas, como la TC en
un dispositivo, se denomina imagen híbrida (SPECT/CT). Permite
una localización precisa de la sospecha de infección y facilita la
descriminaciónentre lainfección ósea y la infección por tejidos
blandos [70]. La centellografía ósea, generalmente realizada con
tecne- tium-99m-difosfonatos (99mTc) es positiva para la
osteomielitis en el caso de hiperemia focal o hiperperfusión y
aumento focal de la actividad ósea [70]. Dado que estos cambios
fisiológicos también están involucrados en la curación de
fracturas, no puede discriminar entre la infección y la formación ósea
postraumática. Por lo tanto, la centellografía ósea tiene un valor
limitado en el diagnóstico del IAFF [26,39,70]. La toma de
imágenes del CMB, utilizando leucocitos etiquetados in vitro es una
técnica prometedora para identificar infecciones bacterianas, pero
no es rutinariamente ailabledebido al etiquetado in vitro complejo
[70]. 18F- fluoro-desoxi-glucosa PET (FDG-PET), es muy útil
en infecciones musculoesqueléticas para visualizar y localizar con
precisión la infección con una alta sensibilidad y especificidad
[70]. Su papel en el IAFF sigue siendo inconcluso y debe
determinarse.
Histología
Los diagnósticos rutinarios del IAFF pueden incluir análisis
histológicos
de varias muestras de tejidos, que se tomaron
intraoperatoriamente del lugar de sospecha de infección y/o no
sindical [63]. El examen histológico permite la diferenciación entre
infección aguda ycromática, prueba de hueso necrótico y detección
de neoplasia maligna y ofrece en combinación con análisis
microbiológicos pistas importantes sobre la presencia de una
infección ósea [33]. chro
Tratamiento
Consideraciones generales
Los objetivos centrales del tratamiento del IAFF se muestran en
el Cuadro 1. Recuerde que cada caso de IAFF debe considerarse
como un caso único, ya que no existe un procedimiento estándar que
pueda aplicarse rutinariamente a cada paciente.
A diferencia de la PJI, los dispositivos de fijación de fracturas se
pueden eliminar después de que se haya producido la curación,
moviendo asíla biopelícula y
Tabla 1
Central aims of treating IAFF.
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microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
Modelo G
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1.
Consolidación de fracturas
2.
Erradicación de la infección o en ciertos casos supresión de la infección hasta que se logre la
consolidación de la
fractura
4.
soft-tissue
Prevención de la osteomielitis crónica
5.
Restoration of functionality
3.
Sanación del sobre
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6
W.J. Metsemakers et al. / Injury, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
Tabla 2
Preguntas para adaptar la estrategia de tratamiento adecuada.
1.
inicio tardío
Inicio de los síntomas (clasificación): temprano–retrasado–
de lainfección?
2.
3.
¿Se formó un caldo curado o estable?
Construcción osteosintética: implante estable y reducción
satisfactoria de fracturas?
4.
5.
¿Tipo de implante (por ejemplo, placa, clavo, fijación externa)?
¿Localización de fracturas (por ejemplo, diafisela, articular)?
6.
¿Condición de envelo
7.
¿Fisiología
8.
9.
Antecedentes de infección en el lugar de interés?
¿Difícil de tratar el patógeno? a
pe de tejidoblando?
local y sistémica del huésped?
antibióticos Terapia antibiótica sistémica
En general, la terapia antibiótica puede ser curativa o
Represiva. En este último caso, los antibióticos controlan la infección
hasta que la fractura se cura y el implante se puede extraer [26]. Los
antibióticos siempre deben serinitiados a las bacterias recuperadas
y su patrón de susceptibilidad a los antibióticos (ver Tabla 3).
Después del desbridamiento quirúrgico, se inicia una terapia
intravenosa inicial para lograr una rápida reducción de la carga
bacteriana en el lugar de la infección. Después de aproximadamente
2 semanas de terapia intravenosa, se sugiere un cambio a la terapia oral con
buena biodisponibilidad (ver
está disponible para la revisión primaria, ya que la
identificación preoperatoria de patógenos a menudo no es posible (a
diferencia de la PJI, debido a la aspiración conjunta); los resultados
a
En
general
no
de la microbiología deben tenerse en cuenta tan pronto como estén disponibles.
en una alta probabilidad de aclaramiento de la infección. Por
lo tanto, la erradicación completa de lan infecciosa no siempre es
el objetivo principal. La terapia supresora con antibióticos puede
ser una alternativa establecida en ciertos casos [3,26,71]. A fin
de adaptar la estrategia de tratamiento adecuada, deben examinarse
una serie de cuestiones importantes (Cuadro2) [1,26,39].
Teniendo en cuenta estas consideraciones, los objetivos antes
mencionados pueden lograrse mediante dosprincipios principales
surgical:
I Riego, desbridamiento y retención del
implante
combinado sin terapia antibiótica.
II Desbridamiento, extracción de implantes o intercambio (una o
varias etapas) con terapia antibiótica acompañada.
En casos muy raros,
especialmente en huéspedes
comprometidos con infecciones graves, no se puede lograr la
curación y los procedimientos de recuperación, como la amputación o
eltablishment de una fístula continua, pueden ser las únicas
alternativas de tratamiento.
Independientemente de cuál de los dos principios principales
fue elegido, el cirujano tratante tiene que aplicar las herramientas de
diagnóstico antes mencionadas (CRP, análisis radiográfico, etc.)
para desarrollar un concepto de tratamiento a largo plazo como
parte de un equipo multidisciplinario. Este concepto de tratamiento
abarca el desbridamiento, la fractura y la terapia de tejido blandoy
laterapia antibiótica (sistemática/local). El desbridamiento
cuidadosamente considerado es la piedra angular del tratamiento
e implica la escisión de tejido necrótico e infectado (hueso y
blando), la evaluación de la construcción osteosintética
(estabilidad), la eliminación de cuerpos extraños (por ejemplo,
secuestrantes, tornillos rotos,
suturas) y la adquisición de
muestras múltiples de tejido para diagnóstico
[72]. El
desbridamiento radical no debe limitarse por las preocupaciones
de crear defectos óseos o de tejidos blandos [33], se debe
comparar el desbridamiento con'Resecciones oncológicas'.’ ‘
Dejando una alta concentración de patógenos (' células cancerosas')
en un área quirúrgica cancer específica,
conducirá
a la
recurrencia de la enfermedad. Cuando se pla nned varias etapas
operativas, estos defectos deben llenarse temporalmente con un
espaciador ('Gestión del espacio muerto'). Por último, una
cobertura adecuada de tejidoblando es essen- tial. Esto a menudo
significa la participación de cirujanos plásticos en el proceso, por
ejemplo, los de la piel.
Consideraciones sobre el tratamiento de
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Table 3) [73–75]. In case of treatment with aim of cure, the total
treatment duration is usually 6 weeks after removal of implants
or 12 weeks if implants stay in place [26,72]. In case of treatment
with aim of suppression, duration of therapy is linked with the
time for the fracture to stabilize/heal and should commonly be
continued for 4–6 weeks after implant removal. This is
particularly recommended in infections with virulent bacteria
such as S. aureus or E. coli in order to prevent or treat chronic
osteomyelitis. When implants are retained, a curative treatment is
generally only effective with a biofilm-active antibiotic, which
has so far only been shown for rifampicin against staphylococci
[76–78] and for quinolone against Gram-negative bacteria [79–
81]. Importantly, rifampicin must always be combined with a
second antibiotic due to otherwise rapid development of
resistance. For the same reason rifampicin should not be started
before an initial bacterial load reduction by surgery and antibiotic
therapy has occurred, all drains are drawn and the wound is dry
[82,83]. For staphylococci, quinolones such as ciprofloxacin or
levofloxacin are the best- studied and effective oral antibiotic
partners to rifampicin [76]. Other combinations have been
successfully used in orthopedic implant infections but are less
widely studied (see options in Table 3) [84]. If bacteria are
resistant to the mentioned biofilm- active antibiotics, they are
classified as difficult to treat and generally cannot be eradicated
by the available alternative antibiotics as long as the implants are
retained [85]. In these cases, the surgeon should strongly
consider implant removal.
degradables frente a materiales no degradables en el tratamiento
del IAFF [102–104]. A pesar de esto,losantibióticos locales parecen
reducir las tasas de infección en fracturas abiertas [105]. Los
antibióticos generalmente ejercen baja toxicidad local y sistémica
[106,107]. Sin embargo, hay casos raros de casos de
Terapia antibiótica local
La aplicación local de antimicrobianos en el lugar de la
infección a través de diferentes portadores ha ganado una
creciente atracción. Especialmente a la luz de la disminución
del flujo sanguíneo al lugar de la infección y el tejido óseo
necrótico, la ventaja de lograr una concentración local muy alta
de antimicrobianos con baja exposición sistémica es convincente
[87]. Además, sus acarreos pueden ser una opción de
tratamiento importante para 'gestión del espacio muerto'.
Ahora, los antimicrobianos más utilizados son la gentamicina,
la tobramicina, la vancomicina y las cefalosporinas [88].
Como portador, se puede diferenciar entre materiales
resorbables frente a materiales no resorbables. materials.
Comúnmente, se aplica un cemento óseo de polimetilme-talacrilato
(PMMA) cargado con antibióticos, que puede introducirse como
cuentas en una cuerda o utilizarse simultáneamente para la
estabilización mecánica como varilla o para el llenado temporal de
grandes defectos óseos [89]. Sin embargo, el cemento también
puede servir como una superficie adicional para que las bacterias se
adhieran, particularmente después de que se hayan eludado los
antibióticos. Esto puede promover la infección en curso o
incluso inducir resistencia a los antibióticos [90–93]. Otro aspecto
negativo de la PMMA es que necesita
ser removido
durante la cirugía de seguimiento,
ya que no es resorbable.
Además, los estudios sobre la cinética de elución han demostrado
que menos del 10% de los antibióticos incorporados normalmente
se liberarán de PMMA [94]. Aumentar la porosidad del
material o mezclar, por ejemplo, la vancomicina con tobramicina
puede producir dosis más altas de eludo [95,96].
Materiales resortables como el sulfato de calcio, que puede
gamaer de antibióticos que PMMA y no necesariamente
necesitan re-cirugía para la extracción, han demostrado
buenos primeros resultados [97–100]. Como efecto secundario,
se puede desarrollar un bolsillo líquido seroso o una secreción
prolongada de heridas [101]. Otros materiales degradables son
el vidrio bioactivo, los fosfatos cálcicos y los implantes de
colágeno. Es necesario afirmar que para todos estos
materiales faltan datos de grandes ensayos clínicos.
Hasta la fecha, no hay evidencia clara de la ventaja de la
adición de antibiótico local a la terapia sistémica en ensayos
clínicos aleatorizados y no hay una ventaja clara de materiales
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/ Lesión, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
7
Tabla 3
Tratamiento antibiótico según el patógeno (adaptado de Zimmerli et al. [86]).
Patógeno
Terapia antibiótica
Staphylococcus spp.
Susceptible de meticilina
2 semanas
Flucloxacilina plus
Rifampicina
2 semanas
Vancomicina o
Daptomicina plus
Rifampicina
seguido de
Rifampicina plus
Resistente a la meticilina
todo Staphylococcus spp.
Dosis (función renal normal)
2 g cada 6 h.iv.
450 mg cada 12 h iv./po.
15 mg/kg cada 12 h iv.
6–8 mg/kg cada 24 h iv.
450 mg cada 12 h iv./po.
450 mg cada 12 po.
1a opción
Ciprofloxacino o
Levofloxaxina o
2a opción
Streptococcus spp.
a
Enterococcus spp.
Penicilina susceptible
Terapia completa resistente a la penicilina
750 mg cada 12 h po.
500 mg cada 12 h po.
1 comprimido de
fusídico o
Cotrimoxazol o
doble resistencia cada 8 h po.
Acido
500 mg cada 8 h po.
3a opción
Clindamicina o
Minociclina o
Linezolid
4 semanas
Penicilina G o
Ceftriaxon
seguido de
Amoxicilina o
Clindamicina
terapia entera b
de amoxicilina o
Penicilina G
whole
Vancomicina o
600 mg cada 8 h po.
100 mg cada 12 h po.
600 mg cada 12 h po.
5 Mio IU cada 6 h iv.
2 g cada 24 h iv.
1000 mg cada 8 h po.
600 mg cada 8 h po.
2 g iv. cada 6 h iv.
5 Mio IU cada 6 h iv.
15 mg/kg cada 12 h iv.
8
Daptomicina o
Enterobacteriaceae
Enterobacter spp. y No fermentadores
(por ejemplo, P. aeruginosa)
6– mg/kg cada 24 h iv.
Linezolid
2 semanas
600 mg cada 12 h iv./po.
b-lactam antibiótico según
seguido de
Ciprofloxacino
2–4 weeks
susceptibilidad
Ceftazidim
2 g cada 8h
o
1–
Meropenem
Anaerobios Gram-negativos
(por ejemplo, Bacteroides))
Infecciones mixtas
resistente a
(sin S. aureus
iv.
d
2 g cada 8 h iv.
2 g cada8 h
seguido de
Propionibacterium spp.
750 mg cada 12 h po.
perfusión prolongada (3 h):
Cefepime o
c
iv.
1–
iv.
d
Ciprofloxacino
2–4 semanas
Penicilina G o
Ceftriaxone
seguido de
Amoxicilina o
Clindamicina
whole therapy
750 mg cada 12 h po.
Metronidazol
Yoterapia ndividualizada de
acuerdo con la susceptibilidad
500 mg cada 8 h iv./po.
5 Mio IU cada 6 h iv.
2 g cada 24 h iv.
1000 mg cada 8 h po.
600 mg cada 8 h po.
lameticilina)
una medición de la
b
c
d
concentración inhibitoria mínima (MIC) recomendada para la penicilina.
Iv.- terapia si la intención curativa, para la terapia supresiva considerar, por ejemplo, amoxicilina 750–1000 mg cada 8 po.
Sin Ceftazidime para Enterobacter spp. (aunque se mida susceptible), alternativa: Ertapenem 1 g cada 24 h.
En infecciones con Pseudomonas: se
e Si alergia a la
recomienda la dosis de high.
penicilina Tipo I (anafiláctica): Clindamicina 600–900 mg cada 8 h iv.
fallo atribuible a la gentamicina aplicada localmente [108] o a la
tobramicina [109].
Explorar el
efecto del recubrimiento
de materiales
osteosintéticos
con un antimicrobiano es una cuestión de
investigación en curso. Sólo unos pocos han logrado llegar al
mercado. Entre ellos se encuentran una uña de tibia intramedular
recubierta de gentamicina [16.110] y megaprosthe- ses recubierto de
plata [111].
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Stage-dependent surgical treatment considerations
Trcomida de infección temprana
La
colonización
del
hardware
puede
ocurrir
intraoperatoriamente, y la formación de biopelículas puede
proceder en cuestión de días, con el implante sirviendo así como
el nidus para la infección y complicando la curación / tratamiento
[3,112–114]. En esta etapa temprana, la formación de biopelículas
parece estar en una etapa inmadura, y la osteomielitis fulminante
a menudo no está presente [29.115]. Sólo en situaciones clínicas
muy raras, como
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fracturas abiertas gravemente contaminadas, se producirá
osteomielitis (es decir, signos histológicos de inflamación de la
médula ósea/ósea) en este período de tiempo. Esta es la razón por la
retención del dispositivo de fijación de fractura es práctica común
y el tratamiento implica terapia antibiótica y desbridamiento de
tejidos. Estudios experimentales en la rata han demostrado que la
formación de caldo podría observarse a pesarde laretención del
implante [32]. Retener un implante en etapas tempranas es
tentador porque la extracción de hardware complicaría el manejo de una
fractura sin cicatrizar, especialmente en fracturas articulares
complejas. Sin embargo, la retención del implante sólo es razonable
si se puede llevar a cabo suficiente riego y desbridamiento del implante /
sitio quirúrgico, si la construcción de osteosíntesis es estable, y
la terapia antibiótica es apropiada [72,116]. La impor- tance de
laestabilidad del implante ya fue esbozada por investigaciones
anteriores de Rittmann y Perren en estudios experimentales
en ovejas, que mostraron los efectos positivos de la estabilidad en
la cicatrización de fracturas en la infección [9]. Además,la
capacidad de st tiene una influencia mucho más profunda que la del material
deimplante elegido (es decir, diferentes aleaciones metálicas)
[117.118]
En las infecciones tempranas, la consolidación se puede lograr
a pesar de la presencia de una infección, siempre y cuando la
construcción de osteosíntesis se mantenga estable [9.119]. Si no se
concede estabilidad y el implante no se puede
desbridar
correctamente, por ejemplo, en clavos intramedulares,
se debe
considerar el intercambio de hardware [36]. El desbridamiento
también incluye una revisión cuidadosa de los hematomas, ya que
son un medio de crecimiento adecuado para bacterias
[26].
Subsecuentemente, un curso de 12 semanas de terapia antibiótica
con implantes retenidos o hasta 6 semanas después de la extracción
del implante debe seguir el desbridamiento [26,78,120]. Dado
que el desbridamiento reduce la carga bacteriana y puede
eliminar una biopelícula inmadura, los antibióticos sistémicos
aditivos tratarán el resto de la infección. Una vez que la fractura
se ha curado, se recomienda encarecidamente retirar el implante para
reducir el riesgo de una infección recurrente [119]. Berkes y otros
investigaron launión oseo en pacientes que desarrollaron una
infección dentro de las 6 semanas posteriores a la fijación de la fractura
operativa y que fueron tratados con desbridamiento, antibióticos y
retención de hardware. La curación de la fractura sólo se podía
lograr en el 71% de los pacientes, mientras que una fractura abierta
y la presencia de una uña intramedular eran predictores de fracaso
del tratamiento [3]. Rightmire et al. realizó un enfoque similar en las
infecciones dentro de las 16 semanas después de la osteosíntesis y
reportó un ión exitoso en el 68%, aunque en el 38% de los
pacientes con sanación ósea exitosa, el hardware tuvo que ser removido
para la infección persistente después de la unión y por lo tanto sólo el
49% del grupo de estudio original logró healing y estaba libre
deinfección después de seis meses [119]. Estos hallazgos apoyan
el hecho de que el enfoque del desbridamiento y la retención sólo es
prometedor en un período de tiempo temprano después de la fijación de la
fractura para lograr la unión y la ausencia de infección a largo plazo.
En la mayoría de las infecciones tempranas de retención y
antibióticos
la terapia es la mejor opción [26], pero hay indicaciones en las que
el intercambio del implante debe tenerse en cuenta [26,39,119]. Los
factores se enumeran en la Tabla 4. Estos factores deben
interpretarse como sugerencias y no como criterios de decisión
definidos.
Treatment of delayed infection
Las infecciones retrasadas, que van de 3 a 10 semanas, son
una zona gris en la que la toma de decisiones con respecto a la opción
de tratamiento adecuada es más difícil que en las infecciones de inicio
temprano o tardío. Es importante entender que la clasificación que
utilizamos (Fig. 1) es un continuo, lo que significa que en las
primeras etapas de esta fase, la retención de implantes todavía
podría ser considerada, mientras que en las etapas posteriores, esto
estaría más claramente contraindicado.
En presencia de los criterios antes mencionados (TablaTable
4), y con una mayor duración de los síntomas o retraso en el
diagnóstico, la decisión debe tender hacia el intercambio de implantes.
Como se explicó anteriormente, el biofilm se desarrolla (madura) a
lo largo del tiempo y los signos de osteomielitis son crecientesy
observados (Fig. 2), lo que significa que el tratamiento de estos tipos de
infección a menudo exige eldesbridamiento radical y el intercambio de
implantes. Una consideración importante en la infección retrasada
es la evaluación de la consolidación de fracturas mediante estudios
por imágenes y durante la cirugía. Si la formación de calnos es visible
y la cicatrización ósea ha progresado lo suficiente como para
proporcionar estabilidad, el desbridamiento y la extracción de
implantes pueden ser la mejor opción.
Los principios principales de desbridamiento y eliminación de
implantes / intercambio en una o varias etapas se describen en la
subsección"Infecciones tardías". “
Tratamiento de la infección tardía
En la siguiente sección resumimos tres escenarios diferentes:
infección clínicamente sospechosa con consolidación ósea
completa, infección clínicamente sospechosa sin consolidación
ósea completa y falta de signos clínicos de infección. Los dos
primeros escenarios se discutirán juntos.
Infección clínicamente sospechosa con y sin consolidación completa
Como se mencionó anteriormente, esta clasificación del IAFF
es un continuo (Fig. 1). Aunque esto significa que no hay línea
roja que separa las infecciones tardías y tardías, hay que tener en
cuenta que después de 10
semanas(Fig. 1), inflamación,
encapsulación fibrosa y osteolisis a menudo conducen a la
inestabilidad de la construcción osteosinítica, potencialmente
resultando en retraso o no unión [29]. Además, la encapsulación
fibrosa de la zona infectada actúa como una barrera alrededor
de los secuestros y el hueso desvitalizado.
La infección tardía clínicamente sospechosa requiere un
desbridamiento extenso con la posible creación de defectos óseos
y de tejido blando. Por lo tanto, el concepto de tratamiento quirúrgico
debe incluir un enfoque multidisciplinario (cirujano de trauma y
plástico). A menudo se requieren procedimientos por etapas,
dependiendo de la extensión de la infección, el grado de
estabilidad y la condicióndel paciente (fisiología del huésped).
Las consideraciones más importantes en infecciones tardías
con, y sin, consolidación de la fractura son: eliminación de los
dispositivos de fijación de fractura restantes / cuerpos extraños; desnoviado radical de todos los huesos involucrados(secuestros) y tejido
blando; terapia antimicrobiana a largo plazo (normalmente 6
semanas de antibióticos y hasta 12 semanas si hay mucha
necrosis) y reconstrucción del envoltorio de tejido blando [121].
Tabla 4
Factors favoring implant removal and exchange.
1.
Osteosíntesis de
uñas
un
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insuficiente de
2.
Osteosíntesis inestable o reducción
3.
Sobre de tejido blando comprometido, que no permite el cierre
4.
5.
Fisiología del huésped comprometida (alcoholismo, diabetes, insuficiencia vascular, tabaquismo)
Difficult to treat pathogenb
una
b
fracturas
suficiente de la herida
recommia de Intercambio/eliminación finalizó fuertemente.ended.
En
general
no
patógenos a menudo
está disponible
no es
para
la revisión
primaria
ya que
la identificación
preoperatoria
de
posible (como en PJI por aspiración conjunta), si en la retención del implante se
eligió y el análisis de microbiología detecta postoperatoriamente un patógeno difícil de tratar, se debe considerar
fuertemente la extracción del implante.
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/ Lesión, Int. J. Cuidado lesionado xxx (2016) xxx–xxx
En ambos escenarios clínicos, los estudios preoperatorios por
imágenes, como Ct Las modalidades de RMN e imágenes nucleares
son útiles para el margenes de resección, incluidas las zonas de
seguridad. El funcionamiento Cirujano debe tener en cuenta que las
líneas de resección deben ser reevaluadas durante la cirugía, ya que
la transición de hueso necrótico a vital no es Siempre obvio de la
imagen preoperatoria. Necrótico, sin sangrado Hueso Es con un
cincel o una rebaba de alta velocidad y representa uno de los el los
pasos más críticos en la cirugía. Las manifes- taciones de infección
intramedular requieren desbridamiento
del canal intramedular
—
—
utilizando Un escariade clásico o un—aspirante
rirador de reíscos Creo
que es una buena cosa queUn DepuySynthes; Johnson & Johnson Co.
Inc., New Brunswick, Nj EE.UU.) [121,122].
Si es posible, se debe preservar la estabilidad del hueso, aunque
en ciertos casos donde el desbridamiento extenso conduce a la
inestabilidad, especise alía cuando no se llevó a cabo la
consolidación de la fractura, se hace necesaria la fijación externa y la
reconstrucción posterior. La fijación externa puede ser una
solución temporal o incluso definitiva (es decir, el transporte
óseo). Como se mencionó anteriormente, el uso de espaciadores
puede ser importante en estos casos, no sólo para el manejo del espacio
muerto, sino también para la terapia antibiótica local.
No sindical carente de signos clínicos de infección
En esta sección no nt será nuestro objetivo discutir el
trato de no sindical en general. Aunque parece apropiado comenzar
con una cuestión similar a la que describimos para el IAFF,
a saber, que la definición de no unión sigue siendo arbitraria [123].
Hay que afirmar que la literatura reciente comienza a aceptar las directrices
de la pasAdministración de Alimentos y Medicamentos de los Estados
Unidos (FDA, por sus) , que define la no unión como un hueso fracturado
que no se ha curado completamente dentro de los 9 meses de la lesión y
que no ha mostrado progresión hacia la curación sobre la pas t
3meses consecutivos en las radiografías en serie [124].
La no unión infectada es un problema subestimado. Gille y
otros. examinaron muestras negativas de cultivos de 23 pacientes
que no son uniones e informaron de la presencia de análisis de
la adeudaciónowing del ARN bacteriano con PCR en dos
pacientes (8,7%) [125]. Palmer et al. analizadas 34 muestras
obtenidas de pacientes con no unión [126]. Aunque ocho
muestras tenían un cultivo convencional positivo, sólo cuatro
de 34 casos fueron negativos tras el análisis del ADN bacteriano
utilizando una combinación de técnicas de hibridación in situ de
ibis molecular diagnostics y fluorescencia.
El beneficio de
utilizar técnicasde base molecular podría ser muy importante, ya
quedistinguir entre la no unión séptica y aséptica es esencial para
determinar el curso del tratamiento [127]. En caso de una no unión
resistente a la terapia de larga data, se debe sospechar una infección.
Si los cultivos son negativos en estos pacientes, como se mencionó
anteriormente, la PCR podría ser una solución futura. future
El problema con este tipo de infección es que el diagnóstico a
menudo sigue la intervención quirúrgica. Está claro que si hay una
sospecha durante la cirugía, se debe realizar un desbridamiento
quirúrgico extenso, como para las infecciones de inicio tardío
mencionadas anteriormente. Se debe considerar la planificación de un
procedimiento de segunda etapa con la eliminación de todo el material de
fijación interna (para la sonión)y a la espera de los resultados de los
cultivos. Además, el uso de espaciadores con
antibióticos
locales (es decir, PMMA) es a menudo un buen tratamiento
aditivo si hay una sospecha de infección durante la cirugía. El
solo intercambio del implantenotiene buenos resultadosen casos de
infección como fue descrito recientemente por Tsang et al.
para la no unión infectada de la tibia [128].
9
En una segunda etapa, cuando la infección ha sido tratada, el
injerto óseo ing (es decir, la técnica de mascarilla o membrana
inducida) podría, por graft ejemplo, considerarse. En caso de un
procedimiento de Masquelet, el cirujano debe estar seguro de que
no hay infección restante, como un estudio experimental reciente de
Seebach et al. demostró que esto puede empeorar por la
introducción de células madre estromales mesenquimales [129].
Por supuesto, el tratamiento definitivo con fijación externa (es
decir, el transporte óseo) también puede ser considered [128].
La Tabla 5 resume las consideraciones que un cirujano debe
hacer al tratar una no unión infectada.
Directivas futuras
La infección complica a una minoría significativa de pacientes
después de la oesteosíntesis, por lo que se requerirán mejoras tanto
en la prevención como en el tratamiento para lograr una mejor atención al
paciente en las próximas décadas. Estas mejoras pueden ir desde
profilaxis antibiótica perioperatoria mejor definida y controlada,
hasta diagnósticos más rápidos y nd específicos de incluso una
infección subaguda, hasta una mayor disponibilidad de dispositivos
médicos antimicrobianos funcionalizados o rellenos de vacío óseo
y material de injerto.
Los estudios preclínicos ocupan un importante paso en la
evaluación de estos nuevosiones intermedios, ya que esta es la etapa en la
que seevalúan intervenciones nuevas o mejoradas en un entorno
controlado antes de los ensayos con pacientes y la implementación
clínica completa [130.131]. Numerosos modelos in vivo de
infección se han descrito en la literatura, sin embargo, aquellos
que modelan la situación clínica lo más cerca posible se
consideran para proporcionar la evaluación más robusta de la eficacia
[132]. En el caso de infectidespués de laosteosíntesis, los modelos que
incorporan infección ósea asociada
con
un
implante
en
funcionamiento
(es decir,
en realidad la fijación de una
fractura/osteotomía inducida quirúrgicamente) logran este objetivo
[29].
La investigación y el desarrollo se han centrado más en las
estrategias preventivas que en las estrategias de tratamiento, ya que es más
probable que las estrategias preventivas tengan un mayor impacto general
en los costos de atención de la salud y los resultados de los pacientes. Los
nuevos enfoques para mejorar la prevención de la infección después
de la osteosíntesis se han centrado principalmente en la
administración local de compuestos antibacterianos a partir de
biomateriales especializados formulados como recubrimientos en
dispositivos [14,16] o como aditivos en rellenos de vacío óseo
como el cemento óseo [133] o materiales sustitutivos óseos
bacteriostáticos [134].
Actualmente,
hay a nuestro conocimiento, sólo un
implante de trauma recubierto de
antibióticos
que
estaba
disponible en el mercado, que se ha encontrado para prevenir
eficazmente la infección en casos incluso complicados con alto
riesgo de infección [14,16]. En el futuro, es probable que más
implantes funcionalizados antibacterianos saquen al mercado,
ofreciendo tecnologías competidoras, aunque en última instancia
bastante similar (liberación de antibióticos convencionales o
plata). El desarrollo
y la implementación clínica
de
dispositivos antimicrobianos en cirugía de traumaes es un
desafío científico y económico debido a las complejidades
de la ecuación de costo-beneficio para estudios clínicos y la
posterior ingesta clínica. Por esta razón, en el futuro, se necesita
un buen análisis de los costos para enfatizar aún más el problema del
IAFF.
Mirando hacia adelante a un escenario en el que la resistencia
a los antibióticos en patógenos comúnmente encontrados
aumenta,losdispositivos con carga antibiótica pueden estar
contraindicados, al menos en hospitales con altas tasas endémicas
de patógenos resistentes a los antibióticos dentro de los implantes.
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
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En este sentido, la plata ha mantenido su
Tabla 5
Considerations when treating infected non-union.
1. Piense en la infección cuando trate a un no-sindicato (culturas)
2. Realizar un buen desbridamiento del área
de implantes
no sindical
3. El intercambio
no siempre es suficiente y otros
externa)
4. When in doubt perform a planned second, definitive, procedure
métodos de fijación de fracturas
deben ser rojos conside (es decir, fijación
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
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10
W.J. Metsemakers et al. / Injury, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
como antimicrobiano para dispositivos médicos debido a las bajas
tasas de resistencia en los aislados clínicos.
Los péptidos
antimicrobianos (AMP'’s) también están emergiendo como
posibles antimicrobianos que no inducen resistencia dentro de los
patógenos después de la exposición [135]. En la actualidad, los AMP
se han limitado a aplicaciones tópicas, aunque las estrategias de
investigación para la funcionalización de implantes han seguido
surgiendo [136]y aún pueden ser un apoyo crítico frente a la resistencia a
losantibióticos.
Por último, los hidrogeles han surgido recientemente como
vehículos prometedores para la administración de antibióticos en
heridas de trauma [88]. Recientemente,se han descrito los studi es
clínicos de fase temprana mediante el que se han aplicado hidrogeles
cargados con antibióticos a los pacientes durante la osteosinistesis [137]. Estos hidrogeles ofrecen el beneficio de la facilidad
de aplicación a heridas potencialmente complejas y pueden cubrir
tanto la superficie del implante como los tejidos circundantes.
Recubrimientos o rellenos de vacío óseo, en cambio, pueden
lixiviar antibióticos de la superficie a los tejidos circundantes,
pero el campo quirúrgico puede extenderse
surrounding
significativamente más allá del espacio periimplante. Los
hidrogeles, por otro lado, se pueden aplicar a través del sitio de la
herida debido a su naturaleza viscosa pero fluida [138]. Queda
por ver si estos hidrogeles progresan a la implementación clínica
rutinaria,pero en el momento actual, ofrecen
una opción
atractiva para el parto antibacteriano a las heridas de trauma.
Lancet1996;347:1133–7 .
[7] Metsemakers WJ, Handojo K, Reynders P, Sermon A, Vanderschot P, Nijs
de riesgo individuales de infección porep y
curación comprometida de fracturas después de la clavado
intramedular de fracturas del eje tibial: una experiencia central única de
S. Factores
[9] Rittmann W, Perren S. Curación ósea cortical después
de la fijación
interna y la infección. Berlín, Heidelberg, Nueva York: Springer; 1974.
[10] Worlock P, Slack R, Harvey L, Mawhinney R. La prevención de la infección en
fracturas abiertas: un estudio experimental del efecto de la estabilidad de la fractura.
Lesión 1994;25:31–8 .
[11] Metsemakers WJ, Emanuel N, Cohen O, Reichart M, Potapova I, Schmid T, et
al. Recubrimiento de matriz de polímero-lípido cargado de doxiciclina para la
prevención
de
osteomielitis
relacionada
con
implantes
resistencia a la doxiciclina
Resumen
Una de las complicaciones más difíciles
en la cirugía de
traumatismo es el desarrollo del IAFF. Las consecuencias para los
pacientes y los sistemas sanitarios con respecto a esta
complicación son graves. A pesar de los avances modernos, la
infección relacionada con los implantes sigue siendo un problema en el cuidado
de fracturas. Este artículo ofrece una visión general de la
standpoin ts actual con respecto al diagnóstico y tratamiento de
estacomplicación grave. Se necesita más investigación clínica y
traslacional para mejorar el resultado de esta población específica de
pacientes.
Conflict de interés
Todos los autores no declaran conflicto de intereses con
respecto a la preparación y redacción de este artículo.
Referencias
[1] Tratamiento de infecciones asociadas con implantes surgical. N
2004;350:1422–9 .
Engl J Med
traumartesperanzadico: un estudio de
control de casos que evalúa los factores de riesgo y el
[2] Infección del sitio quirúrgico en el
costo. J Clin Orthop Trauma 2015;6:220–6 .
[3] Berkes M, Obremskey WT, Scannell B, Ellington JK, Hymes RA,
Bosse M, et al. Mantenimiento de lainfección postoperatoria temprana
después
de la fijación interna de la fractura. J Bone Joint Surg Am
2010;92:823–8.
[4] Tschudin-Sutter S, Frei R, Dangel M, Jakob M, Balmelli C,
algoritmo t de
tratamientos para infecciones relacionadas
conimplantes ortopédicos con retencióndedispositivos,resultados
de un estudio de cohorteobservacional prospectivo. Clin
Schaefer DJ, et al. Validación de un
Microbiol Infect 2016 .
[5] Patzakis MJ, Wilkins J. Factores que influyen en la tasa de infección en
heridas de fractura abiertas. Clin Orthop Relat Res 1989;3:6–40.
[6] Boxma H, Broekhuizen T, Patka P, Oosting H. Ensayo aleatorizado
controlado de profilaxis antibiótica monodosis en el tratamiento quirúrgico
de
fracturas
cerradas:
el ensayo de trauma
480
pacientes. Lesión 2015;46:740–5 .
[8] Ktistakis I, Giannoudi M, Giannoudis PV. Tasas de infección después de fracturas
tibiales abiertas: están disminuyendo. Lesión 2014;45:1025–7 .
holandés.
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
debido
a la
Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
Principios – Segundo edición ampliadaion 2. ed: Thieme; 2007.
[29] Arens D, Wilke M, Calabro L, Hackl S, Zeiter S, Zderic I, et al. Un
Staphylococcus aureus resistente a la meticilina. J Versión de control
2015;209:47– 56.
[12] Rochford ET, Sabate Bresco M, Zeiter S, Kluge K, Poulsson A,
Ziegler M, et al. Monitorización de las respuestas inmunitarias en un
modelo de ratón de fijación de fracturas con y sin osteomielitis
modelo de húmero de conejo
de
Staphylococcus aureus. Hueso 2016;83:82–92.
[13] Rand BC, Penn-Barwell JG, Wenke JC. La administración combinada de
antibióticos locales y sistémicos mejora la erradicación de la contaminación
de heridas: un
clinical evidence
modelo animal experimental de fractura
de fractura y revisión de tibia
retrospectivo de una serie de casos de un
gentamicina en casos complejos
un análisis
solo centro
y
la revisión
de la literatura. Lesión 2015;46:2433–
lograr la cicatrización normal de fracturas cuando el implante se
retiene sobre la base de una infección? Un modelo animal experimental.
puede
Clin Orthop Relat Res 2015;473:3190–6 .
[33] Patzakis MJ, Zalavras CG. Osteomielitis postraumática crónica y no unión
infectada de la tibia:
conceptos de manejo de current. J Am Acad
Orthop Surg 2005;13:417–27.
[34] J.L. Marsh P.A. Watson C.A. Crouch. Artritis séptica causada por osteomielitis
crónica., J. Iowa Orthop, 17 1997 90–95. chronic
[35] T.P. Ruedi R.e. Buckley C.G. Moran K. Ito S.m. Perren R.g. Richards Y al., Para
Principios de La Gestión de Fracturas —
Volumen 2 Principios
Segundo ampliado,
—
—
edición 2. ed: Thieme; 2007.
[36] Willey M, Karam M. Impacto de la infección en la toxicidad de
7 .
[17] Osmon DR, Berbari EF, Berendt AR, Lew D, Zimmerli W,
Steckelberg JM, et al. Diagnóstico y manejo de la infección articular
protésica:
in rats. PLoS One 2016;11:e0147447 .
[32] Bilgili F, Balci HI, Karaytug K, Sariyilmaz K, Atalar AC, Bozdag E, et al. ¿Se
contaminada. Junta ósea J 2015;97-B:1423– 7 .
[14] Fuchs T, Stange R, Schmidmaier G, Raschke MJ. El uso de uñas recubiertas
de gentamicina en la tibia: resultados preliminares de un estudio
prospectivo. Arch Orthop Trauma Surg 2011;131:1419–25.
[15] Schmidmaier G, Lucke M, Wildemann B, Haas NP, Raschke M.
Profilaxis y tratamiento deinfecciones elatadas por implantes por
implantes recubiertos de antibióticos: una revisión. Lesión
2006;37(Suppl 2):S105–12 .
[16] Metsemakers WJ, Reul M, Nijs S. El uso de clavos recubiertos de
abierta:
de osteosíntesis de chapado y clavado con
y sin Osteomielitis Staphylococcus aureus. . Eur Cell Mater 2015.
[30] Rahn BA. Curación ósea: conceptos histológicos y fisiológicos. En: SumnerSmith G, editor. Hueso en ortopedia clínica. Segunda ed. D-bendorf: AO
Publishing; 2002.
[31] Modeling staphylococcus epidermidis-Induced non-Unions: subclinical and
directrices de práctica clínica de la Sociedad de
Enfermedades Infecciosas de América. Clin Infect Dis 2013;56:e1–e25 .
[18] Mangram AJ, Horan TC, Pearson ML, Silver LC, Jarvis WR. Guía para la
Prevención de la Infección Quirúrgica en el Sitio, . Centros para el Control y la
Reducción percutánea y fi
xación de fracturasde calcáneo
intraarticular desplazadas. J Orthop Trauma 2010;24:466–72.
Prevención de Enfermedades (CDC) De las
Prácticas de Control de Infecciones Hospitalarias Asesor
Committee. Am J Infect Control 1999;96:3–4 27: 97-132; discusión del
cuestionario
.
[19] Lin S, Mauffrey C, Hammerberg EM, Stahel PF, Hak DJ. Infección en el
después de la reducción abierta y fijación
interna de fracturas de meseta tibial. Eur J Orthop Surg
sitio quirúrgico
Traumatol 2014;24:797–803.
[20] Bachoura A, Guitton TG, Smith RM, Vrahas MS, Zurakowski D, Ring D. La
enfermedad y la complejidad de las lesiones son factores de riesgo para
la
infección en el sitio quirúrgico después de la
atención de fractura sin cirugía. Clin Orthop Relat Res
2011;469:2621–30 .
[21] Claessen FM, Braun Y, van Leeuwen WF, Dyer GS, van den Bekerom MP,
Ring
D. ¿Qué factores están asociados con una infección en el sitio quirúrgico
después del tratamiento quirúrgico de una fractura de codo? Clin Orthop
Relat Res 2015 .
[22] Meena RC, Meena UK, Gupta GL, Gahlot N, Gaba S. Clavado
fractura
tibial proximal extraarticular cerrada: un ensayo controlado
amedullario intr versus revestimiento proximal en el manejo de
aleatorizado. J Orthop Traumatol 2015;16:203–8 .
[23] GranTM, Alton TB, Patton DJ, Beingessner D. ¿La infección sistémica
o la fiebre aumentan los riesgos de infección quirúrgica
después fidela fixación interna de fracturas de fémur y
tibia en una unidad de politraumatomico de cuidados intensivos.
perioperatoria
J Trauma Cuidado Agudo Surg 2013;75:664–8 .
[24] Arens S, Hansis M, Schlegel U, Eijer H, Printzen G, Ziegler WJ,
et al. Infección después de la reducción abierta y fijación interna con
placas de compresión
dinámicas–
datos
clínicos
y
experimentales. Herida. 1996; 27 Suppl 3:SC27-33.
[25] Metsemakers WJ. Fracturas óseas
(poli)trauma:
análisis
de riesgo
largas en
pacientes
de complicaciones
muskuloesqueesqueléticas y estrategias para prevenirlas [Tesis].
Lovaina: Universidad Católica de Lovaina; 2015 .
[26] Trampuz A, Zimmerli W. Diagnóstico y tratamiento de infecciones
asociadas con dispositivos de fijación de fracturas. Lesión
2006;37(Suppl 2):S59–66 .
[27] Willenegger H, Roth B. Tácticas de tratamiento y resultados tardíos en la
infección temprana después de la osteosíntesis. Unfallchirurgie
1986;12:241–6 .
[28] T.P. Ruedi R.E. Buckley C.G. Moran K. Ito S.M. Perren R.G. Richards et al.
Principios
de AO de la gestión de fracturas –
lafractura.
Orthop Clin North Am 2016;47:357–64 .
[37] Cierny G. 3rd, mader JT, penninck JJ: un sistema de estadificación clínica para
osteomielitis adulta. Clin Orthop Relat Res 2003;7–24.
[38] DeWall M, Henderson CE, McKinley TO, Phelps T, Dolan L, Marsh JL.
Volumen 1 –
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
/ Lesión, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
[39] Kleber C, Schaser KD, Trampuz A. Manejo de la complicación de la
osteosíntesis infectada: algoritmo
Steckelberg JM, Uhl JR. de biofilms desalojados de
de terapia para infecciones
periimplantes. Chirurg 2015;86:925–34 .
[40] Neumaier M, Scherer MA. Lev els de proteína C reactiva para ladetección
la infección postoperatoria después de la
cirugía de fractura en 787 pacientes. Acta Orthop 2008;79:428–32.
temprana de
artroplastia
Uso de la tasa de sedimentación de eritrocitos y nivel de
proteína C reactiva para diagnosticar la infección antesde
laartroplastia total de rodilla. Una evaluación prospectiva. J Bone Joint
Surg Am Vol
2007;89:1409–16 .
Xu M, et al.
[42] Costerton JW, Post JC, Ehrlich GD, Hu FZ, Kreft R, Nistico L, et al.
para la detección de infecciones ortopédicas
y otrasinfeccionesbiofilm. Fems Immunol Med Mic 2011;61:133–40 .
Nuevos métodos
[43] Veeh RH, Shirtliff ME, Petik JR, Flood JA, Davis CC, Seymour JL,
componentes de lamenstruación.
lm en tampones y
J Infectar Dis 2003;188:519–30.
Análisis molecular de patógenos bacterianos en otitis-Media with effusion.
Jama-J Am Med Assoc 1995;273:1598–604 .
[45] Burns TC, Stinner DJ, Mack AW, Potter BK, Beer R, Eckel TT, et
[44]
al.
Características de microbiología
y lesiones en fracturas graves de
tibia abierta del combate. J Trauma Cuidado Agudo Surg 2012;72:1062–7.
[46] Valenziano CP, Chattar-Cora D, O'Neill A, Hubli EH, Cudjoe EA. Eficacia de
los cultivos de heridas primarias en fracturas de extremidades abiertas
óseas largas: son de
cualquier valor. Arch Orthop Trauma Surg
2002;122:259–61 .
[47] Aggarwal VK, Higuera C, Deirmengian G, Parvizi J, Austin MS. Cultivos de
hisopo no son tan eficaces como los cultivos de tejido para el diagnóstico de
infección articular periprotésica. Clin Orthop Relat Res 2013;471:3196–203.
[48] Zuluaga AF, Galvis W, Jaimes F, Vesga O. Falta de concordancia
microbiológica entre muestras óseas y no óseas en osteomielitis crónica: un
estudio
observacional. BMC Infect Dis 20022: .
[49] Pasquaroli S, Zandri G, Vignaroli C, Vuotto C, Donelli G, Biavasco F.
La presión antibiótica
puede inducir el estado viable pero no cultivable
en Staphylococcus aureus creciendo en biopelículas. J Chemother antimicrob
2013;68:1812–7 .
[50] Malekzadeh D, Osmon DR, Lahr BD, Hanssen AD, Berbari EF. El uso previo
de la terapia antimicrobiana es un factor de riesgo para la
infección articular protésica negativa para el
de rodilla y cadera utilizando
las superficies de
sonicación. J Clin
Microbiol 2012;50:3501–8.
[59] Greenwood-Quaintance KE, Uhl JR, Hanssen AD, Sampath R, Mandrekar JN,
[41] Greidanus NV, Masri BA, Garbuz DS, Wilson SD, McAlinden MG,
et al. Detección de Staphylococcus aureus biofi
11
Bone Joint Surg Am Vol 2010;92A:654–63.
[58] Gomez E, Cazanave C, Cunningham SA, Greenwood-Quaintance KE,
[60]
Patel R. Diagnóstico de la infección de la articulación
protésica mediante el uso de espectrometría de masas de
ionización PCR-electrospray. J Clin Microbiol 2014;52:642–9 .
Clarke MT, Roberts CP, Lee PT, Gray J, Keene GS, Rushton N. La
reacción en cadena de la polimerasa puede detectar ADN
bacteriano en artroplastias totales de cadera asépticamente sueltas.
Clin Orthop Relat Res 2004;13:2–7.
[61] Panousis K, Grigoris P, Butcher I, Rana B, Reillyl JH, Hamblen DL. Valor
predictivo deficiente de PCR de amplio alcance para la detección de
la infección por artroplastia en 92 casos. Acta Orthop
2005;76:341–6 .
[62] Tsuru A, Setoguchi T, Kawabata N, Hirotsu M, Yamamoto T, Nagano
S, et al. El enriquecimiento de bacterias samples por centrifugación mejora
el diagnóstico de infecciones relacionadas con la ortopedia a través
amplificación de PCR en tiempo real del gen
bacteriano de resistencia a la meticilina. NOTAS DE BMC Res
2015;8:288 .
[63] Ochsner PE, Hailemariam S. Histología bone
asociada
de la osteosíntesis
a la infección ósea. Lesión 2006;37(Suppl 2):S49–58 .
[64] Wenter V, Muller JP, Albert NL, Lehner S, Fendler WP, Bartenstein P,
El
valor diagnóstico de [(18)F]FDG PET para detectar iones
crónica
e
la osteomielitis:
papel de
la radiografía. Radiología
osteomielitis postraumática: un desafío diagnóstico con
nuevas opciones de imagen. J Trauma 2002;52:1210–9.
cultivo.
prolongada de 14 días.day J Clin Microbiol 2014;52:61–6.
[52] Schafer P, Fink B, Sandow D, Margull A, Berger I. Frommelt L. cultivo
bacteriano prolongado para identificar la infección articular
[53] Sonication of removed hip and
prometedora.
Clin
Infect
Dis
knee prtheses for diagnosis of infection.
Nuevo Engl J Med 2007;357:654–63.
[54] L, rn-Geli
La sonicación de implantes aumenta la precisión
diagnóstica de la infección en pacientes con insuficiencia
ortopédica retardada, pero no precoz, de implantes. Junta ósea J
2013;95B:244–9.
[55] Yano MH, Klautau GB, da Silva CB, Nigro S, Avanzi O, Mercadante MT,
et
al. Diagnóstico mejorado de la infecciónasociada con la osteosíntesis mediante
el uso de sonicación de implantes de fi xación
de fractura.
J
Clin Microbiol 2014;52:4176–82.
[56] Dapunt U, Spranger O, Gantz S, Burckhardt I, Zimmermann S, Schmidmaier
et al. Son nouniones de huesos largos atróficos asociados con
infecciones de bajo grado. Therap Clin Risk Manag 2015;11:1843–
G,
52 .
[57]
1987;165:781–4.
[66] Gross T, Kaim AH, Regazzoni P, Widmer AF. Conceptos actuales en
de
incubación de cultivo en infecciones asociadas a
dispositivos ortopédicos: un
análisis retrospectivo de la incubación
estrategia
deosteomielitis
infección asociada al implante. Eur J Nucl Med Mol Imaging
[51] Schwotzer N, Wahl P, Fracheboud D, Gautier E, Chuard C. Tiempo óptimo
una
et al.
2016;43:749– 61.
[65] Tumeh SS, Aliabadi P, Weissman BN, McNeil BJ. Actividad de la enfermedad en
Clin Orthop Relat Res 2010;468:2039–45 .
periprotésica tardía:
2008;47:1403–9 .
de la
de infecciones de periprosthetic con el uso de
la reacción en cadena de la polimerasa basada en ARN ribosomal. J
Detección S,
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
gentamicina en
[67] Steinhausen E, Glombitza M, Bohm HJ, Hax PM, Rixen D. No-unions: desde
el
diagnóstico hasta la
curación. Cirujano
de accidentes
crecimiento bacteriano en cuentas cargadas con
2013;116:633-47 cuestionario 48-9 .
[68] Ledermann HP, Kaim A, Bongartz G, Steinbrich W. Escollos y limitaciones
de
la resonancia magnética en la osteomielitis postraumática crónica.
Eur
Radiol 2000;10:1815–23 .
[69] Hsu W, Hearty TM. Radionuclide imágenes en el diagnóstico y manejo
la enfermedad ortopédica.
crónica
[75]
[76]
[77]
[78]
adulta:
of MRSE on
a gentamicin and vancomycin
de
stage exchange artthroplasty due to periproprothetic joint
J Am Acad Orthopaed Surg
terapia antibiótica postquirúrgica para la osteomielitis
una
antibióticos: es en realidad un problema. Acta Orthop 2008;79:302–7.
[92] J, Evidence
impregnated polymethyl-metacrylate (PMMA) bone cement spacer after two-
2012;20:151–9 .
[70] Amor C, Palestro CJ. Imágenes de medicina nuclear de infecciones óseas.
Clin Radiol 2016.
[71] Zimmerli W. Presentación clínica y tratamiento de implantes ortopédicosinfección asociada. J Intern Med 2014;276:111–9 .
[72] Schmidt AH, Swiontkowski MF. Fisiopatología de infecciones después de
fixation of fractures. J Am Acad Orthop Surg 2000;8:285–91.
[73] Spellberg B, Lipsky BA. Terapia antibiótica sistémica para osteomielitis
crónica en adultos. Clin Infect Dis 2012;54:393–407.
[74] Rod-Fleury T, Dunkel N, Assal M, Rohner P, Tahintzi P, Bernard L, et al.
Duración de la
cirugía de revisión ortopédica. J. Chemother antimicrob
2001;47:885–91.
[91] Anagnostakos K, Hitzler P, Pape D, Kohn D, Kelm J. Persistencia del
experiencia
de
single-centre. Int
Orthop
2011;35:1725–31.
Daver NG, Shelburne SA, Atmar RL, Giordano TP, Stager CE,
Reitman CA, et al. La terapia oral para reducir la situación es comparable
a la terapia intravenosa para Osteomielitis de Staphylococcus aureus. J
Infectar 2007;54:539–44 .
Resultado y predictores de fracaso del tratamiento en total de infecciones
articulares protésicas de cadera/rodilla debido a Staphylococcus aureus. Clin
Infect Dis 2011;53:334–40.
Widmer AF, Gaechter A, Ochsner PE, Zimmerli W. Tratamiento
antimicrobiano de infecciones relacionadas con implantes ortopédicos con
combinaciones de rifampicina. Clin Infect Dis 1992;14:1251–3.
Zimmerli W, Widmer AF, Blatter M, Frei R, Ochsner PE. Papel de la
the knee. BMC
[93]
Infect Dis 2014;14:144.
de biopelículas viables de Staphylococcus
aureus en un informe de caso de una total artroplastia
total
de la articulación infectada. J Bone Joint Surg Am Vol 2008;90:1751–
Manifestación directa
8 .
[94] van de Belt H, Neut D, Schenk W, van Horn JR, van der Mei
HC, Busscher HJ. Liberación de gentamicina de los cementos óseos de
polimetilmetacrilato y
la formación de biopelícula siflococcus
aureus. Acta Orthop Scand 2000;71:625– 9 .
[95] Moojen DJ, Hentenaar B, Charles Vogely H, Verbout AJ, Castelein RM, Dhert WJ.
Liberación in vitro de antibióticos de cuentas comerciales de PMMA y
espaciadores articuladores
de cadera. J
Artroplastia 2008;23:1152–6.
[96] Penner MJ, Masri BA, Duncan CP. Características de elución de vancomicina y
tobramicina combinadas en cemento óseo acriloic. J Artroplastia 1996;11:939–
44.
tratamiento de infecciones estafilocócicas
relacionadas con implantes ortopédicos: un ensayo controlado
aleatorizado Grupo de Estudio de Infección cuerpo
a cuerpo extranjero (FBI). JAMA 1998;279:1537–41 .
rifampicina para el
[79] Hsieh PH, Lee MS, Hsu KY, Chang YH, Shih HN, Ueng SW. Infecciones
articulares protésicas gramnegativas: factores de riesgo y resultado del
tratamiento. Clin Infect Dis 2009;49:1036–43.
[80] Aboltins CA, Dowsey MM, Buising KL, Peel TN, Daffy JR, Choong PF, et
al. Infección protésica gramnegativa joint tratada con desbridamiento,
retención de prótesis y regímenes de antibióticos incluyendo una
fluoroquinolona. Clin Microbiol Infect 2011;17:862–7.
[81] JC,
hez
Resultado de las infecciones articulares protésicas
agudas debido a bacilos gram-negativos tratados con desbridamiento
abierto y retención de la prótesis. Agentes antimicrob Chemother
2009;53:4772–7 .
la
infección relacionada con el dispositivo ortopédico.
[82] Junta P, zimmerli W. Conceptos de tratamiento antimicrobiano para
Clin. Microbiol. Infectar 2012; 18:1176–84.
[83] Factores
asociados con la resistencia a la Clauss M,
en infecciones articulares periprotésicas
rifampicina
estafilocócicas (PJI): un estudio de caso-control coincidente. Infección
2013;41:431–7 .
[84] Coiffier G, Albert JD, Arvieux C, Guggenbuhl P. Optimización de la
rifampcombina
combinada en terapiapara infecciones
osteoarticulares estafilocócicas. Columna ósea articular
2013;80:11–7 .
[85] Zimmerli W, Trampuz A, Ochsner PE. Conceptos actuales:
infecciones entre prótesis y
articulaciones. Nuevo Engl J.
Med. 2004;351:1645–54 .
[86] W. Zimmerli, Infecciones asociadas a implantes ortopédicos. 2015.
[87] Gogia JS, Meehan JP, Di Cesare PE, Jamali AA. Antibiótico local therapy en
osteomielitis. Semin Plástico Surg 2009;23:100–7 .
[88] ter Boo GJ, Grijpma DW, Moriarty TF, Richards RG, Eglin D. Sistemas
de administración antimicrobianos para profilaxis
de infecciones locales en cirugía ortopédica y traumatismos.
Biomateriales 2015;52:113–25 .
[89] Hake ME, Young H, Hak DJ, Stahel PF,
Estrategias locales
prácticos y trucos
y
de
infection of
Hammerberg EM, Mauffrey C.
terapia antibiótica en trauma ortopédico: consejos
l
revisión de la iterature. Lesión 2015;46:1447–56 .
[90] Neut D, van de Belt H, Stokroos I, van Horn JR, van der Mei HC, Busscher
HJ. Infección asociada al biomaterial de perlas de PMMA cargadas de
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
12
W.J. Metsemakers et al. / Injury, Int. J. Care Injured xxx (2016) xxx–xxx
[97] Ferguson JY, Dudareva M, Riley ND, Stubbs D, Atkins BL, McNally MA. The
use of a biodegradable antibiotic-loaded calcium sulphate carrier containing
tobramycin for the treatment of chronic osteomyelitis A SERIES OF
195 CASOS. Junta ósea J 2014;96B:829–36.
[98] Inzana JA, Schwarz EM, Kates SL, Awad HA. Enfoques de biomateriales para
tratar la osteomielitis asociada a implantes. Biomateriales 2016;81:58–71.
[99] Beuerlein MJ, McKee MD. Sulfatos de calcio: ¿cuál es la evidencia? J Orthop
Trauma 2010;24(Suppl 1):S46–51.
[100] McKee MD, Wild LM, Schemitsch EH, Waddell JP. El uso de un sustituta
ósea bioabsorbible, osteoconductora y bioabsorbible
tasa de infección en un modelo de fractura deconejo. Lesión
2016;47:633–9.
[118]
enel tratamiento de
defectos óseos largos infectados: resultados tempranos de un ensayo
prospectivo. J Orthop Trauma 2002;16:622–7 .
[101] Ferguson JY, Dudareva M, Riley ND, Stubbs D, Atkins BL, McNally
MA. El uso
de un portador de sulfato de calcio cargado
con antibióticos biodegradable que contiene tobramicina para el tratamiento
de la osteomielitis crónica: una serie de
195 casos. Junta ósea J 2014;96-
B:829–36 .
[102] Calhoun JH, Henry SL, Anger DM, Cobos JA, Mader JT. El tratamiento de
las nouniones infectadas con cuentasantibióticas gentamicinpolimetilmetacrilato. Clin Orthop Relat Res 1993;2:3–7.
[103] Wasko MK,
elustom
Kaminski
en
trauma
de cemento
R. Uñas
ortopédico:
antibiótico
hechas
por
revisión de los resultados, nuevos
enfoques y perspectivas. BioMed Res Int 2015;2015:387186.
[104] Anagnostakos K, Schroder K. Injertos óseos impregnados de antibióticos en
cirugía ortopédica y traumatista: una revisión sistemática de la literatura. Int
J Biomater 2012;2012:538061 .
[105] Terapia antibiótica local para fracturas abiertas graves: una revisión de 1085
casos open consecutivos. J Bone Joint Surg Br
1995;77:93–7 .
[106] Walenkamp GH, Vree TB, van Rens TJ. Gentamicin-PMMA cuentas Estudio
farmacocinético y nefrotoxicológico. Clin Orthop Relat Res 1986;171–83.
[107] Springer BD, Lee GC, Osmon D, Haidukewych GJ, Hanssen AD,
Seguridad sistémica de los espaciadores
de cemento con dosis altas de antibióticos después de la
Jacofsky DJ.
resección de una artroplastia total de rodilla infectada. Clin Orthop Relat Res
2004;4:7–51 .
[108] van Raaij TM, Visser LE, Vulto AG, Verhaar JA. Insuficiencia renal aguda
después del tratamiento local con gentamicina en una
rodilla total infectada. J Artroplastia
artroplastia de
2002;17:948–50 .
[109] Patrick BN, Rivey MP, Allington DR.al failure associated with Ann
Pharmacother 2006;40:2037–42.
[110] Fuchs T, Stange R, Schmidmaier G, Raschke MJ. El uso de uñas recubiertas de
gentamicina en la tibia: resultados preliminares de un estudio prospectivo.
Arch Orthop Trauma Surg 2011;131:1419–25 .
[111] Hardes J, von Eiff C, Streitbuerger A, Balke M, Budny T, Henrichs MP,
Reducción de la infección por ic periprotésicon
recubiertas de plata en pacientes con sarcoma óseo. J
et al.
megaprótesis
Surg
Oncol
2010;101:389–95.
[112] Petty W,
Spanier S, Shuster JJ, Silverthorne C. La influencia de
implantes esqueléticos en la
incidencia
de
los
infecciones:
experimentos en un modelo canino. J Bone Joint Surg Am Vol 1985;67:1236–
44.
La teoría del biofilm puede guiar el
tratamiento de las infecciones ortopédicas que sehan
visto reladas por el dispositivo. Clin Orthop 2005;7–11.
[113] Costerton JW.
[114] Gristina AG, Naylor PT,
Myrvik QN. Mecanismos de
sepsis
musculoesquelética. Orthop Clin North Am 1991;22:363–71.
[115] Cuantificación de la historia natural de de Mesy Bentley KL, Varrone JJ, Bello-
la formación de biopelículas in vivo durante el establecimiento
de osteomielitis Staphylococcus aureus asociada a
implantes crónicos en ratones para identificar patógenos críticos y
factores de huésped. J Orthop Res 2015;33:1311–9.
[116] Merritt K, Jd Dowd. Papel de la fijación interna en la infección de fracturas
abiertas: estudios con Staphylococcus aureusa nd Proteus mirabilis. J Orthop Res
1987;5:23–8 .
[117] Metsemakers WJ, Schmid T, Zeiter S, Ernst M, Keller I, Cosmelli N, et al.
de fijación de fractura de titanio y acero con
diferentes topografías de superficie: enfluence sobre la
Placas
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
Modelo G
JINJ 6905 No. De Páginas 12
Moriarty TF, Debefve L, Boure L, Campoccia D, Schlegel U, Richards RG.
Influence of material and microtopography on the development of local
infection in vivo: experimental investigation in rabbits. Int J Artif Organs
2009;32:663–70.
[119] Rightmire E, Zurakowski D, Vrahas M. Infecciones agudas después
de la reparación de la fractura: manejo con hardware en
su lugar. Clin Orthop Relat Res 2008;466:466– 72.
[120] Trebse R, Pisot V, Trampuz A. Tratamiento de implantes retenidos
infectados. J Bone Joint Surg Br 2005;87:249–56 .
no unión infectada.
editores. Principios de AO
[121] E. Johnson, R. Buckley R. Infección crónica
En: R-edi T, Buckley R, Moran C,
de Gestión de
Fracturas:
y
que contiene el péptidoantimicrobiano OP-145.
Versión de control 2016;222:1–8 .
lípido
[137] Logoluso NM, K.; Blauth M.; Danita A.; Simon K.; Recubrimiento de hidrogel
antibacteriano de implantes osteosíntesis. Resultados clínicos tempranos de un
ensayo prospectivo multicéntrico. eCM XVI Infección ósea e implante. Davos,
Suiza 2015.
del ácido hialurónico termo-responsivo
inyectable con carga de gentamicina WJ, Zeiter S, Geoff
Richards R, Grijpma DW, et al. Acta Biomater 2016.
[138] El
on
derivado
Thieme; 2008. p. 543–55.
[122] Lowe JA, Vosburg C, Murtha YM, Della Rocca GJ, Crist BD. Una
nueva técnica para
eliminar
el cemento intramedular.
J Orthop
Trauma 2011;25:762–6 .
[123] Bhandari M, Guyatt GH, Swiontkowski MF, Tornetta P, Bhandari M,
Sprague 3rd S, Schemitsch EH. Falta de consenso en la evaluación de la
curación de
fracturas entre los cirujanos ortopédicos. J. Orthop.
Trauma 2002;16:562–6 .
[124] No uniones Brinker MR. Evalution y tratamiento. En: Browner BD, Levine
AM, Jupiter JB, Trafton PG, editores. Trauma Esquelético: Science Básico,
Manejo y Reconstrucción. 3a ed. Filadelfia: W.B. Saunders; 2003. p.
507–604 .
[125] Gille J, Wallstabe S, Schulz AP, Paech A, Gerlach U. ¿La no unión de
fracturas del eje tibial se debe a patógenos bacterianos no
culturales? Una investigación clínica
utilizando PCR y cultivo
techniques. J Orthop Surg Res 2012;7:20 .
[126] Palmer MP, Altman DT, Altman GT, Sewecke JJ, Ehrlich GD, Hu
FZ, et al. ¿Podemos
confiar en los resultados de la
cultura intraoperatoria en las no uniones. J Orthop Trauma 2014;28:384–
90 .
[127] Panteli M, Pountos I, Jones E, Giannoudis PV. Perfil biológico y molecular
del tejido fracturano-union: corriente enmiras. J Cell Mol Med 2015;19:685–
713 .
[128] Tsang ST, Mills LA, Frantzias J, Baren JP, Keating JF, Simpson AH.
Intercambio
de clavado por la no unión defracturas diasfixiales de la tibia:
análisis de los factores de riesgo de fracaso.
nuestros resultados y un
Junta ósea
J 2016;98-B:534–41 .
[129] Seebach E, Holschbach J, Buchta N, Bitsch RG, Kleinschmidt K, Richter
La antación de la simplita de la célula estromal
mesenquimalpara la estimulación de la curación ósea larga
agrava la osteomielitis inducida por Staphylococcus aureus. Acta
W.
Biomater 2015;21:165–77 .
[130] Critical van der Mei HC, Jutte PC, van den Dungen JJ, Schultz MJ, van der
factors in the translation of improved
antimicrobial strategies for medical implants and
devices (Factores críticos en la traducción de
estrategias antimicrobianas mejoradas para implantes y dispositivos
médicos).
Biomateriales 2013;34:9237–43.
[131] Moriarty TF, Grainger DW, Richards RG. Desafíos en la vinculación
de los stra tegies de investigación
antimicrobianapreclínicos con resultados clínicos para
infeccionesasociadas a dispositivos. Eur Cell Mater 2014;28:112–
28 discusión 28 .
[132] Calabro L, Lutton C, Din AFSE, Richards RG, Moriarty TF. Modelos
animales de infección relacionada con implantes ortopédicos. En: Moriarty
FT, Zaat AJS, Busscher JH, editores. Infección asociada a los
biomateriales: Aspectos inmunológicos y estrategias antimicrobianas.
Nueva York, NY: Springer New York; 2013. p. 273– 304 .
[133] Buchholz HW, Engelbrecht H. Depot efectos de varios antibiotics
mezclados
con resinas Palacos. Chirurg 1970;41:511–5 .
[134] van Gestel NA, Geurts J, Hulsen DJ, van Rietbergen B, Hofmann S, Arts JJ.
Aplicaciones clínicas de vidrio
bioactivo S53P4 en curación ósea y
tratamiento osteomiéltico: una revisión de la literatura.
J
BioMed Res Int
2015;2015:684826 .
[135] Zasloff M. Péptidos antimicrobianos de organismos multicelulares. La
naturaleza. 2002;415:389–95 .
[136] de Breij A, Riool M, Kwakman PH, de Boer L, Cordfunke RA,
Drijfhout JW, et al. Prevención de infecciones asociadas al biomaterial
de Staphylococcus aureus utilizando un recubrimiento de polímero-
Por favor, cite este artículo en prensa como: W.J. Metsemakers, et al., Infection after fracture fixation: Current surgical and
microbiological concepts, Injury (2016), http://dx.doi.org/10.1016/j.injury.2016.09.019
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