Rev. Cubana de Ciencia Avícola, 2002, 26: 103-109 Aislamiento e identificación de Mycoplasma pullorum como cepa de nuevo reporte en Cuba EVELYN LOBO, YLEANA CHAVEZ, J. A. AGÜERO Y SIOMARA MARTÍNEZ Departamento de Biología Molecular Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria, Carretera Tapaste y 8 Vías Km 3 San José de las Lajas. La Habana, Cuba E-mail: [email protected] H. MOSCOSO, MARICARMEN GARCÍA Y STANLEY KLEVEN Centro de Diagnóstico e Investigaciones Aviares (PDRC), Universidad de Georgia, Atlanta, Estados Unidos. E-mail: [email protected] RESUMEN. El Síndrome Respiratorio Crónico (SRC) ha alcanzado una gran importancia por las pérdidas económicas que produce. Su etiología es un complejo multifactorial, donde los micoplasmas, en particular M. gallisepticum y M. synoviae son reconocidos como los de mayor importancia en la participación de la etiopatogenia de esta entidad. Sin embargo, se plantea que en la etiología del SRC puede participar más de una especie de micoplasma. En el caso particular de M. pullorum, fue aislado por primera vez en 1985, caracterizado desde entonces, como un micoplasma saprófito del tracto respiratorio de las aves y contaminante frecuente en cultivos, sin embargo, estudios posteriores comienzan a vincularlo como posible agente patógeno. El objetivo de este trabajo fue determinar y caracterizar la presencia de M. pullorum en gallinas ponedoras comerciales con síntomas clínicos respiratorios ubicadas en diferentes zonas geográficas de la Isla. Para esto se trabajaron un total de ochenta muestras procedentes de animales enfermos y los aislados fueron caracterizados por pruebas serológicas, bioquímicas y moleculares. Como resultado se determinó la presencia de M.pullorum en el 70% del total de las muestras analizadas. Palabras claves: Mycoplasma pullorum, diagnóstico, Síndrome Respiratorio Crónico, gallina ponedora. En la industria avícola, la Micoplasmosis o Síndrome Respiratorio Crónico (SRC) ha alcanzado una gran importancia por las pérdidas económicas que produce tanto de manera indirecta como directa. Su etiología es un complejo multifactorial, donde los micoplasmas, en particular M. gallisepticum y M. synoviae son reconocidos como los de mayor importancia en la participación de la etiopatogenia de esta entidad. Sin embargo, Kleven en 1996, plantea que en la etiología del SRC puede participar más de una especie de micoplasma. Citti y Rosengarten, en 1997 plantean que, entre otros factores, la patogenicidad de determinadas cepas de micoplasma puede estar relacionada con algún cambio fenotípico durante el curso de la infección. Este cambio brinda la capacidad a estos microorganismos de colonizar las superficies mucosales y entonces propagarse dentro del hospedero, aumentando su capacidad de citoadherencia y virulencia debido quizás a mutaciones de la cepa. De aquí que la búsqueda de otras especies de micoplasmas que puedan participar en la etiología del SRC resulte de interès. En el caso particular de M. pullorum, fue aislado por primera vez, por Jordan, en 1985, 104 Evelyn Lobo,Yleana Chavéz, J. A. Agüero, Siomara Martínez y otros caracterizado desde entonces, como un micoplasma saprófito del tracto respiratorio de las aves y contaminante frecuente en cultivos (Tully, 1992; Glisson, 1993; Kleven y Levinshon, 1996). Sin embargo, estudios posteriores comienzan a vincularlo como posible agente patógeno.El aislamiento de M. pullorum reportado por Bencina et al., en 1995 a partir de gallinas y embriones de pollos, los trabajos de Kempf et al, en 1997b, quienes informaron en Francia el aislamiento de dos nuevas cepas de M. pullorum con características de patogenicidad y el primer informe en Cuba en 1997 a partir de exudados traqueales realizados a pollos con síntomas clínicos similares al SRC (Lobo et al, 1998) son evidencias que sustentan la participación de M. pullorum en el SRC de las aves en Cuba. Para esclarecer este planteamiento se hace necesario desarrollar una metodología diagnóstica que incluya, tanto aspectos serológicos y bioquímicos como moleculares. Por lo que el objetivo de este trabajo fue determinar la presencia de M. pullorum en gallinas ponedoras comerciales con síntomas clínicos respiratorios y caracterizar dichos aislados. MATERIALES Y MÉTODOS Examen clínico El examen se realizó mediante la observación clínica de los animales afectados, estudiando como parámetro clínico la presencia de síntomas clínicos de tipo respiratorio, temperatura y aspecto del plumaje. Examen anatomopatológico Se realizó el examen macroscópico teniendo en cuenta alteraciones en los órganos del tracto respiratorio, como la presencia de edema, hemorragias en pulmón y tráquea, aerosaculitis, acúmulo de exudado y focos neumónicos. En el examen histopatológico se tuvo en cuenta la presencia de infiltración de linfocitos, hiperplasia epitelial y glandular, decamación epitelial, hemorragia y congestión, parámetros relacionados con la presencia de un cuadro respiratorio agudo. Aislamiento Se trabajaron un total de ochenta muestras, procedentes de diferentes granjas de una región del occidente del país, las mismas fueron procesadas mediante la siembra de hi- 2002 sopos traqueales en tubos con medio líquido Frey. El medio utilizado contuvo Mycoplasma base caldo, 20% de suero equino, 1.5% de glucosa, suplementado con hidrocloruro de cisteína, acetato de talium, rojo fenol y penicilina. Los tubos fueron inoculados e incubados a 370C por espacio de 3 a 4 días, en los tubos donde se observaron cambios de pH se realizó un pase a placa con agar (1% w7v) de composición similar excepto el rojo fenol que fue omitido. Las placas fueron incubadas en atmósfera de microaerofilia por espacio de 1 a 5 días, observando la aparición de colonias en el transcurso de este tiempo. Cepas y antisueros controles Las cepas utilizadas como controles fueron las siguientes: Mycoplasma gallisepticum 17/ 90; 23/88; 278/89 (aislamiento de campo); cepas de referencia Mycoplasma pullorum R63 y Mycoplasma gallinaceum R64. Se utilizó además un anticuerpo monoclonal de M. gallisepticum A9, antisuero policlonal de M. gallisepticum R30; antisuero policlonal de M. pullorum R63, donadas todas por el Laboratorio BgVV de Alemania. Pruebas bioquímicas Las pruebas bioquímicas efectuadas se realizaron de acuerdo con los procedimientos descritos por Martínez, 1996. Los caracteres estudiados fueron la sensibilidad a la digitonina, fermentación de la glucosa, hidrólisis de la arginina, producción de films y spots. Pruebas serológicas Se realizó la Inmunofluorescencia directa de las colonias según lo descrito por Martínez, 1996, y la electroforesis SDS-PAGE y Westernblot, según los procedimientos descritos (Veliz, 1997). Amplificación in vitro por PCR Para la realización de esta técnica se trabajó con DNA purificado de los aislados según la metodología descrita (Chávez et al, 2000). La reacción se realizó con los cebadores específicos para M. pullorum M C F 5’GGC TAA CTA TGT GCA GCA GC 3’ 7 y MCR 5’CCT TAG CGA TTG TCT CCG TG 3’ según lo reportado por Kempf et al, 1993. La amplificación se llevó a cabo en un volumen total de 50 uL de la reacción, dntp 2mM, cebadores específicos, enzima Taq polimerasa y DNA purificado tanto de los aislamientos Vol. 26 Aislamiento e identificación de Mycoplasma pullorum como de los controles positivos. La corrida se efectuó en Buffer TBE 0.5% a 100V y 50mA. La visualización se realizó en gel de agarosa al 2% teñidos con bromuro de etidio en un transluminador de luz ultravioleta (UV), Pharmacia LKB.Macro Vue. RESULTADOS Examen clínico y anatomopatológico El 75% de los animales estudiados presentaban un cuadro respiratorio agudo, caracterizado por descargas nasales y oculares de tipo serosa y mucopurulentas, disnea, ruidos traqueales y estornudos, anorexia, plumaje erizado, disminución considerable de la puesta de huevo, edema facial y craneal, esto se corresponde con el examen anatomopatológico del sistema respiratorio, realizado a los animales necropsados en los que se observó fundamentalmente opacidad de los sacos aéreos, secreciones serosas y mucopurulentas, hemorragias petequiales en tráquea, congestión y edema pulmonar, coincidiendo este cuadro clínico lesional con lo descrito en la literatura para el Síndrome Crónico Respiratorio (SCR) de las aves (Kleven, 1998ª). Características del cultivo Los aislados en estudio fueron cultivados en medio Frey, presentaban características 105 morfológicas similares, relacionada con la presencia de colonias en forma de «huevo frito» entre las 24 y 48 horas de incubados, coincidiendo esta morfología con lo informado para el género Mycoplasma (Kleven, 1995) Caracteres bioquímicos Frente a las diferentes pruebas bioquímicas los aislados (3; 7; 24; 35; 41; 45; 55; 65 y 77), mostraron sensibilidad a la digitonina, utilización de la glucosa, no hidrolizaron la arginina, presentando actividad de la fosfatasa y no se observó la presencia de film y sport. Pruebas serológicas En la Inmunofluorescencia directa de las colonias realizada a los aislados anteriores se observó la presencia de colonias fluorescentes frente al conjugado de M. pullorum C/UGA. Resultando negativas al resto de los conjugados utilizados específicos para otras especies de micoplasmas aviares. Electroforesis SDS-PAGE: En el estudio electroforético de las proteínas totales se observó un comportamiento similar entre los nueve aislados, en correspondencia con las presentadas por la cepa de referencia de M. pullorum R 63, lo que hace suponer que se trata de un mismo tipo de cepa que está circulando en la región estudiada. FIG 1 . Electroforesis SDS-PAGE de los diferentes aislados Línea 1, Patrón de peso molecular; Línea 2, cepa 17/90 procedente de Alemania; Línea 3, cepa 23/88, procedente de Alemania; Línea 4, cepa 278/89, procedente de Alemania; Línea 5 a 8, aislados cubanos; Línea 9, cepa de referencia M. bovis (R9, PG45); Línea 10, cepa de referencia M. pullorum (R63), Línea 11, Patrón de peso molecular; Línea 12 17, aislamiento de campo cubanos; Línea 18, cepa referencia de M. gallisepticum; Línea 19, asilamiento de campo de M. bovis; Línea 20, cepa de referencia de M. galinaceum, frente al antisuero policlonal de M. pullorum (anti-R63) de manera independiente. 106 Evelyn Lobo, Yleana Chavéz, J. A. Agüero, Siomara Martínez y otros Western blot En el estudio de los diferentes aislados frente al antisuero policlonal de M.gallisepticum R30 y el anticuerpo monoclonal A9 dirigido contra un epitope de la proteína de 67 kDa de dicho microorganismo, no se obtuvo ninguna reacción específica y sí una fuerte señal de las cepas alemanas de M. gallisepticum, así como de la cepa de referencia R30, por el contrario, cuando se analizó el comportamiento de estos aislados frente al antisuero policlonal de M. pullorum R63 se observó una fuerte señal en estos aislados en correspondencia con la cepa de referencia R63, resultado que 2002 corrobora los obtenidos por inmunofluorescencia y electroforesis con relación a la identificación de estos aislados como M. pullorum. Amplificación in vitro por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) Con la reacción de PCR con cebadores específicos para M. pullorum se obtuvo la amplificación de una banda de 938pb en los aislados estudiados la cual se corresponde con la obtenida de la cepa de referencia M. pullorum R63. Estos resultados se corresponden con los obtenidos anteriormente por las diferentes técnicas en relación con la identificación de las cepas como M. pullorum FIG 2. Comportamiento de los diferentes aislados frente al antisuero policlonal de M. pullorum R63. Línea 1, patrón de peso molecular; Línea 2, cepa 17/90; Línea 3, cepa 23/88; Línea 4, cepa 278/89; Línea 5-8, aislados cubanos; Línea 9, cepa de referencia M. bovis (R9, PG45); Línea 10, cepa de referencia M. pullorum (R63), Línea 11, patrón de peso molecular; Línea 12 17, aislamiento de campo cubanos; Línea 18, cepa referencia de M. gallisepticum; Línea 19, asilamiento de campo de M. bovis; Línea 20, cepa de referencia de M. galinaceum, frente al antisuero policlonal de M. pullorum (anti-R63) de manera independiente 938 pb FIG 3. Gel de agarosa al 2% que muestra los resultados del PCR con los cebadores específicos para M. pullorum,. Linea 1, marcador de peso molecular, 100pb (BioLabs); Linea 2, control negativo (H2O); Línea del 312 aislados 3, 7, 17, 24, 35, 41, 45, 55, 65 y 77 respectivamente; Línea 13, control positivo (cepa referencia R30) Vol.26 Aislamiento e identificación de Mycoplasma pullorum DISCUSIÓN Diferentes autores han informado el aislamiento de Mollicutes a partir de las aves. La primera caracterización de micoplasmas aviares data de 1905, cuando Dodel describió el comportamiento de una cepa de micoplasma, responsable de la sinositis en pavos, frente a las diferentes pruebas bioquímicas. En 1907, Grahame-Smith también describieron un comportamiento similar de dicho agente frente a estas pruebas (35). Van Roekel y Olesiuk mostraron en 1953 que perdices y faisanes pudieron estar infectados con el agente del Síndrome Crónico Respiratorio, presentando síntomas similares a los descritos en pollos. En 1958, Adler y Fabricant cultivaron un mycoplasma serotipo C no patógeno a partir de perdices. En 1978, Tiong, informó el aislamiento de Mycoplasma gallisepticum de codornices (Coturnix coturnix japonica) que presentaban sinusitis contagiosa purulenta. Kuksa y Hanak, 1990 describieron el aislamiento de diferentes especies (M. gallisepticum, M. pullorum, M. gallinarum, M. gallopavonis y diferentes cepas no identificadas) a partir de faisanes, perdices y pavos salvajes. Kempf et al, en 1991 aislaron y caracterizaron una cepa de M. pullorum a partir de faisanes en producción y Moalic y Kempf, 1997 informaron el aislamiento de dos nuevas cepas de M. pullorum patógenas para embriones de pavos. Los cultivos realizados a partir de muestras de exudados traquéales realizados a pollos afectados con el síndrome crónico respiratorio, permitieron el aislamiento de diez micoplásmicas con características culturales, bioquímicas y serológicas similares a la de M. pullorum R63. Los nueve aislados, mostraron sensibilidad a la digitonina, utilización de la glucosa, no hidrolizaron la arginina, actividad de la fosfatasa y no se observó la presencia de films y sport.Los análisis serológicos efectuados como la inmunofluorescencia, las colonias, electroforesis y westerngblot indicaron que las cepas 3; 7;24; 35; 41; 45; 55; 65 y 77 no reaccionaron positivamente frente a los antisueros de las diferentes especies de micoplasmas aviares, excepto frente al antisuero policlonal de M. pullorum R63, lo que sugiere la identificación de estas cepas como M. pullorum. 107 La cepa de referencia R63 donada por el BgVV de Alemania, presentaba características morfológicas similares a la descrita para el genero Mycoplasmas donde se aprecia un centro oscuro y denso introducido en el agar rodeado por una zona más clara que da una forma similar a «huevo frito», fermentación de la glucosa comportándose con una disminución del pH del medio de cultivo donde se observó un cambio de coloración de rojo a amarillo, no hidrolizó la arginina, siendo no patógena en embriones y pollos SPF (maestria). El aislamiento de M. pullorum informado por (Bencina et al. 1995) a partir de gallinas y embriones de pollos, sugirió la posibilidad de la transmisión vertical de este micoplasma. Moalic y Kempf, 1997 en estudio de patogenicidad de dos nuevas cepas de M. pullorum realizados en embriones de pollos y pavos SPF, observaron que estas cepas fueron capaces de provocar la muerte en los embriones a los 15 y 18 días postinoculación respectivamente (Kempf et al. 1997) El análisis de proteínas totales de la membrana de micoplasmas utilizado por Kempf, 1991 para diferenciar aislados de M. pullorum provenientes de faisanes sirvió para la comparación de los aislados del presente trabajo que presentaban características similares a la cepa de referencia de M. pullorum R63. En la electroforesis SDS-PAGE en gel de poliacrilamida realizada a estos aislados se observó la similitud entre los aislados 3; 7; 24; 35; 41; 45; 55; 65 y 77, lo que hace suponer que se trata de una misma cepa que esta circulando en esa región. Como evidenciaron los resultados de las pruebas bioquímicas, la inmunofluorescencia, electroforesis en SDS-PAGE, y el Westernblot, la identificación de estos aislados se corresponde con M. pullorum. En estudios preliminares de patogenicidad realizados con la cepa 24, se observaron alteraciones en embriones y en pollos (Leghorn y Broilers) SPF, lo que indica la patogenicidad de este aislado. El PCR como método para la detección de especies de micoplasmas aviares ha sido aplicado con una muy alta sensibilidad y especificidad (Chávez et al. 2000) los cebadores son diseñados sobrea base de la 108 Evelyn Lobo, Yleana Chavéz, J. A. Agüero, Siomara Martínez secuencia del RNAr 16S para garantizar la especificidad de la especie (37). En estas muestras fueron utilizados cebadores específicos para M. pullorum y se obtuvo la amplificación de una banda de 938pb en los aislados estudiados la cual se corresponde con la obtenida de la cepa de referencia M. pullorum R63. CONCLUSIÓN Las diferentes pruebas realizadas a los aislados permitieron caracterizarlos como cepas de Mycoplasma pullorum. procedente de Alemania. Si se tienen en cuenta las pro- 2002 piedades de los micoplasmas como inmunosupresores del sistema inmunológicos (38), además de su capacidad de provocar infecciones en animales cuando están sometidos estos a presiones epidemiológicas, y se analizaron los resultados obtenidos por diferentes autores acerca del aislamiento de cepas de Mycoplasma pullorum a partir de aves enfermas se puede pensar su posible implicación en el Síndrome Crónico Respiratorio como un agente más que en determinadas circunstancia forma parte activa de este Síndrome y que en determinado momento puede desencadenar la infección. Isolation and identification of Mycoplasma pullorum like strain of new report in Cuba ABSTRACT. Respiratory Chronic Syndrome (RCS) has reached a great importance by the economical losses that produces. Their is a complex where the mycoplasms, more important is M. gallisepticum and M. synoviae are recognized like the of higher than importance in the participation of the etiopatogenic of this entity. However it are expounded that it in the cause of the SRC could participate more than a species of mycoplasm. In the particular case of M.pullorum, it is was isolated by first time in 1985, characterized since then, as a mycoplasm not pathogenic of the respiratory tract of the birds and frequent pollutant in cultivations. However, posterior studies begin to link it as possible pathogen agent. The objective of this work was determine and characterize the presence of M. pullorum in hen commercial poultry with respiratory clinical symptoms been located in several geographical zones of the Island. They for this were worked a total of 80 samples from of sick animals and the isolated were characterized by serological tests, biochemical and molecular test. It as result an determined the presence of M.pullorum in the 70% of the total of the analyzed samples. Key words: Mycoplasma pullorum, diagnostic, Respiratory Chronic Syndrome REFERENCIAS BENCINA, D.; D. DORRER; T. TADINA 1995. Mycoplasma especies isolated from six avian species. Avian Pthology. 6: 653-664 CHÁVEZ, YLEANA, R.; EVELYN LOBO, I. ROSADO, 2000. Detection of avian mycoplasmasin Cuba by PCR. Proceding of 13th International Congress of Mycoplasmology (IOM): 258 CITTI, C. AND R. ROSENGARTEN, 1997. Mycoplasma genetic variation and its implication for pathogenesis. Wien Klin Wochenschr. 109 (14-15): 562-568 GLISSON, J.R. 1993. Micoplasmosis aviar. Poultry Disease. 84-95 JORDAN, F. T. W. 1985. Recovery and identification of avian mycoplasmas. In: Methods in mycoplasmology. Tully, J. G. and Razin, S. (eds)., Vol. 2 pp. 69-79. Academic Press, New York. KEMPF , I. 1997a: Les mycoplasmoses aviaires. Le Point Veterinaire. 28 (182): 41-48. KEMPF, I. 1996. Mycoplasmoses aviares. En: Mycoplasmes et mycoplasmoses animales. Minestere de L Agricultura (CNEVA), Sophia-Antipolis, France cours mycoplasmes du 20 au 24 setembre. KEMPF, I.; A. BLANCHARD; F GESTERT; M. GVITET AND G. BENNEJEAN, 1993. The polymerase chain reaction for Mycoplasma gallisepticum detection. Avian Pathol. 22(4): 739-750. KEMPF, I.; F. GESBERT; E. GUINEBERT; M. GUITTET; AND G. BENNEJEAN, 1991. Isolation and characterization of Mycoplasma from pheasant breeders. Medicine Veterinary. 167 (12):1133-1139. KEMPF, I.; GUITTET, M. AND G. BENNEJEAN, 1997b. Identification of two pathogenic avian Vol. 26 Aislamiento e identificación de Mycoplasma pullorum mycoplasmas as strains of Mycoplasma pullorum. Lab. Biologic Cellulaire et moleculaire. INRA. Edovard-Bounleaux. Francia. KLEVEN, S. H. 1996. Situación actual de la Micoplasmosis aviar. II Seminario Avícola Internacional. Micoplasmosis. Avicultura tropical, 44-49. Bucaramanga KLEVEN, S. H. 2000. Mycoplasmosis. 1er Seminario de Actulización en Patología Aviar. Merial-Cerval. Georgia, USA KLEVEN, S.H AND LEVINSHON 1996. Mycoplasma infecctions of poutry. In: Molecular and diagnostic procedure in Mycoplasmology. pp. 283-292 KLEVEN, S.H 1998c. A Laboratory Manual for the isolation and identification of avian pathogens. PDRC, University of Georgia KUKSA, F. AND HANAK, V. 1990. Mycoplasmosis in game birds. Abstracts of the 8 th International Congress of the international Organization of Mycoplasmology. Istemboul. LOBO, E.; Y. R. CHÁVEZ; A. MARTÍNEZ; J. A. AGÜERO, 1998. Isolation of Mycoplasma gallisepticum and other mycoplasma from poultry. Rev. Salud Anim. 20 (2): 87. MARTINEZ, ARELIDES.; C. FERNÁNDEZ; E. LOBO; D. GARCIA; Y. CHÁVEZ; I. ROSADO AND I. ESPINOSA, 1996. Procedimientos para el diagnóstico de micoplasmas de animales y de cultivos celulares. Folleto. CENSA. MOALIC, P.Y.; FABIENNE GESBERT AND ISABELLE KEMPF, 1997. Evaluation of polymerase chain reaction for detection of Mycoplasma meleagridis infection in turkeys. Vet. Microb. 58: 187-193. TULLY, J. G. 1992. Mollicutes (Mycoplasmas). In: Encyclopedia of Microbiology. Vol 3: 181-191. Lederberz, J. (ed.) Academic Press, Inc. San Diego. California. VELIZ, TANIA 1997. Caracterización antigénica e inmunogénica de una cepa vacunal de Mycoplasma gallisepticum . Tesis de Diploma. Universidad de La Habana. Centro Nacional de Sanidad Agropecuaria. 109