manual de practicas de laboratorio de ciencias morfologicas y

U n iv e rs id a d V e ra c ru z a n a
<3c-/
FACULTAD
DE
BIOANALISIS
■ A
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MANUAL DE PRACTICAS DE
LABORATORIO DE CIENCIAS
MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
C oncepcion Conde de Gregoris.
MANUAL DE PRACTICAS DE LABO RATO RIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
UNIVERSIDAD VERACRUZANA
FACULTAD DE BIOANALISIS
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE CIENCIAS MORFOLOGICAS
Y FISIOLOGICAS.
Que para obtener el tftulo de licenciado en Qufmica Clfnica.
PRESENTA:
Concepcion Conde de Gregoris.
ASESOR:
Dr. Francisco Malpica Ramon.
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2
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABO RATO RIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
AGRADECIMIENTOS
A Dios:
Te doy gracias senor por que nunca me has abandonado y siempre has
permanecido a mi lado en cada dfa de mi vida.
A mis padres:
Por su gran esfuerzo en darme estudios y gracias a ellos soy una
profesioncita.
A mis hermanos:
Ma. Luisa, Daniel, Jose Marfa, Pablo y Pedro que siempre me apoyaron de
una u otra manera.
A:
Doha Rosi, Eli, Daniela y Gil por que nunca dudaron en cuidarme a mis
hijos y eso lo valoro demasiado.
Agradecimiento especial a:
Carlos Arturo Gallardo Hernandez, que me apoyo en la realizacion de este
trabajo, agradezco su valiosa ayuda , ademas sabe perfectamente cuanto
lo quiero.
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
AGRADECIMIENTOS
A mi jurado:
Agradezco infinitamente al DR. Francisco Malpica Ramon una gran persona
y amigo por que fue quien me alento para titularme, mi respeto y
admiracion por siempre.
A:
La M. en C. Ma. Del Carmen Martinez Zurnaya, una gran amiga y una
persona muy especial a la que quiero mucho.
A:
El Q. C. Francisco Solis Paez, director de la facultad de bioanalisis por
las facilidades otorgadas para la realization de este proyecto.
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
Cl ENG) AS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
DEDICATORIA
A mis hijos: Samantha Aleida y Emiliano, porque comprendieron siempre que
mama estaba estudiando y contentos me apoyaron para seguir adelante, los amo.
A un gran hombre: Mi esposo Lie. Zinue S. Hernandez Gutierrez, por ser quien me
hace crecer como persona y saca lo mejor de mi, que sin su apoyo nunca hubiera
empezado este proyecto, ayudandome en cada etapa y desvelandose conmigo
para el termino del mismo.
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
INDICE
Introduction....................................................................................
5
Practica NQ1
Estuche de diseccion y manejo del instrumental........................................................6
Practica NQ2
Conocimiento del anfiteatro y manejo de modelo anatomico natural..................... 10
Practica NQ3
Diseccion y sutura...............................................................
13
Practica NQ4
Signos vitales.......................................................................................................
.20
Practica NQ5
Identification de las venas cefalica, media y basilica en un cadaver....... ...........34
Practica NQ6
Obtencion de muestras sangumeas......................................................................... 39
Practica NQ7
Elaboracion de frotis sangumeo...........................................
44
Practica NQ8
Determinacion de hematocrito........................................................
52
Practica NQ9
Recuento de globulos rojos....................................................................................... 58
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Practica NQ10
Liquido cefalorraquideo...................... ............................................................
..... 64
Practica NQ11
Diseccion de una rata............ .............................. ......................... ...........................73
Bibliograffa.......... ,............................................................................ ........... ............ 79
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENC1AS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
INTRODUCCION
El conocimiento del cuerpo humano es por medio de las disciplinas de la
morfologia y la fisiologfa humana, esto se basa en la aplicacion de los
conocimientos teoricos principalmente, pero al reforzarlo mediante la practica, el
conocimiento y la experiencia del docente, se transforma en aprendizaje por parte
del alumno y se hace mas firme al conjuntarlos y sobretodo que le encuentra una
aplicacion clinica y verdadera al conocimiento adquirido durante el semestre y que
ademas usara durante todo el tiempo de vida profesional.
Dentro de la Experiencia Educativa no existe un manual de practicas de
laboratorio, aunque estas se realizan, pero no se encuentran registradas, lo
anterior fue lo que motivo al diseno del presente manual que representa las
diferentes practicas de laboratorio que se realizan durante el transcurso del curso.
El manual de practicas de laboratorio dentro de la Experiencia Educativa de
Ciencias Morfologicas y Fisiologicas, tiene como objetivo que el alumno relacione
la utilidad que tienen los diferentes analisis clfnicos con la morfologia y fisiologfa
del cuerpo humano, para poder comparar con los diferentes estados de
enfermedad que atacan al cuerpo humano, y a su vez aprenda y domine diversas
tecnicas que le seran de gran utilidad a lo largo de toda la carrera de Qufmica
Clinica.
A continuacion se presentan varias practicas enfocadas a la utilidad qufmica
clinica que tiene cada aparato y sistema humano, asf mismo con la realizacion de
este manual se busca dejar una gufa de apoyo para todos los estudiantes que
conforman la facultad de Bioanalisis.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
p r A c t ic a
NO. 1
ESTUCHE DE DISECCION Y MANEJO DEL INSTRUMENTAL.
OBJETIVO
Al finalizar la practica, el alumno sera capaz de identificar cada una de los
instrumentos que conforman al estuche de diseccion, asf como su adecuado y
correcto uso.
SUSTENTO TEORICO
El estuche de diseccion es el conjunto de instrumentos disenados especialmente
para realizar practicas de diseccion
por estudiantes de la camera del area de
Ciencias de la Salud, siendo una herramienta que permite realizar maniobras de
'manipulation de tejidos.
Las variaciones del instrumental son muy numerosas pero adecuados para el
desempeno de la practica y de diferentes materiales como son el titanio, bario u
otros metales, la gran mayoria de este tipo de instrumentos, son fabricados de
acero inoxidable, las aleaciones que se utilizan deben tener propiedades
especificas para hacerlos resistentes a la corrosion, cuando se exponen a sangre,
Ifquidos antisepticos o diferentes Ifquidos corporales, y a los elementos naturales.
Los instrumentos segun su funcion pueden variar en forma y tamano, algunos
pueden ser pequenos o grandes, cortos o largos, rectos o curvos y filosos o
romos.
El estuche de diseccion es usado por los estudiantes, bajo una supervision directa
del maestro al realizar las practicas de diseccion en cadaver o cirugias en
animales de laboratorio, por lo que durante el tiempo que duren estas practicas, es
indispensable para la clase.
El estuche de diseccion varia en numero de piezas, el mas comun utilizado es el
de 12 piezas que a continuacion analizaremos.
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6
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENC1AS MORFOLOGICAS Y FISIQLOGICAS
PARTES DEL ESTUCHE DE DISECCION.
1. Pinzas de diseccion con dientes. Se usa para sostener y manipulas tejidos
firmemente como la piel.
2. Pinza lisa (pinzas de diseccion sin dientes). Se utiliza para la manipulacion de
tejidos grasos o delicados.
3. Pinza punta roma. Se utiliza para ir separando tejidos.
4. Pinzas de Kelly. Ayuda a separar tejidos, son pinzas hemostaticas, rectas o
curvas, tiene ranura en sus dos ramas y presenta un sistema de cremallera para
dejarla fija una vez pinzado el vaso sangufneo.
5. Tijeras curvas. Son utilizadas para cortar tejido (solo cirujano).
6. Tijeras rectas. Utilizadas para realizar codes sencillos como el hilo en la sutura
(solo ayudante).
7. Porta agujas. Se usa para tomar y sostener agujas quirurgicas curvas, son muy
parecidas a las pinzas.
8. Estilete. Utilizado para explorar heridas.
9. Canula. Se utiliza para la exploration de heridas y para realizar codes rectos.
10. Separadores. Se utilizan para separar tejido.
11. Serinas. Son ganchos que solo se ocupan en diseccion para la observation y
manipulacion de tejidos profundos, actuan como separadores.
12. Bisturf. Se divide en dos pades, mango y hoja, esta se fija al mango
resbalando la hendidura dentro de las muescas del mango, al fijar o sacar la hoja
del mango, nunca se utilizan los dedos, todo por medio de pinzas; las hojas son de
diferente forma y tamano, las mas comunes las del numero 3 y 4.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
6
5
1
2
3
12
4
7
11
8
9
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Se identificara el estuche de diseccion y cada una de sus piezas, el cual es el
material principal utilizado dentro del mismo, asf como la manipulacion de este.
TECNICA:
1,-ldentificar cada pieza del estuche de diseccion y su uso practico.
2. -Ensamblar el bisturf con su hoja, se deslizando suavemente la hoja con ayuda
de unas pinzas (no hacerlo con los dedos).
3. - Tomar con el porta agujas la aguja e insertar el material de sutura, jalando el
hilo hasta escuchar un “clic”.
MATERIAL Y EQUIPO.
1.-Bata.
2. - Guantes de latex.
3. - Estuche de diseccion
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
CUESTIONARIO.
1 i Par a que se utiliza el estuche de diseccion en el anfiteatro?
Para hacer disecciones, codes y suturas en el cadaver.
2.- i,De que material esta echo las piezas del estuche de diseccion?
De titanio, balio u otros metales, pero la gran mayona de instrumentos quirurgicos
estan fabricados de acero inoxidable.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y F1SIOLOGICAS
PRACTICA NO. 2
CONOCIMIENTO DEL ANFITEATRO Y MANEJO DE MODELO
ANATOMICO NATURAL
REGLAMENTO DEL ANFITEATRO.
1. El acceso al anfiteatro queda restringido a los alumnos de anatomfa y sus
maestros.
2. Cada grupo tiene horarios establecidos, los cuales deben ser respetados.
3. Los alumnos solo podran asistir a diseccion cuando se encuentre un
maestro cOmo responsable, y deberan dejar suturada la region trabajada.
4. Los cadaveres se asignan por medio de un oficio con copia al jefe de grupo
y al maestro responsable, estando obligados a manipular su cadaver lo
mejor posible con la finalidad de conservarlo util un mayor tiempo.
5. Es requisito indispensable que para hacer disecciones, los alumnos se
vistan con la ropa especffica para tal fin.
6. Cada grupo esta obligado
a separar adecuadamente
los
residuos
resultantes, conforme lo marca la ley general para la prevention y gestion
integral de los residuos.
7. En el anfiteatro, hay un
modelos,
almacen de huesos y piezas anatomicas y
que los alumnos pueden solicitar para prestamo a domicilio
mediante la entrega de su credencial.
8. Por razones sanitarias, los alumnos no pueden ingerir alimento ni fumar en
el anfiteatro.
9. Como el anfiteatro es compartido con otros grupos, es indispensable
mantener el orden, para no interrumpir el trabajo de los compaheros.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOG1CAS Y FISIOLOGICAS
OBJETIVO
Al finalizar la practica el alumno debe ser capaz de reconocer cada una de las
areas que conforman el anfiteatro, mostrar un buen comportamiento dentro del
mismo y el respeto al modelo anatomico natural, asf como su correcta
manipulacion.
SUSTENTO TEORICO
La palabra anfiteatro proviene del griego
ver), el anfiteatro fue una creacion
amphi (ambos lados) theatron (lugar para
romana, se caracterizaba por una construccion
circular ascendente en forma de embudo, en la cual la periferia era el espacio de
mayor diametro y el centro que era el escenario donde se desarrollaba las
matanzas de los cristianos era mucho menor. Con este tipo de construccion el
publico tenia una amplia vision de lo que se realizaba en el escenario desde
cualquier lugar de las graderfas en que estuvieres ubicado.
Los anfiteatros anatomicos se disenaron para disecar y ensenar la anatomfa
mediante demostraciones publicas del cuerpo humano y de animales. Es donde se
realizaban las necropsias o necrocirugfas (cirugia en personas muertas). El primer
anfiteatro anatomico se construyo en 1594 en la universidad de Padua.
Actualmente se cuenta con un anfiteatro para Ciencias de la Salud Xalapa, con
unas dimensiones y construccion diferente a la mencionada, sin embargo es en
donde los alumnos junto con los maestros acuden a las diferentes practicas de
diseccion pertenecientes a las materias relacionadas con la anatomfa humana.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Se visitara el anfiteatro para conocer como se encuentra conformado y se
identificara el modelo anatomico asignado, el cual es el material de la practica
utilizado dentro del mismo, asf como la manipulacion de este.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOGICAS
TECNICA:
1 Conocer la distribution del anfiteatro.
2. - Manejo correcto del modelo anatomico.
3. - Respetar el reglamento del anfiteatro.
—
gk iis ■■■■■
MATERIAL Y EQUIPO.
1. - Bata.
2. - Guantes de latex.
3. - Cubre bocas.
4. - Estuche de diseccion
CUESTIONARIO
1.- ^Para que se disenaron los anfiteatros anatomicos?
Para disecar y ensenar la anatomfa mediante demostraciones publicas del cuerpo
humano y de animates.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
PRACTICA NO. 3
DISECCION Y SUTURA
SUSTENTO TEORICO
Se le llama diseccion al corte realizado en algun tejido con el material adecuado.
La sutura es una union quirurgica de tejidos, separados por una herida, o por una
incision quirurgica, mediante el ligado con hilos metalicos, seda, catgut, nylon, etc.,
con la ayuda de una aguja. Y de este modo proteger la herida de agresiones
externas.
A continuacion se describe algunos tipos de suturas, las cuales son las mas
utilizadas:
•
Modo sim ple de Ciruiano.
Es el nudo mas frecuentemente utilizado en AP. Para realizar el nudo se
enrolla el extremo largo de la sutura (unido a la aguja) alrededor del porta
agujas con dos vueltas (doble lazada sobre porta, con hilo proximal). Con la
punta del porta se sujeta el cabo suelto, y se estiran los extremos para tensar
el nudo.
Se repite la operation en el sentido contrario, para fijar el nudo y Se estiran
ambos cabos para cortar el hilo y dejar dos extremos cortos.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
•
Sutura continua.
Se realiza un primer punto de sutura, pero sin recortar los cabos, de modo que
se continua introduciendo el hilo de forma constante a lo largo de toda la
incision.
Usar las pinzas para separar el tejido.
Cruzar de forma subcutanea formando un angulo de 455 con el eje de la herida,
y salir por la dermis del lado opuesto (en la forma intradermica, tanto la entrada
como la salida se hacen por la hipodermis) manteniendo estos angulos, la
vision del recorrido hace que parezca perpendicular en la zona superficial
mientras que es inclinado en la parte profunda.
Volver a introducir el hilo por la zona enfrentada al punto de salida anterior, y
de nuevo 45s subcutanea, atravesando toda la herida.
Para terminar, cortar el cabo unido a la aguja de forma que sobresalga un poco
para fijarlo a la piel con un esparadrapo quirurgico, o realizando un nudo sobre
el propio cabo.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
•
Punto de colchonero.
Para diseccion vertical:
Se pasa la aguja por la herida, de un extremo al otro a unos 0,5 cm. del borde.
A otros 0,5 cm. del punto de salida, se vuelve a introducir la aguja para pasar
de nuevo a traves de toda la herida hasta el punto origen, pero de forma mas
profunda,
saliendo a unos 0,5 cm. del primero. Se mantiene la misma
direccion en los cuatro puntos. Se anuda el hilo, con ambos cabos saliendo del
mismo lado, con el nudo habitual.
Para diseccion horizontal:
De igual modo, se pasa la aguja de un extremo al otro, pero se aproxima
trasladando el punto a 0,5 cm. al lateral del origen, quedando en la misma Ifnea
paralela a la herida y se introduce a la misma profundidad.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
El hilo utilizado en cada una de ellas, puede variar, segun la zona anatomica, las
caracteristicas de la herida y del paciente que se trate al igual que el tiempo que el
hilo permanecera en la zona suturada.
La sutura de hilo proporciona un cierre seguro y garantiza la mayor fuerza de
soporte de la herida, en comparacion con otros tipos de cierre. Las desventajas
que presenta es que requiere la utilizacion de anestesia, el tiempo de intervencion
es
mayor, traumatiza
el tejido y aumenta
el
riesgo de transmision
de
enfermedades por inoculacion accidental.
La alternativa a las suturas convencionales, esta en la sutura mecanica y en las
cintas adhesivas que proporcionan menor reactividad y menos incidencia de
infecciones que las de hilo. Los pegamentos tisulares o adhesivos surgen en este
contexto como una alternativa a los procedimientos de sutura habituales, aunque
actualmente la mayona de los centros de salud, disponen solo de los materiales
de sutura mas clasicos como la seda.
Las agujas de sutura estan disehadas para llevar el hilo de sutura a traves de los
tejidos, proporcionando el minimo dano, su eleccion viene dada por el tipo de
tejido a suturar, la accesibilidad de la zona a intervenir y el grosor del hilo
empleado. Existen agujas rectas que se manejan con los dedos, no con el porta
agujas; que se emplean para cierres cutaneos de incisiones largas.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLQGICAS
Las agujas curvas se manejan con el porta agujas, la aguja es tomada por una
zona entre el tercio medio y posterior de esta, permitiendo una mayor precision,
las cuales cuentan con distintos arcos y circunferencias. Las de tres octavos o un
medio son las mas utilizadas en cirugias menores.
OBJETIVO
El alumno conocera y practicara la diseccion y algunos de los diferentes tipos de
sutura, asf como el manejo del instrumental necesario.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA
Se practicara la diseccion y algunos tipos de sutura en un cadaver y en un pedazo
de polio o cerdo.
TECNICA
1. Se ensambla el bisturf con su hoja mediante el uso de las pinzas
adecuadas, nunca con los dedos.
2. Se hace una incision en la pieza de polio, cerdo o en la pierna del cadaver,
segun se requiera.
3. Se coloca la aguja en el porta agujas tomando la aguja no en medio, si no a
tres cuartas partes y se inserta el hilo jalando hasta que se escuche un
“clic”.
4. Se inserta la aguja en la piel jalando la aguja con la pinza de diseccion y al
mismo tiempo se trata de unir con la pinza dentada los bordes de la herida
para facilitar el paso de la aguja.
5. Se procede a realizar el nudo simple, enrollando el extremo largo de la
sutura (unido a la aguja) alrededor del porta agujas con dos vueltas (doble
lazada sobre el porta agujas). Con la punta del porta agujas se sujeta el
cabo suelto y se estiran los extremos para tensar el nudo.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
6. Se repite la operation en sentido contrario para fijar el nudo.
7. Otro tipo de sutura es la sutura continua, la cual se realiza con un primer
punto de sutura, pero sin recortar los cabos, de modo que se continua
introduciendo el hilo en forma constante a lo largo de toda la incision, se
utilizan para separar el tejido.
8. Se cruza de forma subcutanea formando un angulo de 45Qcon el eje de la
herida, y salir por la dermis del lado opuesto, manteniendo estos angulos.
9. Volver a introducir el hilo por la zona enfrentada al punto de salido anterior,
y de nuevo a 45s subcutanea atravesando toda la herida.
MATERIAL Y EQUIPO.
•
Estuche de diseccion.
•
Guantes
•
Cubre bocas
•
Bata
MATERIAL BIOLOGICO.
•
Polio.
•
Pata de cerdo.
•
Cadaver.
CUESTIONARIO:
^Que pinzas se utilizan para detener un sangrado?
Pinza de hemostasia o mosquito.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOGICAS
iC om o se debe tomar la aguja para coser una herida?
Se toma con las pinzas de diseccion no de la parte central, si no a tres cuartas
partes.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
P R A C T IC A L
SIGNOS VITALES.
SUSTENTO TEORICO.
Los signos vitales son mediciones de las funciones mas basicas del cuerpo. Los
signos vitales comprenden el ritmo cardfaco, la frecuencia respiratoria, la
temperatura y la presion arterial. Estos signos se pueden observar, medir y vigilar
para evaluar el nivel de funcionamiento ffsico de un individuo.
Los signos vitales normales cambian con la edad, el sexo, el peso, la tolerancia al
ejercicio y la enfermedad.
Los rangos normales para los signos vitales de un adulto sano promedio son:
■ Presion arterial: 120/80 mm/Hg
■ Respiracion: 12-18 respiraciones por minuto.
■
Pulso: 60-80 latidos por minuto (en reposo)
■ Temperatura: 36.5-37.29 C (97.8-99.1 9 F)/promedio de 379 C (98.6 9 F)
FRECUENCIA RESPIRATORIA.
La frecuencia respiratoria es el numero de veces que una persona respira por
minuto. Se suele medir cuando la persona esta en reposo, y consiste simplemente
en contar el numero de respiraciones durante un minuto contando las veces que
se eleva su pecho. La frecuencia respiratoria puede aumentar con la fiebre, las
enfermedades y otras condiciones medicas. Cuando se miden las respiraciones
tambien es importante tener en cuenta si la persona tiene dificultad para respirar.
La frecuencia respiratoria normal de un adulto que este en reposo oscila entre 15 y
20 respiraciones por minuto. Cuando la frecuencia es mayor de 25 respiraciones
por minuto o menor de 12 (en reposo) se podrfa considerar anormal.
-
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
FRECUENCIA CARDIACA:
La frecuencia cardiaca (FC) es el numero de veces que el corazon se contrae en
un minuto, y es importante conocer su comportamiento entre otras razones por su
Utilidad practica como un indice de intensidad para dosificar el ejercicio ffsico.
Tanto las personas sedentarias como los deportistas deben de conocer su
frecuencia cardiaca para realizar un ejercicio ffsico o plan de entrenamiento de
manera controlada, preservando con ello su integridad ffsica y optimizando sus
esfuerzos.
Valores medios de la FCR en funcion de la edad y del sexo
HOMBRES
EDAD
MAL
NORMAL
BIEN
EXCELENTE
86+70
-84
62
60 O MENOS
30-39
86+72
-84
64
62 O MENOS
40-49
90+74
-88
66
64 O MENOS
50-90
90+76
68
-74
66 O MENOS
20-29
MUJERES
EDAD
MAL
NORMAL
BIEN
EXCELENTE
96+78
-94
72
70 O MENOS
30-39
98+80
-96
72
70 O MENOS
40-49
100+80
-98
74
72 O MENOS
50-90
104+84
-86
74
74 0 MENOS
20-29
-21
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
La frecuencia cardiaca al igual que la presion arterial, en reposo pueden ser
afectada por varios factores, tales como: temperatura, humedad, actividad ffsica
realizada antes de la medicion, emociones (estres), la ingestion de alimentos, el
fumar, fatiga, infeccion y otros. La frecuencia cardiaca es un indicativo del nivel de
la aptitud cardiorrespiratoria (aerobica); ya que, se sabe que el ejercicio cronico (a
largo plazo) de tipo aerobico reduce las palpitaciones del corazon en reposo.
PULSO:
El ritmo del pulso es la medida de la frecuencia cardiaca, es decir, del numero de
veces que el corazon late por minuto. Cuando el corazon impulsa la sangre a
traves de las arterias, las arterias se expanden y se contraen con el flujo de la
sangre. Al tomar el pulso no solo se mide la frecuencia cardiaca, sino que tambien
puede indicar:
■
El ritmo del corazon.
■ La fuerza de los latidos.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
El pulso normal de los adultos sanos oscila entre 60 y 100 latidos por minuto. El
pulso puede fluctuar y aumentar con el ejercicio, las enfermedades, las lesiones y
las emociones. Las ninas de 12 anos de edad y las mujeres en general, suelen
tener el pulso mas rapido que los hombres. Los deportistas, como los corredores,
que hacen mucho ejercicio cardiovascular, pueden tener ritmos cardiacos de hasta
40 latidos por minuto sin tener ningun problema.
Uno mismo puede “tomarse el pulso”. El pulso se puede palpar en la muneca, el
cuello, la sien, la ingle, detras de las rodillas o en la parte alta del pie, areas en las
cuales la arteria pasa cerca de la piel.
Para medir el pulso en el cuello (arteria carotida), se colocan los dedos fndice y
medio al lado de la manzana de Adan (nuez), en una ligera depresion que se
encuentra alii y se presiona suavemente con los dedos firmes hasta que se
localiza el pulso. Una vez que se encuentra el pulso, se cuentan los latidos
durante un minuto o durante 30 segundos y se multiplica por dos para obtener la
suma total de latidos por minuto (tambien hablamos de pulsaciones por minuto =
PPm).
PROCEDIMIENTO PARA EL PULSO
Como tomarse el pulso:
Cuando el corazon impulse la sangre a traves de las arterias notara sus latidos
presionando con firmeza en las arterias, que estan localizadas cerca de la
superficie de la piel en ciertos lugares del cuerpo. El pulso se puede encontrar en
la parte baja del cuello hacia el lado, en la parte interior del codo o en la muneca.
Cuando se tome el pulso:
■ Utilizando las yemas de los dedos indices y corazon, presione suavemente
pero con firmeza sobre las arterias hasta que sienta el pulso.
■ Empiece a contar las pulsaciones cuando el segundero del reloj marque las
12.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
■ Cuente su pulso durante 60 segundos (o durante 15 segundos y despues
multipliquelo por cuatro para calcular los latidos por minuto).
■ Mientras este contando,
no mire al reloj continuamente,
mas bien
concentrese en las pulsaciones.
■ Si no esta seguro de los resultados, pidale a otra persona que cuente por
usted.
■ Si su medico le ha pedido que se tome el pulso y le resulta diffcil
encontrarlo, consulte con el medico para que le de mas instrucciones.
DILATACION PUPILAR
optico
optico
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
El orificio que posee el iris en el centra que tiene forma circular, es la pupila. Las
pupilas en hendiduras se pueden cerrar totalmente, por el contrario las circulares
siempre dejan un pequeno orificio. Este orificio hace de obturador y diafragma,
regulador de la luz precisa que debe entrar en la camara oscura del globo ocular e
impresionar la pelfcula sensible de la retina, sin quemarla por un exceso de luz.
Estimulando el iris por exceso de luz puede contraerse, dejando este orificio
convertido en un diminuto punto negro, y por el contrario, en lugares de poca
iluminacion pueden dilatarse hasta formar un gran cfrculo que puede medir hasta
ocho milfmetros de diametro, sobre todo en los jovenes, pues en los ancianos y en
los ninos es mas limitada esta abertura.
El proceso de dilatacion de la pupila sucede con total automatismo, independiente
de la voluntad del sujeto, condicionada por el cambio de brillo o la intensidad de
iluminacion. Volviendo a la comparacion fotografica, tenemos las modernas
camaras con sus grandes lentes de gran abertura y corta distancia focal, que
pueden captar imagenes con escasa iluminacion, pero esa gran abertura de la
lente, consigue poca nitidez y poca profundidad de foco. Pasa igual con la pupila
muy abierta, en escenas poco iluminadas: se dilata hasta conseguir un gran
orificio, pero capta menos detalles.
No solo reaccionan las pupilas por efecto de la luz, pues esta demostrado que
acciones de otra naturaleza, como pueda ser la ira, el deseo y otros estados
animicos pueden influir y modificar el tamano de este singular orificio; tambien
puede ser modificado con el esfuerzo de mirar objetos cercanos para aumentar asi
la profundidad de enfoque, aunque estas funciones no son las de su normal
funcionamiento.
PRESION ARTERIAL
La presion arterial es la fuerza que ejerce la sangre contra las parades de las
arterias. Cada vez que el corazon late, bombea sangre hacia las arterias. Su
-25-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
presion arterial estara al nivel mas elevado al latir el corazon bombeando la
sangre. A esto se le llama presion sistolica. Cuando el corazon esta en reposo,
entre un latido y otro, la presion sanguinea disminuye. A esto se le llama la presion
diastolica.
En la lectura de la presion arterial se utilizan estos dos valores, las presiones
sistolica y diastolica. Generalmente, se escriben uno arriba del otro o uno antes
del otro. La lectura con valores de:
■ 120/80 o menos son normales
■ 140/90 o mas indican hipertension arterial
■ Entre 120 y 139 para el numero mas elevado, o entre 80 y 89 para el
numero mas bajo es prehipertension
-26-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
COMO MEDIR LA PRESION ARTERIAL
Metodo Auscultatorio:
Para proceder a la medicion de la tension arterial, siente tranquilamente al
paciente por 5 minutos previos, cerciorandose que no haya fumado ni ingerido
cafe y que se halla con la vejiga vacfa (luego de haber orinado).
■ Coloque el brazo izquierdo si es diestro y viceversa a la altura del corazon,
apoyandolo en una mesa o el brazo del sillon.
■ Ponga el manguito alrededor del brazo desnudo, entre el hombro y el codo.
■
Identifique y palpe el latido del “pulso braquial” producido por la arteria del
brazo (se localiza a dos centfmetros por encima del pliegue del codo, en la
cara interna del brazo).
■ Sobre este latido, apoye la campana del estetoscopio.
■
Identifique y palpe el latido del pulso radial (pulso localizado a la altura de la
muneca cercano al borde correspondiente al dedo pulgar) en el mismo
brazo que realizara la medicion.
■ Bombee la pera con rapidez hasta que la presion alcance 30 mm Hg mas
de la maxima esperada o bien lo que es mas certero, 30 mm Hg por encima
del momento en que desaparecio el pulso radial que estabamos palpando
(esto ocurre porque al comprimirse el brazo, se comprime la arteria y
desaparece el pulso.
■ Desinfle el manguito lentamente observando la escala del tensiometro,
haciendo que la presion disminuya 2 a 3 mm Hg por segundo.
■ En el momento que escuche (ausculte) el primer latido, debera observar el
nivel que registra la aguja (o el menisco en el caso del tensiometro de
mercurio). Ese valor registrado corresponded a la Presion Arterial Maxima
(o Sistolica) cuyo valor no debera ser mayor a 139 mm de Mercurio
(mmHg).
-27-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
A partir de ese momento seguiremos desinflando el manguito e iremos
escuchando los latidos que primero crecen en intensidad y luego decrecen.
■
En el determinado momento en que dejamos de oir los latidos,
realizaremos una nueva lectura sobre la escala del tensiometro y en ese
momento estableceremos la Presion Arterial Minima, la que no debera
superar los 89 mmHg.
■
Repita el proceso en el brazo opuesto para corroborar que los registros
sean simetricos en ambos brazos.
■
De todas maneras es recomendable que las primeras mediciones las
realice con su supervisor.
-28-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y F1SIOLOGICAS
Metodo palpatorio:
■ Este metodo es mas rustico, de menor precision y prescinde del
estetoscopio (por lo tanto carece de la auscultacion de los ruidos).
■ Coloque el brazo izquierdo si es diestro y viceversa a la altura del corazon,
apoyandolo en una mesa o el brazo del sillon.
■ Ponga el manguito alrededor del brazo desnudo, entre el hombro y el codo.
■ Identifique y palpe el latido del pulso radial (pulso localizado a la altura de la
muneca cercano al borde correspondiente al dedo pulgar) en el mismo
brazo que realizara la medicion.
«
Bombee la pera con rapidez hasta que la presion alcance 30 mm Hg mas
de la maxima esperada o bien lo que es mas certero, 30 mm Hg por encima
del momento en que desaparecio el pulso radial que estabamos palpando
(esto ocurre porque al comprimirse el brazo, se comprime la arteria y
desaparece el pulso.
«
Desinfle el manguito lentamente observando la escala del tensiometro,
haciendo que la presion disminuya 2 a 3 mm Hg por segundo.
■
En el momento que aparezca (se vuelva a palpar) el primer latido del pulso
radial, debera observar el nivel que registra la aguja (o el menisco en el
caso del tensiometro de mercurio). Ese valor registrado correspondera a la
Presion Arterial
■ En el momento que aparezca (se vuelva a palpar) el primer latido del pulso
radial, debera observar el nivel que registra la aguja (o el menisco en el
caso del tensiometro de mercurio). Ese valor registrado correspondera a la
Presion Arterial Maxima(o Sistolica) cuyo valor no debera ser mayor a 139
mm de Mercurio (mmHg).
■ En el momento que aparezca (se vuelva a palpar) el primer latido del pulso
radial, debera observar el nivel que registra la aguja (o el menisco en el
caso del tensiometro de mercurio). Ese valor registrado correspondera a la
Presion Arterial Maxima(o Sistolica) cuyo valor no debera ser mayor a 139
mm de Mercurio (mmHg).
-
29
-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
«
Repita el proceso en el brazo opuesto para corroborar que los registros
sean simetricos en ambos brazos.
Como es de observar rapidamente, el metodo palpatorio obvia el registro de la
presion arterial
minima,
con
lo cual
se
pierde
un
dato
de
gran
valor.
Sin embargo en casos particulars, (ruidos ambientales intensos que impiden un
adecuado registro por el metodo auscultatorio), este metodo aporta una eficaz y
rapida informacion acerca del estado de la presion arterial.
OBJETIVO.
Aprender a medir los signos vitales del paciente como la frecuencia respiratoria,
cardfaca, el pulso, la dilatacion de las pupilas y la toma de presion arterial.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Se trabajara en equipo de cuatro personas. Se escogeran dos integrantes del
equipo para que sean pacientes. Despues tomaran los signos vitales en estado
de reposo, despues de realizar ejercicio, y al estar sometidos a estres.
PROCEDIMIENTO
Presion arterial:
1. Sentar al paciente comodamente.
2. Tomarla en el brazo, y empezar a ubicar palpatoriamente los latidos.
3. Con ayuda de un estetoscopio y un tensiometro, registrar los latidos.
Normal
120
80
ALTA
130
85
-30-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Pulso:
Se puede tomar en todos los lugares en los que pasen las arterias: munecas
(arteria radial o cubital) cuello (arteria carotida), pie (arteria pedial). Frecuencia
(normal: 60-100 pulsaciones por minuto)
1. Sentar al paciente comodamente.
2. Tomar el pulso de cualquier zona antes mencionada, con el dedo rndice y
medio, evitando tomar el pulso con el pulgar.
3. Registrar el numero de pulsaciones durante 1 minuto.
Respiracion.
Esta se toma por simple observation, se observa cuantas veces se mueve el torax
en un minuto.
Frecuencia respiratoria: 12-18 resp/min.
Reflejo pupilar:
1. Con una lampara pequena, se alumbra el ojo y se observa como se
contrae la pupila.
2. En caso de no tener lampara, se abre rapidamente el parpado superior y
se observa la misma reaction. Esta maniobra no es recomendable si
hay senales de heridas u objetos extranos dentro de los ojos.
3. Si no hay contraccion de una o de ninguna de las dos pupilas, pudiera
haber dafio neurologico serio.
4. Normalmente las pupilas se contraen al estimulo de la luz.
5. Si ambas pupilas estan mas pequenas de lo normal (contrafdas), la
causa puede ser una insolacion o el uso de drogas. Si las pupilas no son
de igual tamano, puede indicar la presencia de una herida en la cabeza
o una paralisis.
-3 1 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Temperatura:
1. Se coloca al paciente en una posicion comoda.
2. Colocar el termometro abajo del brazo, en la axila y dejarlo ahf por un lapso
de tiempo de 5 minutos.
3. Retirar el termometro.
4. Para leer el termometro, tomar el extremo opuesto al bulbo, de forma que
los numeros queden de frente a usted.
5. Hacer rodar el termometro entre los dedos, hacia atras y hacia adelante,
hasta que se vea un reflejo rojo o plateado en la columna.
6. Comparar el extremo de la columna con el grado que se marca en las
Ifneas sobre el termometro.
RESULTADOS.
Se sometio a los alumnos a diversos estados ffsicos y emocionales para observar
como cambiaban sus signos vitales. Fueron sometidos a estres al decides que
habrfa examen sorpresa y se les puso a corner con el fin de ver como cambiaban
los signos vitales despues de una actividad ffsica. A continuacion se muestra el
resultado de los signos vitales de un alumno:
Nombre: Judith Zamora Vivanco.
Sianos vitales en estado de reposo:
Pulso: 65 pulsaciones por minuto.
Presion arterial: 1 2 0 - 8 0 mm/HG
Frecuencia respiratoria: 13 respiraciones por minuto.
Sianos vitales desoues de examen sorpresa:
Pulso: 78 pulsaciones por minuto.
-32-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Presion arterial: 130- 85 mm/HG.
Frecuencia respiratoria: 17 respiraciones por minuto.
Sianos vitales desoues de actividad ffsica:
Pulso: 140 pulsaciones por minuto.
Presion arterial: 150 - 90 mm/HG.
Frecuencia respiratoria: 35 respiraciones por minuto.
MATERIAL Y EQUIPO.
■ Estetoscopio.
■ Baumanometro.
■ Cronometro.
■ Lampara.
■ Tensiometro.
■ Termometro de vidrio.
CUESTIONARIO.
1 i,Cuales son los valores normales de la presion arterial?
80/120 mmHg
2.- <j,Cuales son las frecuencias en las que se mide la presion arterial?
Sfstole y diastole.
-3 3 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
PRACTICA N9 5
IDENTIFICACION DE LAS VENAS CEFALICA, MEDIA Y BASILICA EN UN
CADAVER
SUSTENTOTEORICO
Como todos sabemos el corazon es el encargado de bombear la sangre a todo
nuestro organismo, las arterias son las encargadas de llevar la sangre oxigenada y
las venas, las encargadas de regresar la sangre al corazon para ser nuevamente
oxigenada. (Las arterias llevan y las venas regresan).
ARTERIAS:
Las arterias son tubos huecos de paredes resistentes y gruesas. Las arterias
principales son: la aorta y la pulmonar, y su tamano va disminuyendo a arteriolas y
sistema capilar.
ARTERIAS DEL CUERPO
vena auricular posterior
arteria occipital
arteria tem poral superficial
arteria m axilar
arteria facial
arteria lingual
arteria tiroidea superior
arteria carotida com un derecha
arteria vertebral derecha
arteria su bd avia derecha
arteria axilar
arteria profunda d el brazo
arteria carotida externa
arteria carotida interna
arteria carotida com un izquierda
arteria braquiocefalica
arteria subclavia izquierda
arteria coronaria derecha
aorta toracica
arteria braquial
vena radial
vena gonadica
interoseo
arteria cubital
arteria coliaca
arteria renai
vena m esenterica superior
aorta abdom inal
arco palm ar superficial
vena m esenterica inferior
arteria iliaca com un
vena femoral
arteria iliaca interna
vena poplitea
arteria iliaca externa
vena femoral profunda
arteria tibiale posterior
arteria tibial anterior
vena peronea
arteria plantar media
arteria plantar lateral
arco plantar
arteria dorsal de pie
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
VENAS:
Las venas a diferencia de las arterias, son menos elasticas y tienen unas valvulas
que impiden que la sangre descienda o se regrese por su peso. Su grosor tambien
varia desde las minusculas venulas, hasta las de mayor grosor llamadas venas
cavas que entran por el lado derecho del corazon.
Las principales venas son y vienen de:
« Cava superior: de la cabeza
■ Subclavias: miembros superiores
■ Cava inferior: piernas, rinones, hfgado.
•
La vena coronaria rodea al corazon
■$**no foncjj-tudh no£ su p e rio r
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Sena
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M e d ia n a
M ^ s e n te ric a s u p e r io r
basilic*;
T o fd e k a
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C m a m o r ia
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A * 1e>rna
M e s o n t « r jc a
In fe rio r
llio c o in te rn a
»;h*pogdjir»caJ
lU a co e x te rn a
internet-
C o ia te ra le s p a lm a re s
de lo t dodos
Distribution de venas del cuerpo humano.
-35-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISiOLOGICAS
Entre venas y arterias podemos sumar aproximadamente una longitud de 50,000
Km, aproximadamente.
La sangre esta presente en todo el organismo, pero puede variar la cantidad de
concentracion dependiendo de varios factores por ejemplo:
Durante el ejercicio la concentracion de sangre en los musculos es mayor, asi
como durante la digestion la cantidad de sangre aumenta en los intestinos, el calor
y el trio tambien modifican la distribution de la sangre.
OBJETIVO.
Conocer la localization de forma exacta de las arterias y venas del antebrazo.
Especialmente las de interes para la venopuncion.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Esta practica se realizara en el anfiteatro utilizando un cadaver para identificar las
principales venas que se utilizan para tomar muestras de sangre, identificando la
vena basilica, cefalica y mediana.
TECNICA.
1. - En primer lugar cuidadosamente utilizando el bisturf del estuche de diseccion
se realizara una incision en'el antebrazo del cadaver.
2. -Enseguida se penetrara entre los musculos que se encuentran en esa zona
para poder observar la vena cefalica y basilica, tomando en cuenta que la vena
basilica se encuentra a mayor profundidad que la cefalica.
3. - Se observara donde se unen la vena cefalica y basilica, que da origen a la
vena mediana.
-36-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Nota: La vena basilica es una larga vena de largo recorrido del miembro superior,
que ayuda a drenar la sangre de parte de la mano y el antebrazo. La mayor parte
de su trayecto es superficial; generalmente discurre por la grasa subcutanea y
otras fascias que descansan sobre los musculos del miembro superior. Se origina
en la parte cubital de la red venosa dorsal de la mano. Tras un pequeno recorrido
por la mano, se hace anterior y sube por el antebrazo, pasando a llamarse vena
basilica del antebrazo. Cerca de la region de la fosa cubital, en la curvatura de la
articulacion del codo, la vena basilica normalmente se conecta con otra gran vena
superficial del miembro superior, la vena cefalica, por medio de la vena mediana
cubital.
4.- Despues de identificar las venas de interes, se procede a suturar la region en
donde se hizo la diseccion.
VENAS CEFALICA, BASILICA Y MEDIA.
MATERIAL.
«
Estuche de diseccion.
■ Bata.
■ Cubre bocas.
-37-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOGICAS
■ Guantes de latex.
MATERIAL BIOLOGICO.
•
Cadaver.
CUESTIONARIO.
iQ u e caracteristicas presenta la vena basilica?
R= Es una vena que se origina en el lado cubital de la red dorsal de la mano, pasa
hacia arriba por el antebrazo y se une con las venas humerales para formar la
venaaxilar.
^Que caracteristicas presenta la vena cefalica?
R= Nace junto con la vena basilica, del arco venoso dorsal y tambien se hace
anterior (vena cefalica del antebrazo). Asciende por el canal externo del codo,
continua subiendo por el brazo y llega hasta el surco deltopectoral perforandolo y
desembocando en la vena axilar.
iC om o se llama la vena que resulta de la union de las venas basilica y cefalica?
R= Vena mediana.
-3 8 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOG1CAS
PRACTICA N2 6
OBTENCION DE MUESTRA SANGUINEA
SUSTENTO TEORICO
A la accion de realizar un corte en la vena se le conoce con el nombre de
flebotomfa; que deriva del griego flebas (venas) tomas (corte), por consiguiente la
persona que efectua las sangrias es un flebotomista, esta debera tener ciertas
caracteristicas:
•
Buena presentation
•
Buena etica profesional
•
Experiencia
•
Agilidad mental
•
Capacidad y disponibilidad para seguir instrucciones
•
Caracter agradable y amable.
Mediante esta tecnica de extraction, con los cuidados necesarios se obtendra
sangre venosa para la realizacion de diferentes analisis.
OBJETIVO
El alumno conocera y dominara la tecnica de obtencion de sangre, que empleara
durante todo el curso para realizar diversas practicas que requieran de una
muestra para obtener su resultado.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA
Con esta practica se pretende que los alumnos aprendan a tomar una muestra
sangufnea venosa, con previa explicacion teorica con ayuda de un brazo
electronico didactico para toma de muestra y visualizacion de las principales venas
de puncion en un cadaver.
-39-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
TECNICA
1. Se hace una ocultacion previa a la puncion, ligando con la finalidad de
observar y palpar el curso que siguen las venas, desligar.
2. Se limpia con una torunda la zona de dicha puncion, esperando que
evapore el alcohol.
3. Ligar nuevamente e introducir la aguja formando un angulo de 45°, o segun
lo amerite previo chequeo correcto de la jeringa, esta se tomara de la parte
cercana a la aguja con el dedo indice y con el bisel hacia arriba, con la
mano derecha y los dedos de la otra nos servira para evitar el juego de la
misma.
4. Cuando se esta en vena, la sangre fluira hacia la jeringa con el rmnimo de
aspiracion, la cual se continuara haciendo lentamente hasta obtener el
volumen deseado.
5. Retirar la ligadura y decir al paciente que abra la mano y poner la torunda
simultaneamente al sacar la aguja del sitio de donde se hizo la puncion.
6. El paciente debera permanecer con el brazo doblado por un lapso de 3 a 5
minutos, para evitar hemolisis.
7. El
vaciado
de
la
sangre
se
hara
inmediatamente
en
los
tubos
correspondientes deslizando la sangre por las paredes para evitar
hemolisis.
-40-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
V e n a c e f£ lic a
V e n a b a s ilic a
A rte ria
h u m e ra l
V e n a m e d ia n a
del codo
A rte ria c u b ita l
A rte ria ra d ia l
A rc o p a lm a r
p ro f u n d o
VENAS PARA OBTENCION DE MUESTRA
BRAZO ELECTRONICO DIDACTICO PARA TOMA DE MUESTRA
-4 1 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
TOMA DE MUESTRA CON METODO VACUTAINER.
MATERIAL
•
Ligadura
•
Alcohol al 70%
•
Algodon
•
Jeringas desechables
•
Agujas de calibre 19, 20 y 21 de bisel largo
•
Tubo con anticoagulante
•
Cojfn.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
CUESTIONARIO.
1.
que se le conoce como venopuncion?
R= A la accion de realizar un code en las venas.
2. ^Cuales son las principales venas para la puncion?
Vena cefalica, basilica y media.
3. ^Cuantos tipos de tecnicas de extraccion sanguinea se utiliza?
R= Comunmente se utilizan dos, con jeringa o Vacutainer.
-4 3 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
P R A C T IC A L 7
ELABORACION DE FROTIS SANGUINEO
SUSTENTO TEORICO.
Es un examen de sangre que brinda information acerca del numero y forma de las
celulas sangumeas y es de gran ayuda en la determination de enfermedades:
•
Parasitarias.
•
Hematologicas.
•
Inmunologicas.
Los eritrocitos son las celulas sangumeas mas numerosas que hay en este
componente y su color se debe a la hemoglobina que contienen y que por cierto
es la que transporta el oxfgeno. Su lugar de production y desarrollo se encuentra
en la medula osea, donde tambien nacen los leucocitos, pero algunos de estos
ultimos terminan su desarrollo en los tejidos linfaticos. Estos leucocitos no trabajan
en el sistema inmunologico, algunos llegan al lugar de la infection en mayor
numero, pero otros lo acaban con mayor eficacia.
Las plaquetas son celulas que tambien se forman en la medula osea, sirven para
el retardo de hemorragias y favorece a la coagulacion.
El plasma forma el 55% de la sangre, el primero contiene como agua, despues
protefnas, electrolitos, sales, etc.
La mayorfa de los elementos formes que constituyen a la sangre son los
eritrocitos, y casi nada de neutrofilos, linfocitos, monocitos, eusinofilos y por ultimo
basofilos.
Todos excepto los eritrocitos son leucocitos y de esos los neutrofilos, monocitos,
eusinofilos, y basofilos terminan su desarrollo en la medula osea.
-44-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Para la identification de forma visual de los leucocitos, los eusinofilos, basofilos y
neutrofilos parecen tener una estructura interna de granos, por esta razon se les
clasifica como granulocitos, en cambio los linfocitos y monocitos se les llama
agranulocitos.
Los globulos rojos tienen forma de una dona, son flexibles para que al pasar por
los capilares mas angostos no se rompan, la razon de que tienen el centro hueco,
es que han perdido su nucleo y producen oxfgeno de forma anaerobica, es decir
que no gastan el oxfgeno que contienen.
El fierro que contiene cada eritrocito se encuentra en la molecula de hemoglobina,
este elemento se intercambia en los pulmones por una de oxfgeno, y se realiza el
proceso inverso en cada uno de los tejidos.
FORMA DE REALIZAR EL EXTENDIDO:
f DEJAR QUE SE EXTIENDA LA SANGRE' '
-45-
DESUZAR EL PORTA EXTENSOR’
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
CARACTERISTICAS DE UNA BUENA EXTENSION:
•
La cabeza ha de estar cerca de uno de los extremos del porta.
•
La cola debe estar cercana al otro extremo del porta, pero sin llegar a el.
•
El borde de la cola tiene que estar finamente deshilachado. Ese fino
deshilachamiento recibe el nombre de "barbas".
•
Toda la extension ha de ser fina y homogenea.
•
Los bordes laterales de la extension deben estar separados de los bordes
del porta por 1 mm aproximadamente.
•
Una extension normal ha de tener una longitud de las % partes del
portaobjetos.
•
El uso de tenidores automaticos exige la realizacion de extensiones mas
cortas que las consideradas normalmente como correctas (con una longitud
de la mitad del portaobjetos).
f
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
DEFECTOS DE EXTENSION:
•
Excesiva longitud y escaso grosor o escasa longitud y excesivo grosor. Esto
se debe a un inadecuado tamano de la gota de sangre o/y a un error en la
velocidad o/y a un fallo en el angulo de extension de la misma.
•
Presencia de escalones o estrfas. Esto esta ocasionado por una falta de
uniformidad en el deslizamiento de la gota.
•
Existencia de abundantes zonas redondeadas que carecen de sangre. Esto
se produce por la presencia de restos de grasa o de suciedad en el porta.
•
Extremo final excesivamente dentado.
EXTENSION LARGA Y MUY FINA
EXTENSION CORTA Y GRUESA
m —
EXTENSION CON ESTRlAS TRANSVERSALES
EXTENSION CON ESTRlAS LONGITUDINAIES
EXTENSION CON ZONAS SIN SANGRE
EXTENSION CON EXTREMO FINAL MUY DESFLECAOO
OBJETIVO.
El alumno sera capaz de realizar y dominar la tecnica para realizar un frotis
sanguineo, permitiendole distinguir los diferentes componentes celulares y
determinar si el paciente presenta alguna alteracion en sus celulas sangufneas.
-47-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y F1SIOLOGICAS
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Se tomara una muestra sanguinea con anticoagulante. Previa explication de las
caractensticas que un frotis sanguineo debe reunir, el alumno procedera a
realizarlo y tenirlo, para despues observa en el microscopio y conocer las
diferentes caractensticas de las celulas sanguineas.
TECNICA:
1. Haga un extendido de sangre recientemente extrafda y mezclada.
2. Dejar secar a temperatura ambiente.
3. Cubra con el;colorante de writght por un lapso de cinco minutos, segun sea
la calidad del colorante.
4. Pasado el tiempo, anada solucion amortiguadora, (solucion buffer), y deja
actuar al mezclar por 10 minutos.
5. Pasado este tiempo lave por decantacion y deje secar el frotis a
temperatura ambiente, teniendo cuidado de limpiar perfectamente la parte
inferior de la preparacion para eliminar el maximo excedente del colorante.
6. Ya seca la preparacion, anadir entre las partes del cuerpo y la cola una
pequena gota de aceite de immersion.
7. Observar al microscopio en 10X y100X.
Observacion de neutrofilos, linfocitos y eritrocitos.
-4 8 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
VALORES NORMALES:
NEUTROFILOS (54 a 72%):
Es normal encontrar neutrofilos inmaduros, como mielocito y metamielocito.
En el nacimiento desciende a un 30% de cuatro a seis meses, a los cuatro anos
aumenta hasta alcanzar los valores de los adultos.
EOSINOFILOS:
Se encuentran de 1 a 3%, y no presentan variaciones con la edad.
BASOFILOS:
Celulas poco abundantes en la sangre, y su % es de 0-1%.
MONOCITOS:
Oscilan entre 4 y 10%, y no se encuentran variaciones con la edad.
UNFOCITOS:
Al nacimiento, se encuentran aproximadamente 30%, de los 3 a los 6 meses de
edad aumentan al 60%, y permanecen asi hasta los cuatro anos. Luego ocurre
una declinacion hasta alcanzar valores del 30% a los ocho anos, encontrandose
en los adultos concentraciones de 20 a 40%, y permanece asi hasta los 65 anos, y
de ahf bajan gradualmente.
ENFERMEDADES
QUE
CAUSAN
AUMENTO
INDICES DE LEUCOCITOS:
-49-
O
DISMINUCION
EN
LOS
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
NEUTROFILIA f :
> Inmediata: puede ser causada por tension, convulsiones, personas que han
recibido algun tipo de anestesia, ansiedad, administracion de adrenalina.
> Aguda: puede ser por algun tipo de infeccion, necrosis tisular (infarto),
anemia hemolftica, intoxicacion por medicamentos, o pacientes que esten
tomando corticoesteroides.
> Cronica: pacientes con inflamacion cronica, glomerunolefritis y neoplasias.
NEUTROPE
> Production deficiente: en trastornos de celulas precursoras, en deficiencia
de
vitamina
B12
o
acido
folico,
quimioterapia,
radioterapia,
en
enfermedades congenitas o pancreaticas.
> Incremento
en
la
destruccion
celular:
en
infecciones
graves,
en
hiperesplenismo y reacciones inmunitarias muy fuertes.
EOSINOFILIAf :
> Infestacion parasitaria, en reacciones alergicas, en infecciones tipo lepra,
brucelosis, tuberculosis, o enfermedades micoticas, asma, reacciones
medicamentosas, dermatitis, neoplasias y trastornos intestinales.
EOSINOPENIA
> Es muy raro, principalmente en situaciones muy fuertes de tension, en
reacciones inflamatorias, en administracion de glucocorticoides, adrenalina
o prostaglandinas.
BASOFILIA |
:
> En trastornos
mieloproliferativos
cronicos,
enfermedades
inflamatorias y despues de la exposicion de radiaciones.
-50-
intestinales,
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOGICAS
M ONOCITOSISf:
> Sfndromes mielodisplacicos, leucemias agudas, tumores linfocitarios, en
anemia hemdlftica, en neutropenia cronica.
LINFOCITOSIsf :
> En mononucleosis infecciosa, en infecciones por burdetella pertusis, en
infecciones por citomegalovirus, en toxoplasmosis, en infecciones virales
como varicela y hepatitis, en sffilis, en periodos de convalecencia, en
linfocemia aguda, en leucemia linfocitica cronica y en linfoma.
LINFOPENIA j :
> En neoplasias diseminadas, en enfermedades de tejido conectivO, con
lupus eritematoso sistematica, en pacientes con quimioterapia, radioterapia,
administracion
de
corticoesteroides,
enfermedades
inmunodeficientes
casos
de
congenitas
o
tuberculosis,
en
adquiridas,
en
enfermedades agudas, cronicas y en casos de tension y esfuerzos.
CUESTIONARIO.
1 ^Cual es la utilidad de un frotis sangufneo?
R= El frotis sangufneo sirve para observar las celulas sangufneas (eritrocitos,
leucocitos y plaquetas) y evaluar su morfologfa y cantidad en la sangre periferica,
para asf ayudar a confirmar el diagnostico de diferentes afecciones de la sangre.
2.- iC om o se tine un frotis sangufneo?
R= Despues de realizar el extendido, se deja secar, y se Neva a tenir con colorante
de Writght durante 5 minutos, posteriormente, anadir solucion buffer durante 10
minutos, enjuagar con agua corriente y dejar secar al aire.
-5 1 -
MANUAL DE PRACTI'CAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOG1CAS
PRACTICA Ns 8
DETERMINACION DE HEMATOCRITO
SUSTENTO TEORICO.
El hematocrito es el porcentaje del volumen de la sangre que ocupa la fraccion de
los globulos rojos. Las cifras normales de hematocrito en personas oscilan entre:
hombres, de 36,0% a 45,0%; mujeres, de 36,1% a 44,3%, dependiendo de
diversos factores fisiologicos, como la edad y la condicion fisica del sujeto.
Su determination se basa en la separation de los eritrocitos y el plasma mediante
una centrifugation capaz de empacar a los hematfes en el menor volumen posible;
este sera llevado al 100% con el total de la sangre, por lo que el resultado sera
expresado en porcentaje. El volumen del plasma que queda atrapado entre las
celulas debe ser el menor posible para evitar mediciones erroneas.
Es obvio, que el anticoagulante utilizado para realizar esta determinacion sea
capaz de mantener inalterado el volumen eritrocitario.
La determinacion de hematocrito es un examen de sangre que mide el tarnaho y
numero de globulos rojos, al igual que suministra un porcentaje de estos globulos
que se encuentran ,en toda la sangre. Este examen casi siempre se ordena como
parte de un conteo sanguineo completo.
El examen visual del plasma sobrenadante en el tubo de hematocrito puede
aportar information valiosa relativa a la causa de anemia. Los niveles elevados de
bilirrubina
serica,
caracterfsticos
de
pacientes
con
anemia
hemolitica
o
megaloblastica, se detectan por el color amarillo (icterico) del plasma. En las
deficiencias de hierro y en los procesos inflamatorios, el plasma se observa mas
palido de lo normal. Los aumentos en el numero de leucocitos y plaquetas pueden
apreciarse, como una delgada capa de celulas grises, situada por encima de los
eritrocitos empacados.
-52-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Es importante enfatizar que el hematocrito refleja la concentration de los
eritrocitos pero no la masa total de estos. Es asf como el hematocrito esta bajo en
la hiperhidremia del embarazo sin que la masa total de eritrocitos circulante este
reducida; y puede estar normal o elevado en los casos de shock hipovolemico
acompahado de hemoconcentracion aunque la masa total de eritrocitos pueda
estar disminuida en forma importante debido a la perdida de sangre caracterfstica
de esta situation clfnica.
OBJETIVO.
Realizar y aprender la tecnica de la determinacion de hematocrito, en base a los
valores de referencia, tanto en hombres como en mujeres. Asf como identificar la
importancia y utilidad clfnica de la determinacion de hematocrito, ejecutando
correctamente el macro y micrometodo.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
En esta practica se busca realizar de manera correcta la determinacion de
hematocrito, mediante el macro y micrometodo.
TECNICA (MICROHEMATOCRITO).
1. Mezclar la sangre por inmersion, por lo menos durante 5 min, no agitarla.
2. Llenar las dos terceras partes de un tubo capilar por el lado no marcado.
3. Sellar el extremo opuesto (marcado por una banda azul) con la flama del
mechero.
4. Centrifugar a 12, 000 rpm de 5 a 8 min, se lee usando una regia, las alturas
del volumen y del volumen total de la muestra.
5. Se mide toda la muestra, ese sera el 100%, posteriormente se mide solo la
parte roja (eritrocitos), hasta antes de la parte blanca (leucocitos).
6. La determinacion se hace mediante una regia de tres, multiplicando el valor
de lo eritrocitos por 100 y dividiendolo entre el volumen total de la muestra.
-53-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
HEMATOCRITO= ALTURA DE ERITROCITOS (mm)
X100
ALTURA DEL VOLUMEN TOTAL (mm)
1. El valor resultante, sera expresado en porcentaje.
2.
Tambien
se
puede
obtener
el
resultado,
utilizando
un
lector de
microhematocrito, en el cual se coloca el capilar y se mide el total tanto del
paquete globular, como de los demas componentes sangufneos. Solamente se
mide el paquete globular.
VOLUMEN TOTAL DE
LA MUESTRA: 5.1 cm
Ulifatttes
rojos
VOLUMEN DE
ERITROCITOS: 2.4 cm
TUBO DESPUES DE HABERSE CENTRIFUGADO
CALC ULOS:
(2.4cm) (100%)
5.1CM-
-►100%
2.4CM-
-► x
= (47.06%
5.1cm
-54-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIQLQGICAS
VENTAJAS:
•
El plasma que queda atrapado entre las celulas es mmimo (1%)
•
Resultados muy predecibles.
DESVENTAJAS:
•
Relativamente mas diffcil de realizar, sobre todo el sellado y dominar la
lectura.
LECTOR DE MICROHEMATOCRITO
TECNICA (MACROHEMATOCRITO).
1. Mezclar la sangre por inmersion por lo menos durante 5 minutos. NO
AGITARLA.
2. Llenar el tubo de Wintrobe hasta la marca de “0-10” usando una jeringa con
canula larga o una pipeta Pasteur. Es importante vigilar que no se formen
burbujas en la columna de sangre o en el fondo del tubo al llenarlo. Esto se
logra haciendo resbalar la sangre por las paredes del tubo, iniciando en el
fondo y sacando la canula a medida que se va llenando.
3. Centrifugar el tubo a 3000 rpm durante 30 minutos. La velocidad de
centrifugacion se debera ajustar al radio de la centrifuga, considerando que
siempre se debera tener una fuerza centrifuga relativa mayor a 2000 G.
-5 5 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
4. Leer el Ifmite superior de la columna de eritrocitos, inmediatamente por
debajo de la capa gris de leucocitos, en la columna de la derecha (escala
ascendente de 0 a 10 cm).
5. El resultado se informa en milfmetros por ciento.
VENTAJAS:
•
•
Es un metodo estandarizado.
i
Sencillo de realizar y de facil lectura.
DESVENTAJAS:
I
•
El plasma atrapado entre celulas es alrededor del 3% del volumen.
i
i
•
Puede dar resultados inconstantes debido a que existen alteraciones
morfologicas, el plasma que queda atrapado entre celulas se
incrementa.
VALORES DE REFERENCIA:
Al igual que con la hemoglobina y los eritrocitos, se modifican con la edad, sexo y
altura sobre el nivel del mar. En la CD. De Xalapa, Ver. a 1400 m sobre el nivel del
mar, son los siguientes:
HOMBRES
40.7 A 50.3%
MUJERES
36.1 A 44.6%
NINOS DE 3 MESES A 10 ANOS
37%
NINOS DE 10 A 15 ANOS
39%
EQUIPO REQUERIDO.
•
Microcentrifuga para tubos capilares.
Centrifuga
-56-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
MATERIAL.
Tubos capilares
Mechero
Regia
Vacutainer o material para extraction.
Tubos de Wintrobe
Pipeta Pasteur con bulbo
Mechero de Bunsen
Gradilla
MATERIAL BIOLOGICO.
•
Sangre obtenida con EDTA
CUESTIONARIO.
1. iQ ue es el hematocrito?
R= El hematocrito es el porcentaje del volumen de la sangre que ocupa la
fraction de los globulos rojos.
2. ^Que importancia cllnica tiene el hematocrito?
R= Sirve para el diagnostico de la anemia, en conjunto con la determination
de hemoglobina.
-57-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOG1CAS Y FISIOLQGICAS
PRACTICA Ns 9
RECUENTO DE GLOBULOS ROJOS
SUSTENTO TEORICO.
La muestra de sangre se diluye lo suficiente para contar cifras legibles utilizando
un liquido de dilucion isotonico que permita ademas identificarlos adecuadamente,
impidiendo la aglutinacion y la hemolisis y destruya otros elementos que pudieran
interferir en el recuento, que se realiza en la camara de Neubauer, cuya capacidad
es conocida.
El recuento de eritrocitos consiste en la cuenta del numero de celulas sangufneas
rojas por volumen de unidad en una muestra de sangre venosa.
Se obtiene mediante medicion directa y como tal no define ninguna patologfa; es
indispensable para obtener el volumen corpuscular medio VCM, de todas maneras
este parametro es obtenido directamente por el equipo para obtener el tamano
promedio de los eritrocitos y la hemoglobina corpuscular media que si es un
parametro calculado a partir de la hemoglobina y el recuento de globulos rojos.
OBJETIVO.
Identificar la importancia y utilidad clfnica del recuento de eritrocitos, asf mismo
ejecutar correctamente el recuento de globulos rojos en muestras de sangre.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
A partir de una muestra de sangre con EDTA, se procedera a realizar un conteo
de celulas rojas, siguiendo la tecnica estandarizada, y los calculos establecidos.
-58-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
TECNICA.
1. Mezclar la sangre por lo menos durante 5 minutos.
2. Llenar la pipeta de toma hasta la marca 0.5.
3. Diluir con liquido de Hayen, llenando hasta la marca 101; se debe evitar la
formacion de burbujas, que alterarfan la dilucion. Para ello, se recomienda
rotar la pipeta al aspirar y mantenerla en posicion vertical. El exceso en la
punta se elimina con papel secante. Con esto obtenemos una dilucion de
1 :200 .
4. Agitar durante un minuto.
5. Inmediatamente, eliminar las cuatro primeras gotas y cargar la camara de
Neubauer en sus dos cuadriculas. Dejar reposar un minuto a temperatura
ambiente para permitir la sedimentacion de las celulas.
6. Contar al microscopio con el objetivo seco debil o fuerte, verificando primero
que la distribution de las celulas sea homogenea; en caso contrario, se
debera repetir la prueba. La cuenta se realiza en 80 cuadros pequenos del
area central
de la camara, seleccionando para ello un cuadro mediano
central y cuatro angulares.
7. Multiplicar el numero de eritrocitos contados por 10,000 para obtener el total
de globulos rojos por mm3 de sangre.
8. La formula para realizar los calculos es la siguiente:
NX200X10X400 = NX 10,000
80
DONDE:
N: es el numero de eritrocitos contados.
200: es el titulo de dilucion.
10: correction de la profundidad de la camara para ajustar el volumen a 1 mm3
-59-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
400: total de cuadros pequenos del cuadro central de la camara.
80: total de cuadros pequenos contados.
PIPETA DE TOMA PARA GLOBULOS ROJOS Y LEUCOCITOS
L: CUADROS PARA LEUCOCITOS
E: CUADROS PARA ERITROCITOS.
-6 0 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
areas en donde se cuentan globulos blancos
| areas en donde se cuentan eritrocitos
CAMARA DE NEUBAUER
VALORES DE REFERENCIA:
Al igual que con la hemoglobina, se modifican con la edad, el sexo y la altura
sobre el nivel del mar. En la Cd. de Xalapa Veracruz, a 1400 m sobre el nivel del
mar, son los siguientes:
-6 1 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
ERITROCITOS
VALORES DE REFERENCIA
EDAD
SEXO
VALORES
(X105/mm3)
RECIEN NACIDO
M ASC0 FEM
4.5 a 6.5
1 MES A 2 ANOS
M ASC0 FEM
3.5 a 4.0
3 A 10 ANOS
MASC 0 FEM
4.1 a 5.0
11 A 60 ANOS
FEM
4.0 a 5.2
11 A 60 ANOS
MASC
4.6 a 5.8
MAS DE 60 ANOS
MASC 0 FEM
4.1 a 5.0
En la siguiente tabla, se muestran los valores promedio de eritrocitos a diferentes
alturas sobre el nivel del mar:
ERITROCITOS
VALORES DE REFERENCIA A DIFERENTES ALTITUDES
MUJERES
NIVEL DEL
HOMBRES
MEDIA
RANGO
MEDIA
RANGO
4.65
3.88 a 5.42
5.15
4.39 a 5.91
1000
4.69
4.17 a 5.21
5.28
4.63 a 5.93
1860
4.92
4.33 a 5.51
5.76
4.94 a 6.58
2220
4.99
4.27 a 5.71
5.69
5.10 a 6.28
2670
4.95
4.31 a 5.59
5.63
4.95 a 6.31
MAR
NIVEL DEL
MAR
EQUIPOY MATERIAL
•
Microscopio.
•
Pipetas de thoma para globulos rojos con boquilla.
•
Camara de Neubauer.
-6 2 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
•
Gradilla.
•
Tubos de ensaye de 13X100 mm.
•
Pipeta serologica de 5 ml.
MATERIAL BIOLOGICO.
•
Sangre con E.D.T.A
REACTIVOS.
•
Liquido diluyente de Hayen.
CUESTIONARIO.
1 i En que consiste el recuento de globulos rojos?
R= El recuento
de eritrocitos consiste en la cuenta del numero de celulas
sangumeas rojas por volumen de unidad en una muestra de sangre venosa.
2.- ^Por que es diluida la muestra?
R= La muestra de sangre se diluye lo suficiente para contar cifras legibles
utilizando un liquido de dilucion isotonico que permita ademas identificarlos
adecuadamente, impidiendo la aglutinacion y la hemolisis y destruya otros
elementos que pudieran interferir en el recuento, que se realiza en la camara de
Neubauer, cuya capacidad es conocida.
-6 3 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
PRACTICA N9 10
LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO.
SUSTENTO TEORICO.
Aproximadamente el 70% del Ifquido cefalorraqufdeo se forma en los plexos
coroideos ventriculares a traves de un proceso combinado de secrecion activa y
ultrafiltracion a partir del plasma. Alrededor del 30% de LCR se forma como Ifquido
intersticial, elaborado dentro los espacios intracelulares del cerebro y de la medula
espinal. La reabsorcion de LCR se produce a traves de las vellosidades
aracnoideas de los senos durales.
EL LIQUIDOCEFALORRAQUIDEO ES:
• Un Ifquido transparente e incoloro que se produce dentro de las cavidades o
ventrfculos del cerebro, por el plexo coroides y el plasma sangufneo que se
derrama.
• Bana al cerebro, la medula espinal y las meninges. La acumulacion excesiva de
Ifquido cerebroespinal resulta en la dilatacion anormal de los espacios en el
cerebro llamados ventrfculos. Esta dilatacion ocasiona una presion potencialmente
perjudicial en los tejidos del cerebro y es causante de la hidrocefalia.
Su production es aproximadamente 500 ml diarios, aunque el sistema solo cuente
con 120 a 150 ml. El LCR es sustituido en su totalidad tres veces diarias, cada 6 a
7 horas es renovado completamente.
La funcion principal del LCR es mantener flotando al encefalo, actuando como
amortiguador. Del mismo modo sirve de vehfculo para eliminar los desechos y fluir
entre el craneo y al espina dorsal para compensar los cambios en el volumen de
sangre intracraneal y en menor grado,
desechos y nutrir al cerebro.
-64-
sirve como vehfculo para eliminar
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
COMPOSIClbN.
•
Sodio.
•
Cloro.
•
Magnesio.
•
Potasio.
•
Bicarbonato y fosfatos.
•
Glucosa.
•
Protemas.
OBTENCION DE LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO MEDIANTE TECNICA DE
PUNCION LUMBAR:
1. -Se selecciona el sitio de puncion, generalmente en la L-4 Y L-5 o mas abajo, en
el espacio L-5 se observa una pequena saliente osea que ayuda localizar el sitio
de puncion, en este sitio se limpia con alguna solucion antiseptica y el area
circundante se cubre con una sabana esteril de manera que no obstruya el campo
visual.
2. A continuation se inyecta un anestesico local lentamente en la dermis alrededor
del sitio elegido para la puncion.
3. Posteriormente se introduce una aguja especial con estilete en la linea media
entre ambas apofisis del espacio lumbar hasta que penetre en el espacio
subracnoideo.
4. Con la aguja adentro del espacio, se extrae el estilete y se coloca en su lugar un
manometro para medir la presion LCR.
5. Se extraen de 10-20 ML de LCR que se dividen en 3 muestras de 2 a 3ml cada
una en tubos distintos esteriles y con rotulos secuenciales:
-65-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABO RATO RIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
•
El tubo 1 se utiliza para pruebas bioquimicas y serologicas.
•
El tubo 2 para microbiologia.
•
El tubo 3 para pruebas citologicas.
6. Al retirar la aguja se mide nuevamente la presion, en caso de encontrar
hipertension intracraneanal se extrae muy poco Ifquido por el riesgo de que el tallo
cerebral quede fuera de lugar.
7. Se coloca una gasa esteril en el sitio de puncion.
8. Los tubos.se rotulan con el # secuencial 1, 2, 3, el nombre del paciente y la
fecha enviandose inmediatamente al laboratorio.
Existen otros metodos alternatives que se utilizan en casos especiales, como la
puncion sisternal o suboxipital, que implica ser una puncion debajo del hueco
occipital. Esto resulta peligroso, porque esta muy cerca del tronco encefalico,
siempre es realizado con fluoroscopia (rayos X especiales). La puncion ventricular,
es menos comun, se realiza en el quirofano, en la cual se hace un orificio en el
craneo y se inserta una aguja directamente en uno de los ventriculos del cerebro.
Se recotecta el
.liquido. cefalorraquideo
IMPORTANCE CLINICA:
Las infecciones del SNC se dividen en varias categorfas que pueden ser
diferenciadas facilmente entre si mediante el examen del LCR.
-66-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLQGICAS
La meningitis es una inflamacion caracterizada por la inflamacion de las meninges.
La causa mas frecuente de este tipo de inflamacion es a causa de bacterias
(Neisseria meningitidis, Haemophilius influenza, Streptococus pneumonae) las
cuales progresan de una manera muy rapida llevando a un fatal desenlace. Estos
agentes Ilegan por medio de la nariz o la boca, alojandose en las meninges y
Ifquido cerebroespinal. Las meningitis causadas por hongos, intoxicaciones,
medicamentos o virus, son menos frecuentes, y por lo regular siguiendo un
tratamiento adecuado pueden curarse mas facilmente, a diferencia de las
meningitis bacterianas.
Aunque cualquier persona puede contraer meningitis, es una enfermedad
especialmente frecuente en ninos y personas inmunosuprimidas. Los sfntomas
mas frecuentes son dolor de cabeza y rigidez de la nuca que tiende a asociarse
con fiebre, intolerancia anormal a la luz o a los sonidos y trastornos de la
conciencia. A menudo, especialmente en ninos pequenos, solo se presentan
sfntomas inespecfficos, tales como irritabilidad y somnolencia. Si se presentan
erupciones en la piel, puede indicar una forma particular de meningitis, como la
meningococcemia.
Existen diferentes maneras de prevenir la meningitis. Algunas vacunas existentes
contra la meningitis en el mercado solo protegen un solo tipo de bacteria
determinada. Existen vacunas contra el meningococo C, otra que protege contra el
Haemophilus influenza tipo
B (Hib) y, tambien, la del neumococo. Es por ello que
cuando uno recibe una vacuna contra la meningitis (actualmente referida a la del
meningococo C), solo quedara inmune frente al tipo de germen pero no frente al
resto de las multiples posibilidades. Es decir, que aunque recibamos muchas
vacunas contra la meningitis, siempre es posible contraer meningitis por otros
germenes o causantes externos.
-67-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLOGICAS
PRUEBAS DE LABORATORIO:
-Examen ffsico del LCR:
•
Aspecto: en condiciones normales, el LCR es cristalino, con un aspecto y
viscosidad comparables al agua. Los leucocitos o eritrocitos pueden
producir un LCR opaco o turbio. La turbidez a su vez, puede estar causada
por microorganismos (bacterias u hongos).
•
Color: el LCR es totalmente incoloro, patologicamente adquiere coloracion
amarillenta o rojiza.
•
Densidad: 1.oo6- 1.008.
-Examen quimico de LCR:
•
Glucosa: 50 a 75 mg/100ml en adultos, y en ninos de 70 a 90 mg/100ml.
•
Protefnas: de 15 a 40 mg/100 ml.
•
Cloruros: 700 a 750 mg/100 ml.
-Examen citologico:
•
Cuenta celular total en adultos 0-10/mm3 y en ninos de 0-20/mm3.
•
Observacion de celulas epiteliales.
•
En condiciones normales, el LCR no presenta celularidad.
-Examen microbiologico:
•
Tincion de Gram.
•
Tincion con tinta china.
•
Cultivo.
-68-
:
MANUAL DE PRACTiCAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLQGICAS Y FISIOLQG1CAS
OBJETIVO.
Conocer la importancia clfnica que tiene el Ifquido cefalorraqufdeo (LCR), asf
como las pruebas qufmicas, citologicas y microbiologicas que se le realizan; del
mismo modo aprender a evaluar el aspecto ffsico y conocer la manera de
extraction de LCR.
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
En esta practica se busca llevar a cabo las diferentes pruebas que se le realizan al
LCR, como son el examen ffsico, qufmico y microbiologico.
TECNICA.
> EXAMEN FISICO:
1. Observar el aspecto y color del Ifquido cefalorraqufdeo.
2. Medir el volumen del LCR.
3. Medir la densidad del LCR, colocando una gota en el refractometro, y
se observa a contra luz la medida que marca la densidad.
4. Medir el pH del LCR colocando una gota sobre la tira reactiva
indicadora de pH.
TIRA REACTIVA INDICADORA DE pH
-69-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
SE OBSERVA LA DENSIDAD EN EL REFRACTOMETRO.
>
EXAMEN CITOLOGICO:
1. Con la ayuda de una pipeta Pasteur, se coloca una pequena gota de
liquido cefalorraquideo en la camara de neubauer.
2. Se le coloca el cubreobjetos a la camara de neubauer.
3. Se enfoca la camara de neubauer en el microscopio, en el objetivo
de 40X y se observa si existe celularidad.
-70-
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
> EXAMEN MICROBIOLOGICO:
1. Se realiza un frotis de LCR y se fija con calor, cuidando no quemar la
muestra.
2. Posteriormente, se tine mediante la tecnica de Gram: 1 minuto de
cristal violeta, se enjuaga con agua corriente, 1 minuto de lugol y se
enjuaga con agua corriente, se decolora con alcohol acetona hasta
que deje de salir hilos del colorante y por ultimo se tine con safranina
durante 30 s, se enjuaga con agua corriente y se deja secar al aire.
3. Se observa al microscopio en 100X con aceite de inmersion para ver
si existe la presencia de bacterias.
MATERIAL DE LABORATORIO.
•
Pipeta Pasteur.
•
Camara de Neubauer.
•
Lampara de alcohol.
•
Portaobtejos:
•
Cubreobjetos.
•
Refractometro.
•
Microscopio.
REACTIVOS.
•
Colorante cristal violeta.
•
Yodo lugol
•
Alcohol acetona.
-7 1 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLQGICAS
•
Safranina.
MATERIAL BIOLOGICO.
•
Muestra de LCR.
CUESTIONARIO.
1. <i,Que es el LCR y cual es su funcion?
R= Un llquido de transporte e incoloro que se produce dentro de las
cavidades o ventrfculos del cerebro por el plexo coroides y el plasma
sangumeo que se derrama. Su principal funcion es mantener al encefalo
flotando.
;
2. ^Que estudios se llevan a cabo en el LCR?
R= Se realiza un examen ffsico, qufmico, citologico y microbiologico.
3. iQ ue afeccion es la responsable de la inflamacion de las meninges?
R= La meningitis, que puede ser causada por virus, bacterias u hongos, y
afecta principalmente a ninos y personas inmunodeprimidas.
- 72 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
PRACTICA N9 11
DISECCION DE UNA RATA
SUSTENTOTEORICO.
Muchas
investigaciones
cientfficas
son
realizadas
en
animates
de
experimentacion, dentro de los cuales se incluyen primates no humanos como el
mono Rhesus, ungulados como las cabras y los borregos. Sin embargo, en la
mayoria de los experimentos se emplean especies pequenas de mamiferos como
los roedores; entre estos estan los conejos, los cobayos, los hamsteres y
principalmente las ratas de laboratorio.
Los aparatos y sistemas que conforman al organismo de los mamiferos son los
siguientes:
Xavidad nasal
Fosa nasal
Laringe
Pulmon
derecho
Pulmon
I izquierdo
APARATO RESPIRATORIO: El aparato respiratorio es el encargado de captar
oxigeno y eliminar dioxido de carbono procedente del metabolismo celular.
El aparato respiratorio generalmente incluye tubos, como los bronquios, usados
para cargar aire en los pulmones, donde ocurre el intercambio gaseoso. El
diafragma, como todo musculo puede contraerse y relajarse. En la inhalacion, el
diafragma se contrae y se allana y la cavidad toracica se amplfa. Esta contraccion
crea un vacfo que succiona el aire hacia los pulmones. En la exhalacion, el
-7 3 -
MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
diafragma se relaja y retoma su forma de domo y el aire es expulsado de los
pulmones.
En humanos y otros mamiferos, el sistema respiratorio consiste en vfas aereas,
pulmones y musculos respiratorios que median en el movimiento del aire tanto
dentro como fuera del cuerpo.
APARATO
CIRCULATORIO:
Es
la estructura
anatomica
que
comprende
conjuntamente tanto al sistema cardiovascular que conduce y hace circular la
sangre, como al sistema linfatico, que conduce la linfa.
Esta conformado por arterias, venas, sangre, capilares y el corazon, el cual
consiste en un haz de tejido especializado que genera una corriente electrica. Este
marcapasos natural produce una contraccion muscular que impulsa la sangre a
todo el organismo.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
Intestine
__Intestino
grueso
Ap6ndice
detgado
IPW
SISTEMA DIGESTIVO: Es el conjunto de organos (boca, faringe, esofago,
estomago, intestino delgado e intestino grueso) encargados del proceso de la
digestion, es decir, la transformation de los alimentos para que puedan ser
absorbidos y utilizados por las celulas del organismo.
La funcion que realiza es la de transporte (alimentos), secrecion (jugos digestivos),
absorcion (nutrientes) y excrecion (mediante el proceso de defecacion).
El proceso de la digestion es el mismo en todos los animales monogastricos:
transformar los glucidos, lipidos y protefnas en unidades mas sencillas, gracias a
las enzimas digestivas, para que puedan ser absorbidas y transportadas por la
sangre.
OBJETIVO.
El objetivo de esta practica es que el alumno conozca como estan constituidos
anatomicamente los diferentes aparatos y sistemas de un marmfero, tomando
como modelo una rata de laboratorio.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLQGICAS
DESCRIPCION DE LA PRACTICA.
Se anestesiara a una rata de laboratorio y se va a diseccionar para observar los
aparatos y sistemas que la conforman.
TECNICA.
1. Se anestesia a la rata haciendo unos calculos en donde por cada 250 g se
va a inyectar .10 ml de anestesia.
2. Se deja que la anestesia haga efecto, y una vez dormida la rata, se va a
amarrar de las cuatro patas, boca arriba, a los extremos de la tabla.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORY DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
3. Antes de hacer el code abdominal, se rectifica que la rata este
completamente dormida, pellizcando con las pinzas la piel del abdomen, y
verificando que no chille o se mueva.
4. Si la rata ya esta completamente dormida, se va a diseccionar la cavidad
abdominal, cuidando de no cortar algun organo. Se observara el aparato
digestivo utilizando los separadores del estuche de diseccion.
5. Posteriormente, se va a diseccionar la cavidad toracica, cortando las
costillas con las tijeras. Se podra observar el corazon y los pulmones.
6. Una vez estudiado todo el organismo de la rata, se va a inyectar anestesia
directamente en su corazon para provocarle la muerte.
7. Finalmente, se cierra la rata y se Neva a los desechos biologicos.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIQLOGICAS
MATERIAL.
•
Estuche de diseccion.
•
Tabla con sujetadores.
•
Ligas.
•
Guantes.
•
Cubre bocas
•
Bata
MATERIAL BIOLOGICO:
•
Rata de laboratorio.
CUESTIONARIO:
1. iQ ue calculos se hacen para anestesiar a una rata de laboratorio?
R= Se va inyectar por cada 250 g, .10 ml de anestesia.
2. iQ ue aparatos y sistemas se observaran?
R= Sistema digestivo, aparato circulatorio y respiratorio.
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MANUAL DE PRACTICAS DE LABORATORIO DE
CIENCIAS MORFOLOGICAS Y FISIOLOGICAS
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