SECRETARIA DE AGRICULTURA, GANADERIA DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACIÓN LIC. ENRIQUE MARTÍNEZ Y MARTÍNEZ Secretario de Agricultura LIC. JESÚS AGUILAR PADILLA Subsecretario de Agricultura PROFR. ARTURO OSORNIO SÁNCHEZ Subsecretario de Desarrollo Rural LIC. RICARDO AGUILAR CASTILLO Subsecretario de Alimentación y Competitividad LIC. MARCOS BUCIO MÚJICA Oficial Mayor M.C. RAFAEL AMBRIZ CERVANTES Delegado Estatal En Morelos INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRÍCOLAS Y PECUARIAS DR. PEDRO BRAJCICH GALLEGOS Director General DR. SALVADOR FERNÁNDEZ RIVERA Coordinador de Investigación, Innovación y Vinculación M Sc. ARTURO CRUZ VÁZQUEZ Coordinación de Planeación y Desarrollo LIC. LUIS CARLOS GUTIÉRREZ JAIME Coordinador de Administración y Sistemas CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL PACIFICO SUR DR. RENÉ CAMACHO CASTRO Director Regional DR. JUAN FRANCISCO CASTELLANOS BOLAÑOS Director de Investigación DR. MIGUEL ÁNGEL CANO GARCÍA Director de Planeación y Desarrollo LIC. JAIME ALFONSO HERNÁNDEZ PIMENTEL Director de Administración DR. EFRAÍN CRUZ CRUZ Director de Coordinación y Vinculación en Morelos Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Centro de Investigación Regional del Pacífico Sur Campo Experimental Zacatepec MANEJO DE PICUDO DE NOPAL, COCHINILLA Y MANCHA NEGRA EN MORELOS Sandra Eloísa RANGEL ESTRADA1 Sergio RAMÍREZ ROJAS2 Felipe de Jesús OSUNA CANIZALEZ2 1 Investigadora del Programa de Plantas Ornamentales. Campo Experimental Zacatepec. 2 Investigador del Programa de Hortalizas. Campo Experimental Zacatepec. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Progreso No. 5, Col. Barrio de Santa Catarina Delegación Coyoacán C.P. 04010 México, D.F. Tel. (55) 3871 – 8700 ISBN: Primera Edición 2013 La presente publicación se terminó en el mes de octubre de 2013. No está permitida la reproducción total o parcial de esta publicación, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier medio, ya sea electrónico, mecánico, fotocopia, por registro y otros métodos, sin el permiso previo y por escrito a la institución. CONTENIDO 1. Introducción ................................................................................ 1 2. Importancia Económica............................................................... 2 3. Picudo (Metamasius spinolae Gyllenhal) .................................... 4 3.1 Taxonomía ............................................................................ 4 3.2 Origen y distribución .............................................................. 4 3.3 Morfología ............................................................................. 4 3.4 Biología y daños .................................................................... 6 3.5 Prácticas de control ............................................................... 8 3.5.1 Control cultural ................................................................ 8 3.5.2 Control biológico ............................................................. 9 3.5.3 Control químico ............................................................. 10 3.6 Efectividad biológica de insecticidas químicos..................... 10 3.6.1 Establecimiento del experimento .................................. 10 3.6.2 Condiciones meteorológicas durante el estudio ............ 12 3.6.2 Muestreos y análisis estadístico .................................... 12 3.6.3 Resultados .................................................................... 13 4. Cochinilla silvestre (Dactylopius opuntiae Cockerell) ................ 19 4.1 Taxonomía .......................................................................... 19 4.2 Morfología ........................................................................... 19 4.3 Daños ocasionados ............................................................. 21 4.4 Prácticas de control ............................................................. 22 4.4.1 Control cultural .............................................................. 22 4.4.2 Control mecánico .......................................................... 22 4.4.3 Control químico ............................................................. 23 4.5 Efectividad biológica de insecticidas químicos..................... 23 v 4.5.1 Establecimiento del experimento .................................. 23 4.5.2 Condiciones meteorológicas durante el estudio ............ 25 4.5.3 Muestreos y análisis estadístico .................................... 25 4.5.4 Resultados .................................................................... 27 5. Mancha negra (Pseudocercospora opuntiae)............................ 31 5.1 Taxonomía .......................................................................... 31 5.2 Daños .................................................................................. 31 5.3 Prácticas de control ............................................................. 33 5.3.1 Control cultural .............................................................. 33 5.3.2 Control químico ............................................................. 33 5.4 Efectividad biológica de fungicidas ...................................... 34 6. Sugerencias y Recomendaciones ............................................. 34 7. Agradecimientos ....................................................................... 35 8. Literatura Citada ....................................................................... 36 vi 1. Introducción La producción de nopal para verdura en México ha cobrado mucha importancia gracias a la diversidad de usos como planta medicinal, hortaliza, forraje, elaboración de cosméticos, entre otros. A nivel mundial destaca su utilización en la producción de alimentos (consumo en fresco y enlatado) (Orona-Castillo et al., 2003). México es el principal país dedicado al cultivo del nopal como verdura y se ha convertido en un alimento de gran consumo del pueblo mexicano con creciente demanda en las áreas urbanas. El nopal es afectado por problemas fitosanitarios que causan pérdidas económicas de importancia ya que sus daños pueden afectar todos los órganos de la planta: sistema radical, tallo, cladodios y frutos. Estas afectaciones ocasionan problemas de anclaje e impiden la absorción, transformación y traslocación de los diferentes nutrientes, los cuales se reflejan en la disminución del rendimiento y la baja calidad del producto. Esta problemática justifica la búsqueda e implementación de estrategias de control y manejo económicamente viables y específicas para la zona productora de Morelos. Dentro de los principales problemas fitosanitarios que atacan severamente al nopal destacan el picudo, la cochinilla silvestre y la mancha negra. La información contenida en este Manual son los resultados de las investigaciones llevadas a cabo en parcelas de nopal de productores y en laboratorio, y que fueron posibles gracias al apoyo financiero otorgado por la Fundación Produce Morelos A. C. El manual está integrado de foma accesible a productores y técnicos. 1 En primer lugar se revisa la importancia económica del cultivo en el Estado de Morelos seguido de una descripción detallada e ilustrada del picudo, la cochinilla silvestre y la mancha negra. Para el picudo, cochinilla y mancha negra se presentan los resultados de evaluaciones de efectividad biológica de algunos insecticidas probados para su control. Para mayor información se incluye la literatura citada si se desea profundizar en algún tema específico. 2. Importancia Económica De acuerdo con cifras del Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP, 2013), el nopal para verdura se cultivó en 26 estados de la república, Morelos en segundo lugar después del Distrito Federal. De las cerca de 12,500.00 hectáreas (ha) plantadas en el país, Morelos reportó 3,256.00 ha, 1,000 ha menos que las plantadas en el Distrito Federal. En Morelos esta superficie tuvo una producción de 341,642.00 toneladas (t) con un rendimiento promedio de 105 t/ha. El valor de la producción representó más de 400 millones de pesos (SIAP, 2013). El cultivo del nopal para verdura en Morelos, se distribuye en los muicipios de Tlalnepantla con 2,358 ha (72%); Totolapan con 470 ha (14.5%); Tlayacapan con 400 ha (12.0%); Tepoztlán con 20 ha y Amacuzac con 8 ha. De todos los cultivos sembrados en Morelos, el nopal se ubica en el sexto lugar, superado por el sorgo grano, maíz grano, caña de azúcar, maíz para elote y aguacate. 2 Las condiciones climáticas de Morelos resultan óptimas para la producción de nopal, sin embargo, se ha detectado que la variabilidad en los sistemas de producción asociados con la falta de organización, disponibilidad de tecnología, estacionalidad de la producción, capacitación, la no aplicación de buenas prácticas agrícolas, de manejo y de higiene, han sido los factores claves que impiden convertir la producción de nopal verdura en una actividad agrícola altamente competitiva y económicamente rentable como sucede con otros cultivos. El sexto lugar que ocupa el cultivo del nopal verdura en Morelos y la superficie plantada así como el valor de la producción, son aspectos que hacen necesaria la investigación sobre la evaluación y aplicación de nuevas tecnologías para que el cultivo en el Estado alcance niveles altamente competitivos como otras actividades agrícolas. 3 3. Picudo (Metamasius spinolae Gyllenhal) 3.1 Taxonomía El picudo del nopal es uno de los insectos plaga más importantes que causan daños a los cultivos de nopal verdura de la región productora de Morelos, ubicada en los municipios de Tlalnepantla, Totolapan, Tlayacapan, Tepoztlán y Amacuzac. El insecto pertenece al orden Coleoptera y familia Curculionidae. Su género es Metamasius y la especie Metamasius spinolae (Gyllenhal). Aunque en otras zonas del país se le puede conocer como “picudo barrenador del nopal” o “picudo barrenador”, en la zona productora del Estado se conoce comúnmente como “picudo del nopal”. 3.2 Origen y distribución Al picudo del nopal se le considera una especie endémica de América, distribuyéndose desde el sur de Estados Unidos de America (E.U.A.) hasta Centro América, en todas aquellas partes donde hay presencia de especies de cactáceas del género Opuntia (Cibrían-Tovar et al., 2006). 3.3 Morfología Los huevos son de color blanco, brillantes. Las larvas carecen de patas y la cabeza vertical contiene las piezas bucales dirigidas hacia el vientre, el cuerpo es de apariencia amarilla y la cabeza es de color café. Cuando las larvas maduran forman un capullo de forma elíptica alargado, dentro del tejido leñoso del eje principal de la planta, a partir de masas fibrosas masticadas. Cuando alcanzan 4 la etapa de pupa es fácil reconocer las distintas partes del cuerpo y las antenas, piezas bucales, patas y alas, las cuales se encuentran libres o sueltas (Figura 1) (Muñiz, 1998). 0 Figura 1. Estado larval y pupa del picudo del nopal. A) Larva; B) Pupa vista frontal y C) vista lateral. Los adultos llegan a medir de 15 a 25 mm de longitud y se caracterizan por ser de color negro con cuatro pares de manchas rojas discontinuas en el cuerpo (Figura 2) (Evans y Hogue, 2006); un par en la parte delantera del pronoto, otro en el metaesterno y dos más en cada élitro, aunque estas últimas de color rojo-naranja (Vaurie, 1967). Tienen antenas geniculadas de color negro que se insertan cerca de la base del rostro, el funículo presenta seis artejos pequeños, y la clava es más larga que los artejos y es revestida de pubescencia amarilla y fina (Muñiz, 1998). Para distinguir los sexos fácilmente, se usa la forma de la región ventral del primer segmento abdominal ubicado entre la base de las patas posteriores: si es cóncava o aplanada corresponde al macho, si es convexa o dilatada es hembra. Son insectos que tienen poca movilidad y sólo procrean una generación al año (Mann, 1969). 5 Figura 2. Estado adulto del picudo del nopal. A) Vista dorsal; B) Vista lateral. 3.4 Biología y daños Las larvas se desplazan en el interior de los cladodios maduros creando galerías y avanzan en dirección del más viejo (CerónGonzález et al., 2012; Tafoya et al., 2007). Perforan la superficie de los cladodios para realizar intercambio gaseoso y en su defensa la planta emite secreciones gomosas de color amarillento para cicatrizar las heridas e impedir la entrada de patógenos (Figura 3). Las galerías lentamente van debilitando a la planta y pueden ocasionar desprendimiento de cladodios. Cuando finalmente forman sus puparios (cocones fibrosos), las larvas se convierten en pupas y allí permanecen hasta el próximo año (Tafoya et al., 2003). Las lluvias de la temporada incrementan la humedad relativa y entonces reblandecen el pupario, facilitando la emergencia del adulto. En la zona productora de Morelos las lluvias se presentan a finales del mes de abril y terminan en octubre. 6 Figura 3. Daños causados por larvas del picudo del nopal. A) Galerías creadas en cladodios maduros. B) Secreciones gomosas recientes y C) viejas. Los adultos se alimentan de los bordes de los nopalitos (cladodios jóvenes de menos de un mes de formados), causando daño directo, aunque también pueden alimentarse de cladodios maduros (Figura 4) (Cerón-González et al., 2012; Tafoya et al., 2007). Sus daños provocan deformaciones en los cladodios y ya no son aptos para su venta en fresco (Figura 5). Figura 4. Daños causados por el adulto del picudo del nopal. A) Ataque en nopales recién brotados y B) próximos a cosecha; C) Ataque en cladodios maduros. 7 Figura 5. Deformaciones en cladiolos causadas por los daños del picudo del nopal. Hace poco se descubrió que los machos segregan una feromona de agregación (Tafoya et al., 2003), y con esto se podria establecer técnicas de trampeo para evaluaciones en campo. 3.5 Prácticas de control 3.5.1 Control cultural Un aspecto importante para el control del picudo del nopal es mantener el cultivo libre de maleza, así como hacer recorridos frecuentes para identificar los primeros síntomas del picudo. Cortar las pencas dañadas de nopal ayuda a evitar que las larvas avancen hacia el eje central de la planta (Figura 6A). El control cultural consiste en eliminar el insecto en su etapa adulta de forma manual (Orduño, 2009). Se recomienda en esta etapa porque su tamaño es fácil de detectar entre las pencas además de que se muestra poco activo. Esta práctica debe efectuarse en los meses de febrero hasta agosto. Para asegurarse de que se mueran se aconseja tomar con los dedos el pico del insecto mientras se 8 sostiene con la otra mano el cuerpo, entonces se da un giro completo y se jala el pico hasta retirar la cabeza (Figura 6B). Figura 6. Control cultural del picudo. A) Primeros síntomas de gomosis; B) Eliminación del picudo mediante el desprendimineto de la cabeza y pico; C) Eliminación de larvas destruyendo galerías. En el caso de las larvas y pupas, el control manual se dificulta porque se encuentran dentro de las pencas maduras y para llegar a ellas es necesario seguir las galerías con ayuda de un cuchillo o machete (Figura 6C). Las podas de pencas infectadas ayuda a disminuir las poblaciones de picudo y durante el establecimiento de nuevas plantaciones es muy importante asegurarse de usar material vegetal libre de plagas y enfermedades (Orduño, 2009). 3.5.2 Control biológico Para este tipo de control sólo existen reportes a nivel de condiciones controladas de laboratorio. Se ha trabajado con Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae (Tafoya et al., 2003; Orduño-Cruz et al., 2009 en la literatura citada tiene 2008, checar) pero los resultados no han permitido definir una estrategia para su 9 implementación en campo. Se requiere de mayor investigación al respecto. 3.5.3 Control químico Con los recorridos en parcelas de nopal se detectó que gran parte de los productores utilizan diferentes productos para el control químico de este insecto. Dichos productos que no están registrados ni autorizados por las autoridades fitosanitarias para la relación cultivo-plaga, además, son productos catalogados como de alta toxicidad. 3.6 Efectividad biológica de insecticidas químicos El objetivo de este estudio fue evaluar la efectividad biológica de diferentes plaguicidas para el control del picudo del nopal, con la finalidad de determinar el tratamiento más apropiado para el control de esta plaga así como sus posibles efectos fitotóxicos sobre el cultivo. Los resultados servirán para incorporarlos al paquete tecnológico del cultivo de Nopal en el estado de Morelos. 3.6.1 Establecimiento del experimento El estudio de efectividad biológica se realizó en un cultivo comercial de nopal verdura variedad Milpa alta, en el municipio de Tlalnepantla, Morelos. La ubicación exacta fue la siguiente: Latitud 19° 1' 9.32" N, Longitud 98° 59' 55.39" O y una altitud de 2,246 msnm. El cultivo de nopal tenía 10 años de edad y se encontraba en fase de desarrollo vegetativo. La parcela experimental se conformó por 10 cinco tratamientos distribuidos en un diseño de bloques completos al azar con cuatro repeticiones. La unidad experimental fueron cuatro surcos de 6 m de largo y 1.4 m entre surcos, lo que abarcaba una superficie de 33.6 m2. Las mediciones se hicieron en los surcos centrales (parcela útil). Las aplicaciones se hicieron cuando se contabilizó un promedio de 6.3 adultos vivos de picudo del nopal en toda la parcela experimental. Las aplicaciones fueron vía foliar de acuerdo a las dosis mostradas en el Cuadro 1. A los tratamientos con productos químicos se les agregaron 0.5 mL de Break-thru® por litro de agua como adherente. Para la aplicación se usó un aspersor manual tipo mochila y equipado con boquilla de abanico No. 8002. El volumen de aspersión obtenido después de la calibración fue de 923 litros de agua por hectárea. Sería importante colocar en el cuadro siguiente el ingrediente activo de cada producto. Cuadro 1. Dosis y productos evaluados en el control del picudo del nopal verdura. Tratamiento Producto Características Dosis del producto 1 Testigo - 0 2 Ajick® Extracto de ajo 1.00 L/ha Piretroide 0.55 L/ha 3 Box Thai® 4 Actara 25 WG® Neonicotinoide 90.0 g/ha 5 Premier® Piretroide, permetrina 0.50 L/ha 11 3.6.2 Condiciones meteorológicas durante el estudio Los datos meteorológicos se consultaron en la Red Nacional de Estaciones Estatales Agrometeorológicas, la cual es operada y mantenida entre el INIFAP y la Fundación PRODUCE. Se consultaron los registros diarios del 8 al 27 de Junio del año 2013 de la estación Tlalnepantla ubicada en la latitud 19.0115, longitud 98.9968 y altitud de 2,082 msnm. Los registros promedios de precipitación fueron 0.04 mm, 75% de humedad relativa y 18°C de temperatura ambiente. 3.6.2 Muestreos y análisis estadístico Los muestreos se hicieron en los dos surcos centrales de cada parcela útil de cada tratamiento. Se revisaron cuidadosamente las pencas y el suelo para contar el número de individuos vivos. Para determinar la población inicial se hizo un muestreo previo y se repitieron a los 3, 6, 10, 13 y 17 días después de la primera aplicación. A partir de los conteos de insectos vivos se calculó la efectividad biológica de cada plaguicida siguiendo la fórmula de ABBOT: EB= (IT-it/IT)100 Dónde: IT = severidad en el testigo sin tratar it = severidad del tratamiento Los datos del número de insectos vivos por muestreo y por tratamiento se procesaron con un análisis de varianza y la separación de medias se hizo con la prueba de Tukey (=0.05). 12 3.6.3 Resultados Muestreo previo y Muestreo 1 Este muestreo indicó la presencia de picudo del nopal en todos los tratamientos y con una población media de 6.3 adultos vivos por parcela útil. Con el análisis estadístico no se encontraron diferencias significativas, lo que indicó que todos los tratamientos iniciaron en igualdad de condiciones (Figura 7). Figura 7. Parcela experimental y muestreos después de las aplicaciones. El primer muestro se hizo al tercer día después de la primera aplicación de los insecticidas, la población de adultos de picudo del nopal, se incrementó en la parcela útil de todos los tratamientos. Sin embargo, el aumento en la población fue menor donde se aplicó Premier® y Actara 25 WG® en comparación con los demás plaguicidas (Figura 8). Núm. insectos vivos 40 35 Muestreo Previo 30 Muestreo # 1 13 25 20 15 10 5 0 Testigo Premier® Box Thai®Actara 25 WG® Ajick® Figura 8. Número de adultos vivos de picudo en el muestreo previo y tres días después de la primera aplicación de insecticidas en el cultivo de Nopal Verdura. Muestreo 2 y 3 Seis días después de la primera aplicación, el análisis de varianza mostró diferencias estadísticas. La prueba de Tukey, indicó que únicamente los insecticidas Premier® y Actara 25 WG® fueron los mejores tratamientos. Los insecticidas Box Thai® y Ajick® mostraron resultados parecidos al testigo (Figura 9). Al comparar el número de insectos vivos del primer muestreo con los del segundo se apreció una reducción considerable de la población en todos los tratamientos evaluados. Tres días después de la segunda aplicación se hizo el tercer muestreo y el análisis de varianza también mostró diferencias significativas, y con la prueba de Tukey se determinó que con el insecticida Actara 25 WG® se obtuvieron los mejores resultados, superando la respuesta de las aplicaciones con el plaguicida Premier®. 14 En este muestreo la población de adultos vivos de picudo del nopal se incrementó nuevamente respecto al muestreo anterior. Sin embargo, solo en los tratamientos en donde se aplicaron los insecticida Premier® y Actara 25 WG® el número de adultos vivos por parcela útil se redujo a 4.75 y 1.5, respectivamente, mientras que en el testigo y el tratamiento con Ajick ®, había un promedio de 14.75 y 17 individuos vivos, respectivamente (Figura 9). Núm. insectos vivos 40 35 Muestreo # 2 30 Muestreo # 3 25 20 15 10 5 0 Testigo Premier® Box Thai®Actara 25 WG® Ajick® Figura 9. Número de adultos vivos de picudo en el segundo y tercer muestreo después de la primera aplicación de los insecticidas en el cultivo de nopal verdura. Muestreo 4 y 5 A los seis días después de la segunda aplicación de los plaguicidas, nuevamente se observó el incremento en la población de adultos vivos de picudo del nopal en todos los productos evaluados. Sin embargo, el tratamiento con Ajick® fue el que 15 presentó la mayor población de insectos (34.75), mientras que los insecticidas Actara 25 WG® y Premier® siguieron mostrando efectividad en el control de la población de insectos promedio (4.25 y 8 insectos vivos, respectivamente) (Figura 10). Núm. insectos vivos 40 35 Muestreo # 4 30 Muestreo # 5 25 20 15 10 5 0 Testigo Premier® Box Thai® Actara 25 WG® Ajick® Figura 10. Número de adultos vivos de picudo en el cuarto y quinto muestreo después de la primera aplicación de los tratamientos en el cultivo de nopal verdura. El quinto muestreo se hizo tres días después de la tercera aplicación de los tratamientos. El análisis estadístico reveló diferencias significativas debido a que en la mayoría de los tratamientos disminuyo el número de picudos del nopal por parcela útil, comparado con el cuarto muestreo. Nuevamente, el insecticida Actara 25 WG® fue con el que se obtuvieron los mejores resultados de control de la población de insectos ya que en promedio sólo se contaron dos adultos de picudo del nopal por parcela útil (Figura 16 10). Con los demás plaguicidas las poblaciones se mantuvieron altas. Efectividad biológica y fitotoxicidad A pesar de las condiciones climáticas y el constante incremento de los adultos del picudo del nopal, los aplicaciones con los insecticidas Premier® y Actara 25 WG® después de la segunda aplicación de los tratamientos y en el tercer muestreo lograron un control del 67.2 y 89.7%, respectivamente. Ya para el tercer muestreo las aplicaciones de Actara 25 WG® controlaron más del 80% de la plaga mientras que con el insecticida Premier® el controló fue de 70% de la población después del cuarto muestreo (Cuadro 2). Cuadro 2. Porcentajes de efectividad biológica de insecticidas probados en el control del picudo del nopal verdura. Número de muestreo Producto 1 2 3 4 5 Testigo 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0 Ajick® 21.6 -67.9 -17.2 -25.2 -6.7 37.8 3.6 24.1 -6.3 -20.0 Actara 25 WG® 56.8 42.9 89.7 84.7 86.7 Premier® 21.6 28.6 67.2 71.2 70.0 Box Thai® Ninguno de los tratamientos y dosis probadas en el presente estudio mostraron efectos fitotóxicos al cultivo del nopal verdura. Por los resultados antes mostrados, los insecticidas Premier® (0.5 L/ha) y Actara 25 WG® (90.0 g/ha) se proponen como los mejores productos para el control del picudo del nopal. 17 18 4. Cochinilla silvestre (Dactylopius opuntiae Cockerell) 4.1 Taxonomía La cochinilla silvestre es otra de las plagas de importancia que afectan el cultivo de nopal verdura en la zona productora de Morelos. El insecto pertenece al orden Homoptera y familia Dactylopiidae, en la que se encuentran nueve especies del género Dactylopius (Moran y Zimmermann, 1984). Todas son nativas de América (Pérez y Becerra, 2001) y son insectos plaga específicos para cactáceas del genero Opuntia. Su género es Dactylopius y la especie Dactylopius opuntiae Cockerell (Passos da Silva et al., 2007). 4.2 Morfología Las especies de este género se caracterizan por tener un cuerpo blando y su aspecto distintivo es la excresión de cera de color blanco de apariencia algodonosa a través de las estructuras cuticulares (Rodrigo et al., 2010; Vanegas, 2009). Esta cera envuelve la totalidad del insecto y es su protección contra los depredadores (Figura 11) (Tulloch, 1970). Los adultos muestran un dimorfismo sexual marcado. En el ciclo de vida de los machos se reconocen cinco estados que comprenden huevo, ninfa, prepupa, pupa y adulto, mientras que en el de las 19 hembras solo se observan huevo, ninfa y adulto (Gullan y Kosztarab, 1997; Rodrigo et al., 2010). Los dos primeros estadios ninfales duran en promedio 18.1 y 19.8 días para hembras y machos, respectivamente. La duración promedio del ciclo biológico en las hembras es de 77 días y de 43.3 días para machos (Romero et al., 2006). 20 Figura 11. Ciclo de vida de la cochinilla del nopal. A) Huevo; B) Ninfa I; C-D) Ninfa II; E) Hembra; F) Macho. La cochinilla también produce ácido carmínico que es una sustancia cuyo color va del naranja al morado y se encuentra principalmente en su sangre (hemolinfa), su función es servir como un mecanismo de defensa contra depredadores. La principal forma de dispersión de estos insectos es a través del viento cuando se encuentran en el primer instar (Figura 11) (Foxcroft y Hoffmann, 2000). Las hembras adultas tienen cuerpo de forma ovalada con antenas cortas de siete segmentos, patas cortas y no tienen alas (Rodrigo et al., 2010; Romero et al., 2007). Las hembras son las que se asientan en los cladodios de diferentes edades y se sujetan a ellos mediante su aparato bucal que es del tipo chupador. Allí permanecerán toda su vida succionando la savia y causando daño constante a la planta (Mondragon et al., 2012). Los machos pupan encima de las hembras, tienen alas que les permiten moverse y su única función es fecundar a las hembras, por lo que su vida es muy corta (Figura 11) (Romero et al., 2006). 4.3 Daños ocasionados En Morelos, la cochinilla silvestre constituye una verdadera plaga en regiones nopaleras. (Figura 12). La succión de la savia de forma constante en los cladodios ocasiona clorosis y debilitamiento de la planta, además de ocasionar daños estéticos al producto final, afectando su comercialización (González, 2001). 21 Figura 12. Daños ocasionados por la cochinilla en etapas iniciales y en grados de afectación severa en plantaciones de Tlanepantla, Morelos. 4.4 Prácticas de control 4.4.1 Control cultural La plaga representa un grave problema si no se realiza oportunamente las medidas de control y además se debe estar atento a las primeras apariciones en el cultivo. Desde el establecimiento de nuevos cultivos se recomienda hacer una revisión profunda de las pencas para evitar aquellas que estén contaminadas con los insectos. 4.4.2 Control mecánico Para este tipo de control se aconseja podar o retirar aquellas pencas que se encuentren infectadas con la cochinilla para impedir 22 su diseminación a otras plantas (Mena, 2008). Esta práctica es eficiente cuando las poblaciones apenas empiezan su crecimiento, ya que en plantas que están totalmente infectadas resulta laborioso e infructuoso. Si se recurre a esta práctica los restos de plantas contaminadas se deben sacar de la parcela. 4.4.3 Control químico De acuerdo a la lista de plaguicidas de uso agrícola publicada en la página del Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA), no hay plaguicidas registrados para el cultivo de nopal (DIAOPA, 2012). Sin embargo, los productores de nopal utilizan diferentes insecticidas altamente tóxicos para el control de la cochinilla silvestre. Esta forma de control genera resistencia de la plaga, intoxicaciones y residualidad en el nopal fresco para consumo humano y animal. 4.5 Efectividad biológica de insecticidas químicos Al igual que para el picudo del nopal, el objetivo de este estudio fue evaluar la efectividad biológica de diferentes plaguicidas para el control de la cochinilla silvestre del nopal, con la finalidad de determinar el tratamiento más apropiado para su control así como sus posibles efectos fitotóxicos sobre el cultivo. Los resultados servirán para incorporarlos al paquete tecnológico del cultivo de Nopal en el estado de Morelos. 4.5.1 Establecimiento del experimento El estudio de efectividad biológica se realizó en un cultivo comercial de nopal verdura variedad Milpa alta, en el municipio de 23 Tlayacapan, Morelos. La ubicación exacta es la siguiente: Latitud 18° 57' 33.72" N, Longitud 98° 58' 2.37" O y una altitud de 1689 msnm. El cultivo de nopal tenía tres años de edad y se encontraba en fase de crecimiento vegetativo (Figura 13). Figura 13. Estado fitosanitario del cultivo durante el experimento. La parcela experimental se conformó por cinco tratamientos distribuidos en un diseño de bloques completos al azar con cuatro repeticiones. La unidad experimental fueron tres surcos de 5 m de largo y 1.5 m entre surcos, lo que abarcaba una superficie de 22.5 m2 por unidad experimental. La parcela útil fue el surco central. Las aplicaciones se realizaron cuando se tenía más del 50% de infestación por cochinilla en toda la parcela experimental. La aplicación de los insecticidas se hizo vía foliar de acuerdo a las dosis establecidas en el Cuadro 3 y, a excepción del testigo, se adicionó 1.0 mL de Bionex® por litro de agua como adherente. Dentro de los productos probados se incluyó el Lorsban 480® que para SENASICA es un producto con estatus de restringido, pero se evaluó porque algunos productores aún lo usan para el control de la cochinilla y es fácil de conseguir. Se sugiere colocar el ingrediente activo en el cuadro. Cuadro 3. Dosis y productos evaluados en el control de la cochinilla silvestre del nopal verdura. Tratamiento Producto Características 24 Dosis del producto 1 Testigo - 0 2 Break thru® Polieter polimetilsiloxano copolimero 2.5 mL / L agua 3* Lorsban 480® Clorpirifos etil 1.5 L/ha 4 Suprathion® Metidation 1.0 L/ha 5 Ultralite® hongos entomopatógenos 1.5 L/ha * Producto restringido por SENASICA. Para las aplicaciones se empleó un aspersor manual tipo mochila equipado con boquilla de abanico No. 8002. El volumen de aspersión obtenido después de la calibración fue de 622.22 L de agua por hectárea. 4.5.2 Condiciones meteorológicas durante el estudio Al igual que en el estudio para picudo, los datos meteorológicos se consultaron en la Red Nacional de Estaciones Estatales Agrometeorológicas. Se consultaron los registros diarios del 8 al 29 de abril del año 2013 de la estación Tlayacapan ubicada en latitud 18.9522, longitud -98.9885 y a una altitud de 2082 msnm. Los registros promedios de precipitación fueron 0.0 mm, 30.7% de humedad relativa y 22.1°C de temperatura ambiente. 4.5.3 Muestreos y análisis estadístico El muestreo se hizo en cinco cladodios del estrato bajo de la planta. Previamente, se realizo un muestreo para determinar la población inicial de cochinilla. Posteriormente, se muestreó a los 7 días después de cada aplicación. 25 La efectividad biológica de los insecticidas se determinó usando la escala logarítmica diagramatizada de Mora-Aguilera et al. (2000) con base al número de colonias y el área cubierta por las mismas, con respecto al área total del cladodio (Cuadro 4, Figura 14). Cuadro 4. Escalas de infestación de cochinilla silvestre en cladodios de nopal verdura. Nivel Descripción 1 1-5 colonias 2 6-15 colonias 3 16 colonias hasta 25% de recubrimiento de la superficie del cladodio 4 26 a 50% de la superficie del cladodio 5 51 a 75 % de la superficie del cladodio 6 76 a 100% de la superficie del cladodio Figura 14. Descripción visual de las escalas de infestación de cochinilla silvestre en cladodios de nopal verdura. Los datos del nivel de infestación colectados en campo se transformaron a porcentaje de infestación mediante la fórmula de Townsend y Heuberger (1943). 26 Dónde: P: Grado de severidad en %. n: número de muestras por categoría. v: Valor numérico de cada categoría. N: número total de muestras. C categoría mayor. La efectividad biológica de cada insecticida se calculó siguiendo la 100 Porcentaje de infestación fórmula de ABBOT: Muestreo Previo 80 Muestreo # 2 Muestreo # 3 EB= (IT-it/IT)100 60 40 Muestreo # 1 IT = severidad en el testigo sin tratar Dónde: it = severidad del tratamiento Los 20datos de porcentaje de infestación por muestreo y por tratamiento se procesaron con un análisis de varianza, y la 0 separación Testigo de medias se Thru® hizo con la prueba de Tukey (=0.05). Break Lorsban 480® Suprathion® Ultralite® 4.5.4 Resultados Evaluación de los muestreos Al inicio del experimento se hizo un muestreo previo para determinar la población inicial de cochinilla. Los porcentajes de infestación en toda la parcela experimental fueron mayores de 60% (Figura 15). El análisis estadístico no reveló diferencias significativas, por lo que todos los tratamientos iniciaron en condiciones iguales. 27 Figura 15. Porcentajes de infestación de cochinilla silvestre en diferentes muestreos siete días después de la aplicación de los tratamientos. A los siete días después de la primera aplicación de los insecticidas se hizo el primer muestreo. El análisis de varianza tampoco mostró diferencias significativas entre tratamientos. Sin embargo, las aplicaciones con Supration® y Break Thru® lograron reducir a 50% en promedio la infestación inicial de cochinilla (Figura 15). Después de haber hecho la segunda aplicación de insecticidas se hizo el segundo muestreo a los siete días. Las diferencias entre tratamientos fueron significativas y la separación de medias determinó que la mayor tasa de reducción de infestación fue con la aplicación de Suprathion® (17.5%), seguida de Lorsban 480® (25.8%). Con BreakThru® y Ultralite® los porcentajes de infestación fueron superiores a 30% (Figura 15). En el tercer muestreo con 21 días después de haber iniciado el experimento, el análisis de varianza reveló ® significativas. Los insecticidas Break Thru , diferencias Lorsban 480® y Suprathion® lograron mantener los porcentajes de infestación 28 cercanos a 17% mientras que con Ultralite® la infestación fue superior a 30% (Figura 15). Efectividad biológica y fitotoxicidad Una vez realizada la primera aplicación de los tratamientos y siete días después de la misma, los cuatro insecticidas evaluados mostraron una efectividad biológica mayor al 20% con respecto al testigo. Esta efectividad fue mayor después de la segunda aplicación, siendo el Supration® y Lorsban 480® los mejores con 73.1 y 60.3%, respectivamente. Ya para la tercera aplicación los porcentajes de efectividad mejoraron y nuevamente los mejores fueron Supration® y Lorsban 480® con 75% de efectividad cada uno. Sin embargo, el Break Thru® también fue eficiente con 72.5% de efectividad. El insecticida Ultralite® resultó ineficiente para el control de la cochinilla pues su efectividad solo fue de 53.7%, a pesar de estar formulado a base de hongos entomopatógenos que parasitan a los insectos y se alimentan de los mismos (Cuadro 5). Cuadro 5. Porcentajes de efectividad biológica de insecticidas probados en el control de cochinilla silvestre del nopal verdura. Nivel Primer muestreo Segundo muestreo Tercer muestreo 0.0 0.0 0.0 23.1 48.7 72.5 Lorsban 480® 23.1 60.3 75.0 Suprathion® 19.2 73.1 75.0 Ultralite® 23.1 42.3 53.7 Testigo Break Thru® 29 Ninguno de los insecticidas probados en las dosis indicadas mostró efecto fitotóxico al cultivo. Si bien el Lorsban 480® fue uno de los mejores insecticidas en la evalución, en las bases de datos de SENASICA es un producto restringido, en el presente estudio se evaluó para demostrar al productor que la efectividad de este producto puede ser similar a la de otros que son permitidos en el cultivo del nopal verdura. Los resultados obtenidos en este estudio permiten sugerir que los insecticidas Suprathion® (1.0 L/ha), Lorsban 480® (1.5 L/ha) y Break Thru® (2.5 mL/L de agua) son eficaces para controlar la cochinilla silvestre del nopal usando las dosis aquí probadas. Los beneficios obtenidos con el Lorban 480® son iguales a los alcanzados con Suprathion® y parecidos a los del Break Thru®, por lo que debe descartarse su uso en el cultivo del nopal verdura. 30 5. Mancha negra (Pseudocercospora opuntiae) En la zona productora de nopal verdura del estado de Morelos la mancha negra fue detectada en 1990, y desde entonces se ha convertido en uno de los problemas fitosanitarios que provoca pérdidas en los rendimientos y sus daños severos pueden destruir plantaciones completas. 5.1 Taxonomía La mancha negra recibe su nombre por el aspecto circular de color café negruzco que provoca en los cladodios. Hasta hace algunos años se consideraba que el agente causal de la enfermedad era la unión de los hongos Colletotrichum gloeosporioides (Osada y Cárcamo, 1991) y Fusarium solani (Morales y Hernández, 2002). En el año 2006 se realizaron estudios para determinar el agente causal de la mancha negra y los resultados del diagnóstico apuntaron a que el hongo Pseudocercospora opuntiae es el responsable de la enfermedad (Ayala-Escobar et al., 2006). También se detectó la presencia del hongo Colletotrichum gloeosporioides, pero éste es de tipo saprófito, es decir, es un hongo que se alimenta de materia orgánica muerta o en descomposición (Quezada-Salinas et al., 2006). 5.2 Daños Los síntomas de la mancha negra se inician con la decoloración de la cutícula del cladodio, cambiando a un color claro con puntos pequeños de color olivo. Posteriormente, las manchas adquieren 31 un color café-oscuro, su diámetro incrementa de 3 a 4 cm y en la parte central se presenta un hundimiento; para finalmente secarse la parte afectada, quedando expuesto el tejido leñoso (Figura 16). El hongo Pseudocercospora opuntiae se caracteriza por formar conidios color olivo, conidióforos libres y dispersos en el micelio del mismo color (Quezada-Salinas et al., 2006). El pseudoestroma está inmerso y entra a través de los estomas, es de color olivo al principio y café al madurar; los conidióforos se agrupan en fascículos densos, son de color olivo hasta llegar a una tonalidad oscura, son de forma subcilíndrica y rectos, no ramificados; los conidios son ovalados a cilíndricos, su base es cónica truncada, tienen un extremo obtuso, presentan de 0 a 7 septos; la cicatriz de abscisión es de color olivo y delgada (Ayala-Escobar et al., 2006; Quezada-Salinas et al., 2006). 32 Figura 16. Daños causados por la mancha negra. A) Inicio; B) Estado avanzado con áreas secas; C) Invasión completa del cladodio; D) Daño generalizado en la planta. 5.3 Prácticas de control 5.3.1 Control cultural El hongo se presenta en los cultivos cuando se combinan la humedad relativa alta junto con temperaturas bajas. Por ello es recomendable mantener las huertas limpias de malezas que pudieran brindar el microclima ideal para el hongo. También es de vital importancia hacer recorridos en las parcelas para detectar las primeras apariciones y desechar los cladodios contaminados. A su vez se deben recolectar dichos cladodios enfermos y quemarlos o compostearlos (Mena, 2008; Méndez-Gallegos et al., 2008). Estos cladodios se deben retirar junto con los restos de la planta que quedan después de aplicar los diferentes tipos de poda para evitar que sean un medio para la proliferación de pudriciones. 5.3.2 Control químico Para el control químico de la mancha negra el Servicio de Sanidad Vegetal contempla una lista de productos químicos que pueden emplearse para el control de esta enfermedad. Destacan productos cuyos ingredientes activos sean Benomilo, Captan, Oxicloruro de Cobre, Clorotalonil, Sulfato de Cobre e Hidróxido Cúprico. La dosis y efectividad de estos productos son variables y dependen de la zona donde se cultive el nopal. Los productos prohibidos son Gentamicina, Oxitetraciclina, Carbendazim y Estreptomicina. 33 5.4 Efectividad biológica de fungicidas En un estudio realizado por Hernández (2008) se evaluó la efectividad de algunos fungicidas sistémicos sobre el control de la mancha negra. En su trabajo reportó que gran parte de los productores utilizan productos a base de Oxicloruro de Cobre, Benomilo y Mancozeb como únicos fungicidas para controlar la mancha negra, lo que a mediano y largo plazo ocasionará problemas de resistencia a dichos ingredientes activos. La evaluación se hizo en parcelas de nopal del municipio de Tlalnepantla, Morelos. Se evaluaron seis fungicidas sistémicos de tres grupos químicos diferentes (estrobirulinas, benzimidazoles y triazoles) a dosis baja y alta. Específicamente, Folicur® 250 EW, Derosal® 500 D y Tilt® 250 CE, en las dosis de 600 mL, 340 gr y 400 mL en 200 litros de agua, respectivamente, fueron los fungicidas que tuvieron una efectividad significativa para el control de la mancha negra en nopal verdura al reducir al 3.6, 3.8 y 3.1%, en promedio, las infecciones con respecto al testigo. 6. Sugerencias y Recomendaciones Si bien no existen productos químicos autorizados para el control de los principales problemas fitosanitarios expuestos en este manual, los resultados aquí mostrados podrían servir para incorporarlos al paquete tecnológico del cultivo de Nopal en el estado de Morelos. 34 Como en cualquier cultivo el mejor método de control de las plagas y enfermedades son las prácticas de prevención. Particularmente, las prácticas de manejo de estos problemas fitosanitarios en el cultivo del nopal deben enfocarse a medidas relacionadas con las Buenas Prácticas Agrícolas, donde se incluyan la selección adecuada y confiable de material de propagación, empleo de herramientas de trabajo desinfectadas, buena nutrición del cultivo, buen drenaje de suelos, eliminación de residuos de podas, quema y entierro de plantas enfermas, trampeos de plagas, podas fitosanitarias, eliminación de maleza, entre otras. La puesta en marcha de estas medidas reforzará la eliminación de plagas y organismos fitopatógenos en las plantaciones y, además, reducirá en gran medida la aplicación de productos químicos innecesarios y el consiguiente ahorro de recursos para los productores. 7. Agradecimientos Las Instituciones participantes agradecen a los productores cooperantes Sr. Roberto Lagos Espín y Sr. Hilario Pedraza Olivares por las facilidades otorgadas en el establecimiento y desarrollo de los experimentos. 35 8. Literatura Citada Ayala-Escobar, V., Yáñez-Morales, M.J., Braun, U., Groenewald, J.Z. and Crous, P.W. 2006. Pseudocercospora opuntiae sp. nov., the causal organism of cactus leaf spot in Mexico. Fungal Diversity 21:1-9. Cerón-González, C., Rodríguez-Leyva E., Lomeli-Flores J. R., HernándezOlmos C. E., Peña-Martínez R. y Gustavo Mora-Aguilera. 2012. Evaluación de insecticidas sintéticos sobre adultos de Metamasius spinolae (Coleoptera: Curculionidae) procedentes de Tlalnepantla, Morelos. 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Marino González Camarillo Dr. Sergio Ivan Román Ponce EDICIÓN Y SUPERVISIÓN Dr. Efraín Cruz Cruz Dr. Jorge Miguel Paulino Vázquez Alvarado Dr. Felipe de Jesús Osuna Canizalez Dr. Jaime Canul Ku COORDINACIÓN DE LA PUBLICACIÓN Dr. Efraín Cruz Cruz Dr. Sergio Ramírez Rojas DISEÑO DE PORTADA Lic. Gilberto Bahena Salas CÓDIGO INIFAP XXXXXXXX Esta publicación se terminó de imprimir en XXX Su tiraje consta de XXX 41 Lic. Graco Ramírez Garrido Abreu Gobernador Constitucional del estado de Morelos M.A. Roberto Ruiz Silva Secretario de Desarrollo Agropecuario del estado de Morelos CONSEJO DIRECTIVO DE LA FUNDACIÓN PRODUCE MORELOS A.C. C. Tirzo Quintero Flores Presidente C. Petronilo Ariza Mendoza Vicepresidente Ing. Rodrigo Abarca Ramírez Tesorero M.C. Rafael Ambriz Cervantes Vocal M.A. Roberto Ruiz Silva Vocal Dr. Efraín Cruz Cruz Vocal M.C. Juan Antonio Casillas González Vocal M.V.Z. Francisco Alanís Gómez Secretario C.P. José Antonio López Guerrero Gerente Este programa es público, ajeno a cualquier partido político. Quedo prohibido el uso para fines distintos a los establecidos por el programa. 42 DIRECTORIO DEL PERSONAL INVESTIGADOR CAMPO EXPERIMENTAL “ZACATEPEC” Dr. Efraín Cruz Cruz Jefe de Campo NOMBRE PROGRAMAS DE INVESTIGACIÓN M.C. Leonardo Hernández Aragón Arroz Dr. Edwin Javier Barrios Gómez Arroz Biól. Leticia Tavitas Fuentes Mejoramiento y recursos genéticos: forestales, agrícolas, pecuarios y microbianos Ing. Alberto Trujillo Campos Maíz Dra. Marianguadalupe Hernández Arenas Caña de Azúcar Ing. Aarón Lugo Alonso Frutales Dr. Felipe de Jesús Osuna Canizalez Hortalizas Dr. Sergio Ramírez Rojas Hortalizas Dr. Jaime Canul Ku Plantas Ornamentales M.C. Faustino García Pérez Plantas Ornamentales Dra. Sandra Eloísa Rangel Estrada Plantas Ornamentales Ing. Areli Madai Guzmán Pozos Manejo Forestal Sustentable y Servicios Ambientales M.C. Juan Carlos Orihuela Porcayo Carne de Rumiantes Dr. Jorge Miguel Paulino Vázquez Alvarado Socioeconomía M.C. Alejandro Ayala Sánchez Socioeconomía 43 www.inifap.gob.mx La información vertida en este folleto proporciona una descripción detallada de las principales plagas y enfermedades que afectan el cultivo del nopal para verdura en el estado de Morelos. También se incluyen las formas de control que hacen énfasis a la obtención de una verdura inocua.
