NOMBRE DE LA PRÁCTICA: No. DE PRÁCTICA: Reacciones del transporte de electrones 2 No. DE SESIONES: No. DE INTEGRANTES MÁXIMO POR EQUIPO: 1 5 INTRODUCCIÓN: El problema del papel de la luz en la fotosíntesis ha conducido en los últimos años a la postulación de un modelo del que se conocen varios de sus componentes. De acuerdo a este modelo, la luz proporciona la energía necesaria para que los electrones de la clorofila a 680 del fotosistema II sean transportados a través de una serie de acarreadores (Q, plastiquinona, citrocromo b, plastocianina y citocromo f, hasta la clorofila a 700 del fotosistema I, quien a su vez al ser excitado por la luz, ocasiona un nuevo transporte de los electrones hasta el NADP para formar NADPH + H +. Los electrones perdidos por la clorofila del fotosistema II son recuperados mediante la ruptura del agua (fotólisis) En resumen, durante la fase luminosa de la fotosíntesis se produce un transporte de electrones desde la molécula de agua hasta el NADP, siendo la luz quien proporciona la energía necesaria para llevar a cabo este proceso. Ahora bien, ¿Cómo podemos detectar este proceso de electrones? En Inglaterra, en 1939, Robert Hill se planteo las misma pregunta y para contestarla razonó aproximadamente de la siguiente forma:”Durante el transporte de electrones estos son donados y recibidos por sustancias naturales encargadas de hacerlo. Ahora, si nosotros introducimos artificialmente una sustancia que recibe electrones y que al hacerlo, cambie de color, podemos detectar este transporte”. Así con sustancias como el azul de metileno, se puede comprobar que en presencia de cloroplastos asilados y en presencia de luz, el azul de metileno cambiaba de azul a incoloro, lo que indicaba que había recibido un electrón. Cuando no había luz no había excitación de los electrones de la clorofila y el azul de metileno no cambiaba. Un efecto semejante al del azul de metileno se consigue con otro colorante llamado DCPIP (Diclorofenol-indolfenol). El DCPIP es azul, cuando recibe un electrón se vuelve incoloro. ¿Pero qué tiene que ver lo anterior con algunos herbicidas? Pues, como se podrá comprender la presencia de sustancias que interrumpan el transporte de electrones impedirán (dependiendo del caso): la formación de ATP, la formación de NADPH+H+ la ruptura de la molécula de agua, etc., ocasionando trastornos que llevaran a la planta, tarde o temprano, a la muerte. De esta manera se han diseñado sustancias que al asperjarse sobre la planta, interrumpen el flujo de electrones en cualquiera de las siguientes formas. Inhibidores del transporte de electrones. En este caso el compuesto actúa mediante la inactivación de uno o más acarreadores. De los herbicidas de este tipo, uno de los más conocidos es el Diurón. Agentes que impiden la formación de ATP. Dentro de este grupo los compuestos pueden actuar separando el transporte de electrones de la fosforilación (es decir, continúa el transporte de electrones pero no se forma ATP y la energía se desperdicia en forma de calor) impidiendo directamente la formación de ATP, o un tercer caso, haciendo ambas cosas a la vez. Dentro de los compuestos que actúan de la manera anterior tenemos: perfluidone, dinoseb, V- fenilcarbamatos, acylanilidas, imidazoles y benzimidoles sustituidos, benzonitrilos sustituidos y pyriclor, entre otros. Aceptores de electrones. Estos compuestos compiten con algunos compuestos de la cadena transportadora de electrones y los reciben en su lugar OBJETIVO GENERAL: Estudiar las reacciones del transporte de electrones. OBJETIVOS ESPECIFICOS: Evaluar el efecto de sustancias inhibidoras sobre el flujo de electrones en el proceso de la fotosíntesis. Aplicar un procedimiento de extracción de cloroplastos. PARTE EXPERIMENTAL O METODOLOGÍA: AISLAMIENTO DE LOS CLOROPLASTOS 1. Muela en un mortero 5 g de hojas con 30 ml de sacarosa 0.5 M 2. Filtre con la gasa para quitar los restos grandes 3. centrifugue la solución a 2500 rpm durante 10 minutos a 5°C y deseche el sobrenadante (los cloroplastos están en el fondo) Suspenda el precipitado o residuo con los cloroplastos con 10 ml de buffer fosfato frío. Coloque los tubos con los cloroplastos y hielo hasta que los use en el siguiente paso (si tiene 2 tubos o más de cloroplastos reúna todo en uno solo) Reducción del DCPIP y efectos del herbicida a. Numere los tubos de ensayo (del 1 a 3) y los reactivos conforme se muestra en el cuadro: Control SOLUCION Cloroplastos aislados DCPIP Paraquat Buffer de fosfatos, frío Volumen total Color esperado después de exponer al sol: 1a 2 3 0 5 10 1b 2 3 0 5 10 Verde No. de tubo Efecto de la ausencia de luz 2a 2b 2 2 3 3 0 0 5 5 10 10 Efecto del Paraquat 3a 3b 2 2 3 3 3 3 2 2 10 10 Azul Azul b. Los tubos 2 se cubre con papel aluminio c. Los tubos 1 y 3 se dejan a la luz d. Coloque todos los tubos en un vaso de precipitado con agua suficiente para cubrirlos (sin que penetre el agua o floten) y déjelos expuestos a la luz del sol 15 ó 20 minutos y compare las coloraciones de los tubos. CANTIDAD 1 MATERIAL/UTENSILIOS DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES Matraz Kitazato 250 o 500 ml 1 Embudo Buchner 2 Matraz Erlenmeyer 2 Papel filtro 4 Tubos de centrífuga Hermle refrigerada 6 1 1 Tubos de ensayo Probeta Embudo 2 3 1 4 2 Vaso de precipitados Vaso de precipitados Vaso de precipitados pipetas de 5 ml pipetas de 2ml 1 vaso de precipitado de 250 ml Gradilla 1 2 1 1 CANTIDAD 10 ml 20 ml 30 ml 5g 10 ml 50 cm CANTIDAD 1 1 1 OBS. 250 ml De fondo redondo, con tapón de rosca, de 50 ml. 15 x 150 mm Graduada, de 50 ml. Chico, de cristal o de plástico, de cuello corto Capacidad de 250 ml Capacidad de 50 ml Capacidad de 100 ml Graduadas Graduadas Para tubos de 15 x 150mm Trozos manta de cielo 25 x 25 cm aprox. Piceta Capacidad de 100 ml Mortero con pistilo Capacidad de 100 ml REACTIVOS/INSUMOS DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES 2,6-Dicloro 2.2 x 10-4 M (0.007 fenolindolfenol g/100ml agua (DCPIP) Buffer fosfato pH 6.5 (frio) Sacarosa 0.5 M (frio) Hojas de espinaca Fresca Solución de Paraquat 1.0ml/100 ml de agua. Papel aluminio EQUIPO DESCRIPCIÓN ESPECIFICACIONES pH metro Centrífuga refrigerada Hermle Balanza analítica Sensibilidad de 0.0001 g OBS. OBS. CUESTIONARIO: 1. Mencione cual es la molécula donadora de electrones necesarios para la transformación de la energía luminosa en energía química. 2. Mencione cuál es la molécula portadora de ‘poder reductor’ obtenida en la fotosíntesis. 3. Mencione cual es la molécula portadora de energía obtenida en la fotosíntesis 4. Elabore un diagrama del flujo de electrones de los foto-sistemas I y II y señale los sitios donde actúan los inhibidores 5. Investigue la estructura del diclorofenol-indofenol y el cambio que ocurre en la misma tras ser reducida. REPORTE DE LA PRÁCTICA: BIBLIOGRAFÍA: - Devlin, R.m.1975. Fisiología vegetal. Ed Omega. Barcelona. España - Hall, D.O y K.K. Rao.1978. Fotosíntesis. Ed Omega. Barcelona. España - Nelson, L. D. y M. M. Cox. 2000. Lehninger Principios de Bioquímica. Ediciones Omega, S. A., Barcelona, Esp. Róvalo, Merino y Rojas M. 1977. Experimentos de Laboratorio de Fisiología Vegetal. ITESM, Monterrey, México. - Stryer, L., J. M. Berg y J. L. Tymoczko. 2003. Bioquímica, 5a edición. Editorial Reverté, S. A. Barcelona, Esp.