INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL UNIDAD PROFESIONAL INTERDISCIPLINARIA DE BIOTECNOLOGÍA LABORATORIO DE MÉTODOS INSTRUMENTALES AVANZADOS “DEGRADACIÓN DE PARACETAMOL EN SUELO” GRUPO 6AV4 EQUIPO 2 INTEGRANTES DOMÍNGUEZ ALONSO MARCOS ALBERTO MONROY AVALOS DIANA NAVA NERI EDOARDO ROMERO REYES MARTIN TREJO DE LA ROSA MÓNICA MELISSA DOCENTES DR.FRANCO HERNÁNDEZ MARINA OLIVIA CABRERA PÉREZ LAURA CRISTINA Fecha de Entrega: 05 de Junio del 2019 OBJETIVOS GENERAL • Evaluar y comparar la degradación de paracetamol de las diferentes composiciones de los sistemas: suelo, composta o porcentajes suelo-composta a partir de la actividad microbiana mediante equipos de análisis instrumental. ESPECÍFICOS Evaluar mediante UV-VIS, HPLC la degradación de un contaminante orgánico como el paracetamol realizando ensayos a diferentes días (7, 14, 21, 42). Cuantificar la degradación de paracetamol en distintas muestras de suelo y composta. Cuantificar el Oxígeno producido por los microorganismos. Comparar la degradación de paracetamol en distintos tipos de microsistemas. Identificar las problemáticas que existen en el mundo a causa. INTRODUCCIÓN El paracetamol es un fármaco conocido, y se encuentra comercializado en todo el mundo desde hace décadas. Se considera un analgésico y antipirético eficaz y seguro para el tratamiento sintomático del dolor y la fiebre. (Farré et al, 2014). Está ampliamente disponible como un medicamento de uso frecuente. Anualmente se producen 145.000 toneladas de APAP en el mundo; pero a pesar de su seguridad cuando no se utiliza correctamente, es uno de los fármacos más comunes responsables de reportes de sobredosis en los centros de toxicología. Produce hepatoxicidad con dosis de 325 mg que también pueden afectar los riñones, corazón y Sistema Nervioso Central (SNC); generando insuficiencia hepática fulminante y en el peor de los casos la muerte (Chalermrat et al., 2013). Figura 1. Fórmula química del paracetamol. En la fórmula química del paracetamol como se observa en la Figura 1, se encuentra compuesta por una molécula del benceno además de la presencia de un grupo hidroxilo, una amina secundaria, cetona y un radical metilo. Entre los contaminantes orgánicos emergentes, se encuentran los productos farmacéuticos; que debido a su amplio uso por humanos están abundantemente distribuidos en los ecosistemas acuáticos y terrestres y presentes en las heces, residuos sanitarios, plantas de tratamiento de aguas residuales –EDAR-. (Yangali et al., 2010). Las fuentes de contaminación ambiental del paracetamol La vía reportada para la contaminación ambiental del paracetamol es a través de su excreción inalterada en la orina y las heces. En la Figura 2 se muestran las posibles entradas de paracetamol al medio ambiente, en el caso de paracetamol que tienen una baja volatilidad y la distribución de alta polaridad se hace principalmente por el transporte acuoso (orina, heces, etc) o incluso a través de la dispersión de la cadena alimentaria. Aunque existen otros mecanismos antropogénicos a través de los metabolismo postconsumo, su bioconversión en uno o más metabolitos puede ocurrir por la eliminación de los hogares, hospitales a través de baños y por los impactos por actividades las EDAR (Fent et al., 2006; Li et al., 2014). Figura 2. Representación esquemática propuesta del destino ambiental del paracetamol y metabolitos, en diferentes ecosistemas (Barrios, 2016). Degradación de paracetamol en sistemas suelo/agua La degradación del paracetamol en sistemas suelo/agua fue investigado mediante una combinación de estudios cinéticos y el análisis cuantitativo de las reacciones intermedias. La biodegradación fue la vía predominante para la eliminación del paracetamol, mientras que la hidrólisis u otra transformación química, junto con los procesos de adsorción tuvieron una contribución casi nula a la degradación en incubación oscura. Bacillus aryabhattai, cepa 1-Sj-5-2-5-M, Klebsiella pneumoniae, cepa S001, y Bacillus subtilis, cepa HJ5 fueron las principales bacterias identificadas en la biotransformación del paracetamol. Los principales productos de transformación primarios fueron oligómeros de acetaminofén y p-aminofenol, con la adición inicial de 26.5 y 530 μM respectivamente. Los oligómeros de acetaminofén representaron más del 95% de acetaminofén transformado, lo que indica que casi no se generaron residuos unidos a través de la transformación del medicamento en el sistema suelo/agua. (Chuanzhou, 2016). Imagen 3. Vías de degradación del acetaminofén en sistema agua/suelo. Técnica analítica recomendada para la cuantificación de paracetamol En Toxicología en la última década, la cuantificación de las drogas y sus metabólitos ha sido impulsada por el uso de la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) acoplada al espectrómetro de masas con triple cuádrupolo debido a sus capacidades de alto rendimiento, así como su selectividad y sensibilidad. El espectrómetro de masas se han utilizado para adquirir datos de forma simultánea análisis combinado cualitativa y cuantitativa de la muestra, pero la interpretación espectros sigue siendo un reto basado sólo en los datos de baja resolución (Fahad et al., 2008). La HPLC es capaz de separar macromoléculas y especies iónicas, productos naturales lábiles, materiales poliméricos y una gran variedad de otros grupos polifuncionales de alto peso molecular. Con una fase móvil líquida interactiva, otro parámetro se encuentra disponible para la selectividad, en adición a una fase estacionaria activa. La HPLC ofrece una mayor variedad de fases estacionarias, lo que permite una mayor gama de estas interacciones selectivas y más posibilidades para la separación. En la Tabla 6 se muestran algunas condiciones cromatográficas recomendadas por investigadores para la cuantificación de paracetamol (Kawabata et al., 2012). METODOLOGÍA Se procede a realizar la degradación del paracetamol a partir de microcosmos, en donde los microorganismos del suelo se encargaran de asimilar los compuestos de carbono. Preparación de muestras Para el sistema suelo/paracetamol se muele en un mortero paracetamol compromido de 500 mg y se añade a un frasco de plástico de aproximadamente 150 mL que contiene 20 g de suelo. Alternadamente, adicionar 250 mg de paracetamol a los X frascos que contienen 10 g de suelo. Posteriormente, agregar a cada uno de estos frascos 6.3 mL de agua, dando paso a la degradación microbiológica del medicamento. El medio a evaluar es 100% suelo, el cual se adecua a un nivel de 40% de la CRA; el valor y procedimiento se encuentra en el ANEXO 2, es recomendado dicho nivel para un óptimo crecimiento microbiológico, las muestras una vez preparadas se les añade agua con el fin de alcanzar ese nivel de CRA y la degradación se vea positivamente afectada Preparación del microcosmo El microcosmos; donde se va a llevar a cabo la acción metabólica de los microorganismos del suelo, está compuesto de 3 frascos, dos de ellos contienen muestra, con un peso de 20 g y 10 g de muestra respectivamente para cuantificación del ión amonio (NH4+) y paracetamol restante respectivamente, el último frasco contiene hidróxido de sodio; NaOH, además de estar en un ambiente húmedo. Teniendo un total de 12 microcosmos a evaluar los días 7, 14, 21 y 42 por triplicado en cada caso. La biodegradación de paracetamol será por medio de un proceso metabólico en el que un sustrato es transformado biológicamente por un organismo, siendo en este caso que los responsables de la degradación serán los microorganismos presentes en la muestra de suelo, el frasco presente de NaOH sirve como una trampa para el CO2 formado en la respiración de los organismos de acuerdo a la siguiente ecuación: 2NaOH + CO2 Na2CO3 + H2O En donde el bióxido de carbono (CO2) reacciona con el hidróxido de sodio (NaOH) para formar carbonato de sodio (Na2CO3) y agua. Se le agrego una pequeña porcion de agua al contenedor del microcosmos para propiciar un ambiente humedo el cual favorecera a la actividad microbiana. (ANEXO 2) Extracción de NH4+ y paracetamol. Esta etapa se llevó a cabo de la siguente manera: Para el frasco de 20 g la extracción de NH4+ se realiza con agua, para su posterior análisis con espectrofotometría UV-Vis Para el frasco de 10 g la extracción de paracetamol se realizó con metanol (CH3OH) debido la solubilidad del medicamento en presencia del mismo, esto con el fin de cuantificarlo cualitativamente mediante la técnica de HPLC e IR, y cuantitativamente mediante la técnica de UV-Visible. Una vez transcurridos los días previstos en resguardo para que la actividad metabólica de los microorganismos presentes se llevara a cabo, siendo estos 7, 14, 21 y 42 días a condiciones ambiente, proceder con la extraccion depositando el contenido de los frascos en matraces erlenmeyer donde posteriormente a los matraces con 20 g de suelo se les vertio 80 mL de K2SO4 y a los que contenian 10 g de suelo se les vertio 30 mL de metanol, despues de esto se procedio a la agitación manual durante 30 minutos, en seguida con la ayuda de un papel filtro previamente humedecido respectivamente para cada muestra; ya sea metanol o agua, un embudo y de un matraz o vaso de precipitado para recuperar el filtrado, se procedió a realizar la extracción de los residuos de la degradación del medicamento Conservación El filtrado fue colocado en frascos, los cuales se mantuvieron en refrigeración para llevar a cabo, posteriormente su análisis y lecturas en UV-VIS. RESULTADOS Para el cálculo de la concentración de paracetamol en las muestras, fue necesario elaborar una curva tipo en el espectrofotómetro a las concentraciones determinadas (Anexo 2). Dichas mediciones en el espectrofotómetro, al realizar el grafico correspondiente, da como resultado una ecuación (Ec.1) para calcular la concentración de paracetamol con respecto a la absorbancia de la muestra. 𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑐𝑖𝑎 = 0.977 ∗ [𝐶𝑝𝑎𝑟𝑎𝑐𝑒𝑡𝑎𝑚𝑜𝑙 ] − 0.0273 Ec. 1 La cual se despeja obteniendo la Ec.2 [[𝐶𝑝𝑎𝑟𝑎𝑐𝑒𝑡𝑎𝑚𝑜𝑙 ]] = 𝐴𝑏𝑠𝑜𝑟𝑏𝑎𝑛𝑐𝑖𝑎+0.0273 0.977 Ec.2 A partir de ello se realizaron los cálculos correspondientes a la cantidad de paracetamol que no fue degradado en el suelo. Tabla 2. Cálculo de la cantidad de paracetamol no degradado en las muestras de 10 gramos DIA 0 0 0 7 7 7 14 14 14 21 21 21 42 42 42 ABS. 0.581 0.609 0.604 0.706 0.809 0.807 0.662 0.844 0.617 0.895 0.583 0.629 0.701 0.847 0.805 𝑪𝒑𝒂𝒓𝒂𝒄𝒆𝒕𝒂𝒎𝒐𝒍 Factor de dilución [µg/mL] [µg/mL] 6.226 6.513 6.462 7.506 8.560 8.539 7.055 8.918 6.595 9.440 6.247 6.718 7.454 8.949 8.519 6226.203 6512.794 6461.617 7505.629 8559.877 8539.406 7055.271 8918.117 6594.678 9440.123 6246.673 6717.503 7454.452 8948.823 8518.936 [C] [mg/mL] mg*Vol.total [mg] [mg/kg] 6.226 6.513 6.462 7.506 8.560 8.539 7.055 8.918 6.595 9.440 6.247 6.718 7.454 8.949 8.519 186.786 195.384 193.849 225.169 256.796 256.182 211.658 267.544 197.840 283.204 187.400 201.525 223.634 268.465 255.568 18678.608 19538.383 19384.852 22516.888 25679.632 25618.219 21165.814 26754.350 19784.033 28320.368 18740.020 20152.508 22363.357 26846.469 25556.807 Tabla 3. Constantes y parámetros auxiliares para el cálculo de la concentración de paracetamol en las muestras de 10 gramos. Tabla de valores constantes b m Dilución Vol. Total Suelo -0.0273 0.0977 1000 30 1000 De acuerdo a los cálculos realizados se obtuvieron los promedios de las muestras triplicadas para obtener las concentraciones finales en cada uno de los días analizados. Tabla 4. Valores promedios de las muestras triplicadas para graficar y posterior análisis DIA 0 7 14 21 42 Abs (promedio) 0.598 0.774 0.708 0.702 0.784 [C] [ug] Con*Dilucion [µg] 6400.205 8201.638 7522.689 7468.100 8307.404 6.400 8.202 7.523 7.468 8.307 [C] [mg] mg*Vol.total [mg/ml] 192.006 246.049 225.681 224.043 249.222 6.400 8.202 7.523 7.468 8.307 [mg/kg] 19200.614 24604.913 22568.066 22404.299 24922.211 Concentración paracetamol [mg/kg] Concentración de paracetamol 30000,000 25000,000 20000,000 15000,000 10000,000 5000,000 y = 91,691x + 21200 R² = 0,4177 0,000 0 10 20 30 40 50 Tiempo [Días] Gráfica 1. Concentración de paracetamol en muestras de suelo Asimismo, de las concentraciones reportadas se procede a realizar el cálculos de las desviaciones estándar para establecer el margen de error en el análisis. Tabla 5. Desviación estándar Muestra 0 7 14 Desviación estándar 2.38 % 8.13% 16.67% 23.84% 9.31% 21 42 Tabla 6. Producción de CO2 por la actividad microbiana Día Muestra Gasto HCl [mL] 7 7 14 14 21 21 21 42 42 42 1 3 2 3 1 2 3 1 2 3 1.2 4.5 3 4.5 4.5 3.3 6 2.2 3.5 7.3 Conc. NaHCO3 [N] 0.012 0.045 0.03 0.045 0.045 0.033 0.06 0.022 0.035 0.073 Peso NaHCO3 producido [g] Peso Na2CO3 producido [g] 0.02016 0.0756 0.0504 0.0756 0.0756 0.05544 0.1008 0.03696 0.0588 0.12264 0.0254 0.095 0.0636 0.0954 0.0954 0.06996 0.1272 0.04664 0.0742 0.15476 Peso CO2 producido [g] 0.01056 0.0396 0.0264 0.0396 0.0396 0.02904 0.0528 0.01936 0.0308 0.06424 Tabla 7. Parámetros auxiliares para el cálculo de la producción de CO2 Tabla de valores constantes Datos Valor Concentración del ácido 0.1 Volumen de muestra 10 Volumen total de la botella de 0.02 NaOH Peso equivalente NaHCO3 84 Peso NaHCO3 84 Peso Na2CO3 106 Peso CO2 44 Muestra suelo 30 Unidades eq/L mL L Tabla 8. Promedios de la concentración de CO2 Valores de gráfica Día Promedio [mg CO2/kg] 7 14 21 836 1100 1349.333 g/eq g/mol g/mol g/mol g Prod. CO2 total [mg CO2/kg] 352 1320 880 1320 1320 968 1760 645.333 1026.667 2141.333 42 1271.111 Gráfica 2. Cantidad de CO2 producido por la actividad microbiana DISCUSIÓN En el gráfico 1 se muestra la degradación del paracetamol en el suelo propuesto en este estudio. Es importante analizar que a pesar de tener variaciones, no se observa una degradación del compuesto en el suelo, es decir, se mantiene constante. Esto se confirma a partir de la desviación estándar (Tabla 5) en donde se obtienen valores superiores al rango de error aceptable o “error estándar” que es del 5%, esto explicaría las alteraciones en las concentraciones dentro del gráfico lo cual es posible atribuir principalmente al analista. Con lo anterior podemos decir que la molécula de paracetamol no tiende a oxidarse en el suelo al 100%; es decir, se considera un contaminante recalcitrante que por su estructura muy estable químicamente, se resisten a la degradación a partir de los microorganismos o de cualquier degradación biológica/química (Javier Cervantes, 2008). Si las condiciones del medio fueran lo suficientemente oxidante se degradaría una gran cantidad del compuesto y gráficamente se vería una curva con decremento así como un mayor desprendimiento de dióxido de carbono. La adsorción de dióxido de carbono usando soluciones alcalinas se ha explorado ya por más de medio siglo (Spector and Dodge, 1946; Tepe and Dodge, 1943) que ha demostrado bueno resultados con respecto a la captura del gas. El CO2 es producido a partir de la respiración celular de los microorganismos presentes en el suelo, que reacciona con el NaOH presente en el microcosmo de la siguiente manera 2 𝑁𝑎𝑂𝐻 + 𝐶𝑂2 → 𝑁𝑎2 𝐶𝑂3 + 𝐻2 𝑂 𝑁𝑎2 𝐶𝑂3 + 𝐻𝐶𝑙 ↔ 𝑁𝑎𝐻𝐶𝑂3 + 𝑁𝑎𝐶𝑙 𝑁𝑎𝐻𝐶𝑂3 + 𝐻𝐶𝑙 ↔ 𝐻2 𝐶𝑂3 + 𝑁𝑎𝐶𝑙 Al ser un subproducto de la respiración celular y de la degradación del paracetamol se espera que vaya en aumento conforme al tiempo, como se observa en la Gráfica 3. En los días 7, 14 y 21 existe un aumento progresivo esperado, salvo en el día 42 donde se ve una baja del 5.8% con respecto al último día, siendo una variación no tan relevante pues se mantiene en el rango; sin embargo, a pesar de que no se tiene degradación biológicamente del paracetamol en el suelo, es correcto obtener estos resultados, pues demuestra que existen microorganismos que generan CO2 a partir de los nutrientes del suelo. CONCLUSIONES Los primeros resultados cuantitativos por UV-VISIBLE nos muestran que no existe degradación del compuesto paracetamol en el suelo. En la composición de 100% suelo el paracetamol funge como un compuesto recalcitrante. La producción de CO2 se atribuye a la presencia de los microorganismos que degradan los nutrientes en el suelo. BIBLIOGRAFÍA Y REFERENCIAS M. Farré, S. Abanades, Y. Álvarez (2014), Paracetamol, Unidad de Farmacología, Institut Municipal d’Investigació Médica. Hospital del Mar, Universidad Autónoma de Barcelona, Barcelona Yangali-Quintanilla, V.; Kyu Maeng, S.; Takahiro F.: Kennedy, M.; Gary, A. (2010). Proposing nanofiltration as acceptable barrier for organic contaminants in water reuse. Journal of Membrane Science. Chalermrat, B. & Rajender, K. (2013). Acetaminophen-related Hepatotoxicity. Clinics in Liver Disease. Fent, K.; Weston, A.; Caminada, D. (2006). Ecotoxicology of human pharmaceuticals. Revista Aquatic Toxicology. Li, J.; Qingfu, Y.; Gan, Y. (2014). Degradation and transformation products of acetaminophen in soil. Rev Water Research. R. Barrios, C. Sierra, J. Jaimes, (2016) Efectos tóxicos del paracetamol en la salud humana y el medio ambiente, Universidad de Cartagena, Cartagena de Indias, Colombia. L. Chuanzhou, L. Zhonghui, Z. Xu, L. Yingbao (2016), School of Resources and Environmental Science, Wuhan University, Wuhan, 430079, PR China Kawabata, O.; Sugihara, K.; Sanoh, S.; Kitamura, S.& Ohta, S. (2012). Ultravioletphotoproduct of acetaminophen: Structure determination and evaluation of ecotoxicological effect. Rev Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry. Fahad, A.; Edward, B.; Steven, B.; (2008). Estimated risk of hepatotoxicity after an acute acetaminophen overdose in alcoholics. Revista Alcohol Spector, N.A., Dodge, B.F., 1946. Removal of carbon dioxide from atmospheric air. Trans. Am. Inst. Chem. Eng. 42, 827–848. Tepe, J.B., Dodge, B.F., 1943. Absorption of carbon dioxide by sodium hydroxide solutions in a packed column. Trans. Am. Inst. Chem. Eng. 39, 255–276. ANEXOS Anexo 1.Memoria de cálculos Tabla 1. Valores del peso de suelo Peso de suelo seco wss(g) 20 Peso de suelo húmedo wsh(g) 39 Tabla 2. Valores del peso del papel Peso de papel seco; wps(g) Peso del papel húmedo; wph(g) Cantidad de agua en papel; H2O(g) 1.8 1.9 1.8 5.5 6.4 5.3 3.7 4.5 3.5 Relación de agua absorbida; H(gH2O/gpapel) 2.0556 2.3684 1.9444 PROMEDIO 2.1228 Humedad (%H) %𝐻 = 𝑤 𝑓𝑟𝑎𝑠𝑐𝑜 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎 𝑖𝑛𝑖𝑐𝑖𝑎𝑙 − 𝑤 𝑓𝑟𝑎𝑠𝑐𝑜 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎 𝑠𝑒𝑐𝑎 𝑤 𝑝𝑒𝑠𝑜 𝑑𝑒𝑙 𝑠𝑢𝑒𝑙𝑜 %𝐻 = 5.5 − 1.8 = 2.0556 1.8 Capacidad de retención de agua (CRA) CRA = 100*[wsh - wss - wps - (wps*H)]/wss CRA = 100*[39g – 20g – 1.8333 - (1.8333*2.1228)]/20 CRA = 66.37 g H2O El valor resultante de 66.37g es estimado a un 100% de la capacidad de retención de agua del suelo; sin embargo, en la presente práctica es necesario un ambiente con el 40% de la CRA, por lo tanto el valor correspondiente es el resultado del 100% de la CRA multiplicado por la fracción correspondiente de interés, lo cual nos da una masa de agua de 26.55g. 𝐶𝑅𝐴 = (66.37g H2O ∗ 0.4) = 26.55𝑔 𝐻2𝑂 Anexo 2. Curva tipo Tabla 1. Absorbancias y concentraciones elaboradas para la curva tipo de paracetamol Curva tipo Conc. Abs [µg/mL] 10 0.958 5 0.442 2.5 0.217 1.25 0.11 0.625 0.03 Curva tipo de la concentración de paracetamol 1,2 Absorbancia 1 y = 0,0977x - 0,0273 R² = 0,9988 0,8 0,6 0,4 0,2 0 0 2 4 6 8 10 Concentración [µg/mL] Gráfica 1. Curva tipo de la concentración de paracetamol 12 Anexo 3. Memoria fotográfica Figura 1: Preparación de los frascos de NaOH Figura 2: Adición de agua al suelo Figura 3: homogenización del suelo con paracetamol Figura 4: preparación de los microcosmos Figura 5: almacenamiento de los microcosmos Figura 6: agitación de las muestras para extracción Figura 7: preparación de las muestras para filtrado Figura 8: Filtrado de las muestras con K2SO4 Figura 9: Filtrado de las muestras con metanol Figura 10: Preparación de diluciones 1:500 Figura 11: Titulación con HCl 1 N Figura 12: Titulación Figura 13: Titulación con HCl 1N Figura 14: Titulación con HCl 0.1 N Figura 15: Titulación con HCl 0.1 N