EMA (E29) - Menarini Diagnostics
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EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody Identificación del Producto N.º de ref. 44586 44587 44282 Descripción EMA 0,1 M (E29) EMA 1 M (E29) EMA RTU M (E29) Definiciones De Los Símbolos P listo para usar C concentrado A ascitis E suero S sobrenadante DIL DOC# DIS rango de dilución del concentrado documento número distribuido por Uso Previsto Este anticuerpo está destinado para uso diagnóstico in vitro (IVD). Anticuerpo EMA está previsto para que laboratorios cualificados identifiquen, mediante microscopia óptica, la presencia de antígenos asociados en cortes de tejidos embebidos en parafina y fijados con formol utilizando métodos de pruebas IHC (inmunohistoquímica). El uso de este anticuerpo está indicado, después de un diagnóstico diferencial clínico de enfermedades, como ayuda en la identificación de tumores de origen epitelial dentro del contexto de paneles de anticuerpos, el historial clínico del paciente y otras pruebas de diagnóstico evaluadas por un patólogo cualificado. Resumen Y Explicación El antígeno de membrana epitelial es un marcador útil para la tinción de muchos carcinomas. Este anticuerpo tiñe células normales y neoplásicas de diferentes tejidos como epitelio de mama, glándulas sudoríparas y epitelio escamoso. Los carcinomas hepatocelulares, carcinomas adrenales y carcinomas embrionarios son consistentemente EMA-negativos, de manera que los tejidos positivos para queratina y negativos para EMA favorecen el diagnóstico de estos tumores. El anticuerpo EMA es frecuentemente positivo en meningiomas, lo que puede ser útil cuando se quiere diferenciar ésta condición de otras neoplasias intracraneales, como por ejemplo Schwanomas. La falta de reacción de EMA puede ser de valor ya que una reacción EMAnegativa es una característica de algunos tumores como los carcinomas adrenales, seminomas, paragangliomas y hepatomas. Principios Y Procedimientos El anticuerpo primario indicado puede utilizarse como anticuerpo primario para la tinción inmunohistoquímica de cortes de tejido fijado con formol y embebido en parafina. En general, la tinción inmunohistoquímica junto con el sistema de detección con estreptavidinabiotina permite la visualización de antígenos a través de la aplicación secuencial de un anticuerpo específico (anticuerpo primario) al antígeno, un anticuerpo secundario (anticuerpo de unión) al anticuerpo primario, un complejo enzimático y un sustrato cromogénico con etapas de lavado intermedias. Alternativamente se puede utilizar un sistema de detección polimérico sin biotina. La activación enzimática del cromógeno da lugar a un producto de reacción visible en el sitio del antígeno. La muestra puede entonces contrateñirse y aplicarse un cubreportaobjetos. Los resultados se interpretan utilizando un microscopio óptico y ayuda en el diagnóstico diferencial de los procesos patofisiológicos que pueden estar asociados o no a un antígeno en particular. Los productos prediluídos están diluido óptimamente para utilizarse con una amplia variedad de kits de detección que ofrecen otros fabricantes. Materiales Y Métodos Vea la etiqueta del producto para información específica sobre el lote acerca de lo siguiente: 1. Concentración de inmunoglobulina 2. Detalles de la fuente anticuerpos de DIS A.Menarini Diagnostics S.r.l. Via Sette Santi, 3 50131 Firenze Italy DOC# MEN24729000 ES Rev. 0,0 Cell Marque Corporation 6600 Sierra College Blvd Rocklin California 95677 USA EMERGO EUROPE Molenstraat 15, 2513 BH The Hague NL EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody 15. Bloque de avidina-biotina Reactivos Suministrados 16. Reactivo de control negativo Prediluído El producto de anticuerpo primario indicado contiene reactivo listo para usar. 17. Medio de montaje 18.Cubreobjetos 19. Microscopio óptico (40-400x) El rango de concentración de inmunoglobulina prediluida para este producto es 0,14-0,27 µg/ml. Conservación Y Manipulación Concentrado El producto de anticuerpo primario indicado contiene reactivo concentrado. Almacenar a 2-8°C. No congelar. Los formatos prediluido y concentrado de este anticuerpo están diluidos en Amortiguador Tris, pH 7,3-7,7, con un 1% de BSA y <0,1% de azida de sodio. Para garantizar la dispensación adecuada del reactivo y la estabilidad del anticuerpo, tras cada utilización se debe volver a poner el tapón y almacenar el frasco inmediatamente en la nevera, en posición vertical. El rango de concentración de inmunoglobulina concentrada para este producto es 9,33-17,99 µg/ml. Todos los reactivos de anticuerpo tienen una fecha de caducidad. El reactivo es estable hasta la fecha indicada en la etiqueta siempre que se almacene correctamente. No usar el reactivo después de la fecha de caducidad para el método de almacenamiento descrito. El rango de dilución útil recomendado para el producto concentrado es de 1:100-1:500 y se puede encontrar en la etiqueta del producto. No hay signos definitivos que indiquen la inestabilidad de este producto, por lo que los controles positivos y negativos deben analizarse simultáneamente con muestras desconocidas. Póngase en contacto con el servicio de atención al cliente de A.Menarini Diagnostics si encuentra algún indicio sospechoso de inestabilidad del reactivo. Isotipo: IgG2a/k Reconstitución, mezcla, dilución y titulación El anticuerpo prediluído está listo para usar y optimizado para la tinción. No se requiere su reconstitución, mezcla, dilución ni titulación. El anticuerpo concentrado está optimizado para diluirlo en el rango de dilución. Extracción Y Preparación De La Muestra Para Su Análisis Cuando se utiliza el procedimiento habitual, los tejidos fijados en formol en tampón neutro y embebidos en parafina resultan adecuados para el uso con este anticuerpo primario. El fijador de tejido recomendado es formalina tamponada neutral 10%. Pueden tener lugar resultados variables como consecuencia de una fijación prolongada o procesos especiales tales como la descalcificación en la preparación de la médula ósea. El usuario deberá comprobar la dilución práctica del producto concentrado. Las diferencias en el procesamiento del tejido y en los procedimientos técnicos en el laboratorio pueden producir una variabilidad significativa en los resultados y requerir consecuentemente el uso regular de controles. (Consulte la sección Procedimientos de control de calidad) Materiales Y Reactivos Necesarios No Suministrados Cada sección debe cortarse con el grosor apropiado (aproximadamente 3 µm) y colocarse en un portaobjetos de vidrio con carga positiva. Los portaobjetos que contienen el corte de tejido pueden secarse durante al menos 2 horas (pero no más de 24 horas) en un horno a una temperatura de 58-60 °C ± 5 °C. Los siguientes reactivos y materiales pueden ser necesarios para la tinción, pero no se incluyen con el anticuerpo primario: 1. Tejido de control positivo y negativo 2. Portaobjetos para microscopio con carga positiva Advertencias Y Precauciones 3. Horno de secado capaz de mantener una temperatura de 58-60°C ± 5°C 4. Cubetas o baños de tinción 1. Adopte las precauciones adecuadas cuando se manipulen los reactivos. Usar guantes y batas de laboratorio desechables cuando se manipulen materiales potencialmente carcinógenos o tóxicos (como xileno). 5. Cronómetro 6. Xileno o sustituto de xileno 7. Alcohol reactivo o etanol 8. Agua desionizada o destilada 9. Olla de presión eléctrica para el paso del tratamiento previo del tejido 2. Evite el contacto de los reactivos con los ojos y las membranas mucosas. Si se produce el contacto con áreas sensibles, lávese con agua abundante. 10. Sistema de detección y cromógeno 3. 11. Soluciones de lavado 12. Hematoxilina u otra contratinción 13. Diluyentes de anticuerpo 14. Bloque de peróxido para usar con HRP 2 MEN Template #0.2 Las muestras del paciente y todos los materiales en contacto con ellas deben tratarse como si fuesen materiales potencialmente infecciosos y desecharse con las precauciones adecuadas. Nunca pipetear con la boca. EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody 4. Evitar la contaminación microbiana de los reactivos, ya que podrían producirse resultados incorrectos. Procedimientos De Control De Calidad 5. El usuario debe validar los tiempos y temperaturas de incubación. Control de tejido positivo 6. Los reactivos prediluidos listos para usar están diluidos óptimamente por lo que una dilución adicional podría producir la pérdida de tinción del antígeno. 7. Los reactivos concentrados pueden diluirse óptimamente en base a la determinación del usuario. El usuario deberá validar igualmente tanto la compatibilidad como el efecto en la estabilidad de cualquier disolvente utilizado que no esté recomendado específicamente en este documento. Cada vez que se realice el procedimiento de tinción, debe procesarse un control positivo del tejido. Este tejido puede contener células o componentes del tejido de tinción positiva y negativa y servir como tejido de control positivo y negativo. Los tejidos de control deben ser muestras frescas de autopsia, biopsia o cirugía preparadas o fijadas con la mayor brevedad con un proceso idéntico al de los cortes en estudio. El uso de un corte de tejido fijado o procesado de forma diferente a la muestra en estudio servirá para el control de todos los reactivos y pasos del método excepto la fijación y el procesamiento del tejido. 8. Este producto no se clasifica como sustancia peligrosa cuando se usa según las instrucciones. El reactivo tiene como conservante menos de un 0,1% de azida de sodio, y no cumple los criterios del reglamento europeo de Registro, evaluación, autorización y restricción de sustancias químicas (REACH) de sustancia peligrosa a la concentración indicada. 9. Un tejido con una tinción positiva débil es más adecuado para un control de calidad óptimo y para detectar niveles pequeños de degradación del reactivo. El control de tejido positivo para el anticuerpo primario indicado puede incluir lo siguiente: El usuario debe validar cualquier condición de almacenamiento que no sea una de las especificadas en el prospecto. Control de tejido positivo 10. El disolvente puede incluir albúmina de suero bovino y el sobrenadante puede contener suero bovino. Los productos que contienen suero fetal bovino y los productos que contienen albúmina de suero bovino se compran a los proveedores comerciales. Los certificados de origen de la fuente animal utilizada en estos productos obran en el archivo de Cell Marque. Los certificados aseguran que las fuentes bovinas provienen de países con riesgo mínimo de BSE y relacionan como fuentes de bovinos EE. UU. y Canadá. Tejido Visualización Pecho Citoplasmática, Membranosa Piel Citoplasmática, Membranosa Los controles de tejido positivos conocidos solo se deben usar para monitorizar el comportamiento correcto de los tejidos procesados y los reactivos de la prueba, y no como ayuda para establecer un diagnóstico específico de las muestras del paciente. Si los controles positivos del tejido no muestran una tinción positiva apropiada, los resultados de las muestras en estudio se deben considerar no válidos. 11. Como con cualquier producto proveniente de fuentes biológicas, deberán emplearse procedimientos de manipulación apropiados. Instrucciones De Uso Control De Tejido Negativo Procedimiento Detallado El mismo tejido utilizado para el control de tejido positivo se puede utilizar en el control de tejido negativo. La variedad de tipos de células presentes en la mayoría de los cortes de tejidos ofrece sitios de control negativo internos, pero esto debe verificarlo el usuario. Los componentes que no se tiñen deben demostrar la ausencia de tinción específica y proporcionar una indicación de tinción de fondo no específica. Si se produce una tinción específica en los sitios de control de tejido negativo, los resultados obtenidos con las muestras del paciente deben considerarse no válidas. Protocolos de tinción recomendados para el anticuerpo primario indicado: Tinción manual 1. Desparafinación, rehidratación y recuperación del epítopo; el método preferido es el uso de las técnicas de recuperación del epítopo inducida por el calor (HIER). El método preferido permite la desparafinación, rehidratación y recuperación del epítopo simultáneas. Al terminar, enjuague con 5 cambios de agua destilada o desionizada. 2. Si utiliza el sistema de detección HRP, coloque los portaobjetos en un bloque de peróxido durante 10 minutos; enjuague. Si utiliza un sistema de detección AP, omita este paso. 3. Aplique el anticuerpo e incube durante 10 - 30 minutos; enjuague. Discrepancias Inexplicables Las discrepancias inexplicables de los controles se deben comunicar inmediatamente al servicio de atención al cliente de A.Menarini Diagnostics. Si los resultados del control de calidad no cumplen las especificaciones, los resultados del paciente no son válidos. Véase la sección Resolución de problemas de este prospecto. Identifique y corrija el problema; a continuación, repita todo el procedimiento con las muestras del paciente. 4. Para el sistema de detección de 2 pasos del polímero aplique el amplificador según las instrucciones del fabricante 5. Aplique el reactivo de detección durante el número de minutos recomendado por el fabricante, enjuague. Reactivo De Control Negativo 6. Aplique una cantidad abundante de cromógeno e incube durante 1-10 minutos; enjuague. 7. Se debe utilizar un reactivo de control negativo para cada muestra para ayudar a interpretar los resultados. Para evaluar una tinción no específica se utiliza un reactivo de control negativo en lugar del anticuerpo primario. Se deberá tratar el portaobjetos con el reactivo de control negativo haciendo coincidir las especies huéspedes del anticuerpo primario e idóneamente Deshidrate y coloque el cubreobjetos. 3 MEN Template #0.2 EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody Limitaciones con la misma concentración de IgG. El periodo de incubación para el reactivo de control negativo deberá ser igual que el periodo de incubación del anticuerpo primario. 1. Este reactivo es “de exclusivo uso profesional”, ya que la inmunohistoquímica es un proceso diagnóstico de varias etapas que requiere una formación especializada en la selección de los reactivos, tejidos, fijación y procesamiento apropiados; la preparación del portaobjetos de inmunohistoquímica y la interpretación de los resultados de la tinción. Interpretación De Los Resultados El procedimiento de inmunotinción causa la precipitación de un producto de reacción coloreado en los sitios del antígeno localizados por el anticuerpo primario. Consulte en el prospecto correspondiente del sistema de detección las reacciones de color esperadas. Un patólogo cualificado experimentado en procedimientos de inmunohistoquímica debe evaluar los controles de tejido positivos y negativos antes de interpretar los resultados. 2. Para uso exclusivo de laboratorio. 3. Para diagnóstico in vitro. 4. La tinción de los tejidos depende de la manipulación y el procesamiento de los mismos antes de la tinción. Una fijación, congelación, descongelación, lavado, secado, calentado o corte inadecuados o la contaminación con otros tejidos o líquidos puede producir artefactos, bloqueo del anticuerpo o resultados falsos negativos. Los resultados inconsistentes pueden ser consecuencia de las variaciones en los métodos de fijación y embebido, así como de irregularidades inherentes dentro del tejido. Control De Tejido Positivo El control de tejido positivo teñido debe examinarse primero para determinar que todos los reactivos funcionan adecuadamente. La presencia de un producto de reacción con el color adecuado dentro de las células diana es indicativa de una reactividad positiva. Consulte en el prospecto del sistema de detección utilizado las reacciones de color esperadas. Según sea la duración de la incubación y la potencia de la hematoxilina empleada, la contratinción dará como resultado una coloración azul de pálida a oscura de los núcleos celulares. Una contratinción excesiva o incompleta puede comprometer la interpretación adecuada de los resultados. Si los controles de tejidos positivos no muestran una tinción positiva apropiada, los resultados de las muestras en estudio se deben considerar no válidos. 5. Una contratinción excesiva o incompleta puede comprometer la interpretación adecuada de los resultados. 6. Control De Tejido Negativo El control de tejido negativo debe examinarse después del control de tejido positivo para verificar la marcación específica del antígeno diana por el anticuerpo primario. La ausencia de tinción específica en el control de tejido negativo confirma la ausencia de reactividad cruzada del anticuerpo con las células o los componentes celulares. Si se produce una tinción específica en el control de tejido negativo, los resultados obtenidos con la muestra del paciente se consideran no válidos. La tinción no específica, si la hay, tendrá un aspecto difuso. También se puede observar una ligera tinción específica esporádica del tejido conjuntivo en cortes de tejidos que no estén fijados óptimamente. Para la interpretación de los resultados de la tinción deben usarse células intactas. Las células necróticas o degeneradas muestran una tinción no específica. 7. Los anticuerpos y reactivos listos para usar se ofrecen en una dilución óptima para usarse como se indica. Cualquier desviación de los procedimientos recomendados del método puede invalidar los resultados esperados. Se deben utilizar y documentar los controles apropiados. Los usuarios deben asumir en cualquier caso la responsabilidad de la interpretación de los resultados del paciente. 8. Los productos se entregan concentrados para que el usuario pueda diluirlos después de forma óptima para usarlos según determine empleando siempre unas técnicas de validación adecuadas. Los usuarios deben validar el uso de cualquier disolvente que no se recomiende en este documento. Una vez que el anticuerpo primario haya sido validado como adecuado para usar, cualquier desviación de los procedimientos de prueba recomendados puede invalidar los resultados esperados. Se deben utilizar y documentar los controles apropiados. Los usuarios deben asumir en cualquier caso la responsabilidad de la interpretación de los resultados del paciente. 9. Este producto no está diseñado para utilizarlo en citometría de flujo. Tejido Del Paciente Las muestras del paciente se deben examinar al final. La intensidad de la tinción positiva se debe valorar en el contexto de cualquier tinción de fondo del control de reactivo negativo. Como en cualquier prueba de inmunohistoquímica, un resultado negativo significa que el antígeno en cuestión no se ha detectado, no que el antígeno esté ausente de las células o del tejido analizado. Un panel de anticuerpos puede ayudar a identificar reacciones negativas falsas (consulte la sección Sumario de resultados esperados). La morfología de cada muestra del tejido también debe examinarse utilizando un corte con tinción de hematoxilina y eosina al interpretar cualquier resultado de inmunohistoquímica. Un patólogo cualificado debe interpretar los resultados morfológicos del paciente y sus datos clínicos pertinentes. 10. Los reactivos pueden mostrar reacciones inesperadas en tejidos no estudiados previamente. No puede excluirse completamente la posibilidad de reacciones inesperadas, incluso en grupos de tejidos analizados, debido a la variabilidad biológica de la expresión del antígeno en neoplasmas u otros tejidos patológicos. Póngase en contacto con el servicio de atención al cliente de A.Menarini Diagnostics ante cualquier sospecha de reacción inesperada documentada. 4 MEN Template #0.2 La interpretación clínica de una tinción positiva o de su ausencia debe evaluarse en el contexto de la historia clínica, la morfología, otros criterios histopatológicos, así como otras pruebas diagnósticas. Este anticuerpo está diseñado para utilizarlo en un panel de anticuerpos si fuera pertinente. Es responsabilidad de un patólogo cualificado familiarizarse con los anticuerpos, reactivos, paneles de diagnóstico y métodos usados para obtener una preparación con tinción. La tinción se debe realizar en un laboratorio certificado con la supervisión de un anatomopatólogo responsable de la revisión de los portaobjetos teñidos y de la verificación de la idoneidad de los controles negativos y positivos. EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody 11. Los tejidos de personas infectadas con el virus de la hepatitis B y que contengan antígeno de superficie (HBsAg) pueden mostrar una tinción no específica con peroxidasa de rábano. Estudio Normal (seguido) 12. Cuando se utilizan en pasos de bloqueo, los sueros normales procedentes del mismo origen animal que los antisueros secundarios pueden provocar resultados de falsos negativos o falsos positivos debido al efecto de los autoanticuerpos o anticuerpos naturales. Tejido 13. Pueden verse resultados de falsos positivos debido a la unión de proteínas o productos de reacción del sustrato por mecanismos no inmunológicos. También pueden estar causados por la actividad de la pseudoperoxidasa (eritrocitos), actividad de la peroxidasa endógena (citocromo C) o biotina endógena (ejemplo: hígado, cerebro, mama, riñón) dependiendo del tipo de técnica de inmunotinción empleada. 14. Como en cualquier prueba de inmunohistoquímica, un resultado negativo significa que el antígeno no se ha detectado, no que el antígeno esté ausente de las células o del tejido analizado. Limitaciones Específicas 1. Los productos de anticuerpo prediluidos están optimizados como productos listos para usar. Debido a la posibilidad de variaciones en la fijación y procesado del tejido, puede ser necesario aumentar o reducir el tiempo de incubación del anticuerpo primario en muestras individuales. 2. El anticuerpo, en combinación con sistemas de detección y sus accesorios, detecta los antígenos que sobreviven al proceso habitual de fijación con formol, procesado y corte del tejido. Los usuarios que se desvíen de los procedimientos de prueba recomendados son responsables, como lo serían en cualquier caso, de la interpretación y validación de los resultados del paciente. Estómago 1 1 Intestino delgado 1 1 Colon 1 1 Hígado 1 1 Glándula salival 1 1 Vesícula biliar 1 1 Riñones 1 1 Vejiga 1 1 Próstata 0 2 Útero 1 1 Trompas de Falopio 1 1 Ureter 1 1 Cérvix 1 1 Músculos del equeleto 0 2 Músculo liso 0 3 Piel 1 1 Nervios periféricos 0 1 Mesotelio 0 1 Grasa 0 1 Placenta 0 1 Este anticuerpo tiñe tejidos normales como está indicado en la literatura. Estudio De La Enfermedad Del Tejido Sumario De Resultados Esperados Tejido Consulte las siguientes tablas de reactividad: Estudio Normal Tejido Total de Casos casos Positivos probados Notas Cerebro 0 1 Córtex adrenal 0 1 Ovarios 0 1 Páncreas 1 1 Paratiroides 0 1 Pituitaria 0 1 Testículos 0 1 Tiroides 0 1 Pecho 2 2 Bazo 0 1 Amígdalas 0 1 Timo 1 1 Médula ósea 0 1 Pulmones 2 2 Corazón 0 1 Esófago 1 1 Total de Casos casos Positivos probados Notas Adenoma de colon 17 18 Linfoma anaplásico de células grandes 1 1 Carcinoma ductal invasivo de mama 25 25 Meningioma 1 1 Este anticuerpo tiñe tejidos como está indicado en la literatura. Resolución De Problemas 5 MEN Template #0.2 Total de Casos casos Positivos probados Notas 1. Si el control positivo muestra una tinción más débil de la esperada, deben analizarse otros controles positivos realizados en la misma tinción para determinar si se debe al anticuerpo primario o a uno de los reactivos secundarios comunes. 2. Si el control positivo da negativo, se deben analizar otros controles positivos usados en la misma ejecución para determinar si se debe al anticuerpo primario o a uno de los reactivos secundarios comunes. Los tejidos pueden haberse recogido, fijado o desparafinado de manera inadecuada. Deberá seguirse el procedimiento adecuado para la recogida, la conservación y la fijación. EMA (E29) Mouse Monoclonal Antibody 3. Si se produce una tinción de fondo excesiva, pueden haber niveles altos de biotina endógena. Se deberá incluir una etapa de bloqueo con biotina a no ser que se esté utilizando un sistema de detección sin biotina, en cuyo caso ninguna biotina presente sería un factor que contribuyera a la tinción de fondo. 4. Si no se ha eliminado toda la parafina deberá repetirse el procedimiento de desparafinación. 5. Si los cortes de tejido lavan el portaobjetos, deben comprobarse los mismos para garantizar que tienen carga positiva. Otras posibilidades que podrían afectar adversamente a la adhesión del tejido incluyen un secado insuficiente del corte de tejido en el portaobjetos antes de la tinción o fijación en formol que no fuera neutralizado con tampón apropiadamente. El grosor del tejido también puede ser un factor causante. Consulte las medidas correctoras en la sección Procedimiento detallado o póngase en contacto con el servicio de atención al cliente de A.Menarini Diagnostics. Bibliografía 1 2 3 4 5 6 7 8 Pincus, GS, et al. Human Pathol 1985;16:929-940 Pincus, GS, et al. Am J Clin Pathol 1986;77:269-277 Dearnaly, DP, et al. Br J Cancer 1981;44:85-90 Redding, WH, et al. Lancet 1983;1271-1274 Attanoos RL et al. Histopathology. 2003 Sep;43(3):231-8 Beer TW et al. Histopathology. 2000 Sep;37(3):218-23 Lee JS et al. Acta Cytol. 1996 Jul-Aug;40(4):631-6 Fraga M et al. Am J Clin Pathol. 1995 jan;103(1):82-9 6 MEN Template #0.2
