MANUAL TOMA Y TRANSPORTE DE MUESTRAS modificado

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MANUAL PARA LA TOMA,
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MANUAL PARA LA TOMA,
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No de Revisión
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Fecha
Mayo 2009
Junio 2012
Noviembre 2012
Agosto 2013
Marzo 2014
Elaboró
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
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Dirección Prestación
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MANUAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS Y TRANSPORTE DE MUESTRAS
TOMA DE MUESTRAS
OBJETIVOS
Recibir y atender de manera amable y oportuna a los pacientes que requieran el servicio
de Laboratorio Clínico generando seguridad y confianza en los procedimientos a realizar.
Obtener muestras biológicas representativas en forma individual con medidas de atención
y bioseguridad, con el fin de obtener resultados confiables que orienten al médico en su
diagnóstico.
ALCANCE
El manual se toma como referencia para la correcta toma de muestras a los pacientes
atendidos en las sedes de Tunja, Duitama, y Sogamoso.
RESPONSABLES
Es responsabilidad de los coordinadores de sede, coordinador de laboratorio clínico, y las
auxiliares del Laboratorio, velar por que el procedimiento Operativo Estándar se realice y
acaten este manual. El procedimiento es supervisado por la bacterióloga responsable del
área.
RECOLECCION DE MUESTRAS
El auxiliar del laboratorio clínico que atiende al paciente, en la mayoría de los casos, es el
único contacto que tiene el paciente con el laboratorio clínico.
Además quien realiza el procedimiento de toma de muestras asume una enorme
responsabilidad de él o de ella depende que la muestra obtenida sea adecuada, que no
existan variaciones pre analíticas causantes de errores en los resultados, que el médico
tratante del paciente oriente un diagnóstico preciso con base al resultado del laboratorio y
que el paciente en un futuro acuda en un momento al mismo laboratorio solicitando
nuevos servicios, al recordar que fue muy bien atendido en ocasiones anteriores.
Cuando se obtenga una determinada muestra se debe procurar seguir las siguientes
recomendaciones:
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Fecha
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1. Actuar con la mayor habilidad posible
2. Obtener suficiente cantidad de espécimen de acuerdo a los requerimientos de cada
análisis a practicar.
3. Recolectar una adecuada muestra (calidad del espécimen)
4. Procurar que el paciente se incomode lo menos posible.
5. Transmitir al paciente confianza, seguridad y profesionalismo durante el procedimiento.
RECOLECCION DE MUESTRAS DE SANGRE
Se debe seguir las siguientes indicaciones generales:
1. La sangre debe recolectarse en tubos estériles, preferiblemente tubos al vacío.
Existen códigos de colores internacionalmente conocidos para los diferentes
presentaciones de tubos colectores de muestras sanguíneas así :
Tubo tapa roja o amarilla con gel
Sin anticoagulante(Seco)
Tubo tapa violeta
Con EDTA
Tubo tapa azul
Con Citrato de Sodio
Tubo tapa verde o blanca
Con heparina
Tubo tapa gris
Con Oxalatos
2. Al recolectar la sangre, debe permitirse que se coagule si es el caso, o invertir varias
veces los tubos con la muestra para evitar su coagulación.
3. En otras ocasiones tan solo se colocan unas pequeñas gotas de sangre en láminas
portaobjetos de vidrio (extendidos de sangre periférica), en capilares de vidrio o placas
de vidrio o plástico de origen comercial para la realización de algunos estudios.
OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN ADULTOS
1.
2.
3.
4.
Asegúrese que el paciente se ubique en una posición segura y cómoda.
Nunca practique una punción sanguínea en un paciente que se encuentre de pie.
No elija una extremidad en donde este colocada algún tipo de venoclisis.
Inspeccione la vena que se va a puncionar, preferiblemente que sea visible y
fácilmente palpable.
5. Coloque el torniquete con suficiente tensión. No se exceda, un torniquete muy
apretado produce hemólisis, colapso o dolor.
6. Algunos estudios deben realizarse en muestras extraídas sin torniquete.
7. El torniquete debe permanecer colocado de 10 a 15 segundos antes de la punción.
Retirar al tiempo que la aguja.
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8. Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el antebrazo con
movimientos desde la muñeca hacia el codo.
9. Observe siempre los dos brazos para elegir el sitio de punción.
10. Al finalizar el procedimiento indíquele al paciente que debe conservar la extremidad
doblada, de forma tal que se realice presión con el algodón en el lugar de la punción,
debe mantener dicha presión por lo menos durante 5 minutos. Coloque finalmente una
banda adhesiva sobre la herida de la punción.
11. Si el sangrado no se detiene aplique presión constante sobre la herida durante 10
minutos más. Si el problema aún no se soluciona comuníquese con él o la
bacterióloga directamente con el médico tratante.
12. Deposite y destruya todo el material desechable en los recipientes diseñados para
este propósito. Romper las agujas y desechar los elementos utilizados frente al
paciente esto aumenta su confianza en el laboratorio.
13. Asegúrese que los recipientes que contengan la muestra del paciente estén
debidamente rotulados, marcados o identificados (Consecutivo, Nombres y Apellidos,
Número de documento) antes de atender un nuevo paciente o de realizar otra tarea.
Algunos exámenes requieren de la extracción de sangre mediante la punción en la yema
de un dedo, para lo cual se debe apretar el pulpejo del dedo seleccionado de tal manera
que la extremidad muestre congestión venosa, desinfectar el sitio de punción, tomar una
lanceta estéril descabale y realizar una punción rápida y segura, recolectar las gotas de
sangre necesarias evitando presionar demasiado fuerte el pulpejo.
OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN NIÑOS
1. Seguir correctamente las indicaciones propuestas anteriormente para adultos
2. Realizar el procedimiento valiéndose de ayuda de compañeros de trabajo.
3. Sujetar firmemente el brazo del niño, aún cuando el pequeño paciente no oponga
resistencia al procedimiento, usualmente los niños tienden a reaccionar bruscamente al
someterlos a procedimientos de extracción de sangre, esta reacción puede producir
una herida mayor en el niño, como el rompimiento de la aguja dentro de la vena.
OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN BEBES
Si la punción de la vena del bebe no es viable, se pueden recolectar muestras de sangre
con la punción del talón de uno de los pies. Debe sujetarse firmemente el pie del
paciente, aplicar algo de presión en el talón del mismo y esperar a que haya congestión
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venosa evidente. Realizar la punción con lanceta estéril desechable y recolectar las gotas
de sangre en tubo, en capilar o simplemente colocarlas en una lámina portaobjetos,
según sean las necesidades. Es recomendable en la medida que sea posible que la
madre del bebe no presencie el procedimiento.
OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN LUGARES INUSUALES
En ocasiones la punción de una vena del antebrazo es muy difícil, se recomienda en
primera instancia revisar las venas de la mano, no se recomienda la punción de venas de
las manos en bebes, ya que sus vasos sanguíneos son muy delgados y se corre el riego
de producir extravasación interna de la sangre. Si el dorso de la mano no muestra
adecuadas condiciones para realizar la punción se puede acudir al dorso del pie. Un
excelente lugar para obtener muestras sanguíneas en casos difíciles, es punciones la
vena yugular externa, esta opción y técnica esta reservada únicamente al profesional que
tenga amplia experiencia en este tipo de procedimientos
OBTENCION DE EXPECTORACION
1. Hacer gárgaras con agua y escupirlas.
2. Expectorar y depositar la muestra en un recipiente estéril de boca ancha(Frasco
recolector de Orina).
3. Se recomienda que la muestra sea la primera de mañana y en ayunas para evitar
partículas de alimentos.
INVESTIGACION DE BACILOS ACIDO ALCOHOL RESISTENTES
EN EXPECTORACION
Seguir las instrucciones para obtención de expectoración
EN ORINA
Para la investigación de B.A.A.R:
1. Recolectar en un recipiente estéril la
última orina de la noche y la primera de la
mañana.(Debe recolectarse también las orinas que puedan recogerse en este lapso)
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2. Todas las muestras deben recolectarse previo aseo genital con antisépticos y manejar
todos los materiales en condiciones estériles.
EN CONTENIDO GASTRICO O DUODENAL
Se debe recolectar la muestra por medio de sonda nasogástrica, en condiciones estériles,
depositando el material obtenido en recipiente estéril.
CURVA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA
1. Obtener sangre del paciente en ayunas (En esta muestra cuantificar glicemia basal)
2. El paciente deberá ingerir 75 g de glucosa diluidos en 300 ml de agua (dosis para
adultos) o 1,75 g /Kg de peso corporal (dosis para niños)
3. La ingestión debe hacerse en un lapso de 5 minutos en sorbos pequeños.
CURVA DE TRES (3) HORAS
Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa a los 30, 60, 120, 180 minutos
posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 5
CURVA DE CUATRO (4) HORAS
Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa la los 30, 60, 120, 180, 240 minutos
posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 6
CURVA DE CINCO HORAS (5)
Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa a los 30, 60, 120, 180, 240 y 300
minutos posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 7
** En todas las curvas de tolerancia a la glucosa deberá determinarse glucosa basal en
ayunas, antes de administrarle la carga de glucosa.
El paciente deberá permanecer en reposo durante el tiempo del estudio y abstenerse de
realizar ejercicio, comer, beber demasiada agua o fumar
GLUCOSA POST PRANDIAL (2 HORAS)
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POST DESAYUNO
1. Obtener sangre del paciente en ayunas.
2. Indicar al paciente que debe ir a tomar un desayuno rico en carbohidratos y asistir
nuevamente al laboratorio exactamente a las dos horas posteriores de haber iniciado el
desayuno
3. Tomar la segunda muestra de sangre (en esta muestra determinar glucosa post
prandial).
POST CARGA
1. Obtener sangre del paciente en ayunas ( en esta muestra determinar glucosa basal ).
2. El paciente deberá ingerir 75 gramos de glucosa diluidos en 300 ml de agua ( dosis
para adultos) o 1.75 g/Kg de peso corporal para niños )
3. La ingestión debe hacerse en un lapso de 5 minutos en sorbos pequeños
4. Tomar la segunda muestra a las 2 horas posteriores a la ingesta de glucosa para
cuantificar glucosa post carga
** En los anteriores estudios (glucosa post prandial y glucosa post carga) puede
realizarse también durante una hora, si así lo solicita el médico, seguir en tal caso todas
las instrucciones modificando únicamente el intervalo de tiempo
TEST DE O´SULLIVAN
1. Obtener sangre de la paciente embarazada en ayunas (en esta muestra determinar
glucosa basal )
2. La paciente deberá ingerir 50 gramos de glucosa diluidos en 300 ml de agua
3. La ingestión deberá hacerse en 5 minutos en sorbos pequeños
4. Tomar la segunda muestra de sangre una hora después de la ingesta de glucosa
para cuantificar glucosa post carga de 50 gramos de glucosa.
PRUEBA DE ESPERMOGRAMA
El médico debe especificar si lo que desea es un espermograma básico o espermograma
completo.
ESPERMOGRAMA BASICO
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Se determina parámetro tales como pH, aspecto, color, viscosidad, tiempo
de
licuefacción, recuento por milímetro cúbico, número de espermatozoides en la muestra,
movilidad clasificada, vitalidad, morfología, y presencia de leucocitos, piocitos, hematíes y
otros.
ESPERMOGRAMA COMPLETO
Se analizan los mismos parámetros del espermograma básico, adicionándose el estudio
bioquímico del plasma seminal el cual incluye determinaciones de fructuosa, ácido cítrico,
ácido ascórbico, y glicerilfosforilcolina (Externo).
INSTRUCCIONES AL PACIENTE
1. Las instrucciones deben ser siempre por escrito y suministradas siempre por el
2.
3.
4.
5.
6.
laboratorio, evitándose así que el paciente se presente con una muestra mal
recolectada.
El recipiente debe ser apropiado ( no se recomiendan preservativos tales como
condones, ya que muchos de ellos contienen sustancias espermaticidas), se
recomiendan recipientes comerciales fabricados especialmente para una óptima
recolección del semen, puede utilizarse un recipiente para recolección de orina
perfectamente sellado
La muestra de semen debe tomarse idealmente por masturbación, en el laboratorio,
con la alternativa de hacerla en su domicilio, en cualquier caso una vez recolectada la
muestra, debe conservarse a una temperatura entre 35 y 37 grados centígrados, y
debe entregarse al laboratorio antes de 30 minutos posteriores a la obtención de la
misma.
El método coito interrumpido no debe ser aceptado ya que la contaminación
de la vagina produce efecto negativo en la movilidad y supervivencia, además el riesgo
de perder la primera parte del eyaculado en el cual se encuentra un mayor número de
espermatozoides móviles activos.
El paciente debe conservar abstinencia sexual de 2 a 5 días. (Abstinencias mayores
de 10 días muestran un elevado porcentaje de espermatozoides inmóviles y
morfológicamente alterados).
El paciente no debe haber presentado episodios febriles recientes, ni haberse
sometido o intervención quirúrgica reciente, o haber estado bajo prolongado
tratamiento farmacológico (imidazoles, gonadotropinas, testosterona, corticoides,
quimioterapias etc). En cualquiera de estos casos
deberá aplazarse
aproximadamente durante un ciclo espermatogénica, es decir setenta días.
El paciente debe abstenerse de ingerir bebidas alcohólicas durante varios días previos
a la recolección de la muestra.
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RECOLECCION DE MUESTRAS DE ORINA
EXAMEN PARCIAL DE ORINA - UROCULTIVO
Normalmente, sobretodo en la mujer, se encuentran bacterias en la porción distal de la
uretra y el perineo. Estos microorganismos son contaminantes de la orina y deben
evitarse mediante técnicas de recolección asépticas.
1. Limpiar la región peri uretral (extremidad del pene , labios ,vulva) por medio de dos
lavados sucesivos con agua y jabón o un detergente liviano, enjuagando muy bien
con agua esterilizada para quitar el detergente , mientras se mantiene retraído el
prepucio o los pliegues de la vagina.
2. Limpiar la uretra, dejando pasar la primera parte de la micción la cual se desecha.
3. Recoger directamente en un frasco estéril la orina que se emite a continuación (Orina
de segunda parte de la micción).
4. La orina recolectada se utiliza para cultivo y recuento de colonias.
Como generalmente la orina favorecerá el crecimiento de la mayoría de los gérmenes
urinarios patógenos (al igual que los medios de cultivo rutinarios) es absolutamente
necesario que el cultivo de orina se realice de la primera hora posterior a su recolección
o que se mantenga en refrigeración (4 grados centígrados) hasta el momento de su
procesamiento.
RECOLECCION DE MUESTRAS DE ORINA EN NIÑOS
En niños, puede utilizarse una bolsa de plástico estéril colectora de orina (producto
comercial). La bolsa se colocará después de haber lavado los genitales adhiriéndola a la
piel por medio de un anillo adhesivo. Si no es posible recolectar orina en los 45 minutos,
deberá cambiarse la bolsa por una nueva.
RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS
1. Orinar por la mañana al levantarse y anotar exactamente la hora (esta muestra no se
recolecta)
2. Recolectar las muestras posteriores de orina (mañana, tarde y noche) en el recipiente
que debe adquirir el usuario (Garrafa de agua) el cual debe ser preferiblemente de
color opaco, conservar el frasco en nevera, durante el estudio (4 grados centígrados).
3. Al día siguiente exactamente a la misma hora en que la orina fue desechada el día
anterior, se recoge la última muestra.
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4. Es importante tener cuidado al vaciar la orina en el frasco para que no se pierda nada
de ella. En caso de olvidar recolectar parcial o totalmente alguna muestra deberá
iniciarse nuevamente la recolección.
MATERIA FECAL (COPROLOGICOS, COPROSCOPICOS)
1. Recolectar la muestra en recipiente estéril de boca ancha y con tapa.
2. Procesar la muestra antes de dos horas. Si esto no es posible, mantener las muestras
en refrigeración a temperatura de 4 grados centígrados.
3. Se pueden realizar tinciones de láminas, investigación de amebas y otros parásitos,
coprocultivos, coprológicos, coproscópicos, estudios de investigación de grasas,
procedimientos inmunológicos, etc.
PRUEBA DE CINTA PEGANTE O ADHESIVA (PRUEBA DE GRAHAM)
1.- Procedimiento recomendado en la investigación de oxiuros (Enterobius).
2.- Colocar cinta adhesiva en la región perianal del paciente (Método de especial utilidad
en niños).
3.- Dado que la hembra del parásito deposita los huevos en las horas de la noche y en la
región perianal, aplicar la cinta adhesiva antes de acostarse y retirarla por la mañana,
antes de que el paciente se levante de la cama.
4.- Presionar la superficie adherente de la cinta sobre una lámina portaobjetos de vidrio.
Continuar con el procedimiento de observación al microscopio.
SANGRE OCULTA EN MATERIA FECAL
1.- El paciente debe abstenerse de ingerir carnes rojas, rabanos, chorizos, morcillas
(rellenas) etc., durante por lo menos tres (3) días antes del examen.
2.- La muestra de materia fecal recolectada no debe haberse expuesto a contaminación
con orina.
3.- Las muestras seriadas durante algunos días aumenta la exactitud del examen.
4.- Generalmente se obtienen resultados falsos positivos en pacientes con hemorroides.
MUESTRAS VAGINALES
1.- Indicar a la paciente que el día de examen, no debe hacerse baño de ducha vaginal.
2.- Explicar a la paciente el procedimiento que se le practicará.
3.- Introducir el escobillón, asegurarlo correctamente. (Si la paciente es una niña utilizar
especulo virginal). Advertir a la persona responsable de la niña sobre el procedimiento
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que se realizará. Si la paciente es mayor y niega haber tenidos relaciones sexuales,
utilizar igualmente especulo virginal).
4.- No utilizar lubricantes que facilitan la introducción del especulo (Los lubricantes
producen interferencias en los resultados).
5.- Medir PH vaginal. Anotar el resultado.
6.- Tomar muestra de exocervix y fondo del saco posterior con aplicador estéril.
7.- Tomar con un nuevo aplicador estéril, muestras de endocervix. Hacer frotis y
extendidos para coloración de Gram.
8.- Procesar las muestras antes de dos horas.
LISTADO PRUEBAS ESPECIALES
No.
EXAMEN
MUESTRA
1
ACTH ( HORMONA ADRENOCORTICOTROPICA
PLASMA+ EDTA ENVIAR CONGELADO
2
ACIDO FOLICO
SUERO CUBRIR DE LUZ DIRECTA
3
ACIDO VANILMANDELICO
ORINA 24 HORAS
4
ACIDO LACTICO
PLASMA+ EDTA ENVIAR CONGELADO
5
ADENOSIN DEAMINASAS ( ADA)
LIQUIDOS EN TUBO CITRATO (AZUL)
6
ALDOSTERONA
SUERO CONGELADO
7
ALFAFETOPROTEINA
SUERO
8
ANDROSTENEDIONA
SUERO
9
ANTICOAGULANTE LUPICO
PLASMA CITRATADO CONGELADO
10
ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINA G, M, A
SUERO
11
ANCAS
SUERO
12
ANTI DNA
SUERO
13
ANTI JO
SUERO
14
ACS ANTI MITOCONDRIA AMA
SUERO
15
ANTI RNP
SUERO
16
ANTI SM
SUERO
17
ANTI RO
SUERO
18
ANTI LA
SUERO
19
ANAS
SUERO
20
ANTI TIROIDEOS TIROGLOBULINICOS
SUERO
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No.
EXAMEN
MUESTRA
21
ANTITIROIDEOS MIROSOMALES
SUERO
22
ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO
SUERO
23
ANTIGENO PROSTATICO
SUERO
24
25
ANTIRROMBINA III
BETA 2 MICROGLOBULINA
PLASMA CITRATADO CONGELADO
SUERO
26
BETA HCG
SUERO
27
CA 153
SUERO
28
CA 199
SUERO
29
CA 125
SUERO
30
CALCIO
SUERO
31
CALCIO IONICO
TUBO TAPA AMARILLA GEL
32
CARMABAMAZEPINA
SUERO
33
CAROTENOS
SUERO PROTEGIDO DE LA LUZ
34
CATECOLAMINAS
ORINA 24 HORAS
35
CETOSTEROIDES 17
ORINA 24 HORAS
36
CISTICERCO IGG, IGM
SUERO
37
CITOMEGALOVIRUS IGG, IGM
SUERO
38
CLORO
SUERO
39
COLINESTERASA
SUERO
40
COMPLEMENTO HEMOLITICO CH 50
SUERO CONGELADO
41
COMPLEMENTO SERICO C3
SUERO
42
COMPLEMENTO SERICO C4
SUERO
43
COOMBS DIRECTO
SANGRE TOTAL EDTA
44
COMMBS INDIRECTO
SANGRE TOTAL EDTA + SUERO
45
CORTISOL AM
SUERO TOMAR 8AM
46
CORTISOL PM
SUERO TOMAR 4 PM
47
CORTISOL URINARIO
ORINA 24 HORAS
48
CHAGAS
SUERO
49
DEPURACION DE CREATININA
SUERO + ORINA 24 HORAS
50
DIMERO D
TUBO TAPA VERDE
51
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO
SUERO
No de Revisión
00
01
02
03
04
Fecha
Mayo 2009
Junio 2012
Noviembre 2012
Agosto 2013
Marzo 2014
Elaboró
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
Cord. Laboratorio Clínico
Aprobó
Dirección Prestación
Dirección Prestación
Dirección Prestación
Dirección Prestación
Dirección Prestación
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TRANSPORTE Y
CONSERVACIÓN DE MUESTRAS
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No.
EXAMEN
MUESTRA
52
ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN ORINA
ORINA 24 HORAS
53
EPSTEIN BARR ACS IGG, IGM
SUERO
54
ERITROPOYETINA
SUERO CONGELADO
55
ESTRADIOL
SUERO
56
FACTOR IX
PLASMA CITRATADO CONGELADO
57
FACTRO V
PLASMA CITRATADO CONGELADO
58
FACTOR VII
PLASMA CITRATADO CONGELADO
59
FACTOR VIII
PLASMA CITRATADO CONGELADO
60
FACTOR VON WILLEBRAND
PLASMA CITRATADO CONGELADO
61
FACTOR X
PLASMA CITRATADO CONGELADO
62
FACTOR XI
PLASMA CITRATADO CONGELADO
62
FENITOINA
SUERO
64
FERRITINA
SUERO
65
FIBRINOGENO
PLASMA CITRATADO CONGELADO
66
FOSFOLIPIDPOS IGG, IGM
SUERO
67
FOSFORO
SUERO
68
FSH
SUERO
69
FTA ABS
SUERO
70
GGT
SUERO
71
HELICOBACTER PILORY IGG, IGM
SUERO
72
HEMOGLOBINA GLICOSILADA
SANGRE TOTAL EDTA
73
HEAPTITIS A IGG, IG
SUERO
74
HEPATITIS B HBAGS
SUERO
75
HEPATITIS B CORE IGG, IGM
SUERO
76
HEPATITIS C
SUERO
77
HERPER I IGG, IGM
SUERO
78
HERPES II IGG, IGM
SUERO
79
HIDROXICORTICOESTERIODES
SUERO
80
HIDROXIPROGESTERONA 17
SUERO
81
HIERRO SERICO
SUERO
82
HLA B27
TUBO TAPA VERDE 5
No de Revisión
00
01
02
03
04
Fecha
Mayo 2009
Junio 2012
Noviembre 2012
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No.
EXAMEN
MUESTRA
83
HORMONA DE CRECIMIENTO
SUERO
84
HORMONA LUTEINOZANTE
SUERO
85
INMUNOGLIOBULINA A, E, G, M
SUERO
86
INSULINA
SUERO
87
LITIO
SUERO
88
MAGESIO
SUERO
89
MONOTEST
SUERO
90
PTH
SUERO CONGELADO
91
PEPTIDO C
SUERO CONGELADO
92
POTASIO
SUERO LIBRE DE HEMOLISIS
93
PROGESTERONA
SUERO
94
PROLACTINA
SUERO
95
PROLACTINA POOL
SUERO
96
PROTEINA C DE LA COAGULACION
PLASMA CITRATADO CONGELADO
97
PROTIENA S DE LA COAGULACION
PLASMA CITRATADO CONGELADO
98
PROETINA DE BENCE JONES
ORINA RTENCION 3 HORAS /MAÑANA
99
PROETINURA 24 HORAS
ORINA 24 HORAS
100
RECUNETO DE HAMBURGER
ORINA RTENCION 3 HORAS /MAÑANA
101
RUBEOLA IGG, IGM
SUERO
102
SEROTONONA
ORINA 24 HORAS
103
T3
SUERO
104
T4T
SUERO
105
T4 LIBRE
SUERO
106
TESTOSTERONA TOTAL
SUERO
107
TESTOSTERONA LIBRE
SUERO
108
TIROBLOBULINA
SUERO
109
TORCH IGG, IGM
SUERO
110
TOPLASMA IGG, IGM
SUERO
111
TOXACARA
SUERO
112
TROPONINA T
TUBO TAPA VERDE
113
TSH
SUERO
No de Revisión
00
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03
04
Fecha
Mayo 2009
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Elaboró
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Aprobó
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No.
EXAMEN
MUESTRA
114
VITAMINA B12
SUERO PROTEGIDO DE LA LUZ
No de Revisión
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Fecha
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TRANSPORTE DE MUESTRAS
OBJETIVO
Establecer los procedimientos que se realizan en el trasporte de muestras, para
garantizar que éstas lleguen en condiciones óptimas para que al final tengamos un
resultado óptimo para el paciente.
ALCANCE
El siguiente manual se toma como referencia para el trasporte y remisión de muestras
hacia el LABORATORIO DE REFERENCIA.
RESPONSABILIDAD
Es responsabilidad de las AUXILIARES DE LABORATORIO CLINICO Y PROFESIONAL
EN BACTERIOLOGIA.
El Laboratorio con el cual tenemos contrato tiene el siguiente protocolo de trasporte:
1. Tomar la muestra de acuerdo con el anexo anterior, la muestra debe estar
perfectamente marcada.
2. Llenar el formato de remisión de muestras al Laboratorio de referencia. Las muestras
deben estar entre 2-8°C de lo contrario es necesario tomar nueva muestra.
3. Transportar las muestras en una nevera clasificando si el envío es peligroso o no. En
la parte externa de la nevera debe ir el logo UN3373 , nombre de quien envía y nombre
del destinatario, número telefónico en caso de emergencia. Debe tener flechas que
indiquen la manera que ésta se debe transportar para evitar que se derrame.
REMISION DE MUESTRAS AL LABORATORIO DE REFERENCIA
Realizamos el procedimiento descrito en el manual de calidad.
1. Tomar la muestra de acuerdo con el anexo, la muestra debe estar perfectamente
marcada.
2. Llenar el formato de remisión de muestras al Laboratorio de referencia. Las
muestras deben estar entre 2-8°C de lo contrario es necesario tomar nueva
muestra.
Embalaje, etiquetado y documentación para el transporte.
No de Revisión
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01
02
03
04
Fecha
Mayo 2009
Junio 2012
Noviembre 2012
Agosto 2013
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Elaboró
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Debido a los diferentes riesgos entre sustancias infecciosas y especimenes diagnósticos,
los requerimientos de embalaje, etiquetado y transporte varían por cada uno de ellos. Los
requerimientos para embalaje vigentes se describen a continuación. Varios sistemas de
embalaje aprobados se pueden obtener comercialmente.
El sistema consiste en tres capas.
1.
El recipiente primario. Un recipiente estanco aprueba de filtraciones, preferiblemente
plástico, con tapa tipo rosca que cierre herméticamente, etiquetado que contiene el
espécimen. El recipiente se envuelve en material absorbente suficiente para
absorber todo el fluido en caso de ruptura, que puede ser toallas de papel o
algodón.
2.
Recipiente secundario. Este recipiente protege el recipiente primario. Se pueden
colocar varios recipientes primarios envueltos, en un recipiente secundario. Se debe
usar suficiente material absorbente para proteger a todos los recipientes primarios y
evitar los choques entre ellos. El recipiente secundario puede ser de cartón o icopor.
3.
Paquete externo de envío. El recipiente secundario se coloca en un paquete de
envío que protege el recipiente secundario y su contenido de los elementos
externos, tales como daño físico y agua, mientras se encuentra en tránsito. Este
empaque externo puede ser cartón o icopor principalmente. Los formularios con
datos del espécimen, cartas y otras informaciones que identifican o describen el
espécimen y también identifican al remitente y el destinatario deben ser pegados
con cinta adhesiva en el exterior Enviar cada muestra ( suero, plasma, sangre total
etc) en un tubo de propileno suministrado por nuestro laboratorio, perfectamente
marcado y cerrado con tapa rosca también de propileno, limpiar los tubos con
hipoclorito de sodio al 0,1%, envolver cada tubo con material absorbente y una vez
envuelto se coloca en envase rígido para proteger las muestras y si hay espacios
entre estos, se llena con material absorbente(Esto aplica cuando se envían tubos
por unidad). Las remisiones se colocan en bolsa plástica y Lugo se colocan en la
nevera. Colocar una bala de hielo en gel.
Figura 1. Sistema Triple Básico Para Embalaje.
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Dirección Prestación
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Transportar las muestras en una nevera clasificando si el envío es peligroso o no. En la
parte externa de la nevera debe ir el logo UN3373 , nombre de quien envía y nombre del
destinatario, número telefónico en caso de emergencia. Debe tener flechas que indiquen
la manera que ésta se debe transportar para evitar que se derrame.
No de Revisión
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02
03
04
Fecha
Mayo 2009
Junio 2012
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Elaboró
Cord. Laboratorio Clínico
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Dirección Prestación
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Dirección Prestación
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CONSERVACION DE MUESTRAS
OBJETIVO
Establecer los procedimientos que se realizan en la conservación de muestras, para
garantizar que tengan las condiciones óptimas para que al final tengamos un resultado
óptimo para el paciente.
ALCANCE
El manual se toma como referencia para la conservación de muestras en el laboratorio
clínico de COLOMBIANA DE SALUD.
RESPONSABILIDAD
Es responsabilidad de las auxiliares del
Bacteriología.
Laboratorio Clínico y de la profesional en
La bacterióloga es la encargada de procesar en horas de la mañana el área de
microscopia ya que como se mencionó en cada POES estas muestras pueden sufrir
alteraciones si no se procesan de manera oportuna:
- Cuadros Hemáticos
- Parciales de orina
- Coprológicos
- Coproscópicos
- Frotis de Flujo Vaginal
- Secreciones uretrales
- KOH
Las auxiliares centrifugarán las muestras de sangre para separar el coagulo del suero
máximo una hora después de haberlas tomado. La bacterióloga las procesará. Una vez
procesada la química se procede a desactivar las muestras y eliminar según protocolo de
BIOSEGURIDAD.
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Fecha
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Dirección Prestación
Dirección Prestación