Volumen II

0
AUTORIDAD BINACIONAL AUTONOMA DEL SISTEMA HIDRICO T.D.P.S.
PROYECTO PER 98/G32 CONSERVACIÓN DE LA BIODIVERSIDAD EN LA CUENCA
DEL LAGO TITICACA - DESAGUADERO - POOPO - SALAR DE COIPASA
GERENCIA NACIONAL PERUANA
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS
Equipo Profesional Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno
PUNO – PERÚ
0
EQUIPO PROFESIONAL
IIP QOLLASUYO - CIPP CHUCUITO UNA PUNO
Ing. Francisco Paca Pantigoso
Co Director IIP Qollasuyo
Ph. D. Sabino Antencio Limachi
Co Director CIPP Chucuito UNAP
Ing. M. Sc. Romeo F. Paca Pantigoso
Especialista: Estadística e Informática
Blgo. René Alfaro Tapia
Especialista: Pesca Artesanal
Ing. Pesq. Maria del Rosario Roncal Gutiérrez
Especialista: Transformación
Blgo. Brígida Paca Pantigoso
Residente de CP. Chucuito – Pomata
Blgo. René Chura Cruz
Residente de CP. Arapa
Ing. Raul Quispe Mamani
Especialista en formulación de alimentos para peces
Prod. José Carlos Paca Vallejo
Productor de medios
CPC. Guadalupe Vásquez Pareja
Administración
Ing. Rubén Chambilla Huarahuara
Informática Sistemas
INVESTIGADORES
-
Blgo. José Luis Vilca Ticona
Blgo. Yuver Paul Castillo Apaza
Bach. Yanet Carmen Coila Rojas
Blgo. Lourdes Jara Zuñiga
ASISTENTES DE CAMPO
-
Sr. Saturnino Pongo Tarqui
Sr. Hipólito Álvarez Condori
APOYO LOGISTICO
- CP. Myriam Chávez Barbery
1
INDICE
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
Sinopsis Biológica de Trichomycterus dispar “mauri”. Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo –
CIPP Chucuito UNA – PUNO; Noviembre 2000.
Publicación Nº 01
Sinopsis Biológica de Orestias luteus “carachi amarillo”. Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo
– CIPP Chucuito UNA – PUNO. Noviembre 2000.
Publicación Nº 02
Sinopsis Biológica de Orestias ispi “ispi”. Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP
Chucuito UNA – PUNO. Noviembre 2000.
Publicación Nº 03
Refrigeración Casera de Orestias luteus “carachi amarillo”. Lic. Blgía. René Chura Cruz, Ing. Romeo
Paca Pantigoso. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA – PUNO. Noviembre 2000.
Publicación Nº 04
Sinopsis Biológica Orestias pentlandii “boga”; Lic. Blgía. René Chura Cruz. Asoc. IIP Qollasuyo –
CIPP Chucuito UNA – PUNO; Diciembre 2000.
Publicación Nº 05
Sinopsis Biológica Trichomycterus rivulatus “suche”. Ph. D. Sabino Atencio Limachi, Blgo. Rene
Alfaro Tapia. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA – PUNO. Diciembre 2000 Puno.
Publicación Nº 06
Adaptación de Trichomycteridos en Ambientes Controlados Trichomycterus rivulatus “suche” y
Trichomycterus dispar “mauri”. Ph. D. Sabino Atencio Limachi. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito
UNA – PUNO. Diciembre 2000.
Publicación Nº 07
Construcción y Adecuación de Estanques para Trichomycterus rivulatus “suche” y Trichomycterus
dispar “mauri”. Ph. D. Sabino Atencio Limachi. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA – PUNO;
Diciembre 2000.
Publicación Nº 8
Diseño de Ahumador Artesanal para Especies Ícticas Nativas del Lago Titicaca. Ing. Pesq. Maria del
Rosario Roncal Gutiérrez, Ph. D. Sabino Atencio Limachi, Blgo René Alfaro Tapia. Asoc. IIP Qollasuyo
– CIPP Chucuito UNA – PUNO; Enero 2001.
Publicación Nº 10
Procesos para Reproducción Artificial de Orestias luteus “carachi amarillo”, Orestias agassii”carachi
negro”, Orestias ispi “ispi”. Lic. Blgía. Brígida Paca Pantigoso y Lic. Blgía. Rene Chura Cruz. Asoc. IIP
Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA – PUNO; Enero 2001.
Publicación Nº 11
Elaboración de Conservas de: Orestias agassii “carachi negro” y Orestias luteus “carachi amarillo”
“Salsa de Tomate, Grated en aceite. Lic. Blgía. Brígida Paca Pantigoso y Lic. Blgía. Rene Chura Cruz.
Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA PUNO; Febrero 2001.
Publicación Nº 12
Elaboración de Seco Salado de Orestias ispi “ispi”. Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP
Chucuito UNA PUNO; Febrero 2001.
Publicación Nº 13
Elaboración de Ahumado de Orestias ispi “ispi”. Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP
Chucuito UNA PUNO; Febrero 2001.
Publicación Nº 14
Incubadores Artesanales. Lic. Blgía. René Chura Cruz. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA PUNO;
Marzo 2001.
Publicación Nº 15
2
15 Alimentación inicial de alevinos de Orestias. Ph. D. Sabino Atencio Limachi. Asoc. IIP Qollasuyo –
16
17
18
19
CIPP Chucuito UNA PUNO; Abril 2001.
Publicación Nº 16
Taxonomía de la Ictiofauna Nativa del Lago Titicaca. Ph. D. Sabino Atencio Limachi. Asoc. IIP Qollasuyo –
CIPP Chucuito UNA PUNO;; Julio 2001.
Publicación Nº 17
Formulación de Alimento Balanceado para Especies Ícticas Nativas del Lago Titicaca. Ing. Raúl
Quispe Mamani. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA PUNO; Noviembre 2001.
Publicación Nº 18
Reproducción Artificial de Trichomycterus rivulatus “suche” y Trichomycterus dispar “mauri”. Lic.
Blgía. Brígida Paca Pantigoso y Lic. Blgía. René Chura Cruz. Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito
UNA PUNO; Julio 2001.
Publicación Nº 19
Elaboración de Alimento Balanceado para Especies Ícticas Nativas. Ing. Raúl Quispe Mamani. Asoc.
IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA PUNO; Julio 2001.
Publicación Nº 20
3
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
SINOPSIS BIOLÓGICA
DE
Trichomycterus dispar
“mauri”
Equipo Profesional Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 01
Noviembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
0
I.- ASPECTOS GENERALES.-
1.1. Taxonomía de Trichomycterus dispar “mauri”
El primer investigador en describir el género Trichomycterus, fue HUMBOLDT
(1811), identificando equivocadamente como el género Eremophilus, nombre
que fue descartado. VALENCIENNES (1833), dio una descripción más clara de
este género. MEYEN (1834), WIEGMANN (1890), describen varias especies
como pertenecientes al género Pygidium; pero el Dr. T. TCHERNAVIN (1943),
ratifica la denominación de Trichomycterus designada por VALENCIENNES
(1833). El nombre específico originalmente fue dado por TSCHUDI (1845).
Según TCHERNAVIN (1943) la posición taxonómica actual es la siguiente,
citados por Samaniego et al. 1987:
PHYLLUM
Chordata
SUB PHYLLUM
Vertebrata
CLASE
Osteichthyes
SUB CLASE
Actinopterygii
ORDEN
Siluriformes
SUB ORDEN
Siluroidei
FAMILIA
Trichomycteridae
GENERO
Trichomycterus
ESPECIE
Trichomycterus dispar
NOMBRE COMUN
"mauri" “mari” “huita”
II.- MORFOLOGÍA
STORER, F. (1961), manifiesta que el Sub Orden Siluroidei posee boca protáctil
(en caso del género Trichomycterus “suche” y “mauri” no presenta este tipo de
boca),
con dientes generalmente con barbillas sensitivas, cuerpo desnudo (sin
escamas) o con placas óseas, las especies americanas desnudas y con aletas
adiposas.
MIPE (Documento) indica que el “suche” y “mauri”, son peces bentónicos por lo
cual su cuerpo y algunos órganos están adaptados funcionalmente.
Cuerpo.- Soporta altas presiones producidas por el gran volumen de agua, por
lo cual presenta un cuerpo aplanado, dorso ventralmente en los dos tercios
anteriores y lateralmente en el tercio posterior; el vientre es aplanado.
Órganos principales
Ojos.- Los ojos son pequeños y hundidos por su adaptación a escasa cantidad
de luz.
Barbos.- Están premunidos de seis barbos filamentosos en la base de la
mandíbula superior, siendo órganos complementarios.
Vejiga natatoria.- El "mauri" y "suche" carecen de vejiga natatoria o está
sumamente atrofiada.
Estómago.- El estómago es de tipo tubular, es frecuente en los peces
carnívoros y se complementa con un intestino relativamente corto y simple, se
presenta a manera de una bolsa tubular bastante distensible, de tal modo que
cuando el animal se encuentra en ayunas o exento de contenido estomacal,
este se mantiene como un conducto tubular más o menos replegado. En
cambio, cuando este se halla repleto de alimentos se ensancha
ostensiblemente por distensión de su tejido y membranas que conforman sus
paredes.
1
2.1. Estructura del tracto digestivo
LAGLER (1980) indica que la estructura básica del tracto digestivo de los
vertebrados es:
a) Boca bordeada por mandíbula dentada y rodeada internamente por válvulas
orales.
b) Cavidad oral con dientes vomerianos y palatinos en el techo y lengua con
dientecillos linguales en su superficie.
c) Faringe con dientes faringeos en cojinetes hacia los lados de los arcos
branquiales que protegen las aberturas branquiales internas.
d) Esófago.
e) Estómago.
f) Píloro.
g) Intestino corto.
h) Intestino largo.
i) Ano.
2.2. Longitud
La longitud del Trichomycterus dispar “mauri” en la zonas de Chucuito y
Uros fue de 15.74 cm y se observa que en promedio las hembras miden 15.61
cm, son más pequeñas que los machos que tienen una longitud de 15.95 cm.
CUADRO Nº 01
LONGITUDES DE Trichomycterus dispar “MAURI” EN LA ZONA
DE CHUCUITO – UROS (LAGO TITICACA) 1994 – 1995
INTERVALO DE
CLASE cm
MARCA DE
CLASE
12 – 14
13
14 – 16
15
16 – 18
17
18 – 20
19
20 – 22
21
TOTAL
DESVIACIÓN ESTANDAR
PROMEDIO
COEFICIENTE DE VARIABILIDAD
HEMBRAS
Ni
17
17
18
04
03
59
%
28.82
28.82
30.50
6.78
5.08
100.00
2.24
15.61
14.33
MACHOS
Ni
05
15
13
05
00
38
%
13.16
39.47
34.21
13.16
0.00
100.00
1.79
15.95
11.19
TOTAL
Ni
22
32
31
09
03
97
%
26.68
32.68
31.68
9.28
3.09
100
2.07
15.74
13.14
FUENTE: Angles, 1996.
La longitud de Trichomycterus dispar “mauri” en Uros Chulluni es de 15.74 cm y
se observa que en promedio las hembras miden 15.61 cm, son más pequeñas que
los machos que tienen una longitud de 15.95 cm;
2
CUADRO Nº 02
LONGITUDES DE Trichomycterus dispar “MAURI” EN LA ZONA
DE LOS UROS (LAGO TITICACA) 1994 – 1995.
INTERVALO DE
HEMBRAS
MACHOS
TOTAL
MARCA DE
CLASE cm
CLASE
Ni
%
Ni
%
Ni
%
12
14
16
18
–
–
–
–
14
16
18
20
13
15
17
19
TO TAL
DESVIACIÓN ESTANDAR
PROMEDIO
COEFICIENTE DE VARIABILIDAD
17
12
3
5
45.9
32.4
8.1
13.5
5
10
0
1
31.3
62.5
0.0
6.3
22
22
3
6
41.5
41.5
5.7
11.3
37
100.0
2.10
14.78
14.18
16
100.0
1.50
14.63
10.26
53
100.0
1.92
14.74
3.05
FUENTE: Angles, 1996.
CUADRO Nº 03
LONGITUDES DE Trichomycterus dispar “MAURI” EN LA ZONA DE
CHUCUITO (LAGO TITICACA) 1994 – 1995.
INTERVALO DE
CLASE cm
MARCA DE
CLASE
14 –16
16 – 18
18 – 20
20 – 22
TOTAL
15
17
19
21
DESVIACIÓN ESTANDAR
PROMEDIO
COEFICIENTE DE VARIABILIDAD
HEMBRAS
Ni
5
15
2
3
25
%
20
60
8
12
100
17.24
1.76
10.22
MACHOS
Ni
5
13
4
0
22
%
22.7
59.1
18.2
0.0
100.0
16.91
1.71
10.09
TOTAL
Ni
10
28
6
3
47
%
21.3
59.6
12.8
6.4
100.0
17.00
1.56
9.12
FUENTE: Angles, 1996.
III.- FISIOLOGÍA
3.1 Tracto digestivo
LAGLER (1980), menciona que: en los cetáceos y peces óseos, el tracto
digestivo consiste en un conducto interrumpido que se inicia en la boca y
termina en el ano o cloaca, según el pez que se trate. Pero existe gran
variabilidad en lo referente a forma, característica y estructura del tracto
digestivo entre las diferentes clases de peces, de acuerdo a su filiación
taxonómica, mecanismo ingestivo, hábitos alimentarios etc., esto conlleva a
diferencias en la fisiología del tracto digestivo.
Todo alimento inicia su proceso digestivo, siendo ingerido mediante cualquiera
de los mecanismos de ingestión que existen en los peces, de la cavidad
bucofaríngea, que recepciona los alimentos, pasan estos al esófago, aunque los
peces presentan una lengua en la cavidad bucal, esta es rígida, dura y no
cumple ninguna función deglutora.
3
Los alimentos acumulados en el sector bucofaríngeo provocan la distensión de
las paredes esofágicas y por los movimientos musculares del tubo digestivo
pasan lubricados por el mucus hacia el estómago, venciendo previamente la
estrechez que ejerce el esfínter cardial, que se refleja o movimientos reflejos.
Una vez que los alimentos ingresan al estómago se da inicio al proceso
digestivo propiamente dicho, los movimientos peristálticos provocados por la
acción muscular en las paredes del estómago al ataque químico de los jugos
gástricos (HCI) y la acción bioquímica de enzimas o diastasas se encarga de
completar la acción digestiva que tiene lugar en el estómago del pez.
IV.- HABITOS ALIMENTICIOS
LAGLER (1980), manifiesta que un factor importante en la alimentación es la hora
del día. Algunos peces como los bagres que encuentran su alimento mediante el
olfato y el gusto, son predominantemente comedores nocturnos.
MONTOYA (1989), menciona que el Trichomycterus sp. “mauri” es una especie
altamente selectiva en su alimentación ya que el 91.79% en número y el 97.34%
en volumen esta representado por el anfípodo Hyalella spp.; el anélido
Helobdella spp. y ovas de peces, variando el porcentaje de acuerdo al tamaño
del pez.
4.1. Contenido estomacal
4.1.1. Número y porcentajes del contenido estomacal por longitudes
La composición de organismos que se hallan en el contenido estomacal se
aprecia en detalle en el cuadro Nº 01, respectivamente; en el rango de
longitudes comprendidas entre 13 y 14 cm. Se registró 96.03% de Hyalella,
2.84% larvas de chirómidos, 1.13% Ovas de peces.
Para el rango de longitud de 14 a 16 cm, estuvo conformado por un 68.43%
por el contenido estomacal de un 68.43% de Hyalella, 3.92% larvas de
chironómidos, 6.71% Helobdella, 2.79% ninfas de odonatos, pupas de
chironómidos y 15.36% ovas de peces.
En el rango de longitud de 16 a 17.9 cm, el contenido estomacal es 59.94%
de Hyalella, 33.42% larvas de chironómidos, 2.63% Helobdella, 1.17% ninfas
de odonatos, 0.88% pupa de chironómidos y 1.46% de peces, en estos
rangos existe una variedad de preferencias en cuanto a los tipos de
alimentación.
Para el rango de longitud de 18 a 19.9 cm., el contenido estomacal esta
constituido por un 71.22% de Hyalella, 23.38% larvas de chironómidos y
5.4% de ovas de peces.
Para el rango de longitud de 20 a 21.9 cm, el análisis del contenido estomacal
estuvo conformado por un 73.32% de Hyalella, 28.98% larvas de
chironómidos y el resto estuvo formado por otros organismos.
4
CUADRO Nº 04
NUMERO Y PORCENTAJE DE ORGANISMOS EN EL CONTENIDO ESTOMACAL
DEL Trichomycterus dispar “MAURI” EN RELACION A LAS LONGITUDES EN
LAS ZONAS DE UROS – CHUCUITO (LAGO TITICACA) 1994 – 1995
CLASE
Cm
N°
%
13-14
338 96.0
14-16
245 68.4
16-18
410 59.9
18-20
396 71.2
20-22
86 62.3
TOTAL 1475 70.6
Fuente: Angles, 1996
N°
%
N°
%
N°
%
N°
%
N°
%
10
14
232
130
40
426
2.8
3.9
33.9
23.4
29.0
20.4
0
24
18
0
0
42
0.0
6.7
2.6
0.0
0.0
2.0
0
10
8
0
10
28
0.0
2.8
1.2
0.0
7.2
1.3
0
10
6
0
0
16
0.0
2.8
0.9
0.0
0.0
0.8
4
55
10
30
2
101
1.14
15.4
1.46
5.4
1.45
4.84
TOTAL
352
358
684
556
138
2088
4.1.2. Contenido estomacal por épocas
En el Altiplano peruano no se manifiestan con toda claridad las estaciones de
primavera, verano, otoño e invierno, por lo que normalmente solo se
consideran dos épocas, la de intermedio que comprende los meses de abril
hasta agosto y la época de lluvias de setiembre a marzo.
a. Época intermedia
Se analizó 47 ejemplares, tal como se puede ver en el cuadro Nº 05,
donde se observa, que el principal alimento de esta especie está
conformada por 64.98% de Hyalella, 30.58% de chironómidos, 0.86% de
Helobdella, 2.18% ninfas de odonatos y 0.47% pupa de chironómidos y
0.93% ovas de peces.
b. Época de lluvia
Se contó 50 ejemplares, representado en el cuadro Nº 05 cuyo análisis
estomacal estuvo constituido por 82.63% Hyalella, 1.67% larvas de
chironómidos, 3.99% de Helobdella, 0.26% pupa de chironómidos y un
11.45% de ovas de peces.
Haciendo comparaciones en estas dos épocas, indudablemente el
organismo principal de alimentación de los “mauris” es la Hyalella, para la
época de lluvia este organismo toma mayor frecuencia que en la
intermedia.
5
14-15.9
16-17.9
18.19.9
20-21.9
12-13.9
LLUVIA
14-15.9
+
16-17.9
50
18-19.9
FUENTE: Angles, 1996.
INTERMEDIA
+
47
4.2.
75.70
61.46
67.34
62.32
96.02
66.66
64.52
80.50
9.72
34.55
32.66
28.98
2.84
0
4.84
0
7.64
0
0
0
1.4
6.37
29.03
0
6.94
1.33
0
7.25
0
0
0
0
0
0
1
1.66
0
0
0
1.45
0
0
0 26.97
1.61
0
0.62 19.48
TOTAL
ovas
(peces)
chironomido
(pupa)
odonato
(ninfa)
Helobdella
chironomido
(larvas)
O RGANIS M OS
Hyalella sp.
RANGO DE
LONGITUD cm.
EPOCAS
CUADRO Nº 05
PORCENTAJE DE NÚMERO DE ORGANISMOS DEL CONTENIDO DE
Trichomyterus dispar “MAURI”, EN EPOCAS INTERMEDIAS DE LLUVIAS DEL
(TITICACA) 1994 – 1995.
100.00
100.00
100.00
100.00
100.00
100.00
100.00
100.00
Determinación cualitativa de los componentes alimenticios en el
contenido estomacal de Trichomycterus dispar “ mauri”
En la determinación cualitativa se considera el grado de llenura, grado de
digestión y organismos que conforman su dieta.
Con respecto al grado de llenura se obtuvo un promedio de 2 (grado de
llenura), esto nos demuestra que el tracto digestivo se hallaba con escaso
contenido, encontrándose 14 ejemplares con el estómago vacío.
En el grado de digestión se obtuvo un promedio de 3 lo cuál nos indica que el
momento de análisis los alimentos estuvieron digeridos.
Referente a los componentes alimenticios en el “mauri” encontramos
organismos bentónicos Hyalella (anfípodos), pupas y larvas de chironómidos
(insectos), ninfa de odonatos (insectos), Helobdella (anélido) y ovas de
peces.
4.3.
Determinación cuantitativa de la alimentación de Trichomycterus dispar
“mauri”
4.3.1. Índice de Replección Total (IRT)
Al realizar los análisis estadísticos de los IRT para el total de la población
obtuvimos los siguientes resultados.
IRT
(Mínimo)
=
58.8
IRT
(Máximo)
=
365.8
IRT
(Promedio) =
141.4
4.3.2. Índice de Replección Total por clase
Los IRT por clase difieren en cuanto a promedios así como en desviación
estándar como se aprecia en el cuadro N° 06.
6
CUADRO Nº 06
ÍNDICE DE REPLECCIÓN TOTAL DE Trichomycterus dispar
“MAURI” EN EL LAGO TITICACA 1995.
Rango de
Longitud en cm
12.0 – 13.9
14.0 – 15.9
16.0 – 17.9
18.0 – 19.9
20.0 – 21.9
∑
ц
D.S
IRT Mínimo
IRTµ
IRT Máximo
81.6
29.9
41.1
25.4
60.5
246.4
49.3
22.03
566.0
348.6
333.0
332.8
269.3
1848.7
369.7
101.9
323.6
189.2
197.0
179.1
168.4
1047.5
209.5
57.6
FUENTE: Angles, 1996
4.3.3. Índice de Significación Relativa (ISR)
Se hace uso de este índice con el fin de apreciar el grado de preferencia en
su alimentación por el pez en estudio obteniendo lo que se aprecia en el
cuadro N° 07.
CUADRO Nº 07
ÍNDICE DE SIGNIFICANCIA RELATIVA (ISR)
COMPONENTE
ALIMENTICIO
Hyalella
chironomidos (larvas)
Helobdella
odonatos (ninfa)
chironomidos (pupa)
ovas
T O T A L
NPA
F
NCP
P
%P
83 100 1,475-17.9 6,104.90 73.54
14 17
405-4.9 1220-36 14.70
5
6
42-0.5
160-7
1.93
5
6
28-0.3
42-6
1.10
3
4
8-0.1
60-9
0.72
5
6
101-1.2 665-44
8.01
100%
Fx % P
7354
249.9
11.58
6.6
2.88
48.06
7,673.02
I. S. R.
95.84
3.26
0.15
0.08
0.04
0.63
100%
FUENTE: Angles, 1996
ISR
= Índice de significación relativa.
N P A = Número de peces con determinado alimento
F
= Frecuencia
N C P = Número de componentes alimentarios por pez.
%P
= Suma de porcentaje por peso de cada componente alimenticio.
Fx % P = Porcentaje por peso de cada componente
4.4.
Número de organismos de contenido estomacal respecto al rango de
longitudes para la época intermedia
Para el número de organismos del contenido estomacal respecto al rango de
longitudes para la época intermedia se estructuró el cuadro N° 08 donde se
muestra que el rango de longitud 12.6 – 13.9 cm., en dicha época no se
encontró ningún ejemplar.
Para las tallas 14.0 – 15.9 cm. encontró el siguiente número de organismos:
109 individuos de Hyalella, 14 larvas de chironómidos, 11 individuos de
Helobdella, 10 ninfas de odonatos en total 144 organismos. Para las tallas
16.0 – 17.9 se puede ver que hay una variedad de alimentos o Items donde
se encontró: 370 individuos de Hyalella, 208 larvas de chironómidos, 08
ninfas de odonatos, 6 pupa de chironómidos y 10 ovas de peces teniendo un
total de 602 organismos. En este rango se nota que hay más consumo de
organismos.
7
Para las tallas de 18.0 – 19.9 se hallaron 268 individuos de Hyalella y 130
larvas de chironómidos, haciendo un total de 398 organismos y por último
para las tallas de 20.0 – 21.9 de 86 individuos de Hyalella, 40 larvas de
chironómidos, 10 ninfas de odonatos y 2 ovas obteniendo un total de 136
organismos.
Los promedios finales para la época intermedia son los siguientes: 64.97% de
Hyalella, 30.58% larvas de chironómidos, 0.86% de Helobdella, 2.18% ninfas
de odonatos, 0.47% pupas de chironómidos y un 0.94% ovas de peces.
CUADRO Nº 08
NUMERO DE ORGANISMOS DE CONTENIDO ESTOMACAL RESPECTO AL
RANGO DE LONGITUDES PARA LA EPOCA INTERMEDIA DE Trichomycterus
dispar “MAURI” 1994 – 1995
TOTAL
2
X
%
-
-
-
14
208
130
40
11
0
0
0
10
8
0
10
0
6
0
0
833
392
228001.0 6111960.0
64.97
30.58
11
121.0
0.8
28
264.0
2.18
6
36
0.47
0
10
0
2
TOTAL
-
ovas
(peces)
109
370
268
86
chironomido
(pupa)
Helobdella
-
odonato
(ninfa)
chironomido
(larvas)
12-13.9
14-15.9
16-17.9
18-19.9
20-21.9
Hyalella
RANGO DE
LONGITUD
cm.
O RG ANIS M OS
1444
602
398
138
12
1,282
104.0 2220486.0
0.94
100.0
FUENTE: Angles, 1996
4.5.
Número de organismos del contenido estomacal respecto al rango de
longitudes para la época de lluvia.
Para el número de organismos del contenido estomacal respecto al rango de
longitud para la época de lluvia se estructuró el cuadro N° 09
Para el rango de longitud 12.0 – 13.9 se hallaron 338 organismos de Hyalella,
10 larvas de chironómidos, 4 ovas; haciendo un total de 352 componentes.
Para el rango 14.0 – 15.9, se encontraron 136 organismos de Hyalella, 13
organismos de Helobdella y 55 ovas con un total de 204 componentes.
Para el rango de 16.0 – 17.9 se encontraron 40 individuos de Hyalella, 3
larvas de chironómidos y una pupa de chironómidos, y 18 individuos de
Helobdella, con un total de 62 organismos.
Para el rango de 18.0 – 19.9, se contaron 128 organismos de Hyalella, 01
pupas de chironómidos y 30 ovas de peces teniendo un total de 159
organismos, finalmente para el rango de 20.0 – 21.9, no fueron registrados en
la época de estudio.
8
Para esta época se obtuvieron los siguientes promedios finales: 82.62 % de
Hyalella, 1.67% larvas de chironómidos 3.99% Helobdella, 0.27% pupas de
chironómidos y 11.45% ovas de peces.
Haciendo comparaciones de estas épocas, podemos observar claramente
que en la época lluviosa el 82.62% del contenido estomacal esta compuesto
de la Hyalella, y el 64% del mismo organismo en la época intermedia.
Pudiendo afirmar en la época de lluvia este anfípodo es muy importante en su
alimentación; con relación a larvas de chironómidos ocurre lo contrario el
30.58% que corresponde a la época intermedia y el 1.67% la época de lluvia,
seguido de ovas de peces para la época de lluvia con 11.45% con relación
intermedia que solo se cuenta con 0,94% con relación a los demás
organismos, se puede decir que como son organismos esporádicos no son
tan importantes para su dieta, como es la Hyalella.
En el presente trabajo también se pudo verificar en cuanto a la Hyalella que
el consumo es mayor en la época intermedia con relación a la época de lluvia,
lo cuál Montoya menciona que en segundo lugar de consumo están las ovas
de peces, con relación a este trabajo el segundo organismo que en
importancia alimentaría son las larvas de chironómidos.
CUADRO Nº 09
NUMERO DE ORGANISMOS DEL CONTENIDO ESTOMACAL RESPECTO
AL RANGO DE LONGITUDES PARA LA ÉPOCA DE LLUVIA DE
Trichomycterus dispar “MAURI” 1994 – 1995
TOTAL
ovas
(peces)
chironomido
(pupa)
odonato
(ninfa)
Helobdella
chironomido
(larvas)
Hyalella
RANGO DE
LONGITUD
cm.
O R G A N I S M O S
12-13.9
14-15.9
16-17.9
18-19.9
20-21.9
338
136
40
128
-
10
0
3
0
-
0
13
18
0
-
0
0
0
0
-
0
0
1
1
-
4
55
0
30
-
352
264
62
159
-
TOTAL
2
X
%
642
150724
82.62
13
109
1.67
31
492
3.99
0
0
0
2
4
0.27
89
3941
11.45
777.00
155331.00
100.00
FUENTE: Angles, 1996
El número de organismos presentes en el contenido estomacal en los
diferentes rangos de longitud para Trichomycterus dispar “mauri” son
diferentes para cada una de las tallas durante la época de lluvia.
9
4.6.
Relación de época, talla y volumen de los organismos del contenido
estomacal
Se conoce que no existe diferencia en el contenido estomacal en las épocas
de lluvia y seca, en cambio si existe diferencia en la preferencia de
alimentación de las diferentes tallas y el volumen de organismos.
4.7.
Contribución para el conocimiento de la comunidad ecológica para
establecer sus cadenas tróficas
El conocimiento del tipo de alimentación que se registra para las diferentes
tallas de “mauri”, permitirá afirmar en que nivel trófico se halla dentro de las
especies ícticas nativas en el lago Titicaca.
Si hacemos un recuento de la alimentación de las “truchas” (Bustamante
1974), indica que estos peces son carnívoros de tercer orden consumen los
peces “ispi” mientras que el “pejerrey” tiene una alimentación más
heterogénea (Choquehuanca 1980), en lo referente a las especies ícticas
nativas estas tienen mayor especialización ya que el “ispi” es aún
zooplanctófago y los “carachis” combinan su alimentación con anfípodos y
moluscos (Azabache 1984)
Para el Trichomycterus dispar “mauri” las longitudes de 12.0 – 13.9 cm., su
alimentación principal es de Hyalella con un 96.03% larvas de chironómidos
2.84% , y ovas de peces en 1.13% .
Para las longitudes de 14.0 - 15.9 cm, en este rango su dieta es variada pero
como siempre su principal alimento es Hyalella en un 68.43% , ovas de
peces 15.36% , Helobdella 6.61% larvas de chironómidos 3.92% ninfas de
odonatos, y pupas de chironómidos en un 22.79%.
Para las longitudes de 16.00 – 17.9 cm, presenta una dieta variada, Hyalella
en un 59.54%, seguido de larvas de chironómidos 33.42%, Helobdella 2.63%
ovas de peces 1.46%, ninfas de odonatos 1.17% y 0.88% de pupas
chironomidos.
Para las longitudes de 18.0 – 19.9 cm, su dieta en cuanto a preferencias
aumenta, 71.22% de Hyalella, larvas de chironómidos 23.38% y ovas de
peces 5.4%.
Entre las longitudes 20.0 – 21.9 cm, su alimentación está conformada por
70.64% ninfas de odonatos y 1.45% ovas de peces.
V .- HABITAT
AYALA (1982), manifiesta que el Trichomycterus dispar “mauri” tiene hábitos
bentónicos en profundidades de 0 a 20 m, con fondos cenagosos o terrosos con
abundante vegetación acuática sumergida, prefiriendo fondos arenosos,
formados en su mayoría por cantos rodados; además elige habitar aguas
tranquilas, sin mucha corriente buscando albergarse entre plantas acuáticas o
algún otro obstáculo como medio de defensa contra los predadores y en casos
muy especiales realizan el fenómeno del mimetismo.
10
VI.- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA
CANALES (1982), manifiesta que la distribución normal del "mauri" esta
circunscrita a ciertos grupos de agua del Altiplano Peruano Boliviano, pues no se
tiene conocimiento de su existencia fuera de estos países, se podría decir que
tiene una distribución estenocora; requiriendo por tal razón un tratamiento
especial para asegurar la propagación y supervivencia de la especie.
Es indudable que los hábitos de reproducción son determinantes lo que pueda
ocasionar un consiguiente período de extinción.
AYALA (1983), dice que la pesquería de Trichomycterus sp "mauri" es amplia
en su distribución, comprendiendo lagunas de Arapa, Saracocha, Lagunillas y el
lago Titicaca, siendo en esta última la de mayor disponibilidad en la zona Norte,
Sur y bahía de Puno. Dentro de la pesquería del Altiplano Peruano representa el
30% del volumen, la distribución territorial, abarca especialmente la península de
Chucuito, islas de los Uros, y siendo la época de mayor extracción las de lluvia,
cuando salen a buscar zonas de desove.
11
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – PUNO
SINOPSIS BIOLÓGICA
DE
Orestias luteus
“carachi amarillo”
Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 02
Noviembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 - PERÚ
0
I. ASPECTOS GENERALES
1.1.
Taxonomia de Orestias luteus “carachi amarillo”
Los estudios y revisiones más importantes que se han realizado sobre el
Género
son: CUVIER et VALENCIENNES, 1846; GARMAN, 1895;
EIGEMANN et ALLEN (1942); TCHERNAVIN (1944); LAUZANNE (1982) y
PARENTI (1984).
CUADRO Nº 01
Orestias
luteus “CARACHI AMARILLO”
TAXONOMÍA DE
ORDEN
FAMILIA
GÉNERO ESPECIE
NOMBRE COMUN
Cyprinodontiformes Ciprinodontidae
Orestias O. luteus
carachi amarillo, punkuru
awicha, punku, punkuku
k’ara wasa, khenu, punkunti
Fuente: Sarmiento et. al., 1987
La primera colección de Orestias, fue realizada por PENTLAND en los años
30 del siglo XIX, fue descrito por VALENCIENNES quien estableció un
Género Orestias con diez especies, en 1839.
Según TCHERNAVIN (1944) las Orestias luteus “carachi amarillo” lo clasifica
en el grupo 2 y para LAUZANNE (1982) lo clasifica en el grupo 1 según el
cuadro siguiente:
CUADRO Nº 02
COMPARACIÓN TAXONÓMICA DE Orestias Luteus “CARACHI AMARILO” POR
INVESTIGADORES
TCHERNAVIN
LAUZANNE
Grupo
Especies
Grupo
Especie
2
Orestias luteus
1
Orestias luteus
Fuente: Sarmiento et. al., 1987
1.2.
Clasificación de Lauzanne, 1982
LAUZANNE (1982), clasifica a las Orestias en grupos. Siendo para el
“carachi amarillo, el grupo 01 que comprende a: Orestias luteus, Orestias
albus y Orestias jussiei, sin embargo PARENTI (1984) clasifica a las
Orestias en 04 complejos, siendo para el “carachi amarillo” el complejo
agassii.
El holotipo (MNHN A. 9608), una hembra adulta, de 126 mm LS., colectada
por M. PENTLAND, aproximadamente en (1833), del lago Titicaca.
1
1.3.
Clave para “carachi amarillo”, según Lauzanne, 1982 citado por
Sarmiento et al., 1987.
TCHERNAVIN (1944) y LAUZANNE (1982) han propuesto clasificar
taxonomicamente a Orestias luteus “carachi amarillo”, tal como sigue:
1.4.
1.
I/H
I/A
48%
11% ---------------------------------------------------- 9
9
Hueso faringeo cordiforme
dientes faringeos, fuertes y cilíndricos ---------------- 10
10
B/A: 31 - 36%
N/A: 25 – 34%
Encima de la cabeza muy granulosas
Vientre amarillo vivo
------------------ Orestias luteus
I/A: Altura del pedúnculo cuadal en relación a la longitud estándar
I/H: Altura del pedúnculo cuadal en relación a su longitud total
B/A: Largo de la cabeza en relación a la longitud estándar
N/A: Ancho de la cabeza en relación a la longitud estándar
Posición taxonómica
Según, TCHENAVIN (1944) citado por BRAVO (1991):
PHYLLUM
: Chordata.
SUB PHYLLUM
: Vertebrata.
SUPERCLASE
: Pisces.
CLASE
: Osteichthyes.
SUB CLASE
: Actinopterygii.
SUPER ORDEN :Teleostei.
ORDEN
: Ciprinodontiformes.
FAMILIA
: Ciprinodontidae.
SUBFAMILIA
:Cyprinodontinae.
GÉNERO
: Orestias.
ESPECIE
: Orestias luteus.
N. VULGAR
: “carachi amarillo”
“punku”
II.- MORFOLOGÍA Y ANATOMÍA
2.1.
Descripción morfológica de Orestias luteus “carachi amarillo”
THERNAVIN (1944) describe a Orestias luteus “carachi amarillo”, que es de
color amarillo, de cuerpo alargado protegido por escamas, de radios
circulares (ctenoidea); pedúnculo caudal que termina en lóbulos iguales
(homocerca), con puntuaciones negras y redondeadas.
La forma de la cabeza es triangular de color negruzco, posee dos ojos,
presentando además, boca protráctil con mandíbula. Tiene dos aletas
pectorales, una dorsal posterior, una anal y una caudal, la aleta anal y dorsal
se encuentran a la misma altura. Internamente el aparato digestivo se inicia
en la boca con pre maxilares y maxilar protráctil, provisto de dientes cortos y
2
pequeños de un número escaso, posee una laringe pequeña y lisa a los lados
de la cavidad buco – faringeo donde se encuentran las branquias.
A partir del esófago existe un estómago, así como, el hígado voluminoso y de
color rojizo, además, aquí se encuentra la vesícula biliar casi esférica de color
verde amarillento y el corazón pequeñísimo se halla situado cerca de la
cavidad opercular. El macho presenta un testículo de forma alargada y se
comunica con el orificio genital por medio de un conducto de igual manera en
la hembra que presente un solo ovario.
Las Orestias luteus “carachi amarillo” presentan tallas superiores al rango de
148 – 163 mm. Existe una ausencia total de machos, posiblemente se deba a
que éstos no alcanzan dichas tallas o sean muy escasas, ya que en las tallas
comprendidas entre 123 – 133 mm. existen proporciones casi iguales de
machos respecto a hembras.
CRUZ (1984) manifiesta que la longitud promedio de 86 mm el 50% de la
población, alcanzan su primer desove a los 112 mm el 100% de los individuos
han desovado por primera vez.
2.2.
CARACTERÍSTICAS BIOMORFOLÓGICAS
♦ Presenta el cuerpo comprimido lateralmente.
♦ Dientes de arcos branquiales simples.
♦ Ojos pequeños cuyas órbitas no sobresalen de la corona, siendo este casi
convexo.
♦ Cabeza ligeramente redondeada.
♦ Boca protráctil, la comisura desciende hacia un nivel por debajo de la
órbita.
♦ Dientes romos.
♦ Escamas de la parte anterior con granulaciones, grandes y notorias al
tacto.
♦ Presenta las siguientes aletas, una dorsal, una anal, aletas pectorales,
aletas ventrales o pelvianas ausentes, aleta anal presente, aleta caudal
típicamente homocerca con el borde convexo.
♦ Otras características merísticas importantes en el número de radios en las
aletas así tenemos:
Ateta pectoral
Aleta dorsal
Aleta anal
Aleta caudal
•
•
P ................ 21
D ................ 14
A ................ 16
C ................ 28
Internamente el aparato digestivo se inicia en la boca protráctil con
premaxilares y maxilares, previstas de dientes de arcos branquiales
simples.
En la cavidad buco faringea se encuentra la lengua pequeña y lisa, a los
lados de esta se encuentra las branquias.
No se encuentra un estómago propiamente dicho, sino que mas bien le
sigue una región mas dilatada del intestino que termina en un ciego
pilórico con una curvatura poco distinguible, que se continúa con el
intestino, de mayor longitud que la cavidad celómica y que se repliega en
el interior.
3
•
•
•
•
•
2.3.
Esto es posible que la parte final del intestino se halla provista de una
válvula intestinal que se presume tendría una doble función la de retornar
alimentos, para prolongar la digestión y para eliminar los restos de la
alimentación.
El Hígado voluminoso y de color rojizo se halla situado en la parte anterior
de la cavidad celómica, en el hígado se encuentra la vesícula biliar casi
esférica y de color amarillento.
El corazón pequeño se halla situado cerca de la cavidad y por ende cerca
a las branquias.
Las gónadas se hallan situadas en la cavidad abdominal cerca de la
abertura anal.
La coloración del cuerpo es gris amarillenta por la parte dorsal algunos
oscuros y la abdominal amarillo cremoso o amarillo canario.
Descripción histológica en ciclos de madurez sexual
CANCCAPA y CAZORLA (1990) indican que la madurez sexual para
Orestias luteus”carachi amarillo” es como sigue:
Para hembras
-
Estadio I.- Predominan los oogonios y los oocitos de primer orden. La
pared de ovario aunque es delgada, en su mayor parte presenta zonas en
las que se observa ligeramente engrasadas. Se aprecian espacios entre
los lóbulos de tejido conectivo entre los lobulillos más o menos
abundantes.
-
Estadio II.- Se aprecian oocitos II, así como algunos óvulos maduros,
aunque se puede observar en los lobulillos oogonios y oocitos I en buen
porcentaje. En este estadio se puede observar algunos folículos post –
ovulatorios y folículos atrésicos, lo que indicaría que el espécimen ha
desovado anteriormente y está en proceso de recuperación.
-
Estadio III.- Hay predominancia de óvulos maduros y oocitos II, El tejido
conectivo se redujo, desplazado por los óvulos. En menor porcentaje se
encuentran los oogonios y oocitos I. Se pueden encontrar algunos folículos
atrésicos.
-
Estadio IV.- Predominan los óvulos maduros, pero se observan oocitos en
todos los estadios, la pared del ovario se encuentra bastante adelgazada y
el tejido conectivo parece desaparecer entre los óvulos maduros.
-
Estadio V.- Predominancia de los folículos post – ovulatorios y los folículos
atrésicos, pero se pueden observar oocitos en todos los estadios de
madurez.
Para machos
-
Estadio I.- Podría denominarse como estadío de las células germinales por
la predominancia de las mismas en los testes, al corte testículo presenta
4
ya una forma ligeramente de presa casi triangular; existe bastante tejido
conectivo.
-
Estadio II.- Las células germinales dan origen a los espermatogonios,
éstas se ubican en la base de los lóbulos, y por división dan origen a los
espermatocitos I y II, éstas se ubican en la luz del lóbulo. Los
espermatogonios y espermatocitos primarios se aprecian en cistos de la
base de los lóbulos. También se pueden encontrar células germinales.
-
Estadio III.- Los espermatocitos secundarios dan lugar a los
espermatocitos que se ubican en el centro de los lóbulos encontrándose
espermatocitos II en cistos en la base de los lóbulos. Asimismo pueden
encontrarse espermatocitos I y enpermatogonias e incluso células
germinales primarias.
-
Estadio IV.- Se forman los espermatozoides a partir de los espermátides,
los espermatozoides se ubican a la luz de cada lóbulo, por donde van a
trasladarse hasta llegar por intermedio de los conductos al exterior.
-
Estadio V.- Presencia de lóbulos seminíferos vacíos en predominancia,
observándose también espermatocitos en todos los órdenes.
2.4. ESTUDIO MICROSCÓPICO
2.4.1. Estructura y características microscópicas del testículo
GALVEZ (1984) indica que la estructura y características microscópicas del
testículo, son como siguen.
En la observación microscópica (4X), de las láminas histológicas, se aprecian
dos zonas notorias:
2.4.1.1.
Zona periférica o corteza
Donde se observan abundantes túbulos seminíferos con numerosas
células germinales, que representan el parénquima testicular, que están
separados por escasa cantidad de tejido conectivo. Los túbulos
seminíferos se originan de la porción superficial a manera de sacos
ciegos, teniendo disposición radial, dirigiéndose hacia el interior del órgano
y uniéndose unos con otros en la zona central.
2.4.1.2.
Zona central o médula
Tiene apariencia clara y está formada por tabiques de tejido conectivo
denso, que circunscribe a los conductos vasculares y conductos
seminíferos, proyectándose hasta la cápsula de manera laxa.
A) Estroma
La cápsula y tabiques constituyen el estroma, que es un armazón de
soporte formado por tejido conectivo, observándose de color verde con
la coloración de tricrómica de Masson, de rosado con Van Giesson, y
rojo con Hematoxilina Eosina.
5
B) Cápsula
La cápsula en el testículo del “carachi amarillo”, es una capa que rodea
en toda su extensión al testículo. Observado en cortes transversales y
longitudinales, la cápsula esta formada por una membrana serosa y tejido
conectivo que la envuelve en toda su amplitud proyectándose al interior
de las cisuras, para formar pequeños lobulillos superficiales.
C) Capa mesotelial
La capa mesotelial está formada por una membrana serosa, delgada,
constituida por células mesoteliales aplanadas cuyos núcleos son
alargados, aplanados algo oscuros y adistanciados, que corresponden
al peritoneo visceral del abdomen.
D) Capa conjuntiva
Se encuentra por debajo del epitelio de revestimiento visceral, fina y
delgada formada por tejido conectivo laxo, que contiene capilares
sanguíneos.
Con la técnica de tricrómica de Masson, se observa de color verde.
E) Tabiques
Los tabiques se proyectan desde la porción profunda de la cápsula,
hacia el interior del órgano, en forma de pequeños haces laxos de
tejido conectivo que separan a los túbulos seminíferos. A medida que
se proyectan al interior del órgano se van haciendo paulatinamente
más densos, constituyendo tabiques que separan y envuelven
conductos correspondientes a vasos sanguíneos y seminales.
El tejido conjuntivo se condensa hacia el interior del testículo, similar a
la anchoveta, como una masa de estroma que recorre el interior, estos
tabiques se adosan a la cápsula por su pared interna formando multitud
de septos, donde se acumulan y maduran los espermatocitos que
canalizan hacia conductos testiculares, similar a lo descrito en el
presente trabajo.
El tejido conectivo laxo que se observa hacia la superficie testicular,
estaría relacionado a la capilarización de los vasos sanguíneos para
irrigar con mayor eficiencia y brindar el aporte nutritivo a los túbulos
seminíferos; mientras que el tejido conectivo denso estaría localizado
en la zona central del testículo, formando trabéculas con el objeto de
constituir el sistema de sostén de la parte parenquimatosa.
F) Parénquima
Se llama parénquima, a las células conformantes del túbulo seminífero
que tienen como función primordial la de generar los espermatozoides.
6
G) Túbulos seminíferos
Los túbulos seminíferos presentan tres zonas bien definidas, por la
presencia de células germinales en su lumen, con características
morfológicas y tintoreales propias.
2.4.1.3.
Zona superficial
En esta zona los túbulos se originan de sacos ciegos de forma esférica y
apariencia folicular, cuya luz ligeramente amplia repleta de células
grandes dispuestas a manera de cordones.
2.4.1.4.
Zona intermedia
Es la continuación de la anterior; es una zona estrecha en cuyo lumen se
encuentran células de menor tamaño que las anteriores pero con
características similares.
2.4.1.5.
Zona profunda
Es una zona estrecha, en cuyas paredes se incrementa las células de
Sértoli. El lumen contiene células intensamente coloreadas de forma
arriñonada, que vienen a ser los espermatozoides, su pared es delgada y
formada por tejido conectivo intertubular se amplia y se hace más laxo y
contiene grupos de células de núcleos esféricos oscuros y citoplasma de
aspecto granuloso y basófilo que corresponden a las células intersticiales
de Leydig. Existiendo en el límite de este túbulo un cambio a epitelio
simple que es el inicio de los conductos intratesticulares.
2.4.1.6.
Estructura de los túbulos seminíferos
En las diversas zonas, presentan las siguientes estructuras de afuera
hacia dentro.
A) Túnica propia
Constituida de tejido conjuntivo laxo, con pocas células conjuntivas.
B) Membrana basal
Fina capa acelular , apenas notorio con la técnica de PAS.
C) Capa interna
Revestida por dos tipos de células: germinativas y de sostén. Las
primeras conformadas por los espermatogonios que son células
madres, están adosados a la membrana basal, presentan un núcleo
esférico grande con cromatina condensada, exceso citoplasma
acidófilo que lo rodea a manera de un halo, todas con las mismas
características estructurales y tintoreales
7
Los espermatocitos I y II, están localizados en el centro del túbulo de la
porción superficial, donde se aprecian los procesos de mitosis, tienen
características tintoreales, diferenciándose por el tamaño del núcleo
con las espermatogonias.
Las espermátides se encuentran en una porción más profunda del
túbulo, son células más pequeñas que las anteriores, núcleos esféricos
coloreados un tanto mayor que los espermatocitos I y II.
Los espermatozoides, se encuentran en la porción mucho más
profunda del túbulo, con células intensamente coloreadas cuyos
núcleos tiene forma de herraje , sus flagelos son difícilmente
observables con las técnicas usadas.
Las células de Sertoli o de sostén se presentan en escasa cantidad,
uno a tres en cada túbulo caracterizados por un núcleo basilar
vesiculoso claro y de cromatina laxa, algo pálidos, núcleo grande y
abundante citoplasma, desplazados un tanto a la periferia.
2.4.1.7.
Tejido intersticial
Está formado por el tejido conectivo intertubular, es sumamente escaso en
la superficie en donde se presentan a manera de tabiques entre los
túbulos seminíferos, a medida que se proyectan hacia el interior aumentan
de cantidad y se unen unos con otros para contener conductillo
seminíferos mayores; hacia el centro se hacen bien manifiestos y forman
una red alrededor de un conducto central, en este tejido conectivo se
encuentran vasos sanguíneos, siendo las células intersticiales de Leydig
más notorios en el centro que en la periferia.
Células intersticiales
Denominadas células de Leydig, son escasos a nivel de la zona externa
del testículo, se encuentran formando grupos de células sumamente
vascularizadas entre los espacios conectivos intertubulares, tiene forma
poliédrica irregular, con núcleo esférico oscuro y citoplasma de aspecto
granuloso y basófilo que contiene cromatina condensada periféricamente.
Conductos intertesticulares
En el testículo del “carachi amarillo” se presentan dos tipos de conductos
intertesticulares.
Conductos periféricos
Son numerosos y se disponen formando una red intensa alrededor del
conjunto central, tienen distribución radial. Estructuralmente están
constituidos por un revestimiento interno de células planas que están
envueltas a un manojo de haces de fibras colágenas y musculares lisas.
Están acompañadas de vasos sanguíneos de pequeño calibre, que hacia
la zona central corresponden al tipo de arteriolas y hacia la zona
8
superficial se capilarizan, en su luz contienen abundante cantidad de
espermatozoides.
Conducto central
Es un conducto de luz amplia algo irregular que se proyecta a lo largo del
testículo, en su trayecto va recogiendo tributarios de conductos periféricos;
estructuralmente está constituido por las siguientes capas. Un epitelio, de
revestimiento constituido de células aplanadas.
Una parte notoria de tejido conectivo denso entremezclada con haces de
fibras musculares lisas, en cuya porción periférica llegan tabiques de tejido
conjuntivo entremezclados con fibras musculares. Este conducto se
continua con el conducto extratesticular que llevan los espermatozoides
hacia el interior.
El lumen se amplía notoriamente en la zona central, lo que permite el
almacenamiento y la conducción de espermatozoides, también
encontramos un ligero incremento de músculo liso, que posiblemente
favorecerá
La expulsión de los espermatozoides por la contracción que este tejido
realiza.
3.
3.1.
ANATOMÍA
Anatomía del tubo digestivo
3.1.1. La boca
La boca es un ensanchamiento anterior del tubo digestivo con ciertas
estructuras, sus paredes están reforzadas por un cierto número de piezas
óseas aplanadas, constituyendo sectores o regiones tales como la bóveda del
paladar, la vomeriana y la faríngea.
Por sus adaptaciones y modalidad de captura de las presas dependen del
ancho de boca, la profundidad de la boca se relaciona con el tamaño de la
presa.
La boca y los labios son ricos en terminaciones nerviosas sensitivas, variando
enormemente según la implantación de los dientes, su morfología y número.
La cavidad bucal está tapizada por un epitelio y enlazada a los huesos ó a los
músculos por una dermis.
Los dientes de los peces óseos se implantan sobre los huesos premaxilares
(mandíbula superior) y dentarios (mandíbula inferior).
En la boca encontramos la lengua, que es un órgano de forma diversa,
prácticamente inmóvil. Unas veces de superficie lisa, otras veces de superficie
granulosa o rugosa y a veces posee dientes. Su rol sería el de servir de piso a
la cavidad bucal y contribuir a aplastar ligeramente el alimento voluminoso y
algunas veces para colaborar en el proceso de englutirlo.
La boca constituye, el comienzo del aparato digestivo. Está situada al extremo
del hocico.
9
3.1.2. Las branquiespinas
Son formaciones diversas en tamaño y forma, nacen en los arcos branquiales
inmediatamente antes de la faringe.
Ellas pueden presentar formas de tubérculos espinosos de conos delgados,
de largas espinas e incluso de agujas o filamentos muy finos y ocupan en
algunos casos, buena parte de la cavidad bucal.
El rol de estos pequeños órganos tiene una importante relación con los
procesos de alimentación: filtración en unos casos, masticación o presión de
alimentos en otros.
El rol de los branquiespinas en peces que se alimentan de zooplancton,
especialmente pequeños crustáceos, el camino seguido por el alimento
ingerido en los diferentes compartimientos digestivos.
Hay una primera comprensión del alimento al nivel de almohadillas faríngeasbranquioespinas, luego deglutición hasta el estómago, enseguida una
regurgitación u “ruminación” al mismo nivel faringe-branquio espinas y,
finalmente, regresa al estómago y continuación normal del proceso digestivo.
3.1.3. La faringe
La faringe es por lo general un sector anatómico poco diferenciado, que en
realidad corresponde a la parte posterior de la boca, y menos dilatada en ella.
Muchas veces se le reconoce por la presencia de los dientes faríngeos
(almohadillas faringeas o placas masticatrices), que se presentan en la parte
posterior de este vestíbulo.
Las áreas de implantación de los dientes faríngeos inferiores son por lo
general algo mas reducidas y aplanadas que las superiores. Por lo general
estos dientes son algo curvos, móviles, generalmente caniniformes, de
aspecto quitinoso y tamaño reducido. Su distribución dentro del área de
implantaciones es bastante irregular
3.1.4. Esófago
El esófago casi siempre es corto, recto y muy musculoso. Se inicia en la boca
y termina en el cardias del estómago.
-
Es un sector más o menos tubular que une la faringe con el estómago.
El esófago pone en comunicación la cavidad bucal con el estómago; es
corto, recto y con paredes muy musculosas que permiten la dilatación en
alto grado.
Es raro encontrar que el esófago tenga otra función además de transporte
de alimento.
El esófago es tan dilatable que puede acomodar en su interior cualquier
cosa que el pez haya tomado con la boca.
El esófago es un tubo generalmente corto, con paredes gruesas y difícil de
reconocer externamente. Cuando es menos dilatado que el estómago y,
sobre todo, cuando se observa los pliegues internos, normalmente muy
evidentes y paralelos en dirección longitudinal, puede haber certeza de
haberlo localizado. En todo caso, no hay mayores variaciones de especie
a especie.
10
3.1.5. Intestino
Entre el estómago y el intestino suele existir un píloro; es un estrechamiento
generalmente de tipo muscular a la entrada del intestino.
El intestino se le subdivide en intestino medio e intestino posterior, pero esta
delimitación es a menudo incierta o no existe en teleósteos.
El límite entre los dos segmentos viene marcado por una o varias
digitaciones, los ciegos; pero éstos no designan quizá siempre la misma línea
de demarcación.
El paso del intestino medio al intestino posterior puede estar también indicado
por un espesamiento de la capa muscular, una válvula.
Cuando se manifiesta la diferencia de diámetro, el intestino anterior puede
oponerse como intestino delgado al intestino posterior o intestino grueso.
El intestino posterior (grueso) de los peces es corto, rectilíneo y más estrecho
que el intestino medio (delgado).
El intestino de los peces, presenta una gran variabilidad en forma, longitud y
estructura, dependiendo estas diferencias principalmente de la especie y del
régimen alimentario del pez.
En peces netamente carnívoros tienen por lo general un intestino simple, más
o menos derecho y corto; en cambio el intestino de los herbívoros se
presentan más bien algo replegados con curvas y es de gran longitud.
El intestino de los peces es más o menos largo, según el tipo de régimen
alimenticio, se presenta como un simple tubo sin dilatación posterior para
formar después el colon. Este puede ser recto, signoide o espiral, todo ello en
función de la forma de la cavidad abdominal (20).
El intestino de los peces que se alimentan de vegetales alcanza una longitud
que sobrepasa con mucho la del propio cuerpo. La mucosa del intestino
delgado muestra pliegues longitudinales.
Los conductos pancreáticos y colédoco hepático, para aquellos peces que
carecen de vesícula biliar, desembocan en el primer tramo del intestino.
También se encuentran en los apéndices pilóricos glandulares, pequeños
sacos ciegos. Su número varía mucho de una especie a otra.
En el interior del intestino puede haber pliegues diversos de orientación
longitudinal u oblicua, a veces trasversal, otras en zig-zag o semejando
pequeñas papilas. El intestino es rara vez rectilinio, pues en general tiene
circunvoluciones más o menos numerosas, más o menos largas,
dependiendo del espacio disponible en la cavidad abdominal.
3.1.6. Recto
La abertura anal tiene su asiento en el tercio terminal del cuerpo, pero a
veces puede situarse en posición muy adelantada, bien distante de la región
caudal.
11
3.2.
Glándulas anexas al tubo digestivo
A) Hígado
-
Es grueso, voluminoso y rico en grasa. De la unión de los conductos
hepáticos y císticos parte el conducto biliar que desemboca en el
intestino.
En caso de Orestias agassii “carachi negro”, el hígado es prominente,
alargado y aplanado; localizado lateralmente hacia el lado izquierdo.
El hígado de los teleósteos tiene considerable volumen en relación al
cuerpo. Es de color marrón rojizo en las especies libres carnívoras y
marrón claro en las especies herbívoras.
La morfología comparada del hígado casi no merece comentario,
puede ser simple como en muchos teleósteos.
3.3 Histología del tubo digestivo y órganos anexos
3.3.1 Cavidad bucal
De los peces el epitelio es multiestratificada semejante a la epidermis.
También es mencionado para “ispi” con un epitelio estratificado plano no
queratinizado. Además se menciona también de un epitelio relativamente
bajo, que contiene células mucosas ciliadas. Por debajo del epitelio se
encuentra una sub mucosa de tejido conectivo laxo y una capa muscular
formada por fibras estriadas longitudinales.
En la casi totalidad de los peces el epitelio no contiene más que células
sobretodo mucosas y serosas.
3.3.2 Esófago
Se pueden encontrar invaginaciones denominadas papilas que aumentan la
superficie interna, estos amplios pliegues longitudinales facilitan la ingestión
de las partículas alimenticias y en algunas especies tropicales existen
divertículos, ciegos, sacos esofágicos o dientes esofágicos. Estos repliegues
son bastante limitados y que se presentan en el esfinter cardial.
En el “ispi” en su tercio medio del esófago el lumen es amplio donde los
pliegues se proyectan.
A. Mucosa.- Su epitelio formada por un pluri estratificado ciliado para
ciclóstomos y ciertos teleósteos, en otras especies con presencia de
células mucosas y en forma general, presentan células cúbicas a veces
ligeramente alargadas y formando rara vez un tejido pseudo estratificado
pero en el caso del “ispi” presenta una transición de estratificado plano a
estratificado cilíndrico.
B. Sub mucosa.- Para diferentes especies de aspecto claro y bien
desarrollado con sus regiones de tejido laxo y denso la existencia de
haces de fibras musculares longitudinales reunidos en pequeños grupos
son considerados como una muscularis mucosa.
C. Túnica muscular .- Está formada solo por fibras estriadas circulares.
D. Serosa.- Es una capa muy delgada limitada externamente por un
mesotelio está formada por un tejido conjuntivo laxo en algunos vasos
sanguíneos y a veces se puede encontrar nódulos linfáticos.
12
3.3.3 Estómago
Para algunas especies el estómago es de tamaño reducido pero sus paredes
son gruesas y musculosas, el tejido interior también está reforzado con tejido
conectivo y la luz o lumen está muy reducido. Además se ha encontrado una
estructura histológica casi idéntica en la región cardial y fúndica .
A. La mucosa.- Está formada por una sucesión de pliegues que sobresalen
en la luz del órgano y que alternan con invaginaciones profundas que
constituyen las criptas estomacales.
El límite esófago y estómago está marcado típicamente por el brusco
reemplazamiento del epitelio pluri estratificado por un epitelio simple,
mucoso cilíndrico o prismático y por la aparición de células ó de glándulas
gástricas.
Las células cilíndricas están dispuestas en la región apical de los pliegues,
los otros tipos de elementos de esta región como son las células
caliciformes están dispuestas al nivel del cuello de las criptas.
Estudios citológicos de los peces afirman que en el estómago las
glándulas gástricas tienen un tipo celular único que llegan hasta la
muscularis mucosae, que se hallan en la base de los pliegues.
En el “ispi” no presenta contricciones correspondientes al cardias y al
píloro, la mucosa revestida por un epitelio estratificado cilíndrico ciliado
con células calisiformes escasas, células cilíndricas secretoras, no
secretoras y células basales.
Peces y anfibios no tienen más que un tipo de células gástricas con
glándulas acidófilas secretoras a la vez de ácido clorhídrico y de enzimas
ó de sus precursores.
B. La muscular.- La túnica muscular está exclusivamente formada por fibras
lisas.
3.3.4 El intestino
Histológicamente en un corte transversal del intestino se observa un número
de diferentes vellosidades.
A. Mucosa.- En la mucosa intestinal dentro de su epitelio se puede descubrir
dos tipos de células: unas, constituidas por un epitelio columnar ó cilíndrico
que tapiza todas las vellocidades y otras son células caliciformes,
dispersas entre las células del epitelio columnar. En otros se menciona
que el epitelio esta formado por un estratificado mucoso.
B. La sub mucosa.- Esta penetra en las vellosidades para separar las capas
epiteliales y forma una lámina propia observándose en estas fibras
conjuntivas fibrocitos capiliares sanguíneas y a veces nódulos linfáticos
además se menciona de un tejido conectivo elástico muy vascularizado,
cargada de células eosinófilas limitada por una capa densa que es
denominada muscularis mucosae. Pero los teleósteos carecen de
muscularis mucosae típica poseen a menudo un estrato muscular liso
subepitelial. Asimismo para peces pequeños como el “ispi” no presenta
muscularis mucosae.
13
C. La túnica muscular.- La constituyen fibras musculares lisas donde la capa
externa es longitudinal y la interna circular. Entre las dos capas
musculares se encuentra el plexo mioentérico ó Avervach, denominado
simplemente plexos nerviosos.
La túnica serosa no presenta características particulares salvo que son
menos importantes en el espesor de estas.
3.3.5 Recto
El recto tiene una pared muscular más gruesa que la del intestino, con una
túnica interna muy rica en glándulas mucosas y una enorme capacidad de
distensión.
3.3.6 Glándulas anexas
A. Hígado.- La histología del hígado de los peces difiere a la de los
mamíferos en que los hepatocitos tienen mucho menor tendencia de
dispersarse en cordones o lóbulos.
Histológicamente en los peces se puede notar una capa mesotelial que
recubre el órgano y un parénquima con pequeños canales, vénulas y
arteriolas de diverso tamaño y forma, también es estudiado bajo dos
estructuras básicas que es el estroma y parénquima, donde la primera está
constituida por la cápsula y el tejido conectivo intersticial además el
parénquima hepático representado por las células hepáticas presenta un
corte más ó menos poligonal, para el caso del “ispi” los cordones son
desordenados de células hepáticas de forma poliédrica. Los hepatocitos
tienen base ancha y ápice angosto que mira hacia el canalículo biliar a
menudo rodeado de 4-5 células Asimismo para otras especies son núcleos
pequeños y redondeados.
Los sinusoides se encuentran en menor número e irregularmente distribuido
dentro de los hepatocitos y están revestidos por células epiteliales con
núcleos muy prominentes.
En algunas especies se encuentra tejido pancreático mezclado con el
hepático pero guardando su independencia funcional.
B. Páncreas.- El tejido pancreático tiene una localización mucho más variable
que otras viseras abdominales se encuentra diseminado y los lugares
preferentes de su emplazamiento incluyen los islotes secretores dispersos,
entre las células adiposas de los sesos pilóricos del mesenterio, el
revestimiento capsular del baso la capa externa que rodea la vena porta
hepática.
IV. HISTOLOGÍA DEL APARATO REPRODUCTIVO EN Orestias luteus
“CARACHI AMARILLO”
4.1. En hembras
Los ovarios al igual que los testículos son órganos impares internos ambos
entre sí, encontrándose suspendida a ambos lados de la cavidad del cuerpo,
por un par de mesenterios denominados mesovarios. Estos se encuentran
típicamente situados por debajo de los riñones y la vejiga natatoria.
14
El tamaño y extensión que ocupa en la cavidad del cuerpo varía con el estado
de madurez de la hembra, cuando maduros los ovarios pueden ocupar el 70%
de la cavidad del cuerpo. El color varía del rosado pálido, en los juveniles, el
amarillo cuando están madurando y hasta anaranjado cuando están
desarrolladas.
La textura y aspecto varía desde flocular en los inmaduros, finalmente granular,
en los que están madurando, hasta el fuertemente granular cuanto son
plenamente desarrollados.
La parte del ovario está constituida con una capa externa de tejido conectivo,
una capa pigmentada y una capa muscular. Estas capas no están
distintamente separadas una de la otra.
4.2. En machos
El testículo de Orestias luteus “ carachi amarillo” son órganos impares
internos alargados, ligeramente aplanadas y suspendidos en la cavidad
celómica por mesenterios de la pared dorsal del abdomen, llamados
mesorquios.
El testículo es de color blanco cremoso y de consistencia fiable, presentan una
cara ventral y una dorsal, la cara dorsal de forma cóncava orientados hacia
arriba, estando muy estrecho contacto con la vejiga natatoria, y la cara ventral
ligeramente convexa, extremo, agudo de la parte anterior y posterior, separado
por un surco longitudinal y pliegue peritonial dorsal poco profesional dorsal
poco profundo. Presenta tres caras: dorsal, ventro lateral derecho y ventro
lateral izquierdo.
V. FECUNDIDAD EN Orestias luteus “CARACHI AMARILLO”
1. El Orestias luteus “carachi amarillo”, es de alta potencialidad reproductiva,
cuya moda más pronunciada es de 152 mm correspondiente al sexo hembra,
para el sexo macho la moda más acentuada es de 132 mm de marca clase.
2. La fecundidad regresionada (número de óvulos) es dependiente del peso
gonadal, peso del pez, finalmente de la longitud total del pez, cuyas
ecuaciones son:
Valores correspondientes a los meses de febrero y marzo.
Peso gonadal – fecundidad
: Y = 6.2 – 809.3x
Peso total – fecundidad
: Y = 48.8 – 809.8x
Longitud total – fecundidad
: Y = 32.2 – 808.3x
Valores correspondientes al mes de agosto.
Peso gonadal – fecundidad
: Y = 12.9 – 1252.3x
Peso total – fecundidad
: Y = 82.9 – 1241.7x
Longitud total – fecundidad
: Y = 138.7 - 1251.7x
3. Las tallas más frecuentes fluctúan entre 97 – 152 mm. de longitud total en
ambos sexos.
4. La proporción sexual es de 1:1 en los meses estudiados en enero, febrero,
marzo, julio, agosto.
15
5. El peso promedio para la población muestreada es de 43.6 gr para la hembra
es de 46.3 gr, y para el macho es de 37.4 gr correspondiente a los meses de
enero – marzo y para los meses de julio – agosto la población muestreada es
de 45.0 gr para el sexo hembra es de 48.8 gr por tanto para el sexo macho
es de 34.7 gr se estudiaron 250 especímenes de los cuales 104 fueron
hembras, y 146 machos, los cuales motivaron no dar conclusiones definitivas.
VI.- ALIMENTACIÓN
SARMIENTO et al., (1987) menciona para la Orestias luteus “carachi amarillo”
que su dieta esta conformada principalmente por organismos bentónicos en tres
épocas de estudio, haciendo un promedio en número 96.32% y en volumen de
97.54% (ver cuadro Nº 03). Dentro de este grupo el constituyente mas
importante son los anfípodos, las tres épocas de estudio con un promedio
número de 75% y en volumen 93.9%; seguido de larvas de chironómidos es
consumido, en la época de invierno seco con un porcentaje número de 8.15% y
en volumen 2.05% y en época con un porcentaje frecuencial 24.57% y un
1.09%; ostrácoda solo es importante en la época de lluvia con un porcentaje en
número 19.44% y en volumen 2.27%, tiene una preferencia por moluscos
(pelecípoda, planorbis y littoridina) siendo el mas importante esta última, que
se hace presente con mayor frecuencia en la época transitoria con un porcentaje
número del 10.97%, representando en volumen traza alimenticia; los huevos de
pez solo han sido consumidos en la época invierno seco con un porcentaje en
número de 6.27% que se ha presentado en volumen trazas alimenticias.
El zooplancton y grupo terrestre no son importantes; el grupo nectónico se hace
presente solo en la época transitoria y con único representante corixidae representa
en número un porcentaje de 2.37% y en volumen de 4.85%.
En conclusión Orestias luteus “carachi amarillo” es una especie de hábitos
alimenticios bentónicos carnívoros y con una dieta no muy diversificada
(estenofaga), el 94% de su alimento está constituido por anfípoda y muy poco por
pelecípoda, planorbis y littoridina que solo hacen presentes en las épocas de
invierno seco y transitoria.
Sin embargo, RAMÍREZ (1977) encuentra que el constituyente más importante
en la dieta de esta especie está dado por moluscos (littoridina, tropicorbis,
taphius) y la clase pelecípoda representa en total un porcentaje en número de
44.1% y en volumen de 49.2%, seguida por anphípoda que representa el 31%
tanto en números como en volumen. Esta diferencia de preferencia en alimento
se podría deber a que en la zona donde se realizó el trabajo ha existido escaso
número de moluscos lo que no significa que Orestias luteus “carachi amarillo”
no tenga preferencia por este grupo, ya que presenta dientes faringeos robustos
que le permite la trituración de sus conchas LAUZANNE (1982).
En cuanto al zooplancton no juega ningún papel importante en la alimentación de
esta especie pudiendo haber sido chirodus ingerida por casualidad con otros
alimentos. RAMÍREZ (1977) encuentra como constituyente alimenticio a algas
filamentosas, indicando también que podrían haber sido ingeridos por casualidad
junto con los huevos que se encuentran adheridos a la vegetación sumergidos;
también encontró en el contenido estomacal de esta especie un “ispi” hecho que no
se ha verificado.
16
CUADRO Nº 03
CONTENIDO ESTOMACAL DE Orestias luteus “CARACHI AMARILLO” POR
ÉPOCAS OJERANI, BAHIA DE PUNO - LAGO TITICACA 1984-1985
Promedio
Inv. Seco
Transitorias
Lluvias
Organismos
anual
%F
%D
%F
%D
%F
%D
%F
%D
I.- BENTÓNICOS
Amphípoda
Larva Chiromidae
Ostracoda
Pelecípoda
Littoridina
Planorbis
ovas de pez
ninfa de Odonata
pupa Díptero
II.- ZOOPLANCTON
Chidorus
III.- TERRESTRES
Chironomidae A
Díptero A
IV.- NECTÓNICO
97.69
76.21
8.15
2.37
0.81
0.81
2.66
6.28
--0.40
0.66
0.66
1.65
1.65
-----
98.84
91.97
2.05
0.27
3.56
0.42
0.07
0.40
--0.10
----1.13
1.13
-----
96.82
74.13
4.57
1.15
2.60
10.97
2.27
--1.13
------0.76
--0.76
2.37
93.95
92.37
1.09
0.06
0.02
0.03
0.01
--0.37
------1.18
--1.18
4.85
94.45
75.01
--19.44
------------5.55
5.55
---------
99.83
97.56
--2.27
------------0.17
0.17
---------
96.32
------------------2.07
2.07
0.84
----0.79
97.54
------------------0.05
0.05
0.77
----1.61
FUENTE: SARMIENTO et al., 1987
VII.- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA
El rango de conocido de Orestias se extiende desde la provincia de Ancash, al
norte del Perú, hasta Antofagasta, en Chile (09º a 22º Latitud Sur). Es endémico
de los lagos y corrientes de los Andes peruanos, bolivianos y chilenos, más de la
mitad de las 43 especies conocidas son endémicas de la cuenca cerrada del
Titicaca y de aquellas 23 existen solo en el lago Titicaca.
De las 3 subdivisiones que comprende el lago, la mayoría de especies
pertenecen solo a las 2 secciones más pequeñas (lago menor y bahía de
Puno), desconociéndose aún si éstas representan la verdadera distribución
de Orestias en el lago o meramente la facilidad de su colección.
Las mayores densidades relativas de su población, en orden de importancia,
se encuentran en los lagos: Titicaca (Perú Bolivia), Junín (Perú) y Poopo
(Bolivia), lagunas y ríos aledaños. En los tramos superiores de los ríos, su
distribución altitudinal llega hasta los 4299 m.s.n.m., pudiendo vivir en
riachuelos y charcos de muy escasa profundidad y mínimo contenido de
oxígeno. En 1979 se descubrió Orestias en 3 pequeños lagos al Noreste de
Lima, lo que reveló no sólo la presencia de 2 nuevas especies sino también la
posibilidad de que puedan encontrarse Orestias en los numerosos lagos
pequeños que caracterizan el sur de los Andes ecuatorianos PARENTI (1984)
citado por SARMIENTO et al. (1987).
17
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
SINOPSIS BIOLÓGICA
DE
Orestias ispi
“ispi”
Equipo Profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 03
Noviembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
0
I . SISTEMATICA
Esta especie es conocida en todas las zonas que habita con el nombre de “ispi”.
La especie esta situada dentro de la siguiente posición taxonómica: LAUZANNE
(1981) y STORER (1961):
PHYLLUM ............................ Chordata
SUB-PHYLLUM ................... Vertebrata
SUPER-CLASE ................... Pisces
CLASE ................................. Osteichthyes
SUB-CLASE .......................... Actinopteygii
SUPER-ORDEN .................... Teleostei
ORDEN ................................. Cyprinodontiformes
FAMILIA ................................ Cyprinodontidae
SUB-FAMILIA .......................... Orestiinae
GENERO ....................................Orestias
ESPECIE ....................................Orestias ispi Lauzanne, 1981
NOMBRE COMÚN ................... “ispi”.
El holotipo (MNHN 1981; 605) un ejemplar macho adulto, 62 mm LS.,
colectado el 15/10/79, en el estrecho de Tiquina, lago Titicaca.
Orestias ispi ”ispi”, es uno de los mas alargados de Orestiinae (F/A: 18-24%).
El cuerpo es muy comprimido (G/A: 10-15%) y la cabeza es pequeño (B/A: 2226%) y estrecho (N/B: 41-53%), la mandíbula forma con la línea inferior de la
cabeza un ángulo generalmente algo superior a 90 ºC, excepto en los
especímenes mas grandes, en los que el ángulo puede ser inferior a 90 ºC.
CLAVE PARA RECONOCIMIENTO DEL “ISPI” (LAUZANNE, 1982)
1.- I/H 48% ----------------------------------------------------- 2
2.- número de escamas 29 - 53
número de vértebras 30 - 34
branquiespinas no ramificados
Q/B 24% -------------------------------------------------- 3
3.- Presencia de escamas sobre el vientre
B1 : 18 - 21 -------------------------------------------- 4
4.-
I/A:
08 – 11%
G/A : 10 – 14%
N/A : 09 - 12%
F/A : 18 – 24%
Mentón muy anguloso
Color plateado ----------------------------------------------- O. ispi
Los símbolos usados en la clave significan:
I/A : Altura del pedúnculo caudal en relación a la longitud estándar.
I/H : Altura del pedúnculo caudal en relación a su longitud.
B/A : Largo de cabeza en relación a la longitud estándar.
F/A : Altura del cuerpo en relación a la longitud estándar.
G/A : Ancho del cuerpo en relación a la longitud estándar.
C/A : Extremo del hocico – base de la dorsal en relación a la longitud estándar.
N/A : Ancho de la cabeza en relación a la longitud estándar.
N/B : Ancho de la cabeza en relación a su longitud.
Q/B : Diámetro del ojo en relación a la longitud estándar.
B1 : Nº de branquiespinas sobre la parte externa del primer arco branquial.
H/A : Longitud del pedúnculo caudal en relación a la longitud estándar.
1
II. MORFOLOGÍA Y ANATOMÍA
2.1. Descripción de Orestias ispi “ispi”
Presenta cuerpo alargado, protegido por escamas ctenoidea, pedúnculo caudal
con puntos negros y redondeados.
La coloración del cuerpo es dorado negrusco; con predominancia de puntos de
color marrón y negro, hasta la línea lateral, la parte ventral es de color blanco y
los flancos de color plateado con escasas puntuaciones, entre las líneas lateral
y ventral.
La forma de la cabeza es triangular de color marrón oscuro, boca protráctil con
la mandíbula inferior ligeramente sobresaliente. Posee dos aletas pectorales,
una dorsal posterior, una anal y otra caudal; cabe señalar que tanto la aleta
anal como la dorsal se encuentran a la misma altura.
Otra característica merística importante es el numero de radios en las aletas:
Pectoral ..................... 16 a 17
Anal ........................... 15 a 16
Dorsal......................... 12 a 13
Las escamas son muy finas y presentan estrías coricéntricas, ubicadas en la
parte media ventral y regularmente dispuestas incluso en la parte anterior su
número (42 – 53) en línea longitudinal. El número de branquiespinas es 17 a
19.
El aparato digestivo inicia en la boca con premaxilar y maxilar protráctil provisto
de dientes pequeños; posee una lengua pequeña y lisa, a los lados de la
cavidad buco-faringea se encuentran las branquias.
A partir del esófago no existe un estomago propiamente dicho, sino que mas
bien, le sigue una región mas dilatada del intestino que termina en un ciego
pilórico con una curvatura poco distinguible, se continua con el intestino de
mayor longitud que la cavidad celómica y que se repliega en el interior.
El hígado voluminoso es de color rojizo, además aquí se encuentra la vesícula
biliar casi esférica y de color verde amarillento.
El corazón pequeñísimo se halla situado cerca de la cavidad opercular.
2.2.
Longitud
En el cuadro Nº 01, se tiene la distribución de frecuencia de longitudes de
Orestias sp “ispi” por sexo, en número y porcentaje en las distintas clases de
tamaños agrupados cada 5 mm de longitud total; donde se puede observar
que el mayor porcentaje de ejemplares capturados se encuentra entre 80 y 99
mm en hembras (79.69%), en cambio en machos el mayor porcentaje esta
comprendido entre 55 y 84 mm. lo que demuestra que las hembras tienen una
mayor talla que los machos (82.96%); por lo que podemos concluir que, existe
diformismo sexual en cuanto a talla, puesto que los machos son mas
2
pequeños que las hembras. La talla promedio de la especie es de 86 mm.
concentrándose en el mayor porcentaje (43.17%) entre 85 y 94 mm.
La distribución por tamaños para sexo, se aprecia que las longitudes
extremas fluctúan entre 55 y 114 mm de longitud total.
CUADRO Nº 01
PORCENTAJES DE LAS FRECUENCIAS DE LONGITUDES DE Orestias
ispi “ISPI” 1984
Long. Total
HEMBRAS
MACHOS
TOTAL
en mm.
N
%
N
%
N
%
55 – 59
60 – 64
65 – 69
70 – 74
75 – 79
80 – 84
85 – 89
90 – 94
95 – 99
100 – 104
105 – 109
110 – 114
TOTALES
6
1.17
16
3.13
10
1.95
34
6.64
73
14.26
123
24.02
130
25.39
82
16.02
28
5.47
9
1.76
1
0.19
512
100.00
Moda
: 92 mm
Promedio : 89 mm
8
15
20
11
10
9
4
2
2
4
2
1
88
9.09
8
1.33
17.05
21
3.50
22.73
36
6.00
12.50
21
3.50
11.36
44
7.33
10.23
82
13.67
4.55
127
21.17
2.27
132
22.00
2.27
84
14.00
4.55
32
5.33
2.27
11
1.83
1.14
2
0.33
100.00
600
100.00
Moda
: 67 mm
Moda
: 92 mm
Promedio : 74 mm
Promedio : 86 mm
Fuente: Cruz, 1984.
Medidas de longitudes de Orestias ispi “ispi”
a/b = Longitud total
a/d = Longitud estándar
a/c = Longitud a aleta pectoral
3
2.3.
Peso
En el cuadro Nº 02, para un total de 600 individuos se muestra el peso
promedio por sexo y total; siendo para los machos el peso de 6.8 gr y para
hembras 7.6 gr.
CUADRO Nº 02
RELACIÓN LONGITUD-PESO DE Orestias ispi “ISPI” (1984)
Longitud
Total mm.
MACHOS
Peso
Promedio
N
gr.
55 – 59
60 – 64
65 - 69
70 - 74
75 - 79
80 - 84
85 - 89
90 - 94
95 - 99
100 - 104
105 - 109
110 - 114
PROMEDIOS
2.0
2.3
2.9
3.6
3.9
6.0
6.2
6.6
8.2
10.8
12.3
16.6
6.8
HEMBRAS
Peso
Promedio
N
gr.
8
15
20
11
10
9
4
2
2
4
2
1
3.1
3.9
4.1
5.8
6.3
6.8
7.9
8.9
10.8
11.7
12.7
7.6
TOTAL
Peso
Promedio
N
gr.
6
16
10
34
73
123
130
82
28
9
1
2
2.5
3.5
3.8
4.9
6.2
6.6
7.5
8.8
10.8
11.9
14.7
6.9
8
21
36
21
44
82
127
132
84
32
11
2
Fuente: Cruz, 1984.
2.4.
Relación longitud – peso
Para la relación longitud-peso el coeficiente de correlación para machos es
r = 0.9892, para hembras r = 0.9941 y el total tiene una correlación de r =
0.9968; lo que indica que existe una correlación alta entre longitud y peso, es
decir a mayor longitud mayor peso.
La ecuación de regresión para peso en función de longitud es:
P = 0.00002l L2.84; con una R 2 = 99.35%
De acuerdo a esta ecuación podemos afirmar que no se cumple la ley del
cubo en esta especie, se podría deber al desarrollo irregular del cuerpo, cuyo
índice de incremento total es x = 2.84, arrojando diferentes valores por sexo.
La ecuación de regresión para machos es:
P = 0.0000082 L3.04; con una R2 = 97.89%
y para hembras es:
P = 0.000162 L2.39; con una R 2 = 98.82%
4
III .- REPRODUCCIÓN
3.1.
Madurez sexual
El macho presenta un testículo de forma alargada y la hembra presenta un
ovario. El testículo y ovario se conectan con el orificio genital de ambos
órganos sexuales.
La progresión de los estadios de maduración sexual de Orestias ispi “ispi”
para hembras en función del tiempo se presenta en el cuadro Nº 03,
observándose que la madurez sexual del estadío I se presenta entre febrero a
junio, decreciendo de marzo a mayo para luego ausentarse. Para el estadío II
se mostró índices altos entre los meses de marzo a julio.
CUADRO Nº 03
PROGRESIÓN DE LOS ESTADIOS DE MADUREZ SEXUAL Orestias ispi “ISPI”
PARA HEMBRAS (1984)
MESES
FEBRERO
MARZO
ABRIL
MAYO
JUNIO
JULIO
TOTALES
I
%
7.86
1.22
2.22
1.26
4.94
2.93
II
%
10.11
19.51
12.22
6.33
6.17
21.97
12.89
III
%
12.36
13.41
5.55
7.59
13.58
13.19
10.94
IV
%
ESTADIOS
V
%
14.61
14.63
15.56
22.78
19.75
20.88
17.97
17.98
15.85
27.78
26.58
22.22
28.57
23.24
VI
%
VII
%
21.35
7.32
10.00
16.45
14.81
9.89
13.28
15.73
28.05
26.67
18.99
18.52
5.49
18.75
TOTALES
%
100.00
100.00
100.00
99.98
99.99
99.99
100.00
Fuente: Cruz, 1984.
3.2.
Longitud a la primera madurez
En el cuadro Nº 04, se presentan los resultados y curvas de los porcentajes
del estadío II con respecto a la suma de los estadíos I y II, los mismos que
han sido agrupados cada 5 mm de longitud total.
En el gráfico Nº 01, se observa que la longitud promedio a la cual el 50% de
la población para machos alcanza su madurez a los 64.5 mm de longitud,
pudiendo presentarse individuos sexualmente inmaduros hasta los 92 mm y
en las hembras el 50% de la población alcanza su primera madurez a los 74.0
mm de longitud, pudiendo presentarse individuos hasta los 107 mm como
casos aislados.
5
Gráfico Nº 01
Longitud a la primera madurez para Orestias
ispi "ispi"
Porcentaje acumulado
100
90
80
Machos
Hembras
Total
70
60
50
40
30
20
10
0
57
62
67
72
77
82
87
92
97
10
Longitud del Pez (mm)
Fuente: Cruz, 1984
CUADRO Nº 04
LONGITUD A LA PRIMERA MADUREZ DE Orestias ispi “ISPI” (1984)
Longitud
Total en
mm
I
II
I + II
60-64
65-69
70-74
2
-
1
2
3
2
75-79
80-84
85-89
90-94
95-99
100-104
-
1
1
1
-
105-109
-
-
MACHOS
POBLACIÓN
MUESTRAL
HEMBRAS
% II
I
II
I + II
%II
I
II
I + II
37.5
37.5
62.5
3
4
1
1
7
2
1
1
1
-
75.0
75.0
87.5
100.00
-
3
3
1
1
-
-
-
-
% II
4
11
3
5.0
18.5
22.2
5
4
1
2
7
4
7
11
5
7.9
20.2
25.8
12
17
18
2
6
15
20
19
2
6
40.7
65.4
88.9
88.9
91.3
98.8
3
3
1
-
13
17
19
1
2
6
16
20
20
1
2
6
1
1
100.0
-
1
1
43.8
66.2
88.8
89.9
92.1
98.9
100.0
0
Fuente: Cruz, 1984
3.3.
Longitud al primer desove
En el gráfico Nº 02, se puede observar que el 50% de la población de machos
alcanzan su primer desove a los 69.5 mm de longitud y el 50% de las
hembras alcanzan su primer desove a los 89 mm de longitud.
En el cuadro Nº 05 y gráfico Nº 02, para machos y hembras se observa que la
longitud promedio para el 50% de la población que alcanza el primer desove
es a los 86 mm de longitud, a partir de esta talla se va incrementando el
número de ejemplares y es cuando a los 112 mm el 100% de los individuos
han desovado por lo menos una vez.
6
CUADRO Nº 05
LONGITUD AL PRIMER DESOVE EN Orestias ispi “ISPI” (1984)
Marca
Long mm
de
Por clase Clase
(mm)
55-59
60-64
65-69
70-74
75-79
80-84
85-89
90-94
95-99
100-104
105-109
110-114
TOTALES
MACHOS
57
62
67
72
77
82
87
92
97
102
107
112
%
Acum.
F
%
1
7
4
5
5
4
1
1
1
29
3.45
24.14
13.79
17.24
17.24
13.79
3.45
3.45
3.45
POBLACIÓN
MUESTRAL
HEMBRAS
3.45
27.59
41.38
58.62
75.86
89.65
93.10
93.10
93.10
96.55
96.55
100.00
F
%
%
Acum.
1
1
5
18
20
19
3
1
68
1.47
1.47
7.35
26.47
29.41
27.94
4.41
1.47
-
1.47
1.47
2.94
10.29
36.76
66.17
94.11
98.52
100.00
-
F
1
7
5
5
6
9
19
20
19
4
1
1
97
%
1.03
7.22
5.15
5.15
6.19
9.28
19.59
20.62
19.59
4.12
1.03
1.03
%
Acum.
1.03
8.25
13.40
18.55
24.74
34.02
53.61
74.23
93.82
97.94
98.97
100.00
Fuente: Cruz, 1984
100
80
60
Machos
Hembras
Total
40
20
112
107
102
97
92
87
82
77
72
67
62
0
57
Porcentaje acumulado
Gráfico Nº 02
Longitud al Primer Desove en Orestias ispi
"ispi"
Longitud del Pez (mm)
Fuente: Cruz, 1984
3.4.
Fecundidad
En el cuadro Nº 06, se ofrece los modelo de regresión lineal de la fecundidad
en función de la longitud del ovario, peso del pez, longitud del pez y peso del
ovario; así como sus correspondientes correlaciones y coeficientes de
correlación.
Los coeficientes de correlación nos indican que existe un alto porcentaje de
correlación entre la fecundidad y la longitud del ovario (r= 0.98861), y del
mismo modo existe una alta correlación entre fecundidad y longitud del pez
(r=0.98179) la correlación entre fecundidad y longitud del pez es de
(r=0.97500) y la correlación entre la fecundidad y el peso del ovario es de
(r=0.95727); estas dos últimas correlaciones son menores a las primeras, sin
embargo existe una buena relación entre variables.
7
Las ecuaciones de regresión que se consideran en el cuadro Nº 06 pueden
ser usadas indistintamente para calcular la fecundidad, esto si se considera
los coeficientes de determinación que se expresan en el mismo cuadro.
CUADRO Nº 06
REGRESIÓN Y CORRELACION PARA FECUNDIDAD EN Orestias ispi (1984)
VARIABLE
a
b
r
R2
INDEPENDIENTE
Longitud del ovario
-293.15410
30.14262
0.98861
97.73%
Peso del pez
8.92158
38.02738
0.98179
96.39%
Longitud del pez
-474.49000
8.93667
0.97500
95.06%
Peso del ovario
-4.03409
269.59091
0.95727
91.64%
Fuente: Cruz, 1984
3.4.1. Relación de longitud del pez-fecundidad
Esta relación fue determinada en base a 68 ovarios del estadio VI el mismo
que está representado en el gráfico Nº 03.
Nº de óvulos
GRÁFICO Nº 03
RELACION LONGITUD DE PEZ Y FECUNDIDAD
500
450
400
350
300
250
200
150
100
50
0
62
67
72
77
82
87
92
97
102
107
112
Longitud en mm
Fuente: Cruz, 1984
En el cuadro Nº 07, se puede apreciar que existen variaciones no tan alejadas
en lo referente a la fecundidad real y teórica. Podríamos atribuir esto al
método utilizado para los cálculos, para este parámetro se calculó el
coeficiente de correlación, que es: r = 0.97500 y el coeficiente de
determinación es : R 2 = 95.06%; Estos valores nos indican que existen una
alta correlación entre la longitud del pez y el número de óvulos producidos.
La ecuación de regresión de fecundidad en función de la longitud del pez está
dado por la siguiente ecuación:
F = - 474.49 + 8.93667(L)
Donde: F= Nº de óvulos
L= Longitud del pez.
8
CUADRO Nº 07
RELACION ENTRE EL NUMERO DE ÓVULOS OBSERVADOS Y CALCULADOS EN
Orestias ispi “ISPI” (1984)
Longitud
Del pez
mm.
65-69
70-74
75-79
80-84
85-89
90-94
95-99
100-104
105-109
Fecundidad
Real
Teórica
102
174
245
256
332
332
337
445
504
124
169
213
258
303
345
392
437
481
Peso
del
Pez
gr
Fecundidad
3.0
4.5
6.0
7.1
7.2
7.9
9.1
11.4
13.4
Real
Teórica
102
174
245
256
332
332
337
445
504
123
180
237
279
284
309
355
442
518
Long
del
ovario
(mm)
Fecundidad
Real
13
15
18
19
20
21
22
24
26
Teórica
91
174
246
277
308
338
369
431
493
99
159
249
280
310
339
370
430
491
Peso del Fecundidad
ovario
gr
Real Teóric
a
0.6
0.65
0.7
1.0
1.1
1.3
1.4
1.7
1.8
157
174
184
265
292
346
373
454
482
158
171
185
266
293
346
373
454
481
Fuente: Cruz, 1984
3.4.2. Relación entre peso del pez y la fecundidad
El ajuste con una regresión lineal dan valores teóricos muy ajustados a los
reales, con una correlación de r = 0.98179 y R2 = 96.39% y una ecuación de:
F = 8.92158 + 38.02738(x)
3.4.3. Relación longitud del ovario- fecundidad
En el cuadro Nº 07 y gráfico Nº 04, se observa la relación longitud del ovariofecundidad, que corresponde a los 68 especímenes, no se observa
variaciones tan significativas entre la fecundidad real y teórica
determinándose a continuación el valor de r = 0.98861 y R 2 = 97.73%.
La ecuación de regresión es:
F = - 293.15410 + 30.14262(x)
G r á fic o Nº 0 4
R E L AC IÓN L ON GIT U D D E L OV AR IOFE C U N D ID AD
Fecundidad en cientos de
óvulos
50 0
45 0
40 0
35 0
30 0
25 0
20 0
15 0
10 0
50
0
13
15
17
19
21
23
25
27
L o ng itu d d el p ez en mm.
Fuente: Tes is Lic . en B iología UNA-P uno 1984. Julio C ruz
9
3.4.4. Relación peso ovario-fecundidad
El cuadro Nº 07 y gráfico Nº 05, podemos apreciar que la variación existente
para pesos reales con los teóricos no es tan distante el uno del otro;
calculando el coeficiente de correlación dio un valor de r = 0.95727 y R2 =
91.64%, quiere decir que el 91.64% es explicable por la variación del peso
gonadal.
La ecuación de regresión a partir de la cual se puede calcular la fecundidad
en función del peso del ovario es:
F = - 4.03409 + 269.59091(x)
Gráfico Nº 05
Fecundidad en cientos de óvulos
RELACIÓN PESO DEL OVARIO-FECUNDIDAD
500
400
F=2.41+1.13x
300
200
100
0
1
2
Peso en gramos
Fuente: Tesis Lic. en Biología UNA-Puno 1984. Julio Cruz
Realizando el análisis de varianza, para las relaciones peso del ovariofecundidad, longitud del Pez-Fecundidad, en la se observa valores altamente
significativos, tal como se puede observar en los cuadros 08 y 09
respectivamente.
CUADRO Nº 08
ANALISIS DE LA VARIANZA PARA LA RELACIÓN LONGITUD DEL
OVARIO-FECUNDIDAD DE Orestias ispi “ISPI” (1984)
F. DE V.
Regresión
Error
TOTAL
G.L .
1
6
7
SC
0.31007
0.00743
0.31750
CM
0.31007
0.00124
FC
250 **
Ft 0.05
5.99
Fuente: Cruz, 1984
** Altamente significativo
CUADRO Nº 09
ANALISIS DE VARIANZA PARA LA RELACION PESO DEL PEZFECUNDIDAD DE Orestias ispi “ISPI” (1984)
F. DE V.
G.L.
SC
CM
FC
Ft 0.05
Regresión
Error
TOTAL
1
6
7
0.30620
0.01130
0.31750
0.30620
0.00188
16.29 **
5.99
Fuente: Cruz, 1984
** Altamente significativo
10
IV.- HABITAT
El género Orestias abarca la zona andina desde 9º a 22º Latitud Sur, por lo
que se considera que son peces endémicos del lago Titicaca.
El hábitat de Orestias ispi “ispi” es la zona pelágica, realizando migraciones
por épocas o zonas de litoral (época de desove) y mas profunda en busca de
alimento. Es una especie que prefiere el zooplancton; desplazamiento en
cardúmenes, extendiendo en mayor número las hembras con respecto a los
machos.
V .- DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA
Esta especie se halla distribuida por lo general en la zona Norte del lago
Titicaca, particularmente en las siguientes zonas: Yapura, Llachon-Capachica,
Isla Amantani, Vilquechico, Huarisani, Quellahuyo, Jacantaya, Muelle Cariquita,
Moho, Conima y Villa Tilali (Inf. DIREPE XI-PUNO).
Son insistentemente Limnéticos, teniendo una migración diurna; por las noches
encima de la termoclina y de día por debajo de esta.
La captura se realiza por lo general en zona litoral ya que existe una migración
por reproducción y los ejemplares capturados están generalmente en estadíos V
– VI.
11
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
REFRIGERACIÓN CASERA
DE
Orestias luteus
“CARACHI AMARILLO”
Ing. M.Sc. Romeo Paca Pantigoso
Blgo. René Chura Cruz
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 04
Noviembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
0
I.- INTRODUCCIÓN
La presencia de Orestias luteus “carachi amarillo”, en la cuenca del Titicaca es
frecuente, por ser una de las especies que más se ha desarrollado y al mismo
tiempo a resistido a la depredación humana y a las especies introducidas,
convirtiéndose en la base de la alimentación de la población ribereña y además
por que esta especie es comercializada en las ciudades de Arequipa, Moquegua,
Ilo y Tacna.
El transporte para la comercialización del “carachi amarillo” se realiza en
condiciones antihigiénicas e inadecuadas, por lo cual es necesario generar
alternativas tecnológicas que permitan una buena preservación y transporte de
las especies ícticas nativas, para su comercialización en condiciones adecuadas.
El proceso de refrigeración consiste en la preservación del recurso
hidrobiológico, por un período de tiempo relativamente largo, sin alterar su grado
de salubridad y frescura para el consumo humano.
Para el proceso de enfriamiento, que debe llegar a 1 ó 1.5º C, el procedimiento
más simple consiste en adicionar hielo en la parte superior y el fondo.
1
II.- OBJETIVOS
1. Objetivo general
Preservar Orestias luteus “carachi amarillo” en base a refrigeración para el
proceso de transporte y comercialización.
2.
Objetivos específicos
2.1.
2.2.
2.3.
Realizar la biometría de peso y talla en el Orestias luteus.
Determinar el proceso de refrigeración para la especie Orestias luteus,
utilizando la Tabla de Burges (1973).
Establecer una Tabla con los tiempos de enfriamiento para Orestias
luteus.
III. MATERIALES
3.1 Material experimental
Se utilizó 105 peces de la especie Orestias luteus “carachi amarillo”, que
tienen un peso total de 4 kg siendo el peso promedio por animal de 35.7 gr y
una talla promedio de 99.1 mm.
3.2 Material de trabajo
Se utilizaron los siguientes materiales y equipos:
• Una cámara isotérmica (caja teknopor) de las siguientes dimensiones
exteriores:
Largo:
36 cm
Ancho:
24 cm
Altura:
23 cm
Volumen:
0.02 m3
Capacidad: 4 kg. de pescado
Espesor del teknopor: 2.5 cm
• Termómetro, con escala de –10 a 100º C
• Hielo, tipo escama
• Ictiómetro de 0 a 300 mm
• Balanza de triple barra O’Hauss
• Balanza reloj, con una capacidad de 10 Kg.
• Guantes impermeables
IV.
METODOLOGÍA
4.1. Se compró el pescado de las vendedoras de la avenida Simón Bolívar, que a
partir de las 11 de la mañana, comercializan pescado de la zona de Llachón,
en bolsas de polietileno
4.2. En el laboratorio del IIP Qollasuyo, se procedió a tomar la biometría de los 105
carachis amarillos. La talla se registra en el ictiómetro y el peso en la balanza
O’Hauss.
4.3. Tabla de Burges G. 1973, que determina la cantidad de hielo requerida para
enfriar a 0º C un volumen de 7 kg. de pescado fresco, donde:
A = Temperatura inicial de pescado en grados centígrados ºC
B = Peso mínimo del hielo requerido en Kg.
2
CUADRO Nº 01
TABLA DE BURGES DE TEMPERATURA INICIAL DEL PESCADO Y EL
PESO MINIMO DE HIELO REQUERIDO
A (ºC)
B (Kg.)
A (ºC)
B (Kg.)
18.3
15.5
12.7
1.5
1.3
1.0
10.0
7.2
4.4
1.6
0.8
0.6
0.3
0.1
Fuente: Burges, 1973
4.4. Cálculo de hielo requerido para el enfriamiento de pescado a ºC Para el cálculo
se utilizó como base los datos de la tabla de Burges y una regla de tres
compuesta, de las siguientes características:
CUADRO Nº 02
RELACION DE PESO DE PESCADO, TEMPERATURA INICIAL Y HIELO
REQUERIDO
Temperatura inicial del
Peso pescado en Kg.
Hielo requerido
pescado en ºC
7
4
15.5
16.0
1.3
X
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
x=
4 x16 x1.3
= 0.77 Kg.
7 x15.5
x = 770 gr.
Debido a que en el momento de preparar la capa de hielo inferior con un
espesor de 2 cm nos quedó muy poco hielo, se vio por conveniente agregarle
un volumen adicional de 30% más del volumen calculado inicialmente,
haciendo un volumen total de 1000 gr que fue utilizado en el trabajo de
observación preliminar que estamos reportando.
4.5.
Acondicionamiento del pescado en la caja térmica.
• La primera medida que se tomó fue el pesaje del pescado en una balanza
reloj, obteniéndose el peso de 4 kg.
• Con este peso se calculó la cantidad de hielo requerida, que para nuestro
caso fue de 1001 grs
• Luego se registró la temperatura del pescado que fue de 16º C con un
termómetro de digital de marca BOECO de escala de –10º C a 100º C.
• Con esta información se puso una primera capa de hielo de 2 cm en la caja
isotérmica.
• Luego se estibó el pescado en 4 capas, colocándose el pescado con la parte
dorsal hacia abajo, entrecruzando cabeza con cola, se hizo una capa de
pescado de 9 cm.
• A continuación se acondicionó una capa superior de hielo de un espesor de
1.5 cm
• En la parte central se colocó el termómetro, haciendo que la parte inferior se
ubique entre la parte media del estibaje de los pescados.
• Finalmente se tapó la caja en forma hermética
3
Figura Nº 01
ACONDICIONAMIENTO DEL PESCADO EN LA CAJA
ISOTERMICA
1.5 cm de hielo
9.0 cm. de
pescado
(Orestias luteus)
2.0 cm de hielo
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
5.1. Biometría de peso y talla en Orestias luteus “carachi amarillo”
Los datos obtenidos de talla y peso fueron ingresados en el programa Excel del
entorno Windows de una computadora Pentium III, donde se calcularon
directamente los parámetros en estudio con los siguientes resultados:
CUADRO Nº 04
PARÁMETROS DE PESO Y TALLA EN Orestias luteus “CARACHI
AMARILLO”
PARÁMETRO
PESO en gr.
TALLA en mm.
PROMEDIO
DESVIACIÓN ESTANDAR
VALORES MÁXIMOS
VALORES MINIMOS
C. V. %
37.5
7.07
68.9
21.8
18.8
99.1
8.65
130.0
80.0
08.7
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
5.2. Proceso específico de refrigeración para la especie Orestias luteus,
“carachi amarillo” utilizando la tabla de Burges (1973) para el proceso de
enfriamiento
En el proceso que se realizó siguiendo la tabla de Burges, se encontró que esta
tabla no se adapta a las condiciones de la especie y nuestro medio ambiente
por las siguientes observaciones:
•
•
•
•
El volumen de hielo no fue suficiente, se tuvo que agregar el 30% más de
hielo del peso señalado por la tabla de Burges.
La temperatura mínima que se alcanzó fue de 1.5º C en 3 horas con 43
minutos.
A partir de esta temperatura, comenzó el deshielo por el incremento de
temperatura, lo que nos obligó a botar el líquido denominado “sanguaza” e
incrementar hielo en 1001 gr. adicionales en la parte superior.
A partir de este incremento la temperatura descendió nuevamente hasta
los 3º C.
4
5.3. Tabla con los tiempos de enfriamiento, para la especie Orestias luteus
“carachi amarillo”
Con los datos obtenidos no es posible aún proponer una tabla de enfriamiento
para la especie Orestias luteus “carachi amarillo”, sin embargo a continuación
ofrecemos nuestros resultados:
CUADRO Nº 05
OBSERVACIONES DE TEMPERATURA Y TIEMPO EN EL ENFRIAMIENTO
A 0ºC EN Orestias luteus “CARACHI AMARILLO”
OB SERVACIÓN Nº
T EMPERAT URA º C
T IE MP O
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
16.0
7.0
4.0
3.0
3.0
3.0
1.5
2.0
4.0
5.0
0 Hr. 00 minutos
1 Hr. 08 minutos
2 Hr. 05 minutos
2 Hr. 20 minutos
2 Hr. 30 minutos
3 Hr. 17 minutos
3 Hr. 43 minutos
4 Hr. 30 minutos
9 Hr. 30 minutos
11 Hr. 30 minutos
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
Temperatura ºC
GRAFICO Nº 01
ENFRIAMIENTO PARA Orestias luteus “CARACHI AMARILLO”
17
16
15
14
13
12
11
10
9
8
7
6
5
4
3
2
1
0
0.00
1.13
11.50
2.08
9.50
2.33
2.50
3.28
3.72
0.00
1.13
2.08
2.33
2.50
3.28
3.72
4.50
4.50
9.50
11.50
Tiempo en horas
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
VI. RECOMENDACIONES
6.1 Es necesario realizar trabajos de investigación que consideren como
variables de estudio:
• Espesor de la capa de hielo inferior y superior
• Espesor de las capas de pescado
• Tiempo de enfriamiento hasta alcanzar 1º C
• Tiempo en el cual la temperatura se mantiene constante en 1º C
6.2. Es necesario probar simultáneamente con diferentes tipos de cajas
isotérmicas, variando en sus dimensiones.
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
SINOPSIS BIOLÓGICA
DE
Orestias pentlandii
“boga”
Autor: Blgo. René Chura Cruz
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 05
Noviembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
0
1. TAXONOMIA
La taxonomía de Orestias pentlandii “boga”, fue descrita y revisada por CUVIER
y VALENCIENNES (1846); GARMAN (1895); EIGENMANN y ALLEN (1942);
TCHERNAVIN (1944); LAUZANNE (1982) y PARENTI (1984). La primera
colección de Orestias pentlandii “boga”, fue realizada por M. PENTLAND en la
década del 30 del siglo XIX y descrita por VALENCIENNES (1839); quien
estableció el género Orestias con diez especies.
TCHERNAVIN (1944), LAUZANNE (1982) y PARENTI (1984), clasifican en
diferentes grupos y complejos como menciona SARMIENTO et al., 1987.
TCHERNAVIN
GRUP.
ESPECIE
Orestias
01
pentlandii
LAUZANNE
GRUP.
ESPECIE
Orestias
VI
pentlandii
PARENTI
COMPLEJO
Complejo cuvieri
Orestias pentlandii
Fuente: Sarmiento et al., 1987
El SYNTIPO (MNHN A: 9594) corresponde a Orestias pentlandii “boga” dos
adultos, 163 – 168 mm longitud estándar, colectada por M. PENTLAND, CA.
1839 del lago Titicaca.
1.1.
Clasificación taxonómica
La taxonomía para la Orestias pentlandii “boga”, según TCHERNAVIN
(1942); LAUZANNE (1982) y PARENTI (1984); es la siguiente:
REYNO
Animal
PHYLLUM
Chordata
SUB PHYLLUM Vertebrata
GRUPO
Gnathostomata
SUPER CLASE Pisces
CLASE
Osteichthyes
SUB CLASE
Actinopterygi
DIVISIÓN
Teleostei
SUPER ORDEN Cyprinodontimorpha
ORDEN
Cyprinodontiformes
SUB ORDEN
Cyprinodontoidei
FAMILIA
Ciprinodontidae
SUB FAMILIA Ciprinodontinae
GENERO
Orestias (Valenciennes) 1839
ESPECIE
Orestias pentlandii Val., 1839
NOMBRE VULGAR
"boga" “bolla” “kessi”
Clasificación realizada por Sarmiento et al., 1987.
1.2.
Nombre científico válido
Orestias pentlandii (VALENCIENNES, 1839) p. 118
1.3.
Sinonimias o nombres anteriores
Orestias pentlandii VALENCIENNES (1839)
Orestias pentlandii GÜNTHER (1866)
Orestias pentlandii GARMAN (1876); PELLEGRIN (1906)
Orestias pentlandii EIGENMANN 1894; STEINDACHNER (1902); STARKS,
(1906) y FOWLER (1916).
Orestias bairdii COPE (1876); FOW LER (1916).
Orestias bairdi EIGENMANN (1893).
1
1.4.
Nombres comunes
Boga, boguilla (CUVIER y VALENCIENNES, 1846); Bova (GARMAN, 1876)
en TCHERNAVIN, 1943.
1.5. Clave para la identificación de Orestias pentlandii “boga”
Según LAUZANNE, 1982:
1.5.1. I/H
48%
I/A
11% ............................................... 2.
I/H
48%
I/A
11% ............................................... 9.
1.5.2. Número de escamas:
49 – 61
Número de vértebras:
34 – 38
Branquiespinas ramificadas
Q/B
21% ......................................... Orestias pentlandii
I/A: Altura de pedúnculo caudal en relación a longitud estándar
I/H: Altura de pedúnculo caudal en relación a su longitud
Q/B: Diámetro del ojo en relación a la longitud estándar
GRÁFICO (LAUZANNE, 1982)
c
a
m
n
s´
s
o
Longitud Estandar
Distancia Predorsal
Distancia Postdorsal
Distancia Pre anal
Distancia Post anal
Longitud del pedúnculo caudal
en mm
en mm
en mm
en mm
en mm
en mm
(ac)
(am)
(cn)
(ao)
(sc)
(s´c)
2. DISTRIBUCIÓN
Para la determinación de la distribución en el ecosistema lacustre existen tres
factores que pueden ser considerados en las distribuciones de las poblaciones
ícticas: la profundidad del lago, la distribución de las macrofitas y la distancia de la
costa en función de la cual puede producirse variabilidad en la distribución de las
poblaciones pelágicas (SARMIENTO et al., 1987).
Para Orestias pentlandii “boga” VALENCIENNES (1839), especie que prefiere
habitar áreas acuáticas con profundidades, desde los 6 a 50 m, según se ha podido
observar en las pescas exploratorias y por la tendencia y experiencia de los
pescadores de calar sus redes dentro de este rango (NAVARRO,1981). Por las
características anteriores Orestias pentlandii “boga” es una especie de zona
béntica y estaría asociada con Orestias forgeti, Orestias tchernavini y Orestias
mulleri (SARMIENTO et al., 1987).
2
En años anteriores, la “boga” se encontraba distribuida en el lago Titicaca, en las
penínsulas de Capachica, Pomata y Yunguyo; según los muestreos de CUVIER y
VALENCIENNES (1846) y EIGENMANN y ALLEN (1942). Así como en la bahía de
Puno, lago Arapa y Huarina - Huatajata (lago Menor) (VILLWOCK ,1963). En los
años ochenta existía esta especie en el lago Arapa (DIREPE/ORDE PUNO, 1981).
Distribución de las principales especies de Orestias
1.- Valle de Urubama (Cerca del Cusco.
2.- Valle de Urubamba (cerca de Urubamba)
3.- Laguna Langui.
4.- Hacienda Checayani
5.- Lago Arapa.
6.- Vilque Chico Haancané
7.- Lagunillas.
8.- Lago Umayo.
9.- Peninsula de Capachica
10.- Bahia de Puno
11.- Moho.
12/13.- Lago Menor. (Huarina Huatajata)
14.-La Paz
15.- Huaqui
16.- Rio Mauri
Orestias agassii
Orestias cuvieri y Orestias pentlandii
Orestias mulleri et.
Orestias luteus
Fuente: VILLWOCK ,1963
3
3. DESCRIPCIÓN DE Orestias pentlandii “BOGA” Val., 1839
La Orestias pentlandii “boga” Val., 1839 , es posiblemente la Orestia que
alcanza las mayores tallas. La longitud estándar del lote estudiado por
LAUZANNE, 1982 varía entre 126 a 169 mm.
Es una especie muy alargada de acuerdo a las medidas plásticas que se indica
(F/A: 19 – 25%) con pedúnculo caudal muy fino (I/A: 7 – 10%). La cabeza es
relativamente grande (B/A: 23 – 28%) y ancha (N/B: 59 – 71%). El cuerpo es
cilíndrico.
Las escamas de la parte anterior del cuerpo y la cabeza son fuertes y cubiertas
de gránulos, y las otras presentan estrías concéntricas. No presentan escamas
sobre la línea media del vientre. En algunos individuos, puede existir un par de
espacios vacíos trás de la cabeza y a cada costado de la línea media del dorso.
El número de escamas en línea longitudinal es muy elevada (49 – 61), lo mismo
que el número de vértebras (34 – 38).
El número de branquiespinas es particularmente elevado, se cuentan 20 a 25
sobre la parte externa del primer arco branquial y 17 a 21 sobre uno de los
costados de la faringe inferior. El total de branquiespinas en un lado del aparato
branquiespinal está comprendido entre 195 a 226. Las branquiespinas, sobre
todo las del primer arco son furcadas e incluso ramificadas alargados. El hueso
faríngeo tiene vértices numerosos y alargados, dientes relativamente finos con
una curvatura pronunciada.
Las escamas son tipo ctenoidea y las aletas presentes en macho y hembra son:
dos aletas pectorales, una aleta dorsal, una anal y una caudal. El número de
radios varia entre unos y otros: dorsal 13, pectoral 14 – 18, anal 13 – 16 y caudal
22 - 24 (DIREPE, 1987).
Los individuos vivos tienen coloración marrón verdoso, flancos amarillo verdosos
y vientre blanco.
Los juveniles de Orestias pentlandii “boga”, pueden confundirse con Orestias
ispi “ispi”, pero los adultos de Orestias pentlandii “boga”, no se asemejan a
ninguna otra especie de Orestias. Las medidas que indica SARMIENTO Et al.
(1987) son cuerpo cilíndrico, ojo (Q/B 15 – 20) indicando que Orestias
pentlandii “boga”, no presenta escamas en la línea lateral.
4. REPRODUCCIÓN
4.1. Sexualidad
La “boga” para la diferenciación de sexo no presenta caracteres externos que
permitan deducir a simple vista, sin embargo se ha podido demostrar que las
hembras presentan un mayor tamaño y la predominancia de la parte abdominal,
y presencia de color rojizo y prominente del poro genital (TITO Y VELÁSQUEZ,
1991). En el caso de los machos se les reconoce con la manipulación directa
que a una ligera presión en la zona ventral facilita la fluidez del líquido seminal.
La otra técnica para la identificación del sexo se verifica mediante el examen
macroscópico o bajo la lupa de la gónada impar situada en la porción caudal de
la cavidad general del cuerpo (SARMIENTO et al., 1987)
4
4.2. Madurez sexual
La talla a la primera madurez sexual es mayor a 125 mm (BUSTAMANTE Y
TREVIÑO, 1977).
4.3. Fertilización
Es externa.
4.4. Fecundidad
TITO y VELÁSQUEZ (1991), indican que el número de ovas extraídos en
promedio oscilan entre 800 a 1500; sin embargo el PELT (1995) indica que en
promedio tiene 2400 ovas.
4.5. Desove
4.5.1. Período de desove.
Según TITO y VELÁSQUEZ (1991) indican que la época de desove es más
frecuente entre los meses de octubre, noviembre y parte de diciembre; sin
embargo el PELT en 1995 menciona que la época de desove son los meses
de agosto a noviembre.
4.5.2. Número de desoves por año.
Las Orestias son consideradas reproductoras parciales por que desovan dos
veces al año, por consiguiente la “boga” es un reproductor parcial con un
desove fraccionado.
4.5.3. Horas de desove.
La “boga” migra por las noches, especialmente desde las zonas pelágicas o
litorales profundas hacia los lugares de bastante vegetación sumergida, con la
finalidad de realizar el desove en horas nocturnas.
4.5.4. Áreas de desove.
Según reportes de la DIREPE (1987) la existencia de las zonas o áreas de
desove es relativamente grande y territorial abarcando las zonas ubicadas
frente a Chejjachi, Pesquería, Arapa, Trapiche y alrededor de la Isla Arapa;
que geográficamente corresponde a la zona costera de la parte nor oeste de
la lago Arapa donde las profundidades varían de 15 a 20 metros. El área de
desove se calcula de 10 a 11 Km2.
5. MIGRACIÓN
La “boga” presenta una migración horizontal de las zonas pelágicas, hacia las
zonas litorales (DIREPE, 1987).
5
6. BIBLIOGRAFIA
1. BUSTAMANTE, E y H. TREVIÑO, 1977. Descripción de la 1976-1977
pesqueria en el Lago Titicaca DOC. inédito IMARPE PUNO - PERU. 15 p.
2. DIREPE/PUNO 1987. Proyecto: Producción de Especies iscícolas Nativas
Puno – Perú
3. DIREPE/ORDE PUNO 1981. Estudio Bioecológico de las especies nativas
de la laguna Arapa 133 pag. Puno.
4. EIGENMANN, C; Y W . ALLEN 1942. Fishes of western South America.
University of Kentucky.USA 494 Pag.
5. LAUZANNE, L 1982. Description de trois orestias noveaux du lac titicaca
O ispi sp, O. forgueti n. sp. y O. tchernavini n sp. (Pisces.
Cyprinodontinadae) Cybium, 3e, 5(3): 71-91.
6. PROYECTO ESPECIAL LAGO TITICACA 1995. Producción de especies
icticas nativas de la cuenca del lago Titicaca por medio artificial en
laboratorio. Revista Técnica 13 pag.
7. SARMIENTO J. Et al.,1987. Sinopsis Biológica de las Principales especies
ícticas del Lago Titicaca. Proyecto de los recursos del Lago Titicaca.173
pag.
8. TCHERNAVIN, V 1943. A revisión of the subfamily orestiinae. Proc.Zool.
Soc London, 114:140-233.
9. TITO M.,A. y F. VELASQUEZ CH. 1991. Producción Artificial de alevinos
de Orestias pentlandii “boga” Tesis FCCBB-UNA-P Puno Perú 71 pag.
10. VILLW OCK W . 1963.Die Guttong Orestias (Pisces, Microciprini) und
dieFrage der infra-lakustrishea speziation im titicaca seegebiet. Verh.DC.
zool. 26: 610-24
6
7
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
SINOPSIS BIOLÓGICA
DE
Trichomycterus rivulatus
“suche”
Ph. D. Sabino Atencio Limachi
Blgo. René Alfaro Tapia
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 06
Diciembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
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TROCHOMYCTERIDOS DEL LAGO TITICACA
POSICIÓN TAXONÓMICA
REINO
......................... Animal
PHYLLUM
................. Chordata
SUB PHYLLUM……….... Vertebrata
GRUPO
...................... Gnathostomata
SUPER CLASE.................... Pisces
CLASE
............................ Osteichthyes
SUB CLASE
.................... Actinopterygii
DIVISIÓN ................................. Teleostei
SUPER ORDEN........................ Silurimorpha
ORDEN
............................. Siluriformes CUVIER, 1817
SUB ORDEN............................ Siluroidei
FAMILIA
............................. Trichomycteridae GILL, 1872
GÉNERO .............................. Trichomycterus HUMBOLDT, 1811
ESPECIE ........................... T. rivulatus “suche” VAL,1846
T. dispar “mauri”
CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LA FAMILIA Trichomycteridae
-
tienen cuerpo moderadamente alargado y desnudo,
cuerpo desnudo (carecen de escamas),
cuerpo deprimido, dorsoventralmente, particularmente en la zona cefálica,
alcanzan tallas hasta de 202 mm (mauri) y hasta 400 mm (suche),
tiene una sola aleta dorsal,
no presentav aleta adiposa,
en la aleta pectoral, los “suches” tienen más de 7 radios blandos ramificados y
los “mauris” menos de 7 radios,
en sus aletas no tienen radios duros o espinas,
los radios de sus aletas son blandas y ramificados,
en la parte superior de la cabeza tiene un par de barbillas,
en las comisuras de la boca, en cada lado, tienen dos barbillas siendo la
superior más grande que la inferior,
la coloración de sus cuerpos varían de grisaceo, verdusco y amarillento, con
mañchas negras de formas iirregulares,
tienen boca terminal y de posición ventral,
sus ojos son pequeños
tienen la bóveda craneana con un hueso unitario, el perieto occipital
procedente de la difusión de los parietales y el supraoccipital,
tienen una vejiga natatoria atrofiada.
CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL Trichomycterus rivulatus “SUCHE”
A.- CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS Y ANATÓMICAS
-
La forma de su cuerpo es deprimido, dorsoventralmente, en los dos tercios
anteriores.
Piel sin escamas
Alcanzan talla hasta 324 mm y peso hasta 419 gr.
1
-
A diferencia del T. dispar “mauri”, en la aleta pectoral tienen de siete a mas
radios blandos ramificados.
Tienen un par de ojos pequeños.
Son peces ostarioficios (con aparato de transmisión de weber).
Bobeda craneana con un hueso unitario, el parieto-occipital, procedente de
la fisión de los apriétales y el supraoccipital.
Vejiga natatoria atrofiada.
B.- HÁBITAT Y DISTRIBUCIÓN
- Son peces bentónicos que viven en profundidades hasta de 30 m sobre
substratos arenosos o blandos. Vive en lechos que le sirven de refugio o
escondites, que generalmente son rocas, pequeños socavones, asociada a
algunas plantas acuáticas sumergidas.
- Habitan, mayormente en medios lénticos (lagos y lagunas) existiendo
también en medios lóticos (ríos).
- Su distribución es por toda la cuenca del lago Titicaca. Algunos autores
indican una distribución desde el lago Junin (Perú), hasta el lago Poopo
(Bolivia)
C.- ALIMENTACIÓN NATURAL.
La alimentación del “suche” es de tipo eurífago, es decir su espectro alimenticio
está constituido de diversos componentes. Su primera alimentación exógena
constituyen algas unicelulares y estadios iniciales de zooplancton como:
cladóceros, ostracodos, copépodos y anfípodos.
En edades juveniles y adultos, la base de su alimentación le constituye la
Hyalella sp “camaroncillo del lago”, ovas de peces, larvas de insectos, larvas y
alevinos de peces; complementando por cladóceros, copépodos y escasamente
macrófitos acuáticos y algas.
D.- REPRODUCCIÓN NATURAL.
- En el “suche” existe dimorfismo sexual reflejado en la talla de los
reproductores, siendo los machos de menor tamaño que las hembras.
- Los machos se caracterizan por tener un poro genital mas pequeño que el de
las hembras en forma de “tetilla”, que al presionar el vientre se forma una
prominencia en forma de apéndice.
- Realizan migraciones de reproducción, saliendo de las zonas profundas que
es su hábitat normal, hacia zonas litorales.
- El tipo ecológico de su desove es psamofílico, es decir que depositan sus
ovas en substratos de arena.
- Las hembras construyen nidos en la arena, en forma de hoyos de
aproximadamente 50 – 70 cm de diámetro y 10 cm de profundidad
aproximadamente.
- Los reproductores, poseen una sola gónada.
- La proporción de sexo es de 1 macho por 1 hembra.
- Su tipo de desove es porcional, tienen ovas libres.
- Mantienen una conducta de protección de sus ovas y descendiente.
- Las épocas de desove se da entre los meses de enero a abril.
2
BIBLIOGRAFÍA
1.- BARDACH, R.M.,(1982). Acuacultura. A.G.T. Editores S.A. México
2.- BARREDA, M., (1978). Ictiología General. Edit. U.Villarreal Lima-Perú
3.- CHERFAS, B.I., (1956). Piscicultura en Acuatorios Naturales
Industria alimentaria (ID. RUSO) Moscú
Editorial
4.- HUET. M., (1983 ). Tratado de Piscicultura. Ediciones Mundi Prensa, MadridEspaña.
5.- NIKOLSKY, G.V., (1971). Ictiología Especial. Editorial Escuela Superior (ID
RUSO)- Moscú
6.- NIKOLSKY, G.V., (1973 ). Ecología de los peces. Editorial Escuela Superior
(ID RUSO)- Moscú
3
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ADAPTACIÓN DE
TRICHOMYCTERIDOS EN
AMBIENTES CONTROLADOS
Trichomycterus rivulatus “suche”,
Trichomycterus dispar “mauri”
Ph. D. Sabino Atencio Limachi
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 07
Diciembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
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PRESENTACIÓN
Los trichomycteridos del lago Titicaca como el “suche” y el “mauri”, se encuentran
en proceso de extinción; razón por la cual muchos especialistas e instituciones se
han abocado a buscar alternativas que coadyuven a la solución de esta
problemática.
En las últimas décadas, se han realizado algunos trabajos sobre la bioecología y
la reproducción de “suche” y “mauri”, sin embargo no existe publicación sobre las
diferentes etapas que son necesarias para llegar a la reproducción artificial, por
ejemplo la obtención y mantenimiento de reproductores, el proceso de transporte
y mantenimiento de especimenes vivos, el proceso de adaptación en cautiverio,
etc.
El IIP Qollasuyo y el CIPP Chucuito UNA- Puno, con el financiamiento del PNUD a
través de la Autoridad Autónoma de lago Titicaca (ALT), y del Proyecto
PER/98/G-32 Conservación de la Biodiversidad en la Cuenca del Sistema TDPS,
esta realizando la sistematización de la bibliografía existente y publicando guías
prácticas sobre especies nativas.
La presente guía fue preparada por el Dr. Sabino Atencio Limachi, como resultado
de más de 3 meses de observación directa del proceso de adaptación del “suche”
y el “mauri”, en los Laboratorios de la UNA- PUNO. Esta dirigido a especialistas y
público en general que este interesado en el conocimiento de los peces nativos
del lago Titicaca, particularmente en su piscicultura.
Ofrecemos el presente aporte, esperando sus sugerencias y alcances que nos
serviran para seguir renovando esfuerzos.
IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA-PUNO
1
CONTENIDO
I.II.III.IV.V.VI.VII.VIII.IX.X.XI.XII.XIII.XIV.-
PRESENTACIÓN
PREPARACIÓN DEL HÁBITAT ARTIFICIAL
ACONDICIONAMIENTO DEL HÁBITAT ARTIFICIAL.
OBTENCIÓN Y ACOPIO DE ESPECIMENES VIVOS
REAVIVAMIENTO DE LOS ESPECIMENES ACOPIADOS
TRANSPORTE DE ESPECIMENES VIVOS.
SIEMBRA DE ESPECIMENES
SEXADO.
ALIMENTACIÓN
REPRODUCCIÓN
SANIDAD
CONDUCTA
CARACTERÍSTICAS FÍSICO - QUÍMICAS DEL AGUA
RECOMENDACIONES
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
2
I.- PREPARACIÓN DEL HÁBITAT ARTIFICIAL
La preparación del hábitat artificial, se hace en base a los conocimientos previos
sobre la bioecología de la especie y los recursos disponibles. Como en todo
proceso de investigación, las primeras observaciones se realizan en condiciones
de laboratorio, para lo cual se ha tenido en cuenta la disponibilidad de recurso
agua, infraestructura, materiales y equipos.
-
-
El agua disponible, debe ser sin ningún tratamiento con productos químicos
como el cloro. El agua que utilizamos fue proveniente de un pozo artesiano.
Sabiendo del carácter bentónico de los trichomycteridos se puede preparar
su hábitat artificial, utilizando diferentes medios como recipiente; que pueden
ser de plástico, fibra de vidrio, madera, etc. El material mas accesible
constituye las tinas circulares de plástico con un diámetro de 50 cm. a más,
según la densidad de la población de peces a colocarse.
No es recomendable utilizar acuarios de vidrio por su transparencia que les
incomoda y les produce stress.
Es necesario contar con algunos materiales como baldes pequeños, calcales,
coladores, etc.
Se debe contar con algunos equipos mínimos como: balanza tipo Ohaus,
termómetro, oxímetro, equipo de análisis de agua, ictiómetro y otros.
II.- ACONDICIONAMIENTO DEL HÁBITAT
-
El nivel del agua en el recipiente, es suficiente de 25 a 30 cm de altura.
El fondo, tapizado con arena fina y lavada.
En el fondo se colocan unos cobertizos o escondites, hechos con piedras
planas y largas, sostenido sobre otras piedras de menor tamaño para formar
pequeños túneles.
En la superficie del agua se colocan macrófitos acuáticos como: Elodea
potamogeton y Myriophyllum quitense lo cual se va cambiando
semanalmente.
Es indispensable contar con aireadores eléctricos de acuario.
III.- OBTENCIÓN Y ACOPIO DE ESPECIMENES VIVOS
La obtención y acopio de especimenes vivos, es posible en los mismo lugares de
pesca y en puntos de comercialización. El acopio de especímenes en puntos de
comercialización, es posible por cuanto el tiempo de resistencia de estos peces
fuera del agua, es de 4 a 5 Hrs después de su captura, aún en condiciones no
apropiadas de su manipuleo y transporte (atados y latas).
Al acopiar especímenes vivos, es necesario llevar consigo recipientes con agua
limpia del lago, río o de pozo, no tratadas con productos químicos. Al recipiente con
agua, se agrega un poco de macrófitos acuáticos.
IV.- REAVIVAMIENTO DE ESPECÍMENES
Este proceso es necesario en casos cuando la obtención de especímenes vivos
se hace en los puntos de comercialización (mercados, k’atos, etc.).
Por la forma de su captura, con redes agalleras, por el manipuleo y por la forma
3
inadecuada de su transporte; los “suches y mauris” llegan a los centros de
comercialización como muy debilitados. Por estas razones, aún de haberlo
recepcionado en recipientes con agua, es necesario hacer las siguientes
operaciones:
El proceso de reavivamiento o recuperación vital, se refiere a que una vez
obtenido los especímenes vivos, es necesario:
- Trasladarlos a un recipiente amplio que puede ser una tina de plástico u otro
material.
- Hacer la homogenización y cambio total del agua.
- En el fondo, adecuar refugios de piedra
- En la superficie del agua colocar un poco de macrófitos.
- Colocar en el recipiente la mayor cantidad de aireadores posibles (3 – 4).
- Colocar a los peces para que se reaviven o recuperen por un tiempo de 2 a
3 Hrs. antes de su transporte hacia su destino final.
En caso de no contar con ambiente disponible y no contar con oxigenadores:
-
El proceso de reavivamiento se realiza llevando el recipiente con peces a un
río, riachuelo u otra fuente de agua limpia y corriente.
De estar cerca de un río, el recipiente acondicionado contenedor de peces,
se coloca al río en un lugar con corriente moderada y que el agua cubra
unos 2 a 3 cm sobre el recipiente.
Tener cuidado que no escapen los peces que generalmente se quedan en el
fondo y debajo de sus escondites.
Mantener a los peces de 2 a 3 Hrs antes de su transporte hacia su destino
final.
V.- TRASPORTE DE ESPECÍMENES VIVOS
Luego de cumplir con el proceso de reavivamiento o recuperación vital, los peces se
encuentran en mejores condiciones para ser transportados hacia su destino final.
En caso de nuestras experiencias, los lugares de acopio fueron los distritos de
Pomata, Juli e Ilave que distan en 90 km. de la ciudad de Puno (destino).
-
Para el trasporte propiamente, el recipiente contenido de agua, macrófitos y
peces, se cubre y amarra con una tela limpia, para que no se salga todo el
agua y no se escapen los peces.
Estando en ruta, en el lugar mas cercano donde se encuentre agua limpia, es
necesario agregar agua al recipiente y oxigenar, haciendo caer el agua desde
cierta altura. En nuestro caso, luego de llegar al punto mas cercano al Lago
Titicaca (sector Ojerani) a mas o menos 80 km. de viaje desde el centro de
acopio, se agregó y oxigenó el recipiente de trasporte de peces, con agua del
lago. De esta manera llegaron todos los peces vivos hasta su destino final, la
ciudad de Puno.
VI.- SIEMBRA DE ESPECÍMENES EN EL HABITAT DE RECEPCIÓN
- Una vez llegado al destino final, los especimenes vivos son colocados
(sembrados) en el hábitat debidamente acondicionado para la recepción y
mantenimiento.
- Antes de colocar los peces a su nuevo hábitat, previamente en forma gradual,
se mezcla el agua del recipiente de transporte, con agua nueva de la fuente en
4
la cual se mantendrá a los especímenes.
- Luego de ser transportados y sembrados (colocados) en su nuevo hábitat
artificial, se sienten “mejor”, sin embargo, el primer día y noche se les deja en
quietud absoluta y sin suministrarles alimentos.
- La densidad de siembra de especímenes con una talla promedio de 18 cm, es
de 10 ejemplares por m2. . Esta densidad se mantiene siempre y cuando se
tenga el recambio de agua cada 24 Hrs, cuando el oxígeno disuelto se
mantenga de 5 a 6 mg/l, el pH de 7 a 8, y la temperatura de 10 a 15 º C
- Una vez sembrado los peces en su nuevo hábitat, (tinas de plástico) es
recomendable taparlos con tapa oscura.
VII.- SEXADO
Al momento de sembrarlos, es necesario previamente pesarlos, medirlos (longitud
total y longitud estándar) y sexarlos, para así saber la composición de la población
en observación y su correspondiente seguimiento.
- En los trichomycteridos del lago Titicaca, existe dimorfismo sexual.
- Las hembras son de tallas mas grandes que los machos.
- Las hembras cuando están grávidas tienen su vientre abultado.
- El sexado propiamente se hace por rasgos morfológicos.
- El poro genital de los machos es más prominente que en el de las hembras.
- Al presionar su vientre – cerca del poro genital – forma como una tetilla lo
cual no ocurre en las hembras.
VIII.- ALIMENTACIÓN
-
-
A 24 horas de mantenimiento en cautiverio, se le suministra alimento natural
vivo, consistente en Hyalella sp. “camaroncillo del lago” y Lumbricus
terrestris “lombrices”, los cuales son rechazadas inicialmente, hasta por 2 a 3
días.
Algunos ejemplares, se someten a un ayuno forzado, hasta 5 – 6 días, lo cual
es posible gracias a que estos peces son grasos y durante su ayuno, utilizan
sus reservas energéticas.
Después de 6 – 7 días de cautiverio, se nota que gradualmente y de manera
limitada empiezan a consumir el alimento natural que se le suministra.
Los alimentos solo son aceptados de organismos vivos, y en caso de las
lombrices a los más pequeños.
El consumo de alimento lo realizan en horas de la noche o en momentos de
completa quietud.
IX.- REPRODUCCIÓN
Los aspectos reproductivos de los especímenes, durante su proceso de
adaptación, se muestran en los siguientes aspectos:
-
La madurez sexual, se observa en base a una escala de seis grados.
Se determina el índice gónado somático IGS.
La composición de sexos, en los peces en adaptación son de 8 hembras
por 2 machos, en caso de nuestras observaciones.
Durante el proceso de adaptación en cautiverio, las hembras aptas, llegan a
desovar.
5
X.- SANIDAD
-
-
En los aspectos profiláticos o preventivos, se realiza el cambio de agua cada 24
Hrs, limpieza general del hábitat artificial cada 7 días.
Separación de lombrices muertas que fácilmente son atacadas por hongos.
En el aspecto terapéutico, después de 10 - 15 días de mantenerse en cautiverio,
los peces más dañados en el opérculo y la aleta pectoral, como consecuencia
de su captura con redes agalleras, son atacadas por los hongos; lo cual se trata
con una solución de verde de malaquita al 2 ppm. y en otros casos, con
pinceladas de mertiolatie.
Algunos especímenes que pronto llegan a morir, al ser diseccionados
muestran traumatismos y hemorragias internas.
XI.- CONDUCTAS
-
-
-
Los primeros días en su nuevo hábitat, los peces se sienten incómodos y
débiles; su debilidad se manifiesta cuando al manipularlos no ofrecen mayor
resistencia, sus movimientos en el agua son lentos.
Pasado más de 10 días, se nota un cambio en la conducta de los peces, al
parecer se van habituando.
Sus movimientos son más rápidos, durante su manipuleo ofrecen resistencia
hasta que algunos tratan de saltar fuera del agua.
El “suche” y el “mauri” son tímidos y huraños, estando en cautiverio prefieren
mantenerse en sus refugios, preparado con piedras.
Durante el día, tienen muy poco movimiento.
Durante la noche, sus movimientos son más activos.
Los alimentos naturales que se le suministra “camaroncillos” y “lombrices” lo
consumen de noche.
Son muy sensibles a los cambios bruscos del agua, que le producen un shock;
que en algunos ejemplares se observa una reacción con requiebros corporales
como si estuvieran acalambrados, volviendo a su normalidad luego de
homogenizarse el agua y estabilizarse las condiciones de su ambiente artificial.
Cuando la concentración de las soluciones antimicóticos (hongos) son fuertes
también les produce un shock.
Los peces muestran exigencia permanente a la concentración del oxígeno
disuelto en el agua. Cuando no se hace recambio de agua oportuno o en casos
extremos se quiten los oxigenadores, los peces se inquietan de inmediato.
Al disminuir la concentración del oxigeno disuelto y variar otros parámetros
físico químicos del agua como el pH, ºT, etc., los primeros que reaccionan e
inclusive empiezan a morir son los “camaroncillos”, seguidamente los peces que
al final tratan de ponerse en posición vertical tomar el oxigeno del aire.
El límite de tolerancia a la concentración del oxígeno disuelto para el “suche y
mauri” en proceso de adaptación es de 2 mg/l; frente a la cual reaccionan con
conductas arriba señaladas y finalmente mueren.
Algunos ejemplares que definitivamente se resisten a alimentarse mueren por
inanición, lo cual se muestra al ser diseccionados y tener el grado 0 (cero) de
replección gástrica y grado 0 (cero) en grasa.
6
XII.- CARACTERÍSTICAS FÍSICO QUÍMICAS DEL AGUA
-
-
El agua que se utilizó en el proceso de adaptación del “suche y mauri”,
consideramos que no es lo más óptimo ya que no fue elegido de manera
especial para estos peces, sino que se utilizó en base a los criterios de ser agua
de poza no tratada con productos químicos y por su disponibilidad en la UNAPuno.
Las características generales del agua utilizada se muestran en la tabla Nº 01,
mientras que los valores promedios de algunas características específicas de
nuestras observaciones se muestran en la tabla Nº 02.
TABLA Nº 01
CARACTERÍSTICAS FÏSICO-QUÍMICAS DEL AGUA QUE SE UTILIZÓ
PARA EL PROCESO DE ADAPTACIÓN DE LOS TRICHOMYCTERIDOS
DEL LAGO TITICACA
MESES
PARAMETROS
Setiembre
Octubre
Noviembre
Diciembre
Temperatura (ºC)
Oxígeno (O2)
pH
13.4
5.5
7.5
13.8
5.8
7.4
14.0
6.2
7.6
14.5
6.3
7.7
Fuente: Autor
TABLA Nº 02
VALORES PROMEDIO DE LAS CARACTERÍSTICAS FISICO – QUÍMICAS
DEL AGUA DURANTE EL PROCESO DE ADAPTACIÓN DE LOS
TRICHOMYCTERIDOS DEL LAGO TITICACA
MUE ST RA
DAT OS GENERAL ES
Procedencia
UNA – PUNO
Muestreo
24-10-2000
Análisis
25-10-2000
CARACT ERÍST ICAS ORGANOL ÉPT ICAS
Aspecto
Líquido transparente
Color
Incoloro
Olor
Inodoro
Sabor
Insípido
CARACT ERÍST IC AS F ÍSICAS
pH
7.6
CARACT ERÍST ICAS QUÍMICAS
Dureza total como Ca CO3
440.36 mg/l
Alcalinidad total como Ca CO3
118.92 mg/l
Cloruros como Cl
101.69 mg/l
Sulfatos como SO4
89.00 mg/l
Nitratos como NO3
Positivo
Calcio como Ca++
150.29 mg/l
Magnesio como Mg++
15.71 mg/l
Sólidos totales
542.05 mg/l
Fuente: Laboratorio de Quimica UNA – Puno, 2001.
7
XIII.- RECOMENDACIONES
1. Obtener reproductores por capturas directas, utilizando aparejos activos de
pesca, chinchoros.
2. Profundizar estudios sobre la Bioecología de los trichomyctéridos del lago
Titicaca.
3. Diseñar medios especiales para el acopio y transporte de los especímenes
vivos.
4. Diseñar infraestructura especial para el proceso de adaptación.
5. Preveer y garantizar los alimentos vivos para el proceso de adaptación.
6. Preveer y garantizar los medicamentos correspondientes.
7. Contar con materiales y equipos mínimos para el control y seguimiento
respectivo.
8. Contar con una movilidad propia para el transporte de peces vivos.
XIV.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.
-
BARDACH, R.M. 1982. “Acuacultura”; Cap 06. cultivo de bagres en EE.UU,
Pag. 129 –167; Cap 07: Cultivo de Bagres Nativos de Asia, Autralia y
Europa. Pág. 168 – 177.
-
CHERFAS, B.I. 1956. “Piscicultura en Acuatorios Naturales”; Cap V.
Reproducción Artificial de Peces Comerciales. Pág. 90 – 280.
-
DOROJOV, C.M. et al 1975. “Piscicultura en estanques”; Cap. 15; Procesos
Principales de la Piscicultura en Estanques. Pág. 181- 205.
-
MARTISHEV, F.G. 1973. “Piscicultura en Estanques” 426 Pág.
-
MIPE, 1984. Dirección Nacional de Acuicultura; “Cultivo de Peces
Amazónicos”; Boletín de Información Técnica. Doc. Nº 06 Lima, Perú. 43
Pág.
-
NIKOLSKY, G. V., 1971. “Ictiología Especial”. Sub orden Siluroidei Pág.
264-272
-
NIKOLSKI, G. V. 1973. “Ecología de Peces”; 366 Pág.
8
9
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
CONSTRUCCIÓN Y
ADECUACIÓN DE ESTANQUES
PARA
Trichomycterus rivulatus “suche” y
Trichomycterus dispar “mauri”
Ph. D. Sabino Atencio Limachi
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 08
Diciembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERÚ
0
PRESENTACIÓN
L os estanques constituyen la infraestructura básica en la piscicultura; las que
tienen que responder a las características bioecológicas de la especie a
cultivarse.
El IIP Qollasuyo y el CIPP Chucuito-UNA-Puno dentro del marco del Proyecto
PER/98/G-32 “Conservación de la Biodiversidad en la cuenca del TDPS”,
propone una alternativa tecnológica para la construcción de estanques,
destinado al mantenimiento y cultivo de especies ícticas nativas del lago Titicaca.
Es necesario que los pescadores y todos los pobladores de la cuenca del lago
Titicaca, consideren a la piscicultura de especies ícticas nativas, como una
perspectiva potencial de la actividad socio-económica en el Altiplano, la que
implique la preservación de las especies en peligro de extinción y una posibilidad
de diversificar la actividad productiva en la cuenca del lago Titicaca. En este
contexto, ofrecemos la presente “Guia Práctica” sobre la construcción y
adecuación de estanques para los trichomycteridos “suche” y “mauri”. Los
costos, pueden ser minimizados por cuanto en muchos lugares existe a
disposición materiales de construcción como piedras, hormigón y arena; asi
mismo la mano de obra podrá ser aporte del interesado.
1
I. DISEÑO DE UN ESTANQUE
El diseño de una infraestructura, corresponde a las caraterísticas bioecológicas de
la especie íctica, así como a la disponibilidad y caracteristica del recurso suelo-agua.
a) Forma del estanque:
- Rectangular
- Circular
- Poligonal
b) Tipo de Estanque.- Se refiere a la forma de su construcción y pueden ser:
- Por excavación (caso de la presente propuesta)
- Por edificación
c) Para determinar las dimensiones debe considerarse:
- Cantidad de peces a mantenerse o cultivar.
- La edad y talla de los peces (categoría de estanques)
En nuestro caso se considera:
Forma
: Rectangular
Tipo
: Por excavación.
Largo
: 10.60m (exterior)
Ancho
: 03.00m (exterior)
Altura
: 0.90 m.
(Estanque con fines de investigación y producción)
II.- CONSTRUCCIÓN DE UN ESTANQUE
Comprende los siguientes aspectos:
a) Ubicación
Los estanques deben estas ubicados en:
Cerca de una fuente de agua
El agua debe ser disponible en cantidad y calidad necesaria.
El terreno debe tener una pendiente moderada, para la circulación del
agua y su correspondiente oxigenación (menores a 10º)
El estanque debe estar ubicado en un terreno semi permeable, para
evitar o controlar la filtración.
Los estanques deben ubicarse en terrenos que no compitan con la
agricultura y ganadería, salvo que ofrezcan una alta y sostenible
rentabilidad.
b) Levantamiento de los taludes
Constituyen las paredes del estanque, que pueden ser: vaciado con
cemento o emboquillado con piedras y cemento. Para darle mejor
funcionalidad, los taludes tienen una inclinación aproximada de 3% y su
superficie debe quedar uniforme o lisa.
2
c) Dimensiones interiores del estanque
Una vez concluido los taludes, el estanque queda con las siguientes
dimensiones:
- Largo
10.00 m.
- Ancho superior
2.70 m.
- Ancho inferior
2.50 m.
- Altura en la entrada de agua
0.80 m.
- Altura en la parte media
0.90 m.
- Altura en la parte de la salida de agua
0.90 m.
- Pendiente del estanque
3%
d) Materiales a utilizar
-
Piedras
Arena
Hormigón
Cemento
16 m3
01 m3
03 m3
16 bolsas
Otros materiales complentarios como: madera, clavos alambre, tubos de
PVC, pegamento, etc.
e) Fondo del estanque
Considerando que el estanque propuesto tiene caracter experimental y de
producción, se diseña con tres secciones, la primera en la parte de la
entrada del agua, como zona para el mantenimiento de alevinos y juveniles
de trichomycteridos; la segunda zona para la producción del alimento
natural (fito y zooplancton); la tercera zona diseñada para cobertizos y
escondites de adultos y reproductores.
III. ADECUACIÓN DEL ESTANQUE
Antes de colocar a los peces, el estanque debe estar adecuado y preparado
para la recepción de los especímenes. La adecuación incluye los siguientes
aspectos:
a) Sanidad
Consiste en tomar las medidas profilácticas que incluyen:
• Remoción del piso y limpieza de las raices y restos de vegetales, piedras
y elementos extraños.
• Secado del piso, por lo menos 2 días.
• Desinfección de los taludes y el fondo del estanque con cal viva.
b) Hábitat
Consiste en preparar el fondo de acuerdo a la bioecología de la especie y la
producción de alimento natural. Esta abarca los siguientes aspectos:
3
1.- Preparación del fondo; comprende:
Preparación del sustrato para el desarrollo de fitoplancton, zooplancton y
macrófitos. El sustrato debe tener 4 capas cada uno de 3 a 5 cm de
espesor, las que den tener las siguientes características:
Primero: tierra arcillosa, segundo: tierra negra, tercero: abono orgánico
(estiercol de cerdo o ave) y cuarto: tierra negra.
2.- Preparación del filtro natural.- Debe estar constituido por tres capas de
arena de diferente espesor entre 3 a 5 cm. Empezando del fondo las capas
son: primero arena fina lavada, segundo cascajo grueso de 3 - 6 mm de
diámetro y tercero una capa superficial de cascajo (tipo hormigón) de
piedras planas de 10 a 20 mm de diámetro.
3.- Plantación de macrófitos.- De acuerdo al hábitat de la especie se realiza la
plantación de macrófitos: Elodea potamogeton “llachu” y Myriophyllum
elatinoides “hinojo”, Schoenoplectus tatora “Totora”, Chara sp, etc.
4.- Preparación de cobertizos.- considerando que los trichomycteridos son
huraños y de hábitat bentónico, requiere de refugios; por lo que es
necesario preparar una zona de penumbra y cobertizos, con piedras largas
y planas.
5.- Siembra de alimento natural.- Antes de sembrar peces en el estanque, es
necesario tener organismos que constituyan el alimento natural de los
trichomycteridos; en este caso zooplancton: Hyalella sp “camaroncillo del
lago”, Daphnia sp “pulga de agua”, fitoplancton y otros.
6.- Siembra de peces.- finalizada la adecuación del estanque, luego de 2 - 3
días, se procede a sembrar los peces y a partir de ese momento se hace el
seguimiento del proceso de su adaptación en cautiverio.
IV.- COSTO DE CONSTRUCCIÓN
DE T ALLE
1. Materiales
Piedra
Cemento
Hormigón
Arena
Madera
Tubo PVC
Alambre Nº 16
Clavos 2 ½ “
Unidad de Med ida
Costo Unitar io
S/.
Pr ecio T otal
S/.
Cantidad
687.40
m3
Bolsas
m3
3
m
Unidad
Unidad
Kg.
Kg.
16.90
17.30
30.00
30.00
3.00
10.00
2.20
2.00
16
16
3
1
2
1
1
1
Viaje
20.00
6
120.00
2. Transporte
Trans. materiales
120.00
315.00
3. Mano de obra
Maestro de obra Peón
270..40
276.80
90.00
30.00
6.00
10.00
2.20
2.00
Jornal
TOTAL
15.00
21
315.00
S/. 1122.40
Fuente: IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito, 2000 – 2002
4
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
DISEÑO DE AHUMADOR
ARTESANAL
PARA
ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS
DEL LAGO TITICACA
Ing. Pesq. Maria del Rosario Roncal Gutiérrez
Ph. D. Sabino Atencio Limachi
Blgo. René Alfaro Tapia
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 09
Diciembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 - PERU
0
INTRODUCCIÓN
Una de las actividades del Subcontrato 21.24 “Desarrollar la Capacidad de
Programas de Pesca Artesanal en el Ámbito Peruano” del Proyecto PER/98/G-32
“Conservación de la Biodiversidad en la Cuenca del Lago Titicaca – Desaguadero
– Poopo – Salar de Coipasa (TDPS)”, es el de desarrollar una tecnología al
alcance y uso de los pescadores artesanales, para darle mayor valor agregado al
producto pesquero que capturan en el lago Titicaca.
Una de las formas de preservación de los productos hidrobiológicos es el
AHUMADO, forma que se usó por las culturas chinas y egipcias, las mismas que
podrían tener un uso masificado en el ámbito de la población ribereña del lago
Titicaca.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
I. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Las capturas de peces en el altiplano peruano – boliviano son de gran volumen,
pero los pescadores artesanales tienen la desventaja de desconocer algunos
métodos que en muchos lugares son de uso frecuente.
La preservación de los productos pesqueros tiene la finalidad de tener un tiempo
más prolongado, para poder realizar su comercialización y darle un mayor valor
agregado, lo que permitirá elevar la condición de vida del pescador artesanal, por
lo que se plantea desarrollar alternativas de aspectos tecnológicos como el caso
del ahumado del pescado.
II. OBJETIVOS
•
•
Inhibir el crecimiento bacteriano mediante el ahumado del pescado
Dar mayor valor agregado al producto pesquero.
III. ALCANCES
Con el diseño y construcción de un ahumador artesanal se propone alcanzar los
siguientes beneficios:
Preservar el producto pesquero.
Manejo y transporte adecuado de los productos pesqueros.
Dar mayor valor agregado al producto.
Ampliar el mercado de los productos hidrobiológicos.
-
IV. MATERIALES
-
Cilindro de latón.
Varillas de fierro (10 metros).
Tubería de latón de 4 pulgadas de diámetro.
V. DISEÑO
-
VII
El diseño del ahumador artesanal se alcanza en plano que se adjunta.
El manipuleo del ahumador es de uso y operatividad no complicado, lo que
garantizará una adecuada forma de preservación.
CALCULOS
Ahumado en Frío
-
Los tiempos de ahumado en promedio son mayores a 6 horas.
La pérdida de peso está en rangos de 10 a 20%.
Temperatura de 25 a 30 oC.
Ahumado en Caliente
-
Los tiempos de ahumado en promedio son menores a 6 horas.
La pérdida de peso está en rangos de 10 a 20%.
Temperatura de 60 a 80 oC.
2
Ventana
10 cm.
20 cm.
Ventana
65 cm
10 cm.
20cm.
20 cm.
Topes de bastidores
20 cm.
5cm
40 cm.
10 cm.
8 cm
20 cm.
HOGAR
40 cm.
Visagra
10 cm.
Visagra
38 cm.
10 cm.
58 cm.
20 cm.
BASTIDOR
24 cm.
HORNO
10 cm.
Ventana
con tapa
Tapa del
Ahumadero
Anillo de Bastidor
Asoc. IIP QOLLASUYO - CIPP CHUCUITO UNA-PUNO
Dim ensión
Fecha:
en c entímetros
Puno, enero del 2001
3
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
PROCESOS PARA:
REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL
DE
Orestias luteus, Orestias agassii y
Orestias ispi
Lic. Blgo. Brígida Paca Pantigoso
Lic. Blgo. René Chura Cruz
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 10
Diciembre
AÑO 2000
PUNO – 2000 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
Para garantizar la conservacion y aprovechamiento sostenible de las especies
ícticas nativas del lago Titicaca es necesario comprometer a las Instituciones del
Sector y la población ribereña.
La Asociación IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA - Puno, esta comprometida
en estudiar y validar el proceso de reproducción de las Orestias. En esta
oportunidad ofrecemos la Guía de Capacitación “Reproducción Artificial de
carachi amarillo, carachi negro e ispi” con los resultados de los trabajos de
investigación que se ha realizado.
La transferencia de conocimientos a los pescadores debe ser sencilla, por lo cual
el lenguaje que utilizamos esta en función a este objetivo.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
PROCESOS PARA LA REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL DE
Orestias luteus, Orestias agassii y Orestias ispi
1. OBTENCIÓN DE REPRODUCTORES
En la actualidad no se cuenta con un plantel de reproductores en ninguna
Institución o Centro de Investigación, por lo que la obtención de reproductores de
Orestias, motivo de nuestro trabajo se hizo adquiriendo especímenes vivos de
los pescadores. Por la práctica de pesca, las Orestias son capturadas con redes
agalleras de 1 ¾ y 2¼” para “carachi amarillo” y “carachi negro”; y 5/8” - 1
pulgadas para “ispi”, las que son caladas en horas de la tarde y cobradas al día
siguiente en la mañana, con una permanencia promedio de captura de las redes
de 13 horas. Los reproductores para nuestro trabajo fueron acopiados en el
Muelle Barco de la localidad de Chucuito y península de Chucuito. Otro punto de
acopio fue la comunidad de Vilca Maquera del distrito de Pilcuyo, provincia de El
Collao.
2. TRANSPORTE DE PECES VIVOS
Una vez cobradas las redes, se procedió a extraer los reproductores tratando de
no dañarlos y se colocó en recipientes con agua del lago y macrófitas; luego se
cubrieron los recipientes con una tela oscura.
El recipiente se adecuó en la movilidad para transportarlo al centro de
reproducción artificial, oxigenando el agua durante el traslado, para evitar la
muerte de los peces por anoxia. En los casos de Orestias ispi “ispi” y Orestias
pentlandii “boga”, son especies que requieren altas concentraciones de oxígeno
disuelto.
3. SELECCIÓN DE REPRODUCTORES PARA EL DESOVE
Se realiza la selección para la reproducción artificial, considerando los siguientes
aspectos:
-
Selección por sexos,
Selección de los ejemplares de mayor talla y peso,
Selección de peces en V estadio de madurez sexual (aptos),
Aspecto morfológico normal,
Productos sexuales sin rasgos de sangre, heces u otras impurezas.
4. MATERIALES Y EQUIPOS PARA LA INCUBACIÓN Y FECUNDACIÓN
Para el proceso de reprodución artificial se utilizó los siguientes materiales,
equipos y reactivos:
- Recipientes para reproductores seleccionados,
- Baldes medianos,
- Fuentes aporcelanadas y placas petri para la recepción de ovas, semen y la
fecundación artificial,
- Plumas de ave y pinceles pequeños de pelo natural fino,
- Probetas de 50 y 100 ml,
- Agua destilada,
- Mortero pequeño (almirez y mango),
- Coladores pequeños de malla fina,
- Estuche de disección,
- Franela y servilleta limpia,
2
-
Vasos de incubación de flujo vertical tipo Chasse,
Bombillas de jebe con tubo de vidrio,
Solución de verde de malaquita,
Vernier,
Aireadores,
Soporte para los vasos de incubación.
5. CARACTERÍSTICAS DE LOS PRODUCTOS SEXUALES
Los productos sexuales de las diferentes especies del género Orestias, deben
presentar las características que se especifican en el cuadro Nº 01.
CUADRO Nº 01
CARACTERÍSTICAS DE LOS PRODUCTOS SEXUALES DE ORESTIAS
SEXO
GRADO
MADUREZ
SEXUAL
DIÁMETRO
OVA
( mm)
COLOR OVAS
COLOR
SEMEN
Orestias luteus “carachi amarillo”
MACHOS
HEMBRAS
V
V
MACHOS
HEMBRAS
V
V
MACHOS
HEMBRAS
V
V
MACHOS
HEMBRAS
V
V
Blanco lechoso
1.5 – 2.0
Amarillo
Orestias agassii “carachi negro”
Blanco lechoso
1.5 – 1.8
Amarillo transparente
Orestias ispi “ispi”
Blanco lechoso
1.0 – 1.2
Amarillo transparente
Orestias pentlandii “boga”
Blanco lechoso
1.5 – 1.8
Amarillo transparente
Fuente: Asociación IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno, 2000 – 2002.
El diámetro de ovas es diferente para cada especie en función a la talla y
madurez sexual. El color de las ovas en Orestias va entre amarillo y amarillo
transparente; mientras que el semen es de color blanco lechoso para el V
estadío y blanco pálido en el VI estadio.
6. PROCESO DE DESOVE Y FECUNDACIÓN
El desove se realiza por el método de la trascolación, que consiste en friccionar
suavemente el vientre de los reproductores, empezando en la parte pectoral,
para avanzar hacia la parte del poro genital.
En la fecundación se utiliza el método seco, que consiste en recepcionar las
ovas aptas en un recipiente seco, al cual se agrega el semen del macho que es
distribuido y mezclado sobre las ovas con ayuda de una pluma de ave, con
movimientos circulares hasta que se logre fecundar el mayor porcentaje posible;
enseguida se agrega agua y se lava repetidas veces, para luego ser colocadas
en la incubadora.
3
6.1. Desaglutinación de las ovas fecundadas
Las ovas de las Orestias son adherentes, cuentan con filamentos en forma de
cilios y racimos. Luego de la fecundación, y a fin de desaglutinar se agrega
agua, formándose grumos o racimos, que son separados o desaglutinados en
forma mecánica.
Las ovas separadas se lavan con agua hasta que queden limpias, luego se deja
en reposo durante 15 a 20 minutos para completar el proceso de hidratación.
Finalmente las ovas fecundadas son contadas por cualquiera de los métodos:
gravimetrico, volumétrico o conteo directo.
6.2. Incubación y desarrollo embrionario
La incubación es el proceso biológico que comprende la fecundación, el
desarrollo embrionario y termina con la eclosión (nacimiento). Este proceso dura
de 30 a 40 días, dependiendo de la temperatura del agua.
En el caso de las Orestias ispi “ ispi”, estas etapas tienen una duración de 30 a
46 días, dependiendo básicamente de la temperatura del agua. En el caso de
Orestias luteus y Orestias agassii este período de incubación es de 20 a 43
días
La incubación en las ovas fecundadas de Orestias, se hizo en incubadoras de
flujo vertical “vasos tipo Chasse”, al cual se colocaron en promedio de 2000 a
3000 ovas fecundadas.
GRAFICO Nº 01
VASO DE INCUBACION TIPO CHASSE
Durante el desarrollo embrionario de Orestias ispi “ispi”se distinguen las
siguientes etapas:
4
6.2.1. Ova fecundada
FOT O N° 01. Vista frontal de la formación del blastodisco y el espacio vitelino, en esta
foto se observa la disposición de blastodisco en la ova , que es de forma
esférica y con apariencia de una gota de aceite, esta se forma a los 2
días de fecundación del oocito tiene un color amarillo transparente.
6.2.2. Formación del eje embrionario y los órganos rudimentarios
FOT O N° 02. De 7 a 8 días se observó la formación del eje embrionario, los órganos
rudimentarios, la formación del saco vitelino y esbozos de notocordio que
rodea el embrión, este con presencia de pigmentos no muy oscuros.
5
6.2.3. Segmentación de la sección anterior del cuerpo
FOT O N° 03. A los 9 y 10 días se percibió la segmentación de la sección anterior del
cuerpo, formación de la vesícula cefálica, las vesículas oculares, la
pigmentación aumenta de forma irregular del pigmento que se distribuye
a lo largo del dorso del notocordio y el vitelo se dispone alrededor del
embrión.
6.2.4. Rompimiento de la tapa del vitelo
FOT O N° 04 . De 15 a 16 días aparecen los ojos, el rompimiento de la tapa del vitelo y
separación de la rudimentaria sección caudal se realizó con movimientos
lentos y esporádicos a medida que se desprendió el embrión del vitelo.
6
6.2.5. Pigmentación de los ojos e incio de la pulsación del corazón
FOT O N° 05 . Durante 20 a 25 días se observó la pigmentación de los ojos e inicio de la
pulsación del corazón, desarrollo del sistema vitelino – intestinal, apertura
de la cavidad bucal, aparición de opérculos y formación rudimentaria de
las aletas.
6.2.6. Eclosión
FOT O N° 06. Eclosión (nacimiento) de 30 a 40 días, la larva en el momento de la
eclosión mide aproximadamente de 3 a 3.5 mm. El peso del saco vitelino
le impide la flotación por lo que permanece en el fondo de la incubadora.
La reabsorción del saco vitelino duró de 7 a 10 días, donde las larvas
pasan a ser alevinos.
7
7. LARVAJE
Se denominan larvas a los embriones libres (eclosionados) que aun no se parecen
a un pez adulto, se caracterizan por tener un saco vitelino en forma de una bolsa en
el vientre, la misma que contiene sustancias nutritivas procedentes de la ova
fecundada y que constituye la única fuente de energía y alimentación del pez
durante los primeros días de su vida, en que su aparato digestivo aún no reune
condiciones para asimilar alimentos exógenos.
La eclosión se produce cuando se completa el desarrollo embrionario y el
embrión se vuelve activo, rompiendo el tejido de la ova (corion). No todos los
embriones eclosionan en un solo día, demoran hasta 6 días, dependiendo de la
temperatura del agua.
Al embrión eclosionado se le conoce como larva y se caracteriza por tener un
saco vitelino que le sirve como fuente de alimentación endógena. La reabsorción
del saco vitelino se inicia inmediatamente después de la eclosión de la larva,
esta, depende de la temperatura del agua y del tamaño de la ova.
En cuanto a su conducta, las larvas de las Orestias se caracterizan por que
durante los primeros días después a su eclosión, permanecen en la superficie
del fondo formando aglomeraciones que poco a poco se hacen mas sueltos
hasta que empiecen a nadar paulatinamente, lo cual ocurre cuando el tamaño
de su saco vitelino se ha reducido en casi la mitad.
Longitud total
Longitud estandar
Ojo
Melamositos
Aleta caudal
Zona opercular
Cavidad viceral
Boca
Aletas pectorales
Longitud de la
Cabeza
Ancho del cuerpo
8. ALEVINAJE
La reabsorción del saco vitelino para las cuatro especies es entre 5 a 8 días, a
una temperatura de 13º C, llegando hasta 10 días para temperaturas bajas
El alevino, inicialmente, es un pez pequeño que morfológicamente, aún no se
asemeja totalmente a un pez adulto, su coloración no es tan característico en
cada especie. Los alevinos a partir de esta etapa necesitan de una alimentación
exógena.
8
9
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ELABORACIÓN DE
CONSERVAS
DE
Orestias agassii “carachi negro” y
Orestias luteus “carachi amarillo”
- Salsa de tomate
- Grated en aceite
Lic. Blgía. René Chura Cruz
Lic. Blgía. Brígida Paca Pantigoso
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 11
Febrero
AÑO 2001
PUNO – 2001 – PERÚ
0
INTRODUCCIÓN
Dentro de los objetivos a cumplir por el Subcontrato 21.24 “Desarrollar
Programas de Pesca Artesanal en el Ambito Peruano del Sistema TDPS”, es el de
realizar la transformación de especies ícticas nativas.
Una presentación del pescado es la conserva; que es una forma para mantener
por más tiempo; adecuado para transportar este alimento a lugares más lejanos
y con mejores precios para nuestros “carachis”, “ispis” y “mauris”.
Las conservas se realizan desde 1795 y en nuestra región esta actividad tiene 40
años de práctica.
No obstante los resultados positivos de estos ensayos de conservas de Especies
Icticas Nativas, consideramos que no es recomendable su implementación en
forma comercial; porque ello significaría la depredación definitiva de nuestras
especies nativas, tal como ocurrió con la “trucha”, cuando se instalaron
conserveras en la década del 60.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA - Puno
1
I. CONSERVAS DE Orestias agassii y Orestias luteus
Se realizó en forma experimental conservas de las especies Orestias agassii
“carachi negro” y Orestias luteus “carachi amarillo” en salsa de tomate y grated
en aceite.
La materia prima estuvo compuesta por peces pertenecientes a las especies de
Orestias agassii “carachi negro” y Orestias luteus “carachi amarillo”, para
sacar 250 latas de conserva se necesita 70 kilos de pescado. Las latas utilizadas
fueron de hojalata.
II. SALSA DE TOMATE
2.1. Diagrama de flujo
El diagrama de flujo para Orestias agassii “carachi negro” y Orestias luteus
“carachi amarillo” en salsa de tomate es:
Materia Prima
Recepción y pesado
Lavado
Eviscerado
Lavado
Lavado
Lavado
Escurrido
Lavado de latas
Envasado
Pre cocción
Limpieza y escurrido
Adición de líquido de gobierno
Sellado
Lavado de latas
Esterilizado
Enfriado
Secado
Etiquetado y empacado
Almacenado
2
2.2. Materia prima
Las especies que se utilizaron como materia prima para la transformación en
conserva, fueron las que comúnmente se les conoce como “carachi negro” y
“carachi amarillo” en buenas condiciones.
2.3. Recepción y pesado
En la planta conservera se recepcionó la materia prima en cajas de plástico, para
inmediatamente realizar el pesado, obteniéndose un peso total de 70 kilos.
2.4. Lavado
El pescado entero es lavado con el objeto de retirar cuerpos extraños.
2.5. Eviscerado
Se hace un corte en la parte abdominal de los peces, para retirarles las vísceras;
previamente se eliminan las escamas, la cabeza y las aletas, dejando el pescado
para el proceso de transformación propiamente dicho, (los productos eliminados
pueden ser utilizados para el ensilado).
2.6. Lavado
Se lava el pescado para quitar residuos de sangre, mucus y otros.
2.7. Escurrido
El pescado es escurrido por 30 minutos antes de ser envasado.
2.8. Lavado de latas
Las latas
extraños.
vacías se lavan en agua tibia, para quitarles el polvo y cuerpos
2.9. Envasado
Se llenan estos envases acomodando los trozos de pescado tratando de no dejar
espacios libres; se pesa cada una de ellas hasta obtener un peso de 170 gramos.
Se toma las precauciones de limpieza para evitar la contaminación del producto.
2.10. Pre cocción
Se cocinan los trozos de pescado, a fin de disminuir los líquidos de la carne y
mejorar la textura del músculo.
2.11. Limpieza y escurrido
Se eliminan algunos elementos de la carne cocida para mejorar la presentación
de la conserva; y se escurre el líquido.
2.12. Adición del líquido de gobierno
Se adicionó salsa de tomate en una cantidad de 50 ml por lata
aproximadamente.
Para la elaboración de la salsa de tomate se hace un puré de tomate (sin
cáscara y semillas) con agua, aceite, pimienta, clavo de olor, hojas de laurel y
sal.
3
2.13. Sellado
El sellado se realiza con un sellador manual de latas, el que debe ser
controlado para garantizar un sellado que evite el paso de material que
contamine el producto.
2.14. Lavado de latas
Se procede al lavado de latas para eliminar la grasa que hubiera sido
derramada por efecto del sellado; esta actividad se realiza con agua caliente y
detergente, para luego enjuagar con agua varias veces.
2.15. Esterilizado
Se colocan las latas en canastillas, para ser introducidas en una marma por 75
minutos.
2.16. Enfriado
Se usa agua para reducir la temperatura de las latas .
2.17. Secado
Se secan los envases, especialmente los bordes del sellado para evitar que se
oxiden.
2.18. Etiquetado y empacado
Los envases son etiquetados y encajonadas, en cajas de cartón de una
capacidad de 48 latas.
2.19. Almacenamiento
Las cajas con el producto son almacenados por espacio de 40 días, para ver si
se inchan las latas.
4
III.- EN GRATED
3.1. Diagrama de flujo de la elaboración de conservas de Orestias agassii y
Orestias luteus en grated
Materia Prima
Recepción pesado
Lavado
Eviscerado
Lavado
Escurrido
Lavado de latas
Cocción
Molido
Envasado
Adición de líquido de gobierno
Sellado
Lavado de latas
Esterilizado
Enfriado
Secado
Etiquetado y empacado
Almacenado
El proceso de elaboración de grated, es similar al de la elaboración de
conservas en salsa de tomate, hasta el lavado de latas, con la diferencia que en
este proceso se utiliza la cocción, molido, envasado y el líquido de gobierno que
se adiciona es aceite.
5
3.1. Cocción
Los trozos de pescado tienen un cocimiento en la marma por un tiempo de 75
minutos.
3.2. Molido
Se saca el producto y se deja enfriar, en este paso se revisa esto para eliminar
escamas y otros cuerpos extraños que podrían observarse, luego de realizar
esta observación se procede al molido del músculo.
3.3. Envasado
La carne de pescado molida se coloca en los envases. Se pesan las latas con
el contenido hasta llegar a 160 gr por lata.
3.4. Líquido de gobierno
A los envases con el producto se les adiciona aceite en una cantidad de 30 ml
y 3 gr de sal.
6
7
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ELABORACIÓN DE SECO
SALADO
DE
Orestias ispi “ispi”
Equipo Profesional IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA Puno
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 12
Febrero
AÑO 2001
PUNO – 2001 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
El Seco Salado es una forma de preservar el pescado por más tiempo. Esta
forma de conservación se realiza desde nuestros antepasados; pero el presente
manual tiene algunas modificaciones que pueden ser utilizadas para mejorar
nuestro conocimiento de seco salado y preservarlo por más tiempo y darle al
producto mejores precios por la calidad del pescado.
Este aporte de tecnología modificada se debe al cumplimiento de los objetivos del
subcontrato 21.24 “Desarrollar Programas de Pesca Artesanal en el Ámbito
Peruano del Sistema TDPS”
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA - Puno
1
SECO SALADO DE Orestias ispi “ISPI”
Una de las formas de conservar a los pescados es el seco salado, logrando que
el producto tenga una mayor duración y así pueda ser transportado a otros
lugares o almacenados para su comercialización.
El principio del seco salado es el curado en sal en el que se elimina el agua y se
sustituye en gran parte con la sal.
1. Materiales
-
Sal
Ácido ascórbico
Lavadores
Bolsas de polietileno
Balanza
Rejillas de secado
Selladora al vacío
DIAGRAMA DE FLUJO DEL SECO SALADO EN Orestias ispi “ISPI”
Materia Prima
Lavado
Escurrido
Pre Tratamiento
Pila Húmeda
PRE TRATAMIENTO A
PRE TRATAMIENTO B
Segundo Salado
Oreado
Oreado
Desecado
Desecado
Emvasado y sellado
Embasado y sellado
Almacenado
P
Almacenado
2
2. Materia prima
Se realizó este experimento con “ispi” entero, el peso de inicio fue de 16.8
kilogramos, el que estuvo en buenas condiciones.
3. Lavado
Se procedió al lavado del pescado con el fin de quitarle cualquier materia extraña
que estuviera adherida a los peces.
4. Escurrido
Una vez lavada la materia prima se escurre por 10 a 15 minutos para proseguir con
el proceso.
5. Pre tratamiento
Se realiza un pre tratamiento de agua con sal y ácido ascórbico para evitar la
oxidación del pescado, para esto se utiliza.
-
Sal
Ácido ascórbico
Agua
0.750 Kg.
0.015 Kg.
5 lt.
Estos productos se disolvieron en agua, disponiendo el pescado en esta solución
por espacio de 10 minutos para ambos tratamientos.
6. Salmuera en pila húmeda
Este proceso tiene dos tratamientos, para lo cual la materia prima se divide en
partes iguales cada una con un peso de 8.2 Kg.
El pescado fue ordenado en una caja de fibra de vidrio colocando sal en el fondo,
una capa de pescado y una capa de sal sucesivamente, en forma ordenada. Las
concentraciones utilizadas fueron.
Materiales
Pescado
Sal
Tratamiento A
8.20 Kg.
2.52 Kg.
Tratamiento B
8.40 Kg.
3.36 Kg.
En el tratamiento A la cantidad de sal que se utilizó es del 30%, en referencia al
peso del pescado.
En el tratamiento B se usó el 40% de sal en referencia al peso del pescado.
El tiempo de duración del apilamiento fue de tres días, en ambos casos, luego de
lo cual se observó el estado del pescado y se escurre la salmuera.
7. Segundo pre tratamiento
Se realiza un segundo pre tratamiento de agua con sal y ácido ascórbico para evitar
la oxidación del producto, se utilizó las mismas concentraciones de sal y ácido
ascórbico que en primer pre tratamiento.
8. Segundo salado
En el tratamiento A se utiliza la pila seca con 20% de sal en relación a su peso
por 24 horas, en cambio en el tratamiento B se pasa directamente al oreado.
3
9. Oreado
Ambos tratamientos se dejan oreando por 15 minutos y luego se colocan en las
parrillas para hacerlos secar
10. Desecado
Los peces se colocaron en las parrillas en forma ordenada y se llevaron al
medio ambiente:
- Tratamiento A, se seca el producto por espacio de 9 días; obteniéndose un
promedio del 30% de seco salado en relación a la materia prima inicial.
-
Tratamiento B , el producto se deja por 12 días; obteniendo un promedio del
36% de seco saldo en relación a la materia prima inicial.
11. Envasado y sellado
Para tratamientos se envasó el producto en bolsas de plástico, las que luego
fueron selladas
12. Almacenamiento
El almacenamiento se hace al ambiente.
4
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ELABORACIÓN DE AHUMADO
DE
Orestias ispi “ispi”
Equipo Profesional IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA Puno
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 13
Febrero
AÑO 2001
PUNO – 2000 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
D entro de los objetivos a cumplir por el subcontrato 21.24 “Desarrollar
Programas de Pesca Artesanal en el Ámbito Peruano del Sistema TDPS”, hemos
considerado la transformación de las especies ícticas nativas del lago Titicaca,
para lograr un mayor tiempo de conservación de pescado para su
comecialización, así como para dar un mayor valor agregado al producto.
En esta ocasión presentamos una de las formas de transformación del pescado
que es el ahumado, para lo cual hemos diseñado un ahumadero artesanal que
puede estar al alcance del pescador artesanal de nuestro medio, con un costo
sumamente ecocómico.
El ahumado se realiza en frío y en caliente, pero en esta oportunidad les
explicamos en un lenguaje muy sencillo, el ahumado en caliente, que fue
experimentado previamente por el equipo profesional de la Asoc. IIP Qollasuyo CIPP Chucuito UNA Puno.
Asoc. IIP Qollasuyo – CIPP Chucuito UNA Puno
1
AHUMADO De Orestias ispi “ISPI”
Actualmente las especies ícticas del lago Titicaca se puede transformar en pescado
ahumado, esto para darle un sabor agradable y además puede ser conservado por
más tiempo, esta forma de presentación facilita el transporte a otros mercados.
La conservación del ahumado se debe a los efectos combinados de la desecación, la
acción de sustancias químicas y bactericidas presentes en el humo.
Se utilizan dos tipos de procesos de ahumado: el ahumado en frío y caliente. En el
experimento se utilizó el ahumado en caliente, para tener un producto cocido (las
temperaturas oscilaron entre 60 y 80 o C) y al mismo tiempo se hace el ahumado del
producto.
1. Materiales
Los materiales ha utilizar son:
-
Orestias ispi con un peso eviscerado de dos kilogramos.
Sal
Ácido ascórbico
Azúcar rubia
Coronta de maíz
Viruta de madera
Termómetro de –10 a 100o C
Balanza
Lavadores
Cajas escurrideras
Ahumadero
Bolsas de polietileno
Selladora al vacío.
2
2. Diagrama de flujo del ahumado en Orestias ispi “ispi”
Materia Prima
Pesado
Lavado
Eviscerado
Lavado y escurrido
Pesado
Pre Tratamiento
Salado en Salmuera
TRATAMIENTO 1
TRATAMIENTO 2
Escurrido
Ahumado y cocinado
Enfriado
Empacado y sellado
Almacenado
2.1. Materia prima
Se utiliza 2 kilogramos de pescado de la especie Orestias ispi “ispi”
2.2. Lavado
Se lavan los pescados para quitarles la tierra o residuos orgánicos a estos, por
el transporte de puerto hacia la planta de tratamiento.
2.3. Eviscerado
Se separan las vísceras para que el pescado quede limpio; se abre el pez en
forma de filete, tratando con mucho cuidado para no lacerar o desgarrar el
músculo del pez.
3
2.4. Lavado y escurrido
Se lavan los peces procesados, quitando todo residuo de vísceras, luego se
procede al escurrido del agua por un espacio de diez minutos.
2.5. Pesado
El peso inicial de la materia prima al comenzar el proceso de ahumado es de 2
kilogramos.
2.6. Pre tratamiento
Se sumerge el pescado en salmuera a una concentración del 3%:
-
Agua
Sal
Acido ascórbico
5 lt.
150 gr.
15 gr.
Estos materiales se mezclan, para luego colocar los peces en esta solución
por espacio de cinco minutos.
2.7. Salado en salmuera
Este proceso puede realizarse de dos maneras, de acuerdo al tipo de solución
que se utiliza:
Primero
Para un kilo de pescado que se coloca en salmuera, se utiliza la siguiente solución:
-
Sal
Azúcar
Agua
Tiempo
1.0 Kg.
0.175 Kg.
5
lt.
8
minutos
Esta cantidad de sal y azúcar representan el 20% y el 3.5% de concentración, en
referencia al peso total eviscerado del pescado.
Segundo
Para un kilo de pescado que se coloca en salmuera, se utiliza la siguiente solución:
-
Sal
Azúcar
Agua
Tiempo
0.750 Kg.
0.175 Kg.
5
lt.
15
minutos
Esta cantidad de sal y azúcar representan el 15% y 3.5% de concentración, en
referencia al peso eviscerado total del pescado.
2.8. Escurrido
Luego del salado en salmuera se lleva a un recipiente para escurrirlos por un
lapso aproximado de 20 minutos.
2.9. Ahumado y cocinado
Se colocan los peces en la parrilla en forma ordenada; luego se lleva al
ahumadero el cual debe estar encendido. Este proceso dura cuatro horas; se
debe realizar observaciones cada cierto tiempo para verificar el cocimiento y la
textura del producto. El producto obtenido en promedio es el 36% del producto
inicial.
4
2.10.Enfriado
Se sacan las parrillas del ahumadero y se deja enfriar el producto por espacio
de 4 a 5 horas.
2.11.Empaquetado y sellado
El ahumado se coloca en bolsas especiales de plástico, en forma ordenada,
luego se realiza el sellado al vacío con una presión de –0.6 bar, por un tiempo
de 20 segundos por bolsa.
2.12.Almacenamiento
El pescado ahumado y embolsado, para su mejor conservación, se almacena en
un ambiente frío.
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
PREPARACIÓN DE
INCUBADORES ARTESANALES
PARA
ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS
Blgo. René Chura Cruz
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 14
Marzo
AÑO 2001
PUNO – 2001 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
El proceso de reproducción de las especies ícticas nativas del lago Titicaca implica
la perpetuación de especies. Este proceso hoy en día con la intervención del
hombre, se ha logrado la reproducción artificial en ambientes controlados.
La reproducción artificial implica el desove, fecundación y el desarrollo del proceso
embrionario
en incubadores de diferentes tipos. Existe una variedad
de
incubadores modernos y sofisticados, pero que no están al alcance de los
pescadores.
El equipo de la Asociación IIP QOLLASUYO - CIPP CHUCUITO ha diseñado un
modelo de incubadora artesanal, que se puede usar y construir para el proceso de
incubación in situ, por los propios pescadores.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
MATERIALES:
-
01 botella descartable de 2 lts. de capacidad, transparente y con tapa
01 frasquito de terokal
1/8 Gln. de cola sintética
01 pedazo de corcho y/o boya
01 soporte ó trípode
01 pedazo de celocilla de color verde de 1 mm de cocada
01 tijera
01 cuchillo
01 regla milimetrada
01 plumón indeleble.
PROCEDIMIENTO
-
La botella debe ser desinfectada con una a dos gotas de cloro disueltas en 500
ml de agua, para luego enjuagarlos repetidas veces; para la eliminación de
agentes patógenos.
-
Realizar el marcaje de la periferie de la base de la botella, como se observa en
la Figura Nº 01.
-
Cortar con la ayuda de la tijera sobre la marca.
FIGURA 01
Recorte en
esta zona
-
Marcar en la parte inferior vaso un rectángulo de 3 x 5 cm y cortar únicamente en
los laterales y doblar en forma perpendicular como observa la Figura Nº 02.
2
FIGURA 02
3 cm
5 cm
-
En otra botella cortar una lámina de 11 x 8 en la cual se hace el trazo y corte de
un trapecio con una altura de 8 cm. y la base inferior de 7 cm. tal como se indica
en la Figura Nº 03
FIGURA Nº 03
3.0
11.0
cm
5.0
3.0
Cortar
Doblar
80 cm
1.
0
1.
0
-
Doblar los extremos del trapecio tal como se observa Figura Nº 04.
FIGURA 04
-
Pegar la canaleta en el vaso aplicando terokal a la superficie sombreada
FIGURA 05
Aplicar
Terokal
3
-
El vaso con la canaleta debe quedar de siguiente manera
FIGURA 06
-
Cortar y pegar una malla rectangular de 4 x 6 cm. (tul); como se observa en la
figura siguiente
FIGURA 07
-
Taponar la boca de la botella con un corcho de 1 pulg. de diámetro y 1 pulg. de
altura, fijando el corcho con terokal.
FIGURA 08
Adecuado de Corcho
de 1 & x 2.5 cm altura
2.5 cm
4
-
La superficie de la parte superior debe quedar liza y totalmente sellado tal
como se observa en la figura
FIGURA 09
Corcho
Pegamento
DISEÑO FINAL DE VASO DE INCUBACIÓN SOBRE UN TRIPODE
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ALIMENTACION INICIAL DE
ALEVINOS
DE
ORESTIAS
Ph. D. Sabino Atencio Limachi
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 15
Abril
AÑO 2001
PUNO – 2001 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
C ontinuando con los trabajos del proceso de la reproducción artificial de especies
ícticas nativas de la Cuenca del Sistema TDPS; en el presente número ponemos a
disposición los resultados de los trabajos realizados en Alimentación inicial de
alevinos de Orestias.
Las experiencias logradas, deseamos compartir con los pescadores artesanales de
la Cuenca del Sistema TDPS, a quienes ofrecemos el presente Boletín que fue
preparado con los aportes del equipo técnico de la Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP
Chucuito UNA - Puno
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
ALIMENTO INICIAL DE ALEVINOS DE Orestias
Según los estudios de la alimentación natural de las Orestias, en sus primeros
estadíos; se conoce que estas especies se alimentan de especimenes vivos como
microorganismos
y estados larvarios de zooplancton. En base a estos
conocimientos, en la alimentación de los alevinos obtenidos artificialmente, estamos
empleando como alimento:
-
-
Larvas y estadios juveniles
de zooplancton, específicamente: Daphnia,
Cyclops, Rotíferos, etc. Estos especÍmenes son capturados en el lago Titicaca.
Por la imposibilidad de conseguir regularmente los especimenes señalados, se
cuenta con alimento vivo cultivado, entre ellos tenemos:
Anguilillas silusiae ( Panagrellus silusiae) “microgusanos”
Protozoarios : Los infusorios.
1. ALIMENTOS VIVOS CULTIVADOS
1.1. Anguilillas silusiae ( Panagrellus silusiae) “microgusanos”
Pertenecen al género de las Anguilulas; son pequeños gusanos de color
blanco, de mas o menos un milímetro de largo y muy delgados. Constituyen
un buen alimento, especialmente para los peces recién nacidos (alevinos de
primera fase), tienen un alto contenido de proteinas (62%) (G. Sanz Málaga,
1996).
1.2. Infusorios
Son protozoarios, animales unicelulares, microscópicos, más evolucionados.
Dotados de prolongaciones denominados cilios o pestañas vibrátiles, mediante
las cuales se desplazan en el agua.
Su reproducción es asexual, por división celular o asexual, por conjugación.
De todos los infusorios, el más grande (250 micrones) es de interes como
alimento para los peces. Se recomienda como alimento para las crías recien
nacidas, por lo menos en sus primeros días de vida (alevinos de primera fase).
1.3. Forma de suministro del alimento
-
Los “microgusanos” nadan hasta descender al fondo, donde pueden vivir
aproximadamente dos día.
La forma como se le suministra, es que de los recipientes de cultivo
(tapers) los “microgusanos” cosechados, con ayuda de una espátula o una
pluma de ave, luego traspasados a un pequeño recipiente de vidrio o
plástico (vaso) con agua para ser dispersado; luego de ello el aguas con
“microgusanos” se le agrega al acuario contenedor de alevinos. Esta
operación se realiza de 3 a 5 veces al día.
-
Los infusorios, del medio de cultivo son cosechados, con un cucharón, de
lo cual se toma 1 a 2 cucharillas de café para echarlos a cada acuario por 3
a 5 veces al día.
2
2. ALIMENTOS NO VIVOS
Para combinar y complementar la dieta de los alimentos para los alevinos de
las Orestias, venimos utilizando.
2.1. Sera micrón
Es un alimento de cría microfino para todos los peces de las especies ovíparas
que pueden comer inmediatamente después de comenzar a nadar. Este
producto fue
adquirido en el comercio; es un polvillo verdoso. Para
suministrarlo a los alevinos, se coge una pequeña cantidad (pisca) de micrón
sobre un pedazo de vidrio y se disuelve en agua de acuario para formar una
masa en forma de papilla lo cual se suministra a los alevinos, con ayuda de
una espátula o pluma de ave, removiéndolo en el agua del acuario.
2.2. Yema de huevo duro
Se suministra a los alevinos, como alimento alternativo, intercalando con los
alimentos vivos. La yema de huevo duro, se suministró de manera similar al
“micrón”; es decir preparando una pequeña cantidad de “papilla” y luego se
suministra a los alevinos, disolviéndo en el acuario con ayuda de una espátula
o pluma de ave.
Tanto el micrón como el huevo duro, se suministró de 3 a 5 veces al día.
3
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
TAXONOMÍA DE LA
ICTIOFAUNA NATIVA
DEL
LAGO TITICACA
Ph.D. Sabino Atencio Limachi
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 16
Julio
AÑO 2001
PUNO – 2001 - PERU
0
INTRODUCCIÓN
La identificación de las características taxonómicas de la ictiofauna nativa del
Lago Titicaca datan de dos siglos anteriores; estas expediciones han descrito
los diferentes aspectos con los que hacen resaltar la diferencia de cada uno
las especies.
El Equipo Profesional de la Asociación IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno, estan
comprometidos
en estudiar, recopilar y validar estas
Características Taxonómicas . En esta oportunidad ofrecemos una Guía de
Técnica “Taxonomía de la ictiofauna nativa del lago Titicaca” con lo que
alcanzamos una recopilación desde el aporte de los primeros investigadores a
la fecha.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
APORTES A LA REVISIÓN TAXONOMICA DE LA ICTIOFAUNA NATIVA DEL
LAGO TITICACA
Los trabajos científicos sobre la taxonomía de la ictiofauna nativa del lago Titicaca,
datan cerca de dos siglos; entre los primeros investigadores se tienen a: Pentland,
1830; Valenciennes, 1839; Tschudi, 1845; Cuvier y Valenciennes, 1846; Castelnau,
1855; Gunther, 1866; Garman, 1876-1895; Cope, 1876, 1877. Posteriormente
continuaron: Pellegrini, 1902; Bouanger, 1902; Starks, 1906; Everman y Radclife,
1909,1917; Meyers, 1931; Rendahl, 1937; Eigenmann y Allen, 1942. El estudio más
extenso de la taxonomía de peces nativos del Lago Titicaca
fueron las
recolecciones hechas por la expedición de Percy Sladen, en 1937 (W ilson, 1939) y
los análisis emprendidos por Tchernavin, de las colecciones del Museo Británico
(Tchernavin, 1944A; Tchernavin, 1944B;). Entre los últimos trabajos referentes a la
ictiofauna del Lago Titicaca, se tienen los trabajos de: Lauzanne, 1981; Villwock W.,
1983; Parenti L.R. , 1984; Ortega y Vari, 1986.
1. ORDEN Cyprinodontiformes Berg, 1940
Del Orden Cyprinodontiformes, se conocen ejemplares fósiles desde el periodo
del oligoceno. Está representado por 2 Sub Ordenes: Cyprinodontoidei (el poro
genital se encuentra delante de la aleta anal) y Anablyopsoidei (el poro genital
se encuentra en el cuello o zona yugular).
Las relaciones filogenéticas del Orden Cyprinodontiformes, aún no están
suficientemente claras. La mayoría de los actuales ictiólogos, a este Orden , lo
relacionan con los Esociformes (Starks, 1904). Por otro lado, consideran que los
Cyprinodontiformes tienen su origen, directamente en el Orden Clupeiformes
(Gregory, 1933).
Los Cyprinodontiformes, son peces óseos que tienen una longitud que oscila
de 2 hasta 30 cm. Exteriormente, son similares con los Cypriniformes; con 4-8
radios en la membrana branquial, vejiga natatoria cerrada (fisóstomo). Aletas sin
radios duros o espinas. Una sola aleta dorsal. Escamas cicloideas. No tienen
línea lateral y si tienen, es muy poco notoria. En las mandíbulas, tienen dientes
menudos. En la cintura escapular no tienen el mezacoracoideo.
Son generalmente peces de aguas dulces y salobres, muy raramente marinos.
Habitantes de regiones tropicales y sub tropicales de todos los continentes, a
excepción de Australia. Algunas especies como los peces ciegos viven en aguas
de las cavernas cársicas de América del Norte.
Los Cyprinodontiformes, abarcan 9 familias: Cyprinodontidae, Horaichthidae,
Oryziatidae, Ambliopsidae, Poecilidae, Tetraphtalmonidae, Tomeiuridae,
Jeninsiidae, Goodeidae. Entre todas las familias abarcan mas de 400 especies.
Representantes de 4 familias como: Poecilidae y Tetraphtalmonidae, son
vivíparos. Algunas especies como por ejemplo Cyprinodon macularis , viven en
aguas termales, ante temperaturas hasta de 50 ºC. Muchos representantes de
los Cyprinodontiformes, son peces de acuario, por ejemplo:
Gambusia affinis “gambusia”
Amblioosis spelaea “peces ciegos del norte”
Anableps tetraphtalmus “cuatro ojos”
2
Más de 25 especies de los Cyprinodontiformes, están considerados en el Libro
Rojo de la Organización Mundial para la Protección de la Naturaleza, que se
refieren a peces en peligro de extinción y extinguidos.
1.1. SUB ORDEN Cyprinodontoidei Jordan, 1923
Se caracterizan por tener el poro anal, delante de la aleta anal, el desarrollo de
sus ojos es normal. En la era terciaria tuvieron una distribución más amplia que
en la era actual; específicamente habitaron en aguas de la latitudes templadas
de América del Norte y Europa. Por la influencia del Periodo Glaciar, el espacio
de su propagación en el periodo cuaternario, se redujo.
El Sub Orden Cyprinodontoidei, abarca dos Súper Familias: Poeciloidae y
Cyprinodontoidae.
1.1.1. SUPER FAMILIA Poeciloidae
Son generalmente vivíparas. Son peces pequeños, ampliamente distribuidos
en aguas dulces y rara vez en aguas marinas de Norte América y en la zona
Norte de Sudamerica. Abarca cinco familias: Anablepidae, Poecilidae,
Tomeuridae, Jeninsiidae y Goodeidae.
1.1.1.1.
Familia Anablepidae
Abarca un solo género: Anableps, cuyo representante es el Anableps
tetraphthalmus L. que habita en pequeñas lagunas. La vista de estos
peces está adaptada para ver en el medio aéreo y en el medio acuático.
La alimentación de los Anableps lo constituyen pequeños invertebrados y
en mayor proporción insectos terrestres. Como la mayoría de los
representantes de la Súper Familia Poeciloidae, los Anableps son
vivíparos.
1.1.1.2.
Familia Tomeuridae
Abarca una sola especie, a diferencia de los otros Poeciloidae, son
ovíparos. Tienen un gonopodio con una estructura compleja. Su
reproducción es durante todo el año.
1.1.1.3.
Familia Poecilidae
Esta familia es la más numerosa en especies, sus representantes habitan en
las aguas dulces del sur de los Estados Unidos de Norteamérica y en el
zona norte de Sudamérica.
En las últimas décadas, a consecuencia de que algunas especies sobre
todo la “gambusia”, que fueron ( y son ) utilizadas en la lucha contra la
malaria; fueron muy difundidas en la regiones tropicales y subtropicales
del hemisferio oriental. A esta familia pertenecen muchas especies de
acuario como: Xiphophorus, Platypoecilus, Levistes “gupis”, Girardinus
y muchos otros.
Son peces pequeños; las hembras, generalmente son más grandes que los
machos. En muchas especies, los machos son de colores más claros y
brillosos. En los machos de los Xiphophorus y Levistes el margen inferior
de la aleta anal es un tanto alargado. Son especies muy precoces,
generalmente, el mismo verano de su nacimiento alcanzan su madurez
sexual. Su fecundación es externa: el esperma se coloca en el poro genital
de la hembra con ayuda del gonopodio. Durante el año, la hembra desova
3
varias veces de tal manera, la fecundidad de estas especies es muy
significativa; ante condiciones muy favorables de manera extraordinaria y
rápidamente pueden poblar totalmente el acuatorio donde se encuentran.
En condiciones artificiales los peces vivíparos de la Super Familia
Poeciloidae, fácilmente forman híbridos. En algunos representantes de la
familia Poecilidae forman híbridos en condiciones naturales. Ante la
hibridación, frecuentemente se presenta el fenómeno biológico denominado
matroclinia, en el cual el esperma del macho solo da un estímulo para su
desarrollo. Ante esta situación los descendientes tienen un parecido total
con el organismo materno y todos resultan hembras. Es interesante que en
la especie Molinisia formosa (Agassiz), no hay machos y su reproducción
se realiza a través de la hibridación con machos de otras especies y los
descendientes resultan hembras (Hubbs et Hubbs, 1932).
La alimentación de la familia Polecilidae está en base a invertebrados
acuáticos. Los adultos se alimentan preferentemente con larvas de insectos
y crustáceos pelágicos. Estos peces en sus primeros estadios consumen
infusorios; los alevinos y estadios posteriores, consumen rotíferos. Los
Polecilidae no se encuentran en latitudes templadas.
1.1.2. SUPER FAMILIA Cyprinodontoidae
Son peces ovíparos; según sus formas de vida, son muy variados. Por ejemplo,
representantes del género Cyprinodon habitan en acuatorios de los desiertos
de la parte sur de los Estados Unidos de Norte América y Asia menor. Algunas
especies se adaptan en acuatorios salobres, por ejemplo el Cyprinodon
macularius Baird et Gir.; otros viven en aguas termales que a veces alcanzan
temperaturas mayores a los 50 ºC. El pez africano Aplocheiliththys
pelaigicus, que habita en los grandes lagos de la Africa Oriental, se adaptó a
vivir en zonas pelágicas muy alejado de las orillas. Representantes del género
Fundulus, viven en aguas continentales así como en las aguas marinas
costeras del sur de los Estados Unidos y Africa. El Fundulus heteroticus (L.)
es una especie muy preferida para investigaciones experimentales.
Todos los Ciprinodontidos ovíparos depositan una pequeña cantidad de ovas
demersales relativamente de tamaño grande, generalmente con una abundante
cubierta filamentosa (Jones, 1937), con ayuda de los cuales las ovas se
adhieren a las plantas acuáticas sumergidas.
La ovoposición generalmente ocurre a fines de la primavera e inicios de verano
(noviembre, diciembre y enero). En el Fundulus gularis Blgr., que habita en el
río Niger, la hembra durante el periodo de desove, enrolla su aleta anal y forma
un tubo con la cual excava hoyos, donde deposita de 1 a 3 ovas que luego son
fecundados por los machos. Relacionado con esta particularidad en las
hembras, el número de radios no ramificados en la aleta anal es mayor que los
ramificados, en comparación con el de los machos (Slastnikov, 1935).
Muchos representantes de la Sub Familia Rivulinae que vienen en acuatorios
temporales de Sudamérica y África, depositan sus ovas en el lodo. Después del
periodo de reproducción, como consecuencia del secado de los acuatorios
temporales, todos los reproductores mueren, mientras que las ovas se
conservan en el suelo hasta la venida del siguiente periodo de lluvias. Ante esta
situación, ocurre la diapausa durante cuyo tiempo el desarrollo se amortigua
(ovas latentes) y la membrana exterior de la ova lo protege de los factores
4
externos (Peters, 1963; Gulidov, 1968).
La alimentación de casi todos los Cyprinodontoidae constituyen pequeños
invertebrados, principalmente crustáceos, larvas de insectos y rara vez
pequeños moluscos. El valor económico de los Cyprinodontoidae, es
insignificante. Por sus tamaños pequeños, no son utilizados como alimento
humano. En algunos
lugares, ciertas especies son utilizadas como
controladores biológicos, para la lucha contra los zancudos de la malaria.
A la Súper Familia Cyprinodontoidae , corresponden las Familias:
Horaichthyidae y Cyprinodontidae
1.1.2.1.
Familia Horaichthyidae
Habitan aguas salobres de la India, son ovíparos; los machos; antes de la
aleta anal tiene un gonopodio complejo cuya función en los Horaichthys es
suspender (colgar) los espermatóforos hacia el poro genital de la hembra.
Los Horaichthys son peces pequeños y transparentes, alcanzan su
madurez sexual a una talla de 20 mm. Las hembras tienen solo una sola
aleta ventral, la izquierda. El poro genital se encuentra en la base de la aleta
anal y el poro anal se encuentra un tanto delante de la aleta ventral.
En los machos el esperma se encuentra encerrado en especiales
espermatóforos, cuyo número en distintos estadíos de desarrollo en los
machos adultos es aproximandamente 250 – 280 espermatóforos.
Los espermatóforos en sus finos terminales tienen una especial adaptación
para pegarse al poro genital de la hembra. La medida de los espermatóforos
es de 0.61 mm. durante la fecundación el terminal del espermatóforo se
inflama para abrirse y los espermas salen al exterior. La fecundación
transcurre en el interior del organismo materno, a propósito como en los
vivíparos Cyprinodontoidei el esperma se mantiene durante considerable
tiempo en el cuerpo de la madre, de tal manera que unas cuantas puestas
de ovas se realizan sin la fecundación sucesiva.
Sus ovas son demersales, con un diámetro aproximado de un milímetro (1
mm), tienen largos filamentos con ayuda de las cuales se pegan a las
plantas acuaticas. Las ovas se colocan en puestas de 20 a 30 ovas. Su
periodo de incubación dura de 8 a 10 días (Kulkarni, 1940). Su reproducción
es durante todo el año.
La alimentación de estos peces esta constituido principalmente por
crustáceos menores y sus larvas, así como las diatomeas.
1.1.2.2.
Familia Cyprinodontidae.Se caracterizan básicamente porque no tienen gonopodio. Abarca las
siguientes subfamilias: Rivulinae, Cyprinodontinae, Fundalinae, Orestiatinae,
Aphaniinae, Pracatopodinae, Oryziatinae.
1.1.2.2.1. GENERO Orestias Valenciennes, 1839
Los principales caracteres del género Orestias, según W illwock, 1983 son:
-
Ausencia de aletas ventrales en todas las especies conocidas.
La escamación es irregular y es reducida en la mayor parte de la
especies, especialmente en el pecho, vientre y cuellos que son
desnudos, totalmente o en parte.
5
-
-
-
-
-
La linea lateral es siempre clara y algo uniforme, y consiste de una hilera
mas o menos regular de escamas perforadas y ranuradas a lo largo del
canal sensorial.
Los dientes de las mandíbulas son cónicos, formando mayormente más
de una hilera irregular.
Marcado dimorfismo sexual; por ejemplo, las espinas y los ganchos que
se encuentran en las escamas y los radios de las aletas de los machos
maduros, existen en menor número y en menor grado en las hembras
maduras.
Las hembras tienen un solo ovario y los machos un solo testículo; en
ambos casos con una línea divisoria central.
La forma de la cabeza es triangular presentando además, boca terminal
superior y protráctil.
Tiene dos aletas pectorales, una dorsal posterior, una anal y una caudal.
Sus aletas presentan radios blandos ramificados. Cabe señalar que la
aleta anal y dorsal se encuentran a la misma altura.
La aleta pectoral se inicia al final del opérculo.
Internamente el aparato digestivo se inicia en la boca con pre maxilares y
maxilar protráctil, provisto de dientes cortos y pequeños de un número
escaso, posee una laringe pequeña, lisa a los lados de la cavidad buco –
faringea donde se encuentran las branquias
El hígado es voluminoso y de color rojizo, la vesícula biliar es casi
esférica de color verde amarillento y el corazón es pequeño y esta
situado cerca de la cavidad opercular
1.1.2.2.2. GENERO Orestias Valenciennes, 1839 del lago Titicaca
El género Orestias Valenciennes, 1839 del lago Titicaca fue descrita por el
autor que se indica; mientras que las Orestias de la cuenca del Lago
Titicaca, taxonómicamente como fue revisada por Tchernavin, 1944A, quien
reconoció 20 especies, de los cuales 16 corresponden al Lago Titicaca, las
20 especies los organizó en los siguientes 04 grupos:
GRUPO I
GRUPO III
Orestias cuvieri “umanto”
Orestias pentlandii “boga”
Orestias uruni
Orestias minutus
Orestias minimus
Orestias gilsoni
Orestias tutini
Orestias taquiri
GRUPO II
GRUPO IV
Orestias agassii
Orestias uyunius
Orestias jussiei
Orestias polonorum
Orestias langui
Orestias olivaceous
Orestias luteus
Orestias albus
Orestias mulleri
Orestias incae
Orestias crawfordi
Orestias mooni
6
Según Tchernavin, 1944A; los cuatro grupos pueden representar Géneros
distintos o posiblemente Subgéneros. Según el mismo autor estas especies
se pueden clasificar en tres grupos ecológicos principales: formas
depredadoras tal como Orestias cuvieri “umanto”; formas planctivoras
como Orestias mooni (colectivamente llamado “ispi”) y formas bentófagas
como la O. agassii (en conjunto llamado “carachi”).
Estudios recientes por Lauzanne, 1981,1982 han confirmado la existencia
de tres adicionales Orestias del grupo IV: Orestias tchernavini, Orestias
ispi y Orestias forgeti.
Villwock, 1963 , 1966, 1972 y 1983; plantea la teoría de la especiación
intralacustre como un proceso evolutivo y ecológico. Según esta teoría, el
número de especies establecidas por los anteriores se reduciría, a 5
especies válidas de Orestias :
Orestias agassii
“carachi negro” (altamente variable y la más común)
Orestias luteus
“carachi amarillo” (tipo ciprínido que se supone se alimenta principalmente
en el fondo, con preferencia de bivalvos).
Orestias pentlandii
“boga” (tipo coregonus, especie pelágica que se alimenta preferentemente
de zooplancton y de larvas de insectos).
Orestias cuvieri
“umanto” (tipo “pike”, predatora).
Orestias mulleri
“gringuito” (que representa un tipo de aguas profundas).
Según Villwock, 1983, todas las especies deben cuando mucho
interpretarse, como infra especies de alguna de las 5 especies antes
mencionadas.
Por su parte Parenti, 1984 en su obra “A taxonomic Revisión of the Andean
Killifish Genus Orestias” considera hasta 43 especies, cuya área de
expansión abarca desde el departamento de Ancash en el Norte del Perú,
hasta el Departamento de Antofagasta en el Norte de Chile. Señala también
que mas de la mitad de las 43 especies de Orestias son endémicos de la
cuenca del Lago Titicaca y que 23 especies son conocidas solamente en el
lago Titicaca.
Por otra parte Ortega y Vari, 1986 en su trabajo “Annotated Checklist of the
freshwater Fishes of Perú” considera 32 especies de Orestias para el lago
Titicaca.
De los estudios mencionados podemos decir que la mejor sistematización de
Orestias fue conseguida en los trabajos de Tchernavin, 1944 y Lauzanne,
1982, más particularmente en el segundo de ellos.
Tomando las referencia de Ortega y Vari, 1986 las especies de Orestias
que se consideran para el Lago Titicaca son en número de 32:
Orestias agassii
Orestias albus
Valenciennes, 1846; Parenti, 1984.
Valenciennes, 1846; Parenti, 1984.
7
Orestias crawfordi
Orestias ctenolepis
Orestias cuvieri
Orestias farfani
Orestias forgeti
Orestias frontosus
Orestias gilsoni
Orestias gracilis
Orestias imarpe
Oresitas incae
Orestias ispi
Orestias luteus
Orestias minimus
Orestias minutus
Orestias mooni
Orestias multiporis
Orestias mulleri
Orestias olivaceus
Orestias pentlandii
Orestias puni
Orestias richersoni
Orestias robustus
Orestias rotundipinnis
Orestias sillustani
Orestias taquiri
Orestias tchernavini
Orestias tomcooni
Orestias tschudii
Orestias tutini
Orestias uruni
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Valenciennes, 1839; Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Lauzanne, 1981; Parenti, 1984.
Cope, 1876; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti 1984.
Parenti, 1984.
Parenti 1984.
Garman, 1895; Parenti, 1984.
Lauzanne 1981; Parenti, 1984.
Valenciennes, 1839; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Valenciennes, 1846.
Garman, 1895; Parenti, 1984.
Valenciennes, 1839; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti; 1984.
Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Allen, 1942; Paranti, 1984
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Lauzane, 1981; Parenti, 1984.
Parenti, 1984.
Castelnau, 1855; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
Tchernavin, 1944; Parenti, 1984.
En base a la revisión de la bibliografía especializada y a los
investigaciones propias, se propone el siguiente orden taxonómico para las
Orestias del lago Titicaca.
8
TAXONOMIA DE LOS CYPRINODONTIDOS DEL LAGO TITICACA
REINO
Animal
PHYLLUM Chordata
SUB PHYLLUM Vertebrata
Gnathostomata
GRUPO
SUPER CLASE Pisces
CLASE
Osteichthyes
SUB CLASE
Actinopterygii
DIVISIÓN
Teleostei
SUPER ORDEN Cyprinodontimorpha
ORDEN
Cyprinodontiformes Berg, 1940
SUB ORDEN
Cyprinodontoidei Jordan, 1923
SUPER FAMILIA Cyprinodontoidae
FAMILIA
Cyprinodontidae Agassiz, 1834
Cyprinodontinae (Günther S. 1968)
SUB FAMILIA
GENERO
Orestias Valenciennes, 1839
ESPECIES
Orestias cuvieri Valenciennes, 1839 “umanto”
Orestias pentlandii Valenciennes, 1839 “boga”
Orestias agassii Valenciennes, 1846“carachi negro”
Orestias luteus Valenciennes, 1839 “carachi amarillo”
Orestias mulleri Valenciennes, 1846 “gringuito”
Orestias ispi Lauzanne, 1981 “ispi”
...
9
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
FORMULACIÓN DE ALIMENTO
BALANCEADO PARA ESPECIES
ÍCTICAS NATIVAS DEL LAGO
TITICACA
Ing. Raúl Quispe Mamani
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 17
Noviembre
AÑO 2001
PUNO – 2001 - PERU
0
RESUMEN
El IIP "QOLLASUYO" que viene ha ser parte de un mecanismo integrado para
fomentar las acciones de preservación, investigación e innovación tecnológica de
alimentos compuestos para la alimentación de las especies pesqueras nativas, que
estas especies pesqueras son muy apreciadas por los consumidores que aún falto
para la investigación en el potencial para su reproducción en cautividad. No
obstante, las necesidades nutritivas de las mismas son desconocidas, por lo que el
objetivo de las presentes formulaciones llevan al desarrollo de los piensos
compuestos para la alimentación de las especies.
El balanceo de ración o dieta, fue efectuado empleando el método de Programación
lineal o de mínimo coste, que consistió en minimizar (mediante un programa
informático denominado AEZO, F.D. 3.0 para W indows versión 95/98) para cada
etapa de desarrollo en "carachi amarillo", "boga", "suche", "mauri". En función de
costos, la inclusión de materias primas en mayor o menor proporción, considerando
la naturaleza de su alimentación, disponibilidad, requerimiento de energía,
requerimientos de proteínas y nutrientes, composición de los ingredientes,
digestibilidad para peces, dando resultados de programación referente a una
solución factible(composición de la dieta), el aporte real de la combinación, el aporte
de nutrientes por ingredientes y su respectivo costo por Kg. de la composición de la
dieta.
1
INTRODUCCION
Durante los últimos años, según volumen consolidado de extracción de
especies nativas (MIPE/DRP/DAT-UE, 2000) se observa una disminución de
la extracción, lo que está provocando una sobre explotación de las especies
nativas; desde algunos sectores se intenta potenciar el desarrollo en la
conservación de tal manera se podría diversificar su uso ordenado.
Las especies nativas pesqueras, con buenas expectativas para su
reproducción en cautividad, aunque con algunos problemas de supervivencia
larvaria, no obstante las necesidades nutritivas no son conocidas
exactamente, para lo cual se planteó el estudio en la formulación de dietas,
con niveles de proteína, lípidos, carbohidratos, minerales, energía
metabolizable establecidas dentro de los rangos citados para peces en
general por los antecedentes bibliográficos.
Actualmente, la mayor pare de los piensos utilizados en la alimentación de
peces son los alimentos tipo extrusionados, por lo que el objetivo del presente
estudio es la formulación de dietas, utilizando ingredientes alternativos.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
2
MATERIALES Y METODOS
MATERIALES
-
Paquete computacional AEZO F.D. 3.0 para W indows, versión 95/98 para cálculo
de raciones a mínimo costo.
Computadora SYNCMASTER 450Nb.
Datos sobre composición nutritiva de los ingredientes (adoptado de diferentes
fuentes)
Reporte teórico sobre requerimiento nutritivo para peces.
METODOLOGÍA
La alimentación animal representa entre 60-80% (cañas, 1995) de los costos
variables de los sistemas de producción animal, de ahí la importancia de utilizar
raciones que además que cumplen el requerimiento nutricional de la especie, sean
el mínimo costo, consecuentemente se busca diseñar una formulación de máxima
utilidad técnica - económica, y se emplea para tal efecto una herramienta de apoyo.
Para la toma de decisiones que es la programación lineal (AEZO, F.D. 3.0); aunque
es posible balancear una ración por el método de prueba y error, donde éstos
métodos son de mayor utilización de tiempo y de poca precisión, en especial
consideración cuando se incluyen muchas variables (nutrientes, ingredientes).
El análisis de problemas en donde se busca encontrar el máximo o mínimo de una
función lineal de varias variables, sujeta a restricciones; expresado en forma
matemática se tiene:
X1, X2,... Xn Ingredientes disponibles para minimizar una función objetivo (Z).
Z = C1X1 + C 2X2 +...+ C nXn (C i = Precio del ingrediente Xi)
Z = Costo de la ración, la que se desea minimizar
RESTRICCIONES
a11x1 + a12x2 + ... a1nxn = b1
.
.
.
.
.
.
.
.
.
.
.
.
an2x1 + an2x2 + ... annxn = bn
con x 1, x2, ... xn >= 0
En el procedimiento de formulación de dietas se consideró:
-
REQUERIMIENTOS DE ENERGIA METABOLIZABLE
La energía metabolizable, con referencia a la carpa común y pez gato Europeo;
2.700 - 3.100 Mcal/Kg (New, 1987; en peces 2.500 a 4.700 Mcal/kg (Dominique
and Cho, 2000)
3
-
REQUERIMIENTOS DE PROTEÍNAS
Para la mayoría de los peces requieren de 35 - 45 % de proteína en el alimento
(Hepher, 1993) 35 - 45 % proteína digestible, 40 - 50 % de proteína cruda (Cho
and Kaushik, |990).
-
REQUERIMIENTOS DE NUTRIENTES
•
•
•
Calcio, 0.5% (New, 1987)
Fósforo (disponible) 0.7% (New, 1987)
Aminoácidos esenciales, para tal efecto se consideró los siguientes
aminoácidos, con referencia a la carpa y el pez gato, necesidades fijas (en %
del contenido protéico).
Amino ácido
Car pa
Pez gato
Lisina
5.7
5.1
Met + Cist
3.1
2.3
Triptófano
0.8
0.5
Treonina
3.9
2.3
Fibra; < 10% (UPGL, 2000)
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno.
-
RESTRICCIONES
Los inhibidores de las proteasas digestivas, estando presente en muchas
materias primas vegetales (harina de soya, trigo) (Martinez Y. Alarcon; 2001)
(Sintayehu, A., et al, 1996)
Inclusión fija de complementación o aditivos
-
COMPOSICIÓN DE INGREDIENTES
Se tomó la información de varios autores sobre la composición química proximal
de los ingredientes a emplear en el balanceo (CUADRO 1).
Referente a la Bromatología de los organismos alimenticios acuáticos y
vegetación acuática fue tomado de (Hepher, 1993) donde recopila de otros
autores conformados por la vegetación acuática, Oligoquetos, Copépodos,
Ostrácodos, Quironómidos, Moluscos.
-
COSTO DE LOS INGREDIENTES
ADICION DE COMPLEMENTARIOS Y ADITIVOS
RESULTADOS.
La formulación de las dietas representan el cálculo de nutrientes (%) y energía
metabolizable (Mcal/kg) en la mezcla balanceada de diferentes ingredientes
alimenticias para especies pesqueras nativas, donde el método de un programa
informático, que consistió en minimizar una función de costos, la inclusión o no de un
ingrediente básicamente decidido por su precio relativo, no obstante habitualmente
para formular la dieta se tuvo en consideración la concentración energética y el
4
aporte de proteína bruta, lisina, metionina + cistina, triptófano y treonina, como
también minerales imprescindibles par los peces calcio y fósforo, que se puede
observar en los cuadros de "Dietas mínimo costo - solución" de cada especie nativa
(composición de la dieta, en % de Tm, aporte de nutrientes de los ingredientes
parcial y total).
Se efectuó la inclusión fija de aditivos tales como el antioxidante (BHT); Bentonita,
en proporciones de 0,1%
El costo por kilogramo de alimento compuesto para especies ícticas nativas.
Se tiene entre 0.90 - 1.10 nuevos soles valores inferiores al costo por kilogramo para
especies carnívoro como es la trucha arco iris que es del margen de entre 2.0- 2.4
nuevos soles.
NOTA: para este caso de los alimentos para especies ícticas nativas no está
considerado los costos indirectos de producción como otros rubros, los cuales sólo
afectarán en un costo total aproximado final de entre 1.10 - 1.30 kg./alimento como
también están sujetos a variabilidad de acuerdo a la formulación y el costo de los
ingredientes
CUADRO N° 01
COMPOSICIÓN DE LOS ALIMENTOS
Valor nutritivo de los Ingredientes
Nombre del
Alimento
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
REMOLACHA MELAZA
3.4500
5.1460
0.0000
2.3000
66.0000
45.6500
0.0000
6.0000
1.0000
0.0000
0.0000
0.0000
4.0000
0.0000
0.0000
0.1000
2.0000
0.0000
0.0000
0.0300
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
2.7000
3.3000
3.9000
48.0000
13.0000
14.6
4.0000
3.0000
0.0000
0.2600
0.0500
0.0000
0.2400
0.1300
0.0000
Nombre del Alimento
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF TREONINA ACEITE
CIST (%)
(%)
PESCADO
(%)
HARINA PESCADO
5.2000
2.8000
0.8000
2.6000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
6.2000
3.2000
1.2000
3.9000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
1.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
2.9000
1.3200
0.6000
1.7000
0.0000
TRIGO GRANO
0.4000
0.3900
0.1000
0.3600
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
5.4000
1.0000
0.0000
5.1000
0.0000
Nombre del
Alimento
MELAZA DE
CAÑA
TRIGO
GRANO
SOYA
AFRECHO
HARINA PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUATICA
1.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
1.0000
0.0000
0.0000
1.0000
0.0000
0.0000
FUENTE: Recopilado de varios autores.
5
CUADRO N° 02
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “CARACHI AMARILLO”
(INICIO) Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
HARINA PESCADO
22.46
224.60
2.10
0.47
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
38.00
380.00
0.30
0.11
0.02
REMOLACHA MELAZA
3.00
30.00
0.70
26.55
265.54
1.10
0.29
VEGETACIÓN ACUÁTICAA
1.89
18.87
0.30
0.01
TRIGO GRANO
ACEITE PESCADO
5.00
3.00
50.00
30.00
0.80
3.00
0.04
0.09
SOYA AFRECHO
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
1.03
CUADRO N° 03
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “CARACHI AMARILLO”
(INICIO)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
Proteína
C.
Fibra cruda Calcio
%
%
%
14.8234
0.2246
0.8984
ENERG.
MET.
(Mcal)
0.7749
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
TRIGO GRANO
1.9555
17.3470
0.0690
0.1800
0.7170
12.7458
0.0736
0.2754
0.1650
0.6500
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del Alimento
LISINA
(%)
0.0000
0.0000
1.0622
0.0000
0.1500
0.0000
0.0000
0.0030
0.0690
0.0000
0.0025
0.0000
Fósforo
%
0.6289
0.0000
0.0009
0.0637
0.0000
0.0065
0.0000
METION + TRIPTOF TREONINA REMOLACHA
CIST (%)
(%)
(%)
MELAZA
HARINA PESCADO
1.1679
0.6289
0.1797
0.5840
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
TRIGO GRANO
2.3560
0.0000
0.7701
0.1019
0.0200
1.2160
0.0000
0.3505
0.0302
0.0195
0.4560
0.0000
0.1593
0.0000
0.0050
1.4820
0.0000
0.4514
0.0952
0.0180
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
Nombre del
Alimento
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
HARINA PESCADO
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.2655
0.0000
VEGETACIÓN ACUATICA
0.0000
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
0.0500
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
ACEITE
PESCADO
ORGANISMOS
ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.3800
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
6
CUADRO N° 04
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “CARACHI AMARILLO”
(CRECIM)
Dieta C alc ulada
Composición de la dieta
Nombre
del Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
SOYA AFRECHO
REMOLACHA MELAZA
TRIGO GRANO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
TOTALES
Porcentaje
23.07
20.26
20.00
3.00
4.00
26.57
3.00
99.90
Kg./Ton.
230.68
202.58
200.00
30.00
4000
265.74
30.00
999.00
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.30
1.10
0.70
0.80
0.30
3.00
0.48
0.06
0.22
0.02
0.03
0.08
0.09
0.99
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 05
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “CARACHI AMARILLO”
(CRECI)
Aporte de nutrientes por ingrediente
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
15.2248
2.9577
0.2307
0.0000
0.9227
0.0000
0.6459
0.0000
0.5400
9.6000
0.0690
0.1800
0.1320
0.5200
1.3675
12.1311
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.8000
0.0000
0.1200
0.0000
0.0000
0.0520
0.0030
0.0020
0.0000
0.0000
0.480
0.0009
0.0052
0.0000
0.0000
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
SOYA AFRECHO
0.7958
0.7901
REMOLACHA MELAZA
TRIGO GRANO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
SOYA AFRECHO
LISINA
(%)
0.6459
0.3241
0.2640
0.0000
0.0156
0.8504
0.1845
0.0000
0.1200
0.0000
0.0040
0.3189
0.5998
1.0332
0.3400
0.0000
0.0144
1.0364
0.0000
0.0000
0.2000
0.0000
0.0000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
TRIGO GRANO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
SOYA AFRECHO
REMOLACHA MELAZA
TRIGO GRANO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
1.1995
1.0939
0.5800
0.0000
0.0160
1.6479
METION
TRIPTOF TREONINA
SOYA
+ CIST
(%)
(%)
AFRECHO
(%)
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
ACEITE
PESCADO
VEGETACIÓ
N ACUÁTICA
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0400
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.2026
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
7
CUADRO N° 06
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “CARACHI AMARILLO”
(ACABADO)
Dieta C alc ulada
Nombre
del Alimento
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
HARINA PESCADO
23.09
230.93
2.10
0.48
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
24.35
243.55
0.30
0.07
ACEITE PESCADO
3.00
30.00
3.00
0.09
REMOLACHA MELAZA
5.00
50.00
0.70
0.04
SOYA AFRECHO
20.00
200.00
1.10
0.22
VEGETACIÓN ACUÁTICA
21.45
214.52
0.30
0.06
3.00
30.00
0.80
TRIGO GRANO
0.02
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.99
CUADRO N° 07
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “CARACHI AMARILLO”
(ACABADO)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Fibra
cruda
%
0.2309
Calcio
%
0.9237
Fósforo
%
0.6466
11.1179
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.1150
0.3000
SOYA AFRECHO
0.5400
9.6000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.8366
3.1320
TRIGO GRANO
0.0990
0.3900
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.8000
0.0000
0.0900
0.0050
0.0520
0.0000
0.0015
0.0015
0.0480
0.0000
0.0039
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.7967 15.2413
1.2533
0.0000
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF TREONINA ACEITE
CIST (%)
(%)
(%)
PESCADO
1.2000
1.5100
0.0000
0.0000
0.5900
0.6466
0.7794
0.0000
0.0000
0.2640
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
1.1574
0.3432
TRIGO GRANO
0.0120
0.0117
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del
Alimento
0.1847
0.2923
0.0000
0.0000
0.1200
0.6004
0.9498
0.0000
0.0000
0.3400
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0000
0.0030
1.0941
0.0108
0.0000
0.0000
REMOLACHA
MELAZA
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
TRIGO GRANO
0.0500
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.2000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0300
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
8
CUADRO N° 08
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “BOGA” (INICIO)
Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.48
HARINA PESCADO
22.95
229.54
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
42.67
426.72
0.30
0.13
ACEITE PESCADO
3.00
30.00
3.00
0.09
REMOLACHA MELAZA
5300
50.00
0.70
0.04
SOYA AFRECHO
20.00
200.00
1.10
0.22
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
6.00
0.27
60.00
2.74
0.80
0.30
0.05
0.00
TOTALES
99.90
999.00
1.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 09
DIETAS DE MÍNIMO COSTO PARA ALEVINOS DE “BOGA”
(INICIO)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.7919
2.1959
0.0000
0.1150
0.5400
15.1494
19.4799
0.0000
0.3000
9.6000
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
0.1980
0.7800
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0107
0.0400
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
Fósforo
%
0.2295
0.0000
0.0000
0.0000
0.8000
0.9181
0.0000
0.0000
0.0050
0.0520
0.6427
0.0000
0.0000
0.0015
0.0480
0.1800
0.0000
0.0030
0.0000
0.0078
0.0000
METION +
CIST (%)
TRIPTOF
(%)
1.1936
0.6427
0.1836
0.5968
0.0000
0.5121
0.0000
0.0000
0.1200
0.0060
0.0000
1.6642
0.0000
0.0000
0.3400
0.0216
0.0140
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
2.6957
1.3655
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.5800
0.2640
TRIGO GRANO
0.0240
0.0234
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0148
0.0044
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
Calcio
%
LISINA
(%)
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
Nombre del
Alimento
Fibra
cruda
%
TREONINA ACEITE
(%)
PESCADO
REMOLACHA
MELAZA
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0500
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.2000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0600
0.0000
0.0000
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
9
CUADRO N° 10
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “BOGA”
(CRECIM)
Dieta Calculada
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
HARINA PESCADO
23.42
234.18
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
23.84
238.38
ACEITE PESCADO
3.00
30.00
REMOLACHA MELAZA
6.00
60.00
TRIGO GRANO
5.00
50.00
SOYA AFRECHO
15.00
150.00
VEGETACIÓN ACUÁTICA
23.64
236.44
TOTALES
99.90
999.00
Nombre
del Alimento
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.30
3.00
0.70
0.80
1.10
0.30
0.49
0.07
0.09
0.04
0.04
0.16
0.07
0.97
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, 1999
CUADRO N° 11
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “BOGA” (CRECI)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
15.4558
10.8822
0.0000
0.3600
0.6500
7.2000
0.2342
0.0000
0.0000
0.0000
0.1500
0.6000
0.9367
0.0000
0.0000
0.0060
0.0025
0.0390
0.6557
0.0000
0.0000
0.0018
0.0065
0.0360
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.9221
3.4520
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
REMOLACHA MELAZA
TRIGO GRANO
SOYA AFRECHO
Nombre del Alimento
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.8079
1.2267
0.0000
0.1380
0.1650
0.4050
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF
CIST (%)
(%)
TREONINA ACEITE
(%)
PESCADO
HARINA PESCADO
1.2177
0.6557
0.1873
0.6089
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
1.4780
0.0000
0.7628
0.0000
0.2861
0.0000
0.9297
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.0050
0.0900
0.0000
0.0000
0.0180
0.2550
1.2058
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
TRIGO GRANO
0.0200
0.0195
SOYA AFRECHO
0.4350
0.1980
VEGETACIÓN ACUÁTICA
1.2768
0.3783
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del
Alimento
REMOLACHA
TRIGO GRANO
MELAZA
HARINA PESCADO
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
0.0000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0600
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
0.0500
SOYA AFRECHO
0.0000
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
SOYA
AFRECHO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.1500
0.0000
10
CUADRO N° 12
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “BOGA”
(ACABADO)
Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
0.48
HARINA PESCADO
22.95
229.54
2.10
VEGETACIÓN ACUÁTICA
2.27
22.74
0.30
0.01
TRIGO GRANO
6.00
60.00
0.80
0.05
SOYA AFRECHO
20.00
200.00
1.10
0.22
ACEITE PESCADO
2.00
20.00
3.00
0.06
REMOLACHA MELAZA
5.00
50.00
0.70
0.04
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
41.67
416.72
0.30
0.13
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.98
CUADRO N° 13
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “BOGA”
(ACABADO)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
15.1494
0.3320
0.7800
9.6000
0.0000
0.2295
0.0000
0.1800
0.8000
0.0000
0.9181
0.0000
0.0030
0.520
0.0000
0.6427
0.0000
0.0078
0.0480
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.1150
0.3000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
2.1445
19.0234
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0050
0.0000
0.0015
0.0000
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
TRIGO GRANO
SOYA AFRECHO
ACEITE PESCADO
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
TRIGO GRANO
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.7919
0.0887
0.1980
0.5400
0.0000
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF TREONINA ACEITE
CIST (%)
(%)
(%)
PESCADO
0.6427
0.0364
0.0234
0.1836
0.0000
0.0060
0.5960
0.1160
0.0216
0.0000
0.0000
0.0600
SOYA AFRECHO
0.5800
0.2640
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
2.5837
1.3335
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.1200
0.0000
0.0000
0.5001
0.3400
0.0000
0.0000
1.6252
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
Nombre del
Alimento
1.1936
0.1228
0.0240
REMOLACHA
MELAZA
SOYA
AFRECHO
0.0000
0.0000
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.0200
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0200
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0500
0.0000
HARINA PESCADO
TRIGO
GRANO
11
CUADRO N° 14
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “SUCHE”
(INICIO)
Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
REMOLACHA MELAZA
TOTALES
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
23.22
232.18
46.60
3.00
18.00
4.00
5.00
99.90
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.49
0.30
3.00
1.10
0.80
0.70
0.14
0.09
0.20
0.03
0.04
0.98
466.82
30.00
180.00
40.00
50.00
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N°15
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “SUCHE”
(INICIO)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
ENERG.
MET.
(Mcal)
Proteína
Fibra cruda
C.
%
%
Calcio
%
Fósforo
%
0.8010
15.3238
0.2322
0.9287
0.6501
2.4023
21.3104
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.7200
0.1200
0.0000
0.0000
0.0000
0.0468
0.0020
0.0000
0.0050
0.000
0.0432
0.0052
0.0000
0.0015
TRIPTOF
(%)
TREONINA
(%)
ACEITE
PESCADO
0.1057
0.6037
0.0000
0.5602
0.0000
0.1080
0.0040
0.0000
0.0000
1.8206
0.0000
0.3060
0.0144
0.0000
0.0000
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.4860
8.6400
TRIGO GRANO
0.1320
0.5200
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.1150
0.3000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del Alimento
LISINA
(%)
METION +
CIST (%)
HARINA PESCADO
1.2073
0.6501
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
2.8943
1.4938
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.5220
0.2376
TRIGO GRANO
0.0160
0.0156
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del
Alimento
REMOLACHA
MELAZA
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.1800
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0400
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
0.0500
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
12
CUADRO N° 16
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “SUCHE”
(CRECIM)
Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.48
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
23.03
230.29
29.94
299.41
0.30
0.09
ACEITE PESCADO
2.00
20.00
3.00
0.06
0.04
REMOLACHA MELAZA
6.00
60.00
0.70
SOYA AFRECHO
19.00
190.00
1.10
0.21
VEGETACIÓN ACUÁTICA
13.93
139.30
0.30
0.04
TRIGO GRANO
6.00
60.00
0.80
0.05
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.97
CUADRO N° 17
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “SUCHE”
(CRECIM)
Aporte de nutrientes por ingrediente
ENERG.
Nombre del
MET.
Alimento
(Mcal)
Proteína C. Fibra cruda
%
%
HARINA PESCADO
0.7945
15.1989
0.2303
ORGANISMOS ALIMENTICIOS
ACUÁTICOS
1.5408
13.6681
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.1380
0.3600
0.0000
SOYA AFRECHO
0.5130
9.1200
0.7600
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.5433
2.0338
0.0000
TRIGO GRANO
0.1980
0.7800
0.1800
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
LISINA
(%)
1.1975
1.8563
0.0000
0.0000
0.5510
Calcio
%
Fósforo
%
0.9211
0.6448
0.0000
0.0000
0.0060
0.0494
0.0000
0.0030
0.0000
0.0000
0.0018
0.0456
0.0000
0.0078
METION
TRIPTOF TREONINA
+ CIST
(%)
(%)
(%)
0.6448
0.1842
0.5987
0.9581 0.03593
1.1677
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.2508
0.1140
0.3230
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.7522
0.2229
TRIGO GRANO
0.0240
0.0234
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0060
0.7104
0.216
Nombre del
REMOLACHA
Alimento
MELAZA
HARINA PESCADO
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0600
SOYA AFRECHO
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
SOYA
AFRECHO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.1900
0.0000
0.0000
ACEITE
PESCADO
0.0000
0.0000
0.0200
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
TRIGO
GRANO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0600
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
13
CUADRO N° 18
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “SUCHE”
(ACABA)
Dieta Calculada
Nombre
Ingredientes
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
22.67
37.22
4.00
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.30
3.00
0.48
0.11
0.12
0.70
1.10
0.80
0.05
0.25
0.05
1.03
226
372.25
40.00
REMOLACHA MELAZA
7.00
70.00
SOYA AFRECHO
23.00
230.00
TRIGO GRANO
6.00
60.00
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 19
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “SUCHE”
(ACABADO)
Aporte de Nutrientes por ingredientes
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.7823
1.9156
0.0000
0.1610
0.6210
14.9655
16.9932
0.0000
0.4200
11.0400
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
0.1980
0.7800
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
REMOLACHA MELAZA
LISINA
(%)
1.1791
2.3079
0.0000
0.0000
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
0.2267
0.0000
0.0000
0.0000
0.9200
0.9070
0.0000
0.0000
0.0070
0.0598
0.6349
0.0000
0.0000
0.0021
0.552
0.1800
0.0030
0.0078
METION
TRIPTOF TREONINA
+ CIST
(%)
(%)
(%)
0.6349
0.1814
0.5895
1.1912
0.4467
1.4518
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.6670
0.3036
TRIGO GRANO
0.0240
0.0234
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.1380
0.0060
0.3910
0.0216
ACEITE
PESCADO
0.0000
0.0000
0.0400
0.0000
0.0000
0.0000
MELAZA DE
CAÑA
TRIGO GRANO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0700
0.0000
SOYA AFRECHO
0.0000
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
0.0600
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
0.2300
0.0000
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
SOYA
AFRECHO
14
CUADRO N° 20
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “MAURI”
(INICIO)
Dieta Calculada
Nombre
Ingredientes
HARINA PESCADO
TRIGO GRANO
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
Composición de la
dieta
Porcentaje Kg./Ton.
2258
5.00
4.00
25.00
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.80
0.70
1.10
0.47
0.04
0.03
0.27
0.30
3.00
0.30
0.00
0.06
0.12
1.00
225.82
50.00
40.00
250.00
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.25
2.48
ACEITE PESCADO
2.00
20.00
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
41.07
410.70
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 21
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ALEVINOS DE “MAURI”
(INICIO)
Aporte de Nutrientes por ingredientes
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
14.9042
0.6500
0.2400
12.0000
0.2258
0.1500
0.0000
1.0000
0.9033
0.0025
0.0040
0.0650
0.6323
0.0065
0.0012
0.0600
0.0097
0.0362
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
2.1134 18.7483
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
TRIGO GRANO
REMOLACHA MELAZA
SOYA AFRECHO
ENERG. Proteína
MET.
C.
(Mcal)
%
0.7791
0.1650
0.0920
0.6750
VEGETACIÓN ACUATICA
ACEITE PESCADO
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
TRIGO GRANO
REMOLACHA MELAZA
LISINA
(%)
1.1743
0.0200
METION
+ CIST
(%)
0.6323
0.0195
TRIPTOF TREONINA
(%)
(%)
0.0000
0.0000
0.7250
0.3300
0.0134
0.0040
0.0000
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
2.5463
1.3142
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
SOYA AFRECHO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
ACEITE PESCADO
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
TRIGO GRANO
REMOLACHA MELAZA
TRIGO
GRANO
0.1807
0.0050
0.5871
0.0180
0.0000
0.0500
0.0000
0.1500
0.0000
0.0000
0.4928
0.0000
0.4250
0.0127
0.0000
1.6017
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
MELAZA DE
TRIGO GRANO
CAÑA
SOYA
AFRECHO
SOYA AFRECHO
0.0000
0.0000
0.0400
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.2500
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
VEGETACIÓN ACUÁTICA
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0200
0.0000
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
15
CUADRO N° 22
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “MAURI”
(CRECIM)
Dieta Calculada
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
HARINA PESCADO
22.99
229.89
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
41.91
419.11
PESCAD ACEITE
4.00
40.00
SOYA AFRECHO
20.00
200.00
TRIGO GRANO
5.00
50.00
REMOLACHA MELAZA
6.00
60.00
TOTALES
99.90
999.00
Nombre
del Alimento
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.30
3.00
1.10
0.80
0.70
0.48
0.13
0.12
0.22
0.04
0.04
1.03
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 23
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA JUVENILES DE “MAURI”
(CRECIM)
Aporte de nutrientes por ingrediente
Fibra
cruda
%
Calcio
%
Fósforo
%
15.1729
191322
0.0000
0.2299
0.0000
0.0000
0.9196
0.0000
0.0000
0.6437
0.0000
0.0000
0.5400
9.6000
0.1650
0.6500
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.1380
0.3600
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.8000
0.1500
0.0000
0.0000
0.0520
0.0025
0.0000
0.0060
0.0480
0.0065
0.0000
0.0018
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
ENERG. Proteína
C.
MET.
%
(Mcal)
0.7931
2.1567
0.0000
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
Nombre del Alimento
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF TREONINA
CIST (%)
(%)
(%)
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
1.1954
0.6437
2.5985
1.3411
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.5800
0.2640
TRIGO GRANO
0.0200
0.0195
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
REMOLACHA MELAZA
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
ACEITE PESCADO
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
REMOLACHA MELAZA
0.1839
0.5029
0.0000
0.1200
0.0050
0.0000
0.0000
0.5977
1.6345
0.0000
0.3400
0.0180
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO TRIGO GRANO
0.0000
0.0000
0.0000
0.2000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0500
0.0000
SOYA
AFRECHO
0.0000
0.0000
0.0400
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
REMOLACHA
MELAZA
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0600
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
16
CUADRO N° 24
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “MAURI”
(ACABADO)
Dieta Calculada
Nombre
del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
Composición de la dieta
Porcentaje
Kg./Ton.
22.46
30.00
2.25
Precio
S/. Kg.
Costo
Total
2.10
0.30
0.70
0.47
0.09
0.02
1.10
0.80
0.30
3.00
0.22
0.14
0.02
0.09
1.04
224.64
300.00
22.53
SOYA AFRECHO
20.00
200.00
TRIGO GRANO
17.18
171.83
VEGETACIÓN ACUÁTICA
5.00
50.00
ACEITE PESCADO
3.00
30.00
TOTALES
99.90
999.00
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
CUADRO N° 25
DIETAS DE MÍNIMO COSTO, PARA ADULTOS DE “MAURI”
(ACABADO)
Aporte de Nutrientes por ingredientes
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
ENERG.
MET.
(Mcal)
Proteína
Fibra cruda
C.
%
%
Fósforo
%
14.8261
13.6950
0.1352
9.6000
2.2338
0.7500
0.2245
0.0000
0.0000
0.8000
0.5155
0.0000
0.8985
0.0000
0.0023
0.0520
0.0086
0.0000
0.6290
0.0000
0.0007
0.0480
0.0223
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
Nombre del Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
0.7750
1.5438
0.0518
0.5400
0.5670
0.1950
Calcio
%
LISINA
(%)
METION + TRIPTOF TREONINA TRIGO
CIST (%)
(%)
(%)
GRANO
1.1681
1.8600
0.6290
0.9600
0.1797
0.3600
0.5841
1.17000
0.0000
0.3000
0.0000
0.0000
0.5800
0.2640
0.0687
0.0670
0.2700
0.0800
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
0.0000
0.1200
0.072
0.0000
0.0000
0.0000
0.3400
0.0619
0.2550
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
TRIGO GRANO
VEGETACIÓN ACUÁTICA
Nombre del
Alimento
HARINA PESCADO
ORGANISMOS ALIMENTICIOS ACUÁTICOS
REMOLACHA MELAZA
SOYA
AFRECHO
TRIGO
GRANO
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
SOYA AFRECHO
0.2000
0.0000
TRIGO GRANO
0.0000
0.1778
VEGETACIÓN ACUÁTICA
0.0000
0.0000
ACEITE PESCADO
0.0000
0.0000
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
ACEITE
VEGETACIO
PESCADO N ACUÁTICA
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0000
0.0200
0.0000
0.0300
0.0000
0.0000
0.0500
0.0000
17
DISCUSIÓN
Los resultados obtenidos en el cálculo de solución factible, referente al aporte de
nutrientes es similar y/o se encuentran de acuerdo a los requerimientos de los peces
en general en los intervalos citados por (New, 1987; Hepher, 1993; Cho and
Kaushik, 1990; UPGL, 2000)
Los límites de inclusión de ingredientes, bien por motivos tecnológicos (demasiado
grasa que dificulta la granulación) o bien por motivos fisiológico, digestivo y
metabólico fue efectuada mas que todo a la torta de soya como cita (Alarcón F.J,
1997)
La formulación de una fórmula ideal y las consideraciones prácticas que sea
nutritivamente equilibrado tanto para el mantenimiento, crecimiento, la reproducción
y la salud de las especies tal como también lo considera (Dominique, P. And Cho, J,
2000)
CONCLUSIONES
Del presente trabajo se extraen las siguientes conclusiones.
Según la solución factible el aporte de nutrientes de los ingredientes se encuentran
dentro de los valores recomendados para peces de proteína entre 35-50% y energía
metabolizable entre 2.50 - 4.70 Mcal/kg; para este efecto para las especies nativas se
tiene las siguientes conclusiones en cuanto al contenido mínimo en el alimento
(contenido teórico) de energía metabolizable (Mcal/Kg) y proteína cruda (%) se
presentan en el cuadro 25.
CUADRO 25
APORTE REAL DE NUTRIENTES EN LAS DIETAS FORMULADAS
EXPERIMENTALMENTE
ESPECIE Y/O ETAPA
CARACHI – aLEVÍN
CARACHI - JUVENIL
CARACHI – ADULTO
BOGA – ALEVÍN
BOGA – JUVENIL
BOGA – ADULTO
SUCHE – ALEVINO
SUCHE - JUVENIL
SUCHE - ADULTO
MAURI – ALEVÍN
MAURI - JUVENIL
MAURI - ADULTO
ENERGÍA
METABOLIZABLE
(Mcal/Kg)
(Mínimo)
PROTEÍNA CRUDA
%
(mínimo)
3.75
3.69
3.64
3.85
3.66
3.88
3.94
3.73
3.68
3.83
3.79
3.67
46.02
40.61
39.78
45.35
38.00
45.18
46.09
41.16
44.20
46.58
44.92
41.22
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno. Según AEZO/Agrosis, (1999)
-
Previa etapa de formulación por método lineal se puede restringir el nivel de
inclusión de los factores nutritivos que puedan tener algunos ingredientes de
origen vegetal.
18
-
La validación de la formulación según requerimientos nutricionales de las
especies pesqueras nativas nos permitirá determinar las formulaciones en
proporciones exactas de los ingredientes mas convenientes para cada especie.
RECOMENDACIONES.
-
Determinar los requerimientos nutricionales en ensayos "In vivo" ó "in vitro" de las
especies pesqueras nativas de lago Titicaca.
Realizar nuevas formulaciones de dietas en función a los requerimientos
establecidos.
Ejecutar trabajos de alimentación de especies ícticas nativas, empleando los
alimentos formulados y elaborados en el presente trabajo.
BIBLIOGRAFÍA.
1. ALARCÓN F. J (1997). Procesos Digestivos en Peces Marinos. Caracterización y
aplicaciones Prácticas. Tesis doctoral Universidad de Almería. Almería.
2. CAÑAS, R (1995). Alimentación y Nutrición Animal. DPC. Grapos S.A. impreso
en Chile.
3. CHO, C, Y., and Kau Shik, D.J (1990) la energía y utilización de la proteína en
(Salmo Gairdneri) Revista Mundial NUTRICIÓN - LA DIETA, 61. Pág. 132-172.
4. DOMINIQUE P, and CHO, Y (2000) And introduction to the Nutrition and feeding
of fish. Fish Nutrition Investigation Laboratory Dept. Of Animal and Poultry
Science, University of Guelp, Ontario - Canada.
5. HEPHER, B (1993) Nutrición de Peces Comerciales en Estanques. Edit. Limusa
S.A. de CV grupo Noriega Editors - México.
6. MIPE/DRP/OAT-UE, (2000). Estadísticas sobre volumen consolidado de
extracción de productos hidrobiológicos nativas.
7. MARTINEZ. D y ALARCÓN, L (2001). Efecto de los inhibidores presentes en
materias primas vegetales sobre las proteasas alcalinas de los peces.
Universidad de la Almería, 04120 - Almería.
8. NEW M. B. (1987). Feed and Feeding of Shrimp and fish. Aquac. Develop. And
Coord. Prog. UNEP - FAO, ADCP/REP/87/26. FAO, Rome: p 274.
9. SINTAYEHU, A.; MATHIES, E.; MEYER – BURGDORFF, H.; ROSENOW , H. And
GUNHER, k. D (1996) Apparent digestibilities and growth experiments With tilapia
areochromis niloticus fed soybean harina, cottonseed harina and sun flower seed
harina. J APPL.
10. UNIVERSIDAD DE LAS PALMAS DE GRAN CANARIA (UPGC) (2000) Fac. de
Veterinaria, Dpto. de Producción Animal "Nutrición Animal" - Gran Canarias.
19
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
REPRODUCCIÓN ARTIFICIAL
DE
Trichomycterus rivulatus “suche”
y Trichomycterus dispar “mauri”
Lic. Blgo. Brígida Paca Pantigoso
Lic. Blgo. René Chura Cruz
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 18
Julio
AÑO 2001
PUNO – 2001 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
Entre las especies ícticas nativas del lago Titicaca en peligro de extinción se
encuentran los trichomycteridos es decir el “mauri” y el “suche”.
Principalmente el “suche” que sufre la mayor amenaza.
El peligro de extinción obedece a varios factores como la introducción e
intromisión de especies ícticas foráneas como: la “trucha “ y el “pejerrey”, el
proceso de eutroficación, contaminación, el crecimiento poblacional, la
pobreza, etc. Frente a esta situación una de las alternativas de preservar y
conservar las especies ícticas nativas, particularmente el “suche” es su
acuicultura intensiva, es decir su reproducción artificial para lograr su
repoblamiento.
En este contexto se les ofrece la presenta guía, que esta dirigida a los
pescadores artesanales y todas las personas afines al campo pesquero en el
lago Titicaca.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
1. OBTENCIÓN DE REPRODUCTORES
Se cuenta con un plantel de reproductores en los estanques del Centro Piloto de
Pomata (Challacollo). Estos reproductores fueron capturados en el sector Villa
Santiago (Pomata) del Lago Titicaca con redes agalleras de una malla de 1 ½”, 1
¼” y 1 7/8” para “mauri” y 2”, 21/8” y 21/4” para “suche”; las que son caladas en
horas de la tarde (antes de las 4 de la tarde) y cobradas al día siguiente en las
primeras horas de la mañana (5 de la mañana). En ocasiones se realiza el
acopio de reproductores en forma directa de los pescadores.
2. TRANSPORTE DE LOS REPRODUCTORES
los reproductores aptos se transporta en tinas, baldes y otros recipientes
adecuados para este fin, de una capacidad de 5 a 10 litros con agua del lago y
cubiertos con plantas acuáticas. llegado al laboratorio se le añade con agua
fresca en forma gradual evitando ocasionar un shock térmico.
3. SELECCIÓN
La selección de los reproductores de trichomycteridos se hace tomando en
cuenta las siguientes características:
a. Selección por sexo
b. Que estén aptos ( estadio V)
c. Selección por tallas 112 mm como mínimo para “mauri” y 200 mm como
mínimo para “suche”
d. Aspecto morfológicos (que no tengan mal formaciones)
2
4. MATERIALES Y EQUIPOS PARA LA FECUNDACIÓN E INCUBACIÓN
-
Baldes de 5 a 10 litros de capacidad.
Franela de algodón.
Placas petri.
Coladores pequeños.
Vaso de incubación.
Lupa
Fuentes aporcelanadas.
Bombillas de jebe.
Plumas de ave.
Cámara fotográfica.
5. DESOVE Y FECUNDACIÓN
Para el proceso de fecundación artificial se debe tener en cuenta la proporción
sexual de 2 machos por 1 hembra en “mauri” y en de 1 a 1 para “suche”.
La fecundación se realiza por el método seco (Braskii), que consiste en extraer la
totalidad de las ovas aptas de la hembra, sobre una bandeja completamente
seca y en un lugar donde no haya incidencia directa de los rayos solares;
friccionando el vientre con la mano.
Se sigue un proceso similar para los machos esparciendo el líquido seminal
sobre la ovas, luego se mezcla los dos productos sexuales con la ayuda de una
pluma de ave, para que se produzca la fecundación de las ovas y dar origen al
huevo o cigoto.
Los productos sexuales se dejan reposar una hora para una mejor fecundación.
Posteriormente se lavan las ovas fecundadas con agua fresca hasta que queden
translucidas. Las ovas son libres por lo que no es necesario la separación.
Se cuantifica directamente el numero de ovas y luego se mide el diámetro para
ambas especies es de aproximadamente de 1.7 a 1.9 mm, depositándolas en los
vasos de incubación. Después de 24 horas las ovas fecundadas se hidratan
aumentando en su diámetro de 2.4 a 4 mm.
Los periodos de incubación varían en función de la temperatura del agua, a
mayores temperatura, menor período de incubación.
3
6. ECLOSION Y LARVAJE
- La incubación tiene un período de 6 a 15 días para “mauri” y “suche”
- El periodo de eclosión dura 3 a 5 días, dependiendo de la temperatura del
agua.
- Las larvas se caracterizan por presentar un saco vitelino previsto de reserva
vitelina.
- La reabsorción del saco vitelino en la población de larvas dura de 7 a 12 días
dependiendo de la temperatura del agua.
- Las larvas tienen tallas aproximadas de 6 a 7 mm.
- La alimentación de las larvas es endógena, utilizando el vitelo.
7. ALEVINAJE
- Las larvas pasan a ser alevinos, con la reabsorción del saco vitelino.
- La alimentación de los alevinos es exclusivamente exógena, con base a
fitoplancton, zooplancton, larvas de insectos acuáticos y en algunas
oportunidades con alimento balanceado.
- Los alevinos son diferentes morfológicamente a los adultos en los primeros
días de vida, pero con el transcurso de los días los vestigios morfológicos de
las aletas van tomando la forma definitiva del adulto.
4
5
Instituto de Investigación, Producción, Servicios y Capacitación “Qollasuyo”
Centro de Investigación y Producción Pesquera Chucuito UNA – Puno
ELABORACIÓN DE ALIMENTO
BALANCEADO
PARA
ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS DEL
LAGO TITICACA
Ing. Raúl Quispe Mamani
PUBLICACIONES
QOLLA
Nº 19
Julio
AÑO 2001
Puno 2001 – PERU
0
INTRODUCCIÓN
Las raciones de alimento balanceado para especies ícticas nativas se elabora con
materia prima, concentrados, ingredientes complementarios y aditivos. Lo que se
pretende en el presente trabajo es introducir la utilización de alimentos de la zona,
en la elaboración de dietas para la alimentación de las especies ícticas nativas del
lago Titicaca, teniendo una composición equivalente a la de los nutrientes de los
alimentos naturales (Energía Metabolizable, Proteína, Aminoácidos esenciales,
Lípidos, Minerales, Carbohidratos); ajustando el precio.
Actualmente se tiene dos tipos de Alimentos Compuestos en el proceso de
Elaboración: el extruido
y el alimento Compuesto - Pelletizado es bastante
diferente, donde el pelletizado se realiza básicamente en seco, frío o caliente
con baja presión, mientras que en el extruído se añaden grandes cantidades de
aceite a los ingredientes secos y la mezcla húmeda se extruye a altas
temperaturas y presión.
En la formulación y elaboración de alimentos compuestos para especies
pesqueras nativas no se tiene antecedentes por lo que el objetivo del presente
trabajo es la elaboración de las dietas experimentales de acuerdo a la
formulación planteada, los resultados serán directamente aplicables a
evaluación en el proceso productivo para tener un grado adecuado de viabilidad
técnica de los productos de alimentos compuestos para las especies ícticas
nativas.
Asoc. IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNAP
1
1.- MATERIALES Y MÉTODOS
El presente trabajo de Diseño y Elaboración de Alimentos Balanceados
experimentales se llevó
a cabo en la planta de Alimentos Balaceados del
Proyecto Especial Truchas Titicaca (PETT), donde fueron fabricados mediante
pelletizado.
1.1. MATERIALES
1.1.1. Materia prima, complementarios y aditivos utilizados en la fabricación de
las dietas balaceadas.
-
Harina de Pescado
Torta de soya
Organismos alimenticios (Hyallella, etc.)
Harina de trigo
Vegetación Acuática
Aceite vegetal
Melaza de caña
Antioxidante
Conservantes (0.2%)
Agentes ligantes y/o aglomerantes (0.2%)
1.1.2. Materiales y/o equipos
-
Balanza de plataforma, marca exacta, cap. 500kg.
Balanza de precisión marca OHAUS, cap. 3210 gr.
Jarras graduadas
Tinas
Bastidores
Sacos de polipropileno
Envases Pouch
Envases de papel
1.1.3. Equipos para fabricación de Alimentos Balaceados
-
Molino desintegrador de martillos, Cap. 150 Kg./h. Accionamiento 380 V.
(motor eléctrico de 20 HP)
Molino pulverizador de martillos, Cap. 240 Kg./h. Accionamiento 380 V.
(motor eléctrico de 15 HP)
Mezclador vertical, Cap. 1000 – 1200 Kg./h. Acc. 380 V. (motor eléctrico
de 5 HP)
Pelletizadora y
dosificador/mezclador, Cap. 300 – 600 Kg./h.
Accionamiento 380 V. (motores eléctricos de 25 y ¼ HP)
Generador de vapor (Beckett) Cap. 100 lb./pulg2 Accionamiento 220 V.
(motor de 1/8 HP)
Secador de pellets (Máquinas – INNOVA), Cap. 125 – 1200 Kg./h.
Accionamiento 380 V. (motores eléctricos de ½ y ¼ HP)
Tamizador (OCRIM) Cap. 500 – 1000 Kg./h. Accionamiento de 380 V.
(motor eléctrico de ¼ HP)
Cosedora de sacos (Kingex) Cap. 5 sacos/min. Accionamiento de 220 V.
(motor de 1/8 HP)
2
1.2. METODOLOGÍA
DE
EXPERIMENTALES
PROCESAMIENTO
DE
LAS
DIETAS
Figura 01
FLUJO DE PROCESAMIENTO DEL ALIMENTO BALANCEADO DENSO
COMPRIMIDO.
- Trigo entero
- Torta de soya
MATERIA PRIMA
ACONDICIONAMIENTO
BALANCEO de RACIÓN
AEZO F. D. 3.0 Versión
Windows 95/98.
PESADO
- Harina de pescado
- Harina de torta de soya
- Organismos Acuáticos
- Harina de trigo
- Vegetación Acuática
- Conservante
- BHT (antioxidante)
MEZCLADO EN
BASE SECA
MEZCLADO EN
BASE HÚMEDA
- Melaza de caña
- Aceite vegetal
PELLETIZADO EN
CALIENTE
-Vapor saturado
SECADO Y/O
ENFRIADO
TAMIZADO
ENSACADO / PESADO
Y COSIDO
ALMACENAMIENTO
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno.
1.2.1. MATERIA PRIMA
Se consideraron materias primas a partir de productos alimenticios enteros o
granulados (tortas o granos) los que garantizan la calidad del alimento
compuesto
1.2.2. ACONDICIONAMIENTO DE LAS MATERIAS PRIMAS
Los ingredientes como; el trigo, la torta de soya a granel se recepcionaron en
planta, a la vez se ha efectuado la separación de partículas indeseables, no
3
comestibles, a fin de garantizar la pureza del ingrediente, como evitar daños a
las máquinas.
Los insumos en granos y tortas, se sometieron a una proceso de molienda,
efectuada en un molino de martillos móviles donde, el principio de
funcionamiento es por (estallido o percusión), obteniendo partículas menores
de 300 micras, con tamiz fino teniendo un diámetro de perforación de 0,9 mm.
1.2.3. FORMULACIÓN DE RACIONES
Las raciones experimentales fueron formuladas, empleando un programa
computacional denominado AEZO. FD para WINDOW S 95/98 considerando
aspectos que se mencionan en la metodología de formulación de ración.
1.2.4. PESADO
De acuerdo a la composición porcentual de las dietas, se realizó el pesado de
cada uno de los insumos, complementarios y aditivos.
1.2.5. MEZCLADO BASE SECA
Para el producto mezclado de base seca, se incluyen todos los ingredientes
en seco, como (harina de pescado, harina torta de soya, harina de maíz
híbrido, harina de trigo, antioxidante Butilhidroxitolueno-BHT), para efectuar el
mezclado y homogenizado en un tiempo de 8 minutos.
1.2.6. MEZCLADO BASE HÚMEDA
Se prepara una cantidad de 3 Kg por tina, cuya capacidad es de 90 litros,
donde se incluyen los ingredientes como la melaza de caña, aceite vegetal, a
estos insumos de les da un mezclado manual, hasta homogenizarlos,
obteniéndose ésta en un tiempo de 2-8 minutos por cada 3 Kg
1.2.7. PELLETIZADO EN CALIENTE
La operación de moldeado se llevó a cabo en la pelletizadora, la que está
provista de dos rodillos con superficies perforadas de acero endurecido con
un determinado diámetro; la que tiene una matriz con orificio de salida para el
producto, y concluye con una cuchilla fija para cortar los pellets; está máquina
gira en sentido horario.
El pelletizado en caliente, consistió en dar forma, a la masa ó mezcla de
ingredientes en una prensa de expulsión con matriz fija plana; acondicionada
la mezcla con vapor saturado de agua a 99 a 110 oC, en el trayecto del
dosificador – transportador que dosifica la mezcla humedecida en cantidades
4
continuas y necesarias para que los rodillos compriman a través de los
agujeros de la matriz fija la que tiene 4 mm. de diámetro, para luego ser
expulsados en cantidad continua, y obtener gránulos o pellets.
1.2.8. ENFRIADO – SECADO
El producto pelletizado al salir de la máquina pelletizadora tuvo una
temperatura de 89-98 ºC y con una humedad promedio de 35 %. El producto
fue alimentado a una secadora horizontal de pellets, la máquina emplea aire
frío del ambiente para secar el producto. Para obtener resultados
satisfactorios, se procedió a un oreado del producto a temperatura del medio
ambiente.
1.2.9. TAMIZADO
El producto una vez sometido al secado, se tamizó para obtener un producto
seleccionado de diferentes tamaños y separar las partículas finas. Este
proceso se lleva a cabo empleando una máquina seleccionadora, la que tiene
o tamizador la que tiene una producción de 300-450 Kg/h.
1.2.10. ENSACADO – COSIDO
El ensacado del producto pelletizado seco, se hizo en bolsas de papel, en
presentaciones de 3 Kg.
1.2.11. ALMACENAMIENTO
Las dietas elaboradas fueron almacenadas a la sombra en “parihuelas” de
madera a una temperatura de 13 oC.
2. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
En los cuadros siguientes se presenta las cantidades de Ingredientes empleados
en la elaboración de las Dietas experimentales.
CUADRO Nº 01
CANTIDAD DE INSUMOS E INGREDIENTES PARA LA ELABORACIÓN DE
ALIMENTO B PARA ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS
INGREDIENT E S
Harina de pescado
Organismos alimenticios
Melaza
Vegetación acuática
Harina de trigo
Aceite de pescado
Harina de soya
COMPOSICIÓN PARA DIETA DE 3 KG/CU (CARACHI
AMARILLO)
ALEVINOS
JUVENILES
ADULTOS
Cant. (kg)
Cant. (kg)
Cant. (kg)
0.6738
1.14
0.09
0.056
0.150
0.09
0.796
0.692
0.797
0.090
0.007
0.120
0.090
0.600
0.692
0.730
0.150
0.643
0.090
0.090
0.600
5
RESULTADOS
Peso inicial : 3000gr. Peso inicial: 3000gr
Peso final : 2500gr. Peso final: 2 978 gr
Rendimiento: 83.3% Rendimiento: 99.1%
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2001)
Peso inicial: 3000gr
Peso final: 3150 gr
Rendimiento: 105%
CUADRO Nº 02
INGREDIENTES
Harina de pescado
Organismos alimenticios
Aceite de pescado
Melaza
Torta de soya
Harina de trigo
Vegetación acuático
RESULTADOS
COMPOSICIÓN PARA DIETA DE 3 KG/CU (BOGA)
ALEVINOS
JUVENILES
ADULTOS
Cant. (kg)
Cant. (kg)
Cant. (kg)
0.6885
1.2801
0.090
0.150
0.600
0.180
0.0081
Peso inicial: 3000gr
Peso final: 3090 gr
Rendimiento: 103%
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2001)
0.7026
0.7152
0.090
0.180
0.450
0.150
0.7092
Peso inicial: 3000gr
Peso final: 3009 gr.
Rendimiento: 100%
0.6885
1.2501
0.050
0.150
0.600
0.180
0.068
Peso inicial: 3000gr
Peso final: 3014 gr
Rendimiento: 100%
6
CUADRO Nº 03
CANTIDAD DE INSUMOS E INGREDIENTES PARA LA ELABORCIÓN DE ALIMENTO B
PARA ESPECIES ÍCTICAS NATIVAS
COMPOSICIÓN PARA DIETA DE 3
KG/CU SUCHE
INGREDIENTES
ALEVINOS
JUVENILES
ADULTOS
Cant.(kg)
Cant.(kg)
Cant.(kg)
0.6966
1.3980
0.090
0.54
0.120
0.150
-Pi=3000gr
Pf=3013
R=100%
Harina de pescado
Organismos alimenticios
Aceite de pescado
Harina de soya
Harina de trigo
Melaza de caña
Vegetación acuática
RESULT AD OS
0.6909
0.8982
0.060
0.570
0.180
0.180
0.4179
Pi = 3000gr
Pf = 3002
R = 100%
0.6801
1.1166
0.120
0.69
0.180
0.210
-Pi = 3000gr
Pf = 1977
R = 99%
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2001)
CUADRO Nº 04
INGREDIENTES
Harina de pescado
Organismos alimenticios
Aceite de pescado
Harina de soya
Harina de trigo
Melaza de caña
Vegetación acuática
RESULT AD OS
COMPOSICIÓN PARA DIETA DE 3 KG/CU
MAURI
ALEVINOS
JUVENILES
ADULTOS
Cant.(kg)
Cant.(kg)
Cant.(kg)
0.6774
1.2321
0.06
0.750
0.150
0.120
0.0075
Pi = 3000gr
Pf = 3065gr
R=102%
0.6897
0.2573
0.120
0.600
0.150
0.180
-Pi = 3000gr
Pf = 3100gr
R = 103%
0.6738
0.900
0.09
0.600
0.515
0.067
0.150
Pi = 3000gr
Pf = 3043gr
R = 101%
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2001)
En los cuadros anteriores se observa que en el proceso de elaboración de las
dietas experimentales se obtuvo rendimientos que fluctúan entre 83.3% a 105%
resultados acorde o muy cercanos a las referencias bibliográficas, sin embargo
dentro del rendimiento se tiene en cada dieta un porcentaje promedio de 8% de
finos, aunque teóricamente debería ser el 3% de finos; en las dietas que exceden
en rendimientos mayores al 100% se puede atribuir que estos resultados se
obtienen debido a la inclusión de aceite vegetal y melaza de caña como
ingredientes líquidos.
Según el crecimiento de los característicos merísticas de Orestias luteus,
Orestias pentlandii y Trichomycterus dispar . Referente a longitud de boca en
(mm) se presenta en el cuadro Nº 05.
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CUADRO Nº 05:
CRECIMIENTO DE LAS CARACTERÍSTICAS MERISTICAS DE LAS ESPECIES ÍCTICAS
NATIVAS
Características mirística (mm)
1 día 8 días
Orestias luteus
Longitud de boca (mm)
0.3
0.3
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2001)
17
días
0.3
Características merística (mm)
Ores tias pe ntlan dii
Longitud de boca (mm)
Fuente: IIP – Qollasuyo CP - Arapa (2001)
Características merística (mm)
T richo my cterus d is par
Longitud de boca (mm)
Fuente: IIP-Qollasuyo CP-Arapa (2002)
44
días
0.6
58
días
0.7
70
días
0.8
82
días
0.9
115
días
1
33 días
43 días
0.6
0.7
178
días
1.2
1 días
14 días
20 días
61 días
0.7
0.8
1.0
1.2
De acuerdo a lo reportado se puede recomendar los siguientes tamaños de
alimentos para diferentes especies y tamaños de especies.
ETAPA DE
DESARROLLO
“CARACHI
AMARILLO”
(Tamaño de
alimento mm)
“BOGA”
(tamaño de
alimento mm)
Alevinos
(0.1-0.4)
(0.1-0.4)
Juveniles
(0.6-1.0)
(0.6-1.2)
Adultos
(1.1-2.5)
(1.2-2.8)
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno (2002)
“SUCHE”
(tamaño de
alimento mm)
“MAURI”
(tamaño del
alimento mm)
(0.2-0.4)
(0.5-1.2)
(1.2-2.5)
(0.3-0.4)
(0.5-1.2)
(1.2-3.0)
Las partículas de Alimento ingerido están en relación al diámetro de la boca;
Aleev, 1963; citado por (Hepher 1993), demostró que los especies que se
alimentan de Plancton, materia vegetal o pequeños organismos bentónicos, por
lo general tienen el tamaño de la boca más pequeño que los
carnívoros
depredadores; (Dominique and. Cho, 2001)manifiestan que los tamaños
correctos del alimento deben ser aceptables para los diferentes tamaños de
peces.
Las post larvas de los peces nativas son pequeñas (2-3mm y 0.12 g de peso
promedio) y por tanto se concluye que se necesita un alimento tan pequeño y los
métodos para obtenerlo están en una etapa inicial y experimental.
El pellet o gránulo debe ser de correcta textura, flotabilidad donde parece que ha
de ser formulado y diseñado específicamente para alimento desmoronado ya que
en la industria de Alimentos Balanceados no se tiene en desarrollo de este tipo
de productos porque las especies ícticas el tamaño del alimento son menores a
los alimentos para otras especies ya existentes.
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A continuación en el cuadro 7 se muestra las características organolépticas de
las dietas experimentales.
CUADRO Nº 07
CARACTERÍSTICAS ORGANOLÉPTICAS DE LAS DIETAS
DIETA
sabor
CARACTERÍSTICAS ORGANOLÉPTICAS
olor
color
apariencia
Dieta, “carachi
amarillo”
Harina de
Pescado fresco
pescado y carne olor a melaza
Harina de
Dieta para la “boga”
Pescado fresco
pescado
Harina de
Pescado fresco
Dieta para “suche”
pescado
olor a melaza
Sabor a carne
Dieta para “mauri”
Pescado fresco
harina de pescado
Fuente: IIP Qollasuyo - CIPP Chucuito UNA Puno (2002)
Oscuro
pronunciado
Ligeramente
oscuro
Oscuro
pronunciado
Oscuro
pronunciado
Buena dureza
Correcto pulido
Dureza adecuada
Buen pulido
Dureza adecuada
Buen pulido
Dureza adecuada
Buen pulido
Las características organolépticas presentan una ligera variación donde éstas
están en función de las propiedades físicas de los ingredientes, cantidad de cada
ingrediente en la mezcla, tamaño de la partícula de los ingredientes, la
temperatura utilizada para el pelletizado, el nivel de grasa incluida, la utilización
de insumos complementarios y/o aditivos.
3. CONCLUSIONES
-
El alimento seco formulado en pellet’s se debe desmenuzar para que ésta
tenga un tamaño de alimento correcto, donde presentaron características
físicas y texturales deseables.
-
El tamaño correcto del alimento provee una suave transición entre los
diferentes rangos de tamaño de los peces en los alimentos.
-
El pellet o gránulo debe ser formulado y diseñado específicamente para
alimento desmenuzado.
-
En una formulación de alimento desmenuzado se puede utilizar agentes
aglutinadores naturales como es el almidón de papa, harina de trigo en
niveles considerados y así se asegurará la calidad, estabilidad en el agua,
flotabilidad de la partícula.
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4. RECOMENDACIONES
-
Efectuar determinaciones de tamaño de boca de las especies ícticas nativas
de cada una de las etapas de desarrollo de los peces.
-
Establecer normas de tamaño de alimento para diferentes especies y
tamaños de especies.
-
Elaborar las dietas alimenticias para especies ícticas nativas en método de
procesamiento de alimento por extrusión.
-
Realizar nuevas pruebas de formulación y elaboración de los alimentos
compuestos.
Iniciar trabajos de prueba y cultivo de peces empleando alimentos formulados
y elaborados por la Asociación IIP “Qollasuyo” y CIPP Chucuito de la UNA
Puno.
Validar las dietas para diferentes edades de Orestias y Trichomycterus
diseñadas y elaboradas por el IIP “Qollasuyo”.
-
Realizar análisis bromatológico de los alimentos naturales (Zooplancton y
otros) preferidas por las especies ícticas nativas y partir de estos resultados
elaborar alimento balanceado.
- Iniciar con la formulación de otro tipo de alimentos y metodologías para la
elaboración del alimento balaceado para las especies ícticas nativas.
-
Continuar con los trabajos de alimentación artificial en
especies ícticas
nativas desde los primeros estadios de crecimiento, para lo que podría servir
las formulaciones presentes en este capitulo.
-
Iniciar las investigaciones para la producción de alimento vivo (fitoplancton y
zooplancton) a fin de romper la dependencia de alimento natural silvestre.
5. BIBLIOGRAFÍA
-
DOMINIQUE, P. The Desk, Azebedo, P.A. and. CHO, C. (2000)the
combinations of ingredients of the protein animals dice as major sources of
the protein in the diet of trout of the rainbow fish laboratory of investigation of
nutrition, the dept. of animal and poultry sci., university of guelp, Ontario
Canada.
-
HEPHER, B. (1993) Nutrición de Peces Comerciales en estanques, Edit.
Limusa S.A. de C.V., Grupo Noriga Editores- México.
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