BACTERIOLOGIA - Udabol Virtual

FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
CARRERA DE BIOQUÍMICA Y FARMACIA
RE
RED NACIONAL UNIVERSITARIA
UNIDAD ACADÉMICA DE SANTA CRUZ
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
BIOQUÍMICA Y FARMACIA
CUARTO SEMESTRE
SYLLABUS DE LA ASIGNATURA DE
BACTERIOLOGÍA GENERAL
Elaborado por: Dra. Carmela Tapia Rios
Gestión Académica I/2013
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UDABOL
UNIVERSIDAD DE AQUINO BOLIVIA
Acreditada como PLENA mediante R. M. 288/01
VISIÓN DE LA UNIVERSIDAD
Ser la Universidad líder en calidad educativa.
MISIÓN DE LA UNIVERSIDAD
Desarrollar la Educación Superior Universitaria con calidad y
Competitividad al servicio de la sociedad.
Estimado(a) estudiante:
El Syllabus que ponemos en tus manos es el fruto del trabajo intelectual de tus docentes, quienes han
puesto sus mejores empeños en la planificación de los procesos de enseñanza para brindarte una
educación de la más alta calidad. Este documento te servirá de guía para que organices mejor tus
procesos de aprendizaje y los hagas mucho más productivos. Esperamos que sepas apreciarlo y
cuidarlo.
Aprobado por:
Fecha: Marzo de 2013
SELLO Y FIRMA
JEFATURA DE CARRERA
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SYLLABUS
BACTERIOLOGÍA
GENERAL
Código:
BCL-421
Requisito:
BCL-321
Carga Horaria:
100 horas / Semestre
Horas Teóricas
60 horas
Horas Prácticas
40 horas
Créditos
10
OBJETIVOS GENERALES DE LA ASIGNATURA.
Asignatura:
I.





Adquirir conocimientos de bacteriología, especialmente sobre bacterias del medio en el que
vivimos.
Aplicar los conocimientos básicos en el empleo de métodos de diagnóstico de laboratorio.
Determinar los métodos de diagnóstico y la metodología en cada una de los casos a estudiar.
Determinar el cuadro clínico, tratamiento y profilaxis epidemiológica en cada enfermedad
bacteriana.
Prácticar los métodos de control y bioseguridad en laboratorio bacteriológico.
II. PROGRAMA ANALITICO DE LA ASIGNATURA.
UNIDAD I: HISTORIA E INTRODUCCIÓN AL ESTUDIO DE LA MICROBIOLOGÍA.
TEMA 1. ESTRUCTURA BACTERIANA
1.1.
1.2.
1.3.
1.4.
1.5.
1.6.
1.7.
Pared celular, membrana citoplasmática:
Flagelo, Cápsula, Pilli.
Ribosomas, lisosomas, nucleoide.
Crecimiento y control de microorganismos.
Nutrición y reproducción microbiana.
Cultivo. Medios de cultivo.Crecimiento Bacteriano
Patogenicidad bacteriana.Relación huésped-bacteria. Factores importantes.
TEMA 2. CLASIFICACIÓN Y DIVISIÓN DE LA BACTERIOLOGÍA, PRINCIPALES
NUTRIENTES
2.1.
Bacteriología.
2.2.
Virología
2.3.
Micología
2.4.
Criterios para su clasificación
2.5.
Morfología, Tinción, reacciones bioquímicas
2.6.
Principales nutrientes, y medios de cultivo
2.7.
Lípidos, Proteinas e Hidratos de Carbono.
2.8.
Genética bacteriana
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TEMA 3. ESTERILIZACIÓN Y DESINFECCIÓN
3.1.
Métodos
3.2.
Utilización del calor seco.
3.3.
Utilización del calor húmedo
3.4.
Otros métodos, Radiación ,trituración, sonido
3.5.
Bactericida y Bacteriostático.
3.6.
Uso de desinfectantes más comunes
3.7
Antibiograma.Antimicrobianos. Betalactámicos , quinolonas, macrólidos, tetraciclinas.
UNIDAD II: RESISTENCIA E INMUNIDAD
TEMA 4. INTRODUCCIÓN A LA INMUNOLOGÍA
4.1.
Relación antígeno anticuerpo
4.2.
Parasitismo, comensalismo, simbiosis
4.3.
Toxinas., alergia
4.4
Factores importantes.
4.5
Defensas específicas e inespecíficas contra la infección.
UNIDAD III. BACTERIAS PATÓGENAS
TEMA 5. GÉNERO STHAPYLOCOCCUS Y STREPTOCOCCUS
5.1.
Morfología, cultivo, tipo de infección
5.2.
Staphylococcus aureus, epidermidis. S, saprophyticus ,Streptococcus pyogenes
5.3.
Streptococcus pneumoniae
5.4.
Enterococcus faecalis
5.5.
Examen de secreciones y líquidos corporales
TEMA
6.1.
6.2.
6.3.
6.4.
6.5.
6. GÉNEROS HAEMOPHYLUS Y BORDETELLA
H . influenzae, Bordetella pertusis
H. parainfluenzae.
Morfología, cultivo, transmisión patogenia, tratamiento prevención.
Género neisseria: Neisseria gonorrhoeae y meningitis
Examen de LCR. Secreciones faringeas, secreciones vaginales.
TEMA 7. ENTEROBACTERIACEAE
7.1.
Morfología, cultivo, patogenia, tratamiento prevención de infecciones causadas por
Enterobacteriaceae
7.2.
Escherichia coli y otras afines
7.3.
Salmonella, Shigella.
7.4
Género Vibrio, género Brucella
7.5
Examen bacteriológico de orina
7.6
Examen bacteriológico de materia fecal.
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TEMA 8. BACTERIAS NO FERMENTADORAS Y MICOBACTERIAS
8.1
Morfología, transmisión. Cultivo. Patogenia, tratamiento, prevención
8.2
Género Pseudomonas
8.3
Género Aeromonas
8.4
Género Acinetobacter
8.5
Género Cromobacter
9.6
Género Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium leprae
9.7
Examen de esputo, toma de muestras de secreción bronquial, baciloscopía
UNIDAD IV : BACTERIAS PATÓGENAS
TEMA 9
9.1
9.2
9.3
9.4
9.5
BACILOS ANAEROBIOS
Clostridium tetani.
Clostridium perfringens
Clostridium botulinum
Otros Clostridium
Morfología, transmisión, tratamiento, prevención
TEMA 10 BACILOS ANAEROBIOS
10.1
Chlamydia trachomatis
10.2
Treponema. Treponema pallidum
10.3
Ricketsias
10.4
Morfología. Diagnóstico. Transmisión, tratamiento, prevención
10.5
Examen bacteriológico de secreción uretral
10.6
Pruebas indirectas en sangre,
10.7
Aplicación de técnicas en el diagnóstico microbiológico
TEMA 11 BACILLUS.
11.1.
Bacillus anthracis
11.2
Bacillus cereus
11.3
Otros Bacillus
11.4
Morfología, transmisión, tratamiento, prevención.
TEMA 12 IDENTIFICACIÓN MICROBIANA Y BACTERIANA
12.1. Identificación microbiana y bacteriana. Crecimiento en los cultivos.
12.2. Antibiograma.
12.3. Quimioterapia.
12.4. Examen bacteriológico de materia fecal. Cultivos. Pruebas de laboratorio.
12.5. Técnicas más utilizadas. Medios de cultivo.
12.6. Examen bacteriológico en orina. Cultivos. Pruebas de laboratorio.
12.7. Técnicas y medios de cultivo.
12.8. Examen de secreciones y líquidos corporales: LCR. Secreciones faríngeas. Secreciones
vaginales. Cultivos. Medios de cultivo. Crecimiento bacteriano.
12.9. Pruebas bacteriológicas en sangre total. En plasma y en suero. Cultivos. Medios de cultivo.
Resultados obtenidos. Informes de laboratorio.
12.10. Examen de esputo. Toma de muestras en secreciones bronquiales. Examen de laboratorio.
Tinción para BAAR.
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12.11. Características del bacilo en la Tuberculosis.
12.12. Técnicas en el diagnóstico microbiológico molecular. Aplicación de las mismas.
III. ACTIVIDADES A REALIZAR DIRECTAMENTE EN LA COMUNIDAD.
i Tipo de asignatura
Asignatura de Apoyo.
ii Resumen de los resultados del diagnóstico realizado para la detección de los problemas a
resolver en la comunidad.
Según los datos obtenidos de los diagnósticos realizados por las instituciones de salud (SEDES y el
Centro de Salud Sagrada Familia) y de acuerdo a la demanda social la problemática sobre salud
pública ocupa los primeros lugares en cuanto a la preocupación de la población se trata. Inmerso
dentro de esta problemática tenemos la falta de concientizaciòn y conocimiento de enfermedades
trasmitidas por alimentos ocasionando diarrea en pacientes menores a 5 años, es importante el
diagnostico, el tratamiento y la prevención de este tipo de enfermedades
iii
Nombre del proyecto al que tributa la asignatura.
“Estudio de Diarreas en niños menores de 5 años en el Centro de Salud Sagrada Familia de
la Red Metropolitana Sur “
iv
Contribución de la asignatura al proyecto.
De acuerdo al contenido programático de la asignatura y su vinculación con el proyecto la
contribución consistirá en coadyuvar a otras asignaturas inmersas en el proyecto en el diagnóstico
prevención de las diarreas en niños,
Actividades a realizar durante el semestre para la implementación del proyecto.
Trabajo a realizar por los
estudiantes
Organización de actividades del
proyecto
Búsqueda de bibliografía
Localidad, aula o
laboratorio
Aula
Incidencia social
A los alumnos que
participan Mayor
información sobre la
etiología de las
diarreas
Elaboración de fichas para los
pacientes
Aula y Centro de salud Concienciación sobre
Sagrada familia Red la necesidad de
Sur
realizar el análisis en
niños menores a 5
años
Capacitación en talleres sobre Laboratorio
de Pericia en el manejo
bioseguridad, toma y transporte Microbiología
de muestras biológicas
de nuestra,
en los alumnos que
participan
de
la
Brigada
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Fecha.
6 al 9 de
mayo
Entre el 13 al
18 de mayo
Entre 18 al 25
de mayo
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Recolección de muestras
Centro
Indicaciones
sobre
como Red.Sur
prevenir
infecciones
gastrointestinales a los padres
de familia
Tabulación de datos y
entrega de resultados
de
salud Capacitación de los Entre 3 al 8 de
actores involucrados.
junio.
Padres de familia
Aula
Actores involucrados
en el proceso.
Pacientes del Centro
de Salud
Jefatura de carrera
Entre el 24 al
29 de junio.
IV. EVALUACIÓN DE LA ASIGNATURA.
●
PROCESUAL O FORMATIVA.
ACTIVIDAD
EVALUATIVA
Preguntas orales
Resolución de casos
Prácticas de
laboratorio
PARÁMETROS
PONDERACIÓN
Conocimiento
del
tema.
Respuestas oportunas
TOTAL
Conocimiento
del
tema.
Capacidad
de
deducción, criterio
TOTAL
Presentación
Conocimiento de la
práctica
Iniciativa, creatividad y
participación
Destreza
en
la
práctica
TOTAL
25 puntos
FECHA
En todas las clases
teóricas y prácticas.
25 puntos
50 puntos
25 puntos
Una semana antes de
las evaluaciones
25 puntos
50 puntos
10.Puntos
En todas las clases
prácticas.
10 Puntos
10Puntos
20 Puntos
50 Puntos
A lo largo del semestre se realizarán estos tres tipos de actividades formativas:
Las primeras serán de aula, que consistirán en clases teóricas, exposiciones, repasos cortos,
resolución de casos como análisis de muestras y estudio de láminas de bacteriología en el laboratorio
de microbiología
El trabajo, la participación y el seguimiento realizado a estas tres tipos de actividades se tomarán
como evaluación procesual calificándola entre 0 y 50 puntos independientemente de la cantidad de
actividades realizadas por cada alumno.
La nota procesual o formativa equivale al 50% de la nota de la asignatura.
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●
DE RESULTADOS DE LOS PROCESOS DE APRENDIZAJE O SUMATIVA (examen parcial
o Final)
Se realizarán 2 evaluaciones parciales con contenido teórico y práctico (resolución de casos
y prácticos) sobre 50 puntos cada una. El examen final consistirá en un examen escrito con
un valor del 75% de la nota y la presentación de los informes y documentos del proyecto con
el restante 25%.
V. BIBLIOGRAFÍA
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- JAWEST y MELICK. Microbiología médica ED. El manual Moderno México
2006(Signatura topográfica 616.01 B79).
- ATLAS, RM y R. BARTHA. Ecologia Microbiana y Microbiología Ambiental. 4º Edicion.
Edit. Addison-Wesley. Madrid.2002.
-
JAWEST. Microbiologia. Editorial Progreso. Moscú. 2008
-
PEREA, EJ. Enfermedades infecciosas. Editorial Limusa. México.2002.
BIBLIOGRAFÌA COMPLEMENTARIA
- MIMS, PLAYFAIR, ROITT,WAKELIN,WILLIANS. Microbiologia Médica. PLAYFAIR,
(eds) Mosby Doyma libros 1º Edicion,1995.
MURRAY PR, ROSENTHAL KS, KOBAYASHI GS, PFALLER MA. Microbiologia
Médica. 5º Edicion. Edit. Mosby. Madrid.2006.
-
PEREZ ALVA, Simon. Control Microbiologico. Ed. Acacia S.A. Peru.1989.
- Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Washintong C. Diagnóstico
Microbiológico. Quinta Edición. Editorial Médica Panamericana. 2000.
-
Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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VII. PLAN CALENDARIO.
SEMANA
ACTIVIDADES ACADÉMICAS
OBSERVACIONES
1ra.
Avance de materia
Unidad I, Tema I
2da.
Avance de materia
Unidad I, Tema I-II
Preguntas orales GIPS
3ra.
Avance de materia
Unidad I,Tema II
Preguntas orales GIPS
4ta.
Avance de materia
Unidad I, Tema III
Preguntas orales GIPS
5ta.
Avance de materia
Unidad I, Tema III
6ta.
Avance de materia
Unidad I, Tema III
7ma.
Avance de materia
Unidad II, Tema IV
8va.
Avance de materia
Unidad III, Tema V
Avance de materia
Unidad III, Tema VI
Preguntas orales GIPS
Preguntas orales
GIPS,Resolucion de
casos
Preguntas oralesGIPS
Primera Evaluación
Preguntas oralesGIPS
Primera Evaluación
Preguntas orales GIPS
1ra. Incursión
Preguntas orales GIPS
2da. Incursión
3ra. Incursión
Preguntas orales GIPS
Preguntas orales GIPS
Preguntas orales,GIPS
Resolución de casos
4ta. incursion
Preguntas orales GIPS
Segunda Evaluación
Preguntas oralesGIPS
Segunda Evaluación
9na.
Unidad III, Tema VII
10ma.
Avance de materia
11ra.
Avance de materia
Unidad III, Tema VII
12da.
Avance de materia
Unidad III, Tema VIII
13ra.
Avance de materia
Unidad IV, Tema IX
Actividad de Brigadas
14ta.
Avance de materia
Unidad IV, Tema X
15ta.
Avance de materia
Unidad IV, Tema XI
16ma
Avance de materia
17va
Avance de materia
18na
Avance de materia
Unidad IV, Tema XI
Unidad IV, Tema XII
Unidad IV, Tema XII
Preguntas orales GIPS
Preguntas orales,GIPS
Preguntas orales,GIPS
Resolución de casos
Examen final
19va.
Examen final
20va.
Examen segunda instancia
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Presentación de notas
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VII. WORK PAPER
PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
WORK PAPER # 1
UNIDAD I : Tema 1
TÌTULO: Estructura bacteriana
FECHA DE ENTREGA: 2 semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Tercera semana de clases
INTRODUCCIÓN
Bacteria: La bacteria es un ser unicelular que se divide por simple división se nutre de
compuestos como ser los hidratos de carbono, lípidos, proteínas y agua, también son necesarios
elementos como las vitaminas minerales anhídrido carbónico, requerimientos físicos como ser la
temperatura, presión y PH. Las bacterias forman parte del ecosistema en el que vivimos, algunas
son saprófitas, comensales y patógenas causan infección, la estructura nos permite comprender
el comportamiento de las bacterias frente a nuestro organismo.
COMPOSICIÓN DE LA BACTERIA
COMPONENTES DE LA PARED CELULAR.
1.- Pared celular: Responsable de la morfología de las bacterias y de protección natural de la
misma.
2.- Membrana citoplasmática: Permite el ingreso y la salida de nutrientes a la bacteria.
3.- Péptidoglucano. Compuesto por N- acetil glucosamina, N- acetil murámico ligado a un
tetrapéptido. Se encuentra entre la membrana y la pared celular.
4.- Cápsula: Organela facultativa destinada a la protección de la bacteria, esta compuesta por
hidratos de carbono.
5.- Flagelo. : Organela facultativa responsable de la motilidad de la bacteria, esta compuesta por
una proteína llamada quitina.
6.- Pilli ó fimbrias: Organela facultativa, cuya función es la adherencia a través de substancias
conocidas como andesinas, Las fimbrias están compuestas por quitina.
COMPONENTES DEL CITOPLASMA
1.- Ribosomas: Estructura destinada a la síntesis de proteínas, se encuentran agrupados
llamados polisomas
2.- Lisosomas. Estructura destinada a la catabolización de los nutrientes.
3.- Nucleoide: La bacteria no tiene núcleo sin embargo contiene restos de DNA que le permite
replicarse a través de la información genética.
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COMPONENTES NUTRICIONALES
La composición de los nutrientes nos permite saber sus necesidades nutricionales y de esta
manera poder desarrollarlos en el laboratorio
Hidratos de carbono
Lípidos
Proteínas
Agua
: 15 a 25 %
: Hasta el 40 %
: 50% en peso seco
: 85 %
Factores de crecimiento:
Vitaminas: VIT. B1. Vit. B6, Vit, B12 Ac, pantoténico, Acido nicotínico
Aminoácidos: Glicina, Serina, Triptofano fenil alanita cisteina asparagina
Minerales : Sodio, potasio ,Cobre, Fósforo, azufre, Fosfatos, carbonatos
Anhídrido carbónico
Requerimientos inorgánicos
Temperatura : 35 a 37 ºC.
Presión
: 1 At.
PH
. La óptima
MÉTODOS DE OBSERVACIÓN E IDENTIFICACIÓN DE LAS BACTERIAS
Para la observación de la estructura de las bacterias se emplea métodos de tinción que permite
observar:
La morfología
Tinción de Gram.: Método universal de tinción, que permite observar la forma de la bacteria que
puede ser coco, bacilo, espirilo, grampositivos o gramnegativos empleando dos colorantes que
son la violeta de genciana y la safranina
Tinción de Ziehl Neelsen: Método de tinción que nos permite la observación de bacterias ácidoalcohol resistentes como son los del género Mycobacterium, utilizando colorantes como la fucsina
fenicada, el alcohol ácido y el azul de metileno.
Tinción de cápsulas: permite observar a las bacterias que tienen cápsula
Tinción de flagelos: Permite observar a los flagelos y pilli con mayor nitidéz
Medios de cultivo: Conociendo la estructura y los requerimientos se pueden utilizar medios de
cultivo que nos permitan identificar la bacteria.
Medios de cultivo selectivos
Medios de cultivo diferenciales
Medios de cultivo enriquecidos
Medios de cultivo de transporte
Medios de cultivo de enriquecimiento
Medios de cultivo especiales
IMPORTANCIA DE LA ESTRUCTURA BACTERIANA Y SU COMPOSICIÓN.Conocer la estructura bacteriana es de vital importancia en el reconocimiento de la bacteria en la
identificación preliminar de las bacterias para poder utilizar los medios de cultivo para su
correspondiente identificación .
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Las bacterias en su estructura tienen elementos que nos permitirán en el laboratorio el desarrollo
y la correspondiente identificación de la especie que causa infección
En la enfermedad de la Tuberculosis se emplea la tinción de Ziehl Neelsen ya que su
composición lipídica hace a la bacteria que sea ácido alcohol resistente y para la misma bacteria
se emplea un medio especial Lowentein jensen, ya que esta bacteria es de desarrollo lento y los
medios de cultivo aumenta su sensibilidad en el diagnóstico
CUESTIONARIO DEL WORK PAPER
1. ¿Las bacterias son células procariotes ó eucariotes?
2. ¿Qué función tiene la cápsula?
3. ¿Qué utilidad tienen los flagelos y las fimbrias?
4. ¿Cuál es la composición del péptido glucano?
5. ¿Qué función cumplen los ribosomas y los lisosomas?
6. ¿Para qué sirve la tinción de Gram?
7. ¿De qué esta compuesto la cápsula?
8. ¿Qué observa en la Tinción de Ziehl Neelsen?
9. ¿Cuántas clases de medios de cultivo conoce?
10. ¿Qué composición aproximada porcentual tienen los hidratos de carbono?
11. ¿Qué porcentaje de lípidos tienen las bacterias?
12 ¿Cuáles son los factores de crecimiento de las bacterias?
13 ¿Qué función cumplen los oligoelementos o minerales?
14. ¿Cuáles son los requerimientos inorgánicos para el desarrollo de las bacterias?
15. ¿Cuál es la composición porcentual de proteínas en la bacteria?
16. ¿Cuáles son los componentes celulares bacterianos?
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
WORK PAPER # 2
UNIDAD III : Tema 6
TÌTULO: Neisseria gonorrhoeae
FECHA DE ENTREGA: 9na Semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Décima semana
GONORREA
Es una de las enfermedades de transmisión sexual mas común, y es también considerada como una de las
enfermedades infecciosas bacteriana más frecuente, puede contraerse juntos con otras E.T.S. ya sea Clamidia,
Sífilis, Herpes
AGENTE CAUSAL La bacteria que la produce es la Neisseria gonorrhoeae, llamado comúnmente gonococo
MORFOLOGIA: Contiene diplococos Gramnegativos no esporulados intra o extracelular, con un diámetro
aproximado de 0.6 a 0.8 um estos cocos tiene forma de riñón o de grano de café. El gonococo es un gérmen
muy frágil al calor, a temperaturas de refrigeración y a diversos antisépticos.
ULTRAESTRUCTURA: De la Neisseria gonorrhoeae carece de cápsula, la estructura más extensa esta
compuesta por fimbrias compuesta por sub.- unidades de péptidos (pilli)
En la membrana trilaminar están presentes las proteínas I, II y III y polisacáridos. La proteína
TRANSMISIÒN:La gonorrea se transmite:
-Por relaciones sexuales sin protección
-Se puede transmitir de una mujer embarazada a su bebé recién nacido durante el
-Por relaciones sexuales con múltiples compañeros sexuales
parto
PATOGENIA: las bacterias que causan gonorrea se encuentran en las áreas de la mucosa del cuerpo (vagina,
uretra, garganta y el recto) en el semen y líquidos vaginales. El gonococo expresa su primer grado de
patogenicidad al adherirse a la superficie de los epitelios uretral , endocervical vaginal e incluso a los
espermatozoides humanos y a las células no ciliadas que cubren las trompas de Falopio ,la bacteria con pili se
adhiere con mayor facilidad que la que no tiene pili. La bacteria evade a la fagocitosis por que puede expresar
antígenos de superficie antifagocitarios como los pilli bacterianos y ciertas proteínas presentes en la bacteria
que pueden protegerla de la fagocitosis.
PERÍODO DE INCUBACIÒN: Aproximadamente de 2 a 5 días después del contacto sexual con una persona
infectada, aunque los síntomas pueden aparecer dos semanas después
SINTOMATOLOGIA: Sobre un 50% de las muyeres infectadas y de 5 a l0 % de los hombres
infectados con gonorrea no tienen síntomas .Estos son los principales síntomas más comunes:
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Hombres: Un flujo del pene que suele ser medio amarillo dolor y ardor al orinar.
Mujeres: Usualmente flujo y dolor al orinar, sangrado entre menstruaciones o después del sexo y
dolor en el bajo vientre
Infección Rectal: Flujo del ano, picazón anal, defecaciones dolorosas y materia fecal sangrante.
TRATAMIENTO; Se suele tratar con una sola dosis de antibióticos, el tratamiento puede ser por vía
oral Ciprofloxacina) o por vía IM la Penicilina o Espectinomicina debido a que la gonorrea y la
Clamidia suelen existir juntos se suele tratar a la gonorrea con antibiótico contra la Clamidia los
antibióticos usados son: Ceftriaxona, Doxiciclina, Levofloxacina, Tetraciclina y otros,
Sin tratamiento existe un buen porcentaje de desarrollar complicaciones. La complicación más
frecuente en las mujeres es la enfermedad pélvica inflamatoria (EPI) que puede causar incapacidad
de embarazo o aumentar el riesgo de embarazo ectópico. Los hombres pueden sufrir hinchazón de
los testículos y pene, ocasionar prostatitis, epididimitis y ocasionar esterilidad. Ambos sexos pueden
sufrir Artritis, Endocarditis.
PREVENCIÓN. : La abstinencia de la actividad sexual es la manera más segura de evitar infectarse
con la gonorrea. Limitar el sexo a una sola pareja no infectada, monogamia mutua, la base es la
educación sexual.
PROFILAXIS: Similar a las demás E.T.S. no hay una vacuna disponible y se limita al uso
preservativo o condón de látex.
del
DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO: Se realiza una tinción de Gram. En muestras obtenidas ya sea
se secreción uretral o flujo vaginal, donde se pueden observar a los diplococos gramnegativos,
también se realiza cultivo en agar Thayer Martín o agar chocolate
CUESTIONARIO DEL WORK PAPER:
1. ¿Qué es la Gonorrea o blenorragia?
2. ¿Cuál es el agente causal?
3. ¿Qué organelas posee la bacteria en la pared celular?
4. ¿Qué morfología presenta la Neisseria gonorrhoeae?
5. ¿Son resistentes los gonococos al medio ambiente y a medios físicos?
6. ¿Cuál es su principal signo de patogenicidad de la bacteria?
7. ¿La transmisión se realiza por contacto directo, indirecto o por ambos mecanismos?
8. ¿Cuál es el período de incubación?
9. ¿Cuáles son los síntomas más comunes en la gonorrea?
10. ¿Existen personas que son contagiadas y que no presenten síntomas?
11. ¿Cuál es la complicación mas frecuente de la gonorrea en las mujeres que no realizan
tratamiento?
12. ¿Qué antimicrobianos se utilizan en el tratamiento de la gonorrea?
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
WORK PAPER # 3
UNIDAD III: Tema 8
TÌTULO: Mycobacterium tuberculosis
FECHA DE ENTREGA: Décima semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÒN: Décima primera semana de clases
INTRODUCCION.
La tuberculosis es una enfermedad crónica, ocasionada por el Mycobacterium tuberculosis
generalmente la infección se localiza en los pulmones, puede ocurrir la diseminación y afectar a otros
órganos
Robert Koch lo descubre en el año 1882,
AGENTE CAUSAL: Mycobacterium tuberculosis
CARACTERISTICAS DEL BACILO: El Mycobacterium tuberculosis es un bacilo aerobio es ácido
alcohol resistente
Es aerobio estricto
Muy resistente al frío y a la congelación
Sensible al calor, a la luz solar y la luz ultravioleta
Se multiplica lentamente
TRANSMISION: La tuberculosis se transmite por contacto directo:
Se transmite de persona a persona por vía respiratoria a través de las gotitas de
líquidos expulsados al hablar, toser estornudar las gotitas se evaporan a poca distancia de la boca y
seguidamente los bacilos desecados persisten en el aire por largo tiempo. La infección se produce
por la inhalación de estos bacilos., Normalmente se necesitan muchos meses de convivencia con un
enfermo para que se produzca la transmisión
La tuberculosis se contagia a través del aire las personas no pueden contagiarse
mediante el saludo de manos, o compartiendo alimentos.
PERÍODO DE INCUBACIÒN
A diferencia de otras enfermedades infecciosas laTuberculosis no tiene un período de incubación
específico aunque se considera alrededor de 21 días.
El bacilo puede permanecer latente en el organismo durante un largo período, hasta que una
disminución de las defensas le da la oportunidad de multiplicarse y producir los síntomas de la
enfermedad, aunque una tercera parte de la población mundial es portadora de los bacilos la
enfermedad se desarrolla en un porcentaje pequeño de personas.
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PATOGENIA:
La tuberculosis constituye un paradigma de la interacción de un agente exógeno y la respuesta
inmunitaria del huésped. La primoinfección tuberculosa definida por el conjunto de fenómenos
biológicos que tienen lugar cuando un organismo entra en contacto con el bacilo tuberculoso. Cuando
un bacilo ingresa al organismo son atacados por las defensa del organismo. Se propaga y alcanzan el
torrente sanguíneo y pueden llegar a todo el organismo dando una enfermedad diseminada
SINTOMATOLOGÍA:
Fatiga
Fiebre
Pérdida de peso
Sudoración nocturna
Tos persistente
Dolor toráxico
Esputos sanguinolentos
TRATAMIENTO;
Realizar un correcto aislamiento domiciliario durante los primeros 15 días de tratamiento El reposo
es necesario y el paciente puede reincorporase a su actividad laboral después de 2 meses.
Lo antibióticos más utilizados en un esquema de tratamiento son.: Isoniacida, Estreptomicina,
pirazinamida, Etambutol, Rifampicina la duración del tratamiento oscila entre 6 a 9 meses.
PREVENCIÓN. :
Una ventilación suficiente es la medida más aconsejada para reducir la infecciosidad. Evitar el
hacinamiento
La quimiprofilaxis pretende detener la cadena epidemiológica de la tuberculosis mediante el
tratamiento de sujetos expuestos a contagio o ya infectados.
La vacunación sistemática con el bacilo de Calmette Guerin (BCG), es la norma en nuestro pais.
DIAGNÓSTICO DE LABORATORIO:
Se realiza una tinción de Ziehl Neelsen que nos permite visualizar el bacilo ácido alcohol resistente.
El cultivo presenta una mayor sensibilidad y especificidad requiriéndose ocho semanas de
incubación para obtener un resultado definitivo
El diagnóstico de la Tuberculosis se restablece cuando el bacilo tuberculoso es identificado en los
líquidos corporales tejidos y esputo.
La prueba de tuberculina mediante la intradermoreacción de Mantoux es el único método aceptado
para el diagnóstico de la infección se aplica en forma intradérmica el antígeno proteico purificado
PPD después de 72 hrs. se considera positivo cuando hay una induración igual o mayor a l4 mm de
diámetro en pacientes vacunados
La radiografía de tórax puede dar mucha información.
Todo caso de tuberculosis debe ser considerado como de probabilidad mientras no se observe al
bacilo o se obtenga a través del cultivo en el medio de Lowenstein Jensen. En la práctica,por la
demora de los cultivos es suficiente con disponer de una baciloscopía si se acompaña de clínica y
radiografía indicativa.
CUESTIONARIO DEL WOK PAPER
1.
¿Que es la Tuberculosis?
2. ¿La tuberculosis es una enfermedad asociada a la mal nutrición y a depresiones en el sistema
inmunológico fundamentalmente?
3.
¿El Mycobacterium tuberculosis es un bacteria resistente o lábil?
4.
¿Qué morfología presenta el M, tuberculosis?
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5.
¿Cómo se transmite la tuberculosis?
6.- ¿La bacteria desarrolla en medios de cultivo comunes?
7.
¿La transmisión se realiza por contacto indirecto?
8.
¿Cuál es el período de incubación?
9.
¿Cuáles son los síntomas mas frecuentes??
10. ¿Cómo se define la primoinfección?
11. ¿Para que sirve la quimioprofilaxis?
12. ¿Cómo se realiza el diagnostico en el laboratorio de bacteriología?
13. ¿Cuáles son las bases de diagnóstico de la tuberculosis?
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
WORK PAPER # 4
UNIDAD IV: Tema 9
TÌTULO: Clostridium tetani
FECHA DE ENTREGA: Décimo tercera semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Décimo cuarta semana de clases
El tétanos es un desorden neurológico caracterizado por un aumento del tono muscular, espasmos
provocados por la tetanospasmina, una toxina producida por una bacteria denominada Clostridium
tetani. Con frecuencia la enfermedad es mortal sobre todo en niños y ancianos. El tétanos actúa
esporádicamente y casi siempre afecta a personas no inmunizadas o personas inmunizadas que no
han renovado su vacuna. Se trata de un microorganismo de distribución mundial encontrado en el
suelo, en medio inorgánico, metales en oxidación. Sus esporas pueden vivir años en algunos medios
y son resistentes a varios desinfectantes. Suele ser mas frecuente en pequeñas heridas de menor
importancia que en grandes heridas.
MORFOLOGÍA:
El Clostridium tetani es un bacilo grampositivo no esporulado de forma bastonada móvil y formador
de esporas que se sitúan en un extremo dándole un aspecto de raqueta o palito de tambor. El
microorganismo se encuentra en el suelo en las heces de los animales y ocasionalmente del hombre,
Las esporas pueden sobrevivir varios años en un ambiente hostil y son resistentes al agua hirviendo
durante 20 minutos y a varios desinfectantes químicos. Las células vegetativas son por el contrario
bastante fáciles de inactivar y son sensibles a varios antibióticos. Es un anaerobio estricto.
TRANSMISIÒN Y CAUSAS:
La contaminación del tétanos se produce a través de heridas abiertas que entran en contacto con
agentes infectados, Una vez en el interior del organismo se multiplican y liberan dos substancias
tóxicas la tétano lisina y la tetanoespasmina, esta última neurotóxica y responsable del cuadro
causado por el Clostridium tetani
PERÍODO DE INCUBACIÓN : El período de incubación es de 5 días a 15 semanas siendo
frecuentemente de 7 a 10 días cuanto màs corto mayor gravedad suele tener el cuadro,. Existen tres
formas clínicas, tétanos generalizado, localizado y neonatal
PATOGENIA:
Probablemente la contaminación de las heridas con las esporas es un hecho frecuente, sin embargo,
la germinación y la producción de toxina solo ocurre en las heridas con bajo potencial de oxido
reducción, como las que contienen los tejidos desvitalizados, cuerpos extraños o infección activa, El
Clostridium tetani por si mismo no produce inflamación y la puerta de entrada tiene aspecto benigno
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si no hay infección con otros gérmenes. La toxina liberada en la herida se fija en las terminaciones de
la neurona motora periférica, penetran en el axón y es trasladada a la zona neural del sistema
nervioso central por un transporte intro-neuronal retrogrado. La toxina migra a través de la sinapsis a
las terminales PRE - sinápticas en los que la bloquea, La liberación de los neurotransmisores
inhibidores de glicina y GABA., disminuir la inhibición la frecuencia de descarga de reposo de la
neurona motora aumenta produciendo rigidez. Con la disminución de la actividad de reflejo, que
limita la diseminación polisinaptica de los impulsos, en ves de inhibirse recluta los antagonistas
produciendo espasmos
En el tétano localizado solo se afectan los nervios que inervan a los músculos afectados.
El tétano generalizado se produce cuando la toxina liberada en la herida penetra en el torrente
sanguíneo y se extiende a otros terminales nerviosos, la barra hemato-encefálica bloque la
penetración directa al sistema nervioso central
SINTOMATOLOGIA:
Lo primero que el paciente nota es el cierre de la mandíbula como consecuencia del la afectación de
los músculos maseteros.
También aparece disfagia (dificultad acompañada de dolor al tragar), rigidez de los músculos el cuello
y la espalda. Seguidamente aparece rigidez en el abdomen
Así mismo la contracción mantenida en los músculos de la cara produce un signo característico
denominado risa sardónica
MANIFESTACIONES CLÌNICAS
TETANOS GENERALIZADO: Es la forma más generalizada de la enfermedad y se caracteriza por un
aumento en el tono y por espasmos generalizados. Las primeras manifestaciones tienen lugar a los 7
días de la infección aunque pueden verse después de 14 días. Los primeros síntomas consiste en
inquietud, dolor y rigidez de la espalda por espasmo muscular así como el cuello los músculos el
abdomen, también es muy común la dificultad Para la masticación y la deglución. Un signo precoz es
el trismo o dificultad para abrir la boca por aumento del tono de los músculos maceteros
TETANOS NEONATAL
Usualmente tiene lugar como forma generalizada y si no se trata suele ser fatal. Se desarrolla en
niños de madres inadecuadamente inmunizadas, después de un tratamiento del cordón umbilical en
condiciones no estériles, suele producirse en las dos primeras semanas después del nacimiento. Los
síntomas màs característicos es la rigidez, espasmos y dificultad en la deglución.
TETANOS LOCAL
Es una forma poco frecuente que tiene lugar cuando solo quedan afectados los músculos cerca de la
herida, el pronóstico es bueno.
TETANOS CEFALICO: Es un forma rara de tétanos, después de una herida en la cabeza o en la
oreja, Frecuentemente se observa trismos y disfunción del séptimo par craneal, El período de
incubación es corto y la mortalidad elevada
TRATAMIENTO; Los objetivos del tratamiento son:
- Eliminar el foco de origen y la toxina
- Neutralizar la toxina no fijada
- Impedir los espasmos musculares
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La penicilina sigue siendo el antibiótico de elección debido a su eficaz acción contra el Clostridium y
su capacidad de difusión.
La antitoxina se administra para neutralizar a la toxina circulante,que aun no se a fijado a la herida,
esto contribuye a disminuir la mortalidad.
PREVENCIÓN Y PROFILAXIS:
Todos los sujetos inmunizados parcialmente o no inmunizados deben ser vacunados entre los 2
meses y dos años de vida con tres dosis de la vacuna triple DTP o la pentavalente.
La herida debe someterse a una limpieza y desbridamiento quirúrgico inmediato para eliminar
cuerpos extraños y cualquier tejido necrótico en el que se puedan desarrollar condiciones anaeróbias.
DIAGNÒSTICO DE LABORATORIO: El Clostridium tetani no siempre es visible en la tinción de
Gram., de una muestra tomada de la herida. El cultivo de las muestras se realiza en atmòsfera de
anaerobiosis , utilizando medios de cultivo como el Skirow Agar, o el agar sangre con telurito.
CUESTIONARIO DEL WORK PAPER
1. ¿Qué es el Tétanos?
2. ¿Cuál es su hábitat de la bacteria?
3. ¿Qué morfología tiene el Clostridium?
4. ¿Las esporas y las formas vegetativas son iguales? ¿Cual la diferencia?
5. ¿El Clostrdium tetani es una bacteria aerobia o anaerobia?
6. ¿El Clostridium tetani ocasiona Septicemia?
7. ¿El Tétanos es Transmisible?
8. ¿Cuál es el período de incubación?
9. ¿Cuántas clases de tétano existen?
10. ¿Cuales son los principales síntomas del tétanos?
11. ¿Cuál es el objetivo del tratamiento del Tétanos?
12. ¿Qué antibióticos se utiliza en el tratamiento del Tétanos.
13. ¿Cómo se neutraliza la acción de la Toxina?
14. ¿Cuál es la prevención para el tétanos?
15. ¿Existe vacuna para evitar el tétanos?
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VIII. GIP´S
PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA - GIP # 1
UNIDAD I :Tema 4 Esterilización
TÌTULO: Preparación de material de laboratorio
FECHA DE ENTREGA: Primera semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Segunda semana
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA:
La esterilización es el proceso de eliminación de toda forma de vida, incluidas las esporas. Es un
término absoluto que implica pérdida de la viabilidad o eliminación de todos los microorganismos
contenidos en un objeto o sustancia, acondicionado de tal modo que impida su posterior
contaminación. En esta práctica se podrá utilizar esterilización al calor seco, al calor húmedo, calor
más presión y otros.
- Métodos Químicos
Estos métodos provocan la pérdidá de viabilidad de los microorganismos.
Con oxido de etileno: Es un agente alquilante que se une a compuestos con hidrógenos lábiles. Es
utilizado en la esterilización gaseosa, generalmente en la industria farmacéutica. Destruye todos los
microorganismos incluso virus. Sirve para esterilizar material termosensibles como el descartable
(goma, plástico, papel, etc.).
Con aldehídos: Son agentes alquilantes que actúan sobre las proteínas, provocando una modificación
irreversible en enzimas e inhiben la actividad enzimática. Estos compuestos destruyen las esporas.
Glutaraldehído: Consiste en preparar una solución alcalina al 2% y sumergir el material a esterilizar
de 20 a 30 minutos, y luego un enjuague de 10 minutos. Este método tiene la ventaja de ser rápido y
ser el único esterilizante efectivo frío. Puede esterilizar plástico, goma, vidrio, metal, etc.
- Métodos físicos
Calor: La utilización de este método y su eficacia depende de dos factores: el tiempo de exposición y
la temperatura. Todos los microorganismos son susceptibles, en distinto grado, a la acción del calor.
Calor Húmedo:
El calor húmedo produce desnaturalización y coagulación de proteínas.
Autoclave:
Se realiza la esterilización por el vapor de agua a presión. El modelo más usado es el de
Chamberland .Esteriliza a 121ºC a una atmósfera de presión (estas condiciones pueden variar) y se
dejan los medios de cultivo durante 15 minutos.
Calor seco:
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El calor seco produce desecación de la célula, es esto tóxicos por niveles elevados de electrolitos,
fusión de membranas. Estos efectos se deben a la transferencia de calor desde los materiales a los
microorganismos que están en contacto con éstos.
Estufas:
Doble cámara, el aire caliente generado por una resistencia, circula por la cavidad principal y por el
espacio entre ambas cámaras, a temperatura de 180º C para el instrumental metálico y a 140º C para
el contenido de los tambores.
PRÁCTICA
OBJETIVOS: Conocer los diferentes proceso de esterilización de material utilizando equipos
utilizados en Bacteriología
MATERIAL:
Autoclave
Pupinel
Baño maría
Cajas petri
Tubos de ensayo
Mechero y aza
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1. – Esterilizar cajas petri, tubos de ensayo, material metálico en el pupinel a 180 ºC 1 hora
2. - Esterilizar los medios de cultivo en el autoclave a 121 ºC drante 15 minutos .
3.- Esterilizar por el método de combustión utilizado mechero, manejo de aza bacteriológica,
Esterilizar la boca de los tubos, y frascos.
RESULTADOS: Observación del material esterilizado guardar para su uso posterior
CONCLUSIONES
EVALUACIÒN
1,- ¿Qué tipos de material se esterilizan en el pupinel y en el autoclave?
2.- ¿Qué tipos de cuidados se deben tener al utilizar el pupinel y el autoclave?
3.- ¿Cuáles son las ventajas y las desventajas de los métodos de esterilización fisicos y quimicos?
4.- ¿A que se refiere el tipo de esterilización mecánico?
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5.- ¿Qué tipos de materiales se esterilizan a fuejo directo?
6.- ¿Cómo se realiza actualmente el control del material esterilizado?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA - GIP’s # 2
UNIDAD I :Tema 2 Nutrición y medios de cultivo
TITULO: Preparación de medios de cultivo
FECHA DE ENTREGA: Segunda semana de clases
PERÍODO DE EVALUACION: Tercera semana de clases
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
La utilización de medios de cultivo artificialmente preparados in vitro para el desarrollo de las
bacterias es una metodología básica en la práctica de la Bacteriología, donde se utilizan medios
deshidratados y hay que volver a hidratarlos para vaciar a las cajas petri y tubos de ensayo, para
conservarlos en la heladera y utilizarlos cuando sean requeridos, para ello se debe hacer cálculos y
pesar los medios para la cantidad necesaria de medio de cultivo.
Tipos de medios de cultivo
Según su estado:
A.- Medios líquidos: No llevan agentes solidificantes.
B.- Medios sólidos: Llevan un agente solidificante (agar) que es un polisacárido acídico producido
por ciertas algas rojas que gelifica por debajo de 45°C. Se usa a una concentración del 1,5%.
C.- Medios semisólidos: Agar a una concentración del 0,7%.
Según su composición:
A.- Medios sintéticos o químicamente definidos. Llevan fuente de carbono, fuente de nitrógeno,
sales que suplan iones, otros elementos como son estimuladores del crecimiento pero siempre a
concentraciones conocidas.
B.- Medios complejos o de composición indefinida. Estos medios llevan ingredientes como extracto
de levadura, peptona, infusión de cerebro, extracto de carne, etc. que contienen nutrientes en
abundancia pero sin saber con exactitud la composición cualitativa ni cuantitativa de estos nutrientes.
C.- Medios de enriquecimiento. Son medios complejos (normalmente) con aditivos adicionales para
favorecer el crecimiento de determinados microorganismos (particularmente heterótrofos exigentes).
Ejemplo: adicción de sangre, suero o extractos de tejidos de animales y plantas.
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D.- Medios selectivos. Son aquellos que favorecen por su diseño el crecimiento específico de un
microorganismo particular (o grupo de microorganismos). Es de gran utilidad para el aislamiento de
microorganismos a partir de una población microbiana mixta. Ejemplo: CO2 como fuente de carbono
es selectivo para autótrofos; adiccionando cristal violeta se inhibe el crecimiento de los Gram (+);
utilizando maltosa como única fuente de carbono sólo crecerán los que usen maltosa.
E.- Medios diferenciales. Son aquellos destinados a facilitar la discriminación de microorganismos
de una mezcla por sus propiedades diferenciales de crecimiento en dichos medios. Ejemplo: agar
sangre diferencia hemolíticos de no hemolíticos; Mac Conkey diferencia lactosa (+) de lactosa (-).
F.- Medios de mantenimiento. Suelen ser distintos a los de crecimiento óptimo ya que el crecimiento
rápido y prolífico suele ocasionar la muerte rápida de las células. Ejemplo: al añadir glucosa y
utilizarla los microorganismos producen ácidos, acidificándose el medio por lo que es preferible no
utilizar glucosa en los medios de mantenimiento.
PRÁCTICA
OBJETIVOS: Preparar medios de cultivo para el uso en el laboratorio de Bacteriología.
MATERIAL
Balanza
Espátula
Matraz o balón de vidrio
Pipetas
Cajas petri
Tubos de ensayo
Agar sangre
Agar Mac Conkey
Agar SS
Agar Chocolate
Agar CLED
Caldo BHI
Médios selectivos : TSI, Citrato , LIA, Urea, SIM, Malonato
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1.-Realizar cálculos para pesar la cantidad de medio requerido
2.-Usar balanza analítica para pesar el medio de cultivo
3.-Rehidratar con agua destilada deionizada, al volumen necesario
4.- Medir el PH
5.-Esterilizar en el autoclave 15 Min. A 121 ºC
6.-Esperar 15 minutos para sacar del autoclave, distribuir en los tubos de ensayo, cajas petri dejar
enfriar y gelificar.
7.-Guardar en heladera para su posterior utilización
CONCLUSIONES
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EVALUACIÓN:
1.- ¿Nombrar los tipos de medios diferenciales, selectivos y de mantenimiento?
2.- ¿Qué tipo de medio de cultivo es el medio Agar chocolate?
3.- ¿Cuáles son los cuidados que se deben tener al preparar los diferentes medios de cultivos?
4.- ¿Cómo se realiza el control de calidad de los medios de cultivo preparados?
5.- ¿Cuáles son los cuidados que se deben de tener con la utilización de la balanza analítica?
6.- ¿Como se realiza el control de crecimiento de los medios de cultivo?
7.- ¿Mencionar los medios de cultivo que no se autoclavan?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008(Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA - GIP # 3
UNIDAD I :Tema 1 Genética bacteriana
TITULO: Técnicas de sembrado
FECHA DE ENTREGA: Tercera semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÒN. Cuarta semana de clases
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
Existen varias técnicas de siembra en los medios preparados, estas técnicas o formas de siembra
que se realizan a partir de muestras biológicas que presumiblemente existe infección deben ser
realizadas con destreza para poder aislar las colonias que se desarrollan en lo medios de cultivo, esto
nos permitirá poder observar después de un tiempo de incubación a una temperatura determinada ,
generalmente la temperatura corporal 37 ºC la multiplicación de las bacterias por división binaria se
transforman en clones o colonias que cada bacteria tiene una característica determinada como ser,
color ,tamaño, aspecto, dureza adhesión.PRÁCTICA
OBJETIVOS
Realizar diferentes formas de siembra para el aislamiento de bacterias en los medios de cultivo.
MATERIAL
1.- Medios Líquidos
2.- Medios de cultivo sólidos en tubos
3.- Medios de cultivo sólidos en cajas petri
4.- Mechero y aza bacteriológica
5.- Estufa de cultivo a 35-37 ºC.
MÈTODO Y PROCEDIMIENTO
1.-Esterilizar el aza en el mechero
2.-Recolectar muestra biológica del frasco
3.-Sembrar por agotamiento en media caja petri
4.-Sembrar por agotamiento en tres direcciones en una caja petri
5.- Sembrar en medio líquido
6.-Sembrar en tubo inclinado por agotamiento
7.-Incubar a 35 -37 ºC en la estufa de cultivo durante 24 Hrs.
8.-Sacar de la estufa y observar el desarrollo de las colonias
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RESULTADOS
Observar el desarrollo bacteriano
CONCLUSIONES
EVALUACIÓN
1.- ¿A qué se llama siembra por agotamiento?
2.- ¿Qué es una siembra por inoculación?
3.- ¿Para qué se realiza un estriado en la caja petri?
4.- ¿A qué temperatura crecen favorablemente las bacterias?
5.- ¿Qué tiempo necesitan las bacterias para su desarrollo?
6.- ¿Todas las bacterias desarrollan a la misma temperatura?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79).
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GIP 4
UNIDAD I :Tema 1 Estructura bacteriana
TITULO: Tinción de Gram
FECHA DE ENTREGA: Cuarta semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Quinta semana de clases
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA.
La tinción de Gram es un tipo de tinción diferencial empleada en Bacteriología para la visualización de
bacterias, sobre todo en nuestras clínicas. Su nombre se debe al bacteriólogo danés Christian Gram,
que desarrolló la técnica en 1884.
Se utiliza tanto para poder referirse a la morfología celular bacteriana como para poder realizar una
primera aproximación a la diferenciación bacteriana, considerándose a las bacterias Grampositivas
que se visualizan de color violeta y bacterias gramnegativas a las que se visualizan de color rosado.
Las bacterias grampositivas y gramnegativas se tiñen de forma distinta debido a las diferencias
constitutivas en la estructura de sus paredes celulares. La pared de la célula bacteriana sirve para dar
su tamaño y forma al organismo así como para prevenir la lisis osmótica. El material de la pared
celular bacteriana que confiere rigidez es el peptidoglicano.
La pared de la célula grampositiva es gruesa y consiste en varias capas interconectandas de
peptidoglicano así como algo de ácido teicoico. Generalmente, 80%-90% de la pared de la célula
Grampositiva es peptidoglicano. La pared de la célula gramnegativa, por otro lado, contiene una capa
mucho más delgada, únicamente de peptidoglicano y está rodeada por una membrana exterior
compuesta de fosfolípidos, lipopolisacáridos, y lipoproteínas. Sólo 10% - 20% de la pared de la célula
gramnegativa es peptidoglicano.
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PRÁCTICA:
OBJETIVOS:
Realizar la metodología de la tinción de Gram.
Material
Violeta de genciana
Lugol
Alcohol acetona
Safranina
Mechero
Aza
Portaobjetos
Microscopio
PROCEDIMIENTO
- Realizar el frotis en el portaobjetos
- Colocar violeta de genciana 1 min.
- Lavar con agua
- Agregar lugol dejar 1min.
- Lavar con agua
- Decolorar con alcohol acetona segundos
- Lavar con agua
- Agregar safranina ó fucsina diluida
- Lavar con agua, secar y observar al microscopio con 100X
RESULTADOS
CONCLUSIONES
EVALUACIÓN
1.- ¿Qué colorantes se utiliza en la tinción de Gram?
2.- ¿A qué caracteristicas se debe la coloracion de las bacterias?
3.- ¿Porqué es esencial que el proceso de decoloración sea en el tiempo preciso?
4.- ¿Cuáles son los tipos de morfología bacteriana que se observan con la tinción de Gram?
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5.- ¿En la tinción de Gram se utiliza safranina ó fucsina diluida?
6.- ¿Cuál es el fundamento de la tinción de Gram?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA
GIP # 5
UNIDAD III :Tema 8 Tuberculosis
TITULO : Tinción De Ziehl Neelsen
FECHA DE ENTREGA: Quinta semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÒN: Sexta semana de clases
FUNTAMENTACIÓN TEÓRICA:
La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, aplicada
a la observación de bacterias ácido alcohol resistentes como ser el Mycobacterium tuberculosis y
Mycobacterium leprae. Se basa en que las paredes celulares de las bacterias contienen ácidos
grasos que les confieren la propiedad de resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la
tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan bacilos ácido-alcohol resistentes o BAAR.
La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la
pared bacteriana. Consiste en la utilización de dos colorantes uno la fucsina fenicada que se colorea
de rojo al calentarla y luego el otro colorante el azul de metileno como contraste en fondo azul.
Al observar la preparación al microscopio óptico con objetivo de inmersión los microorganismos ácido
alcohol resistentes (Micobacterias) aparecen teñidas de rojo mientras que el resto de bacterias
presentes en la muestra aparecen teñidas de azul.
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CARRERA DE BIOQUÍMICA Y FARMACIA
PRÁCTICA.
Objetivo: Realizar la técnica con la finalidad de observar bacilos ácidos alcohol resistentes
Material
Muestra (esputo)
Fucsina fenicada concentrada
Alcohol ácido
Azul de metileno
Microscopio
Mechero
Aza
Porta objetos
Baja lengua de madera
Aceite de inmersión
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1.- Realizar el frotis de la muestra con ayuda de un palito sobre el portaobjetos.
2.- Colocar la fucsina fenicada.
3.- Calentar hasta emitir vapores durante 5 minutos
4.- Lavar con agua corriente a baja presión
5.- Decolorar con alcohol ácido durante 1 a 3 min.
6.- Lavar con agua corriente a baja presión.
7.- Agregar el colorante de contraste azul de metileno durante 1 a 5 min..
8.- Lavar con agua. Secar… observar con inmersión 100x
9.- Buscar los bacilos alcohol ácido resistentes de color rojo en fondo azul.
RESULTADO
El resultado se informa de la siguiente manera:
Negativo: no se observan BAAR en 100 campos observados.
Positivo +: se observan menos de un bacilo por campo en promedio en 100 campos observados.
Positivo ++: se observan de 1 a 10 bacilos por campo en promedio en 50 campos observados.
Positivo +++: Se observan más de 10 bacilos por campo en promedio en 20 campos observados.
CONCLUSIONES
Baciloscopía positiva…………………………………………………
Baciloscopía negativa………………………………………………..
EVALUACIÓN
1.- ¿Cuál es el fundamento de la tinción de Ziehl Neelsen?
2.- ¿Cuál es la muestra adecuada para realizar la tincion de Ziehl Neelsen ?
3.- ¿Qué importancia tiene el calentamiento de la Fucsina?
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4.- ¿Cuáles son los dos métodos para realizar la tècnica de Ziehl Neelsen?
5.- ¿Cómo se informa una Baciloscopía?
6.- ¿Que colorantes se utilizan en la tinción de Ziehl -Neelsen?
BIBLIOGRAFÍA BÁSICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA – GIP’ #6
UNIDAD III :Tema 5
TITULO: Identificación del género Staphylococcus
FECHA DE ENTREGA:
Sexta semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Séptima semana de clases
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
Los Staphylococcus aureus son bacterias que se encuentran en la piel y fosas nasales de las
personas sanas, causan una gran variedad de infecciones, desde infecciones menores de la piel
(forúnculos, ampollas, y abscesos cutáneos hasta enfermedades que pueden poner en peligro la vida
como Neumonía, Meningitis, Endocarditis, Síndrome del shok tóxico (SST) y Sepsis.
Es un coco que crece agrupado en racimos (de ahí su raíz "Staphylo"), que responde positivamente a
la tinción de Gram, es aerobio y anaerobio facultativo por lo que puede crecer tanto en una atmósfera
con oxígeno y también sin el mismo, no presenta movilidad ni forma cápsula. Es capaz de crecer
hasta con un 10 % de sal común. Por esto puede crecer en el agua del mar. Produce la fermentación
láctica. Es catalasa positivo y coagulasa positivo.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Realizar pruebas de identificación para Staphylococcus
MATERIAL
Medios de cultivo con desarrollo de bacterias (Agar sangre)
Colorantes para tincion de Gram
Portaobjetos
Mechero y aza bacteriologica
Microscopio
Manitol Sal agar
Plasma humano
Tubos de hemólisis
Novobiocina
H2O2
MÉTODO Y PROCEDIMIENTO
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1.- Observación de hemólisis en el agar sangre
2.- Observación de colonias blanquecinas, grandes cremosas
3.- Observación en el microscopio de cocos grampositivos agrupados por la tinción de Gram.
4.- Prueba de la catalasa positiva (unión del H2O2+ la enzima coagula del estafilococo)
5.- Prueba de la Coagulasa
En un tubo de hemólisis con 0,5 ml de plasma colocar una colonia de estafilococo
Incubar a 35 ºC durante 4 - 24 Hrs. observar la formación del coagulo.
6.- Prueba del Manitol Sal agar.
Sembrar una colonia en el MSA incubar a 35 ºC 24 Hrs.Observar el desarrollo y desdoblamiento del manitol (viraje de rojo a amarillo)
7.-Prueba de la Novobiocina
Realizar una suspensión de bacterias sospechosas de estafilococo sembrar en el medio
de Müeller Hinton agar colocar el disco de novobiocina incubar a 35 ºC 24 Hrs.
Observar si existe halo de inhibición alrededor de la novobiocina
CONCLUSIONES
Interpretar los resultados de las pruebas
S. aureus: Catalasa positiva, MSA positivo coagulasa positiva
S. epidermidis: Catalasa positiva MSA con desarrollo sin desdoblar el manitol
Coagulasa negativa, novobiocina sensible
S. saprophyticus : Catalasa (+) MSA(-) coagulasa(-) novobiocina (R)
EVALUACIÒN
1.-¿Qué aspecto tienen las colonias de los Staphylococcus?
2.-¿Qué pruebas son positivas en el S. aureus?
3.- ¿Qué pruebas son positivas para el S. epidermidis?
4.- ¿Para qué sirve la prueba de la novobiocina?
5.- ¿En qué medios de cultivo desarrolla el género Staphylococcus?
6 ¿Que pruebas utiliza para diferenciar al género Staphylococcus del género Streptococcus?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008(Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA - GIP # 7
UNIDAD III :Tema 5
TITULO: Identificación del género Streptococcus
FECHA DE ENTREGA: Séptima semana de clases
PERÍODO DE EVALUACION: Octava semana de clases
FUNDAMENTACION TEÓRICA
El género Streptococcus es un grupo muy grande de bacterias la mayoría de ellos son saprófitos. Sin
embargo es importante la identificación de los estreptococos patógenos como ser el S. pyógenes del
grupo A, S. pneumoniae y el S. agalactiae del grupo B,Enterococcus faecalis para ello se toma en
cuenta las sensibilidades a la bacitracina.y la optoquina , y la bilis esculina, también se debe tomar
en cuenta la característica de las colonias y la producción de hemólisis
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer a los diferentes Streptococcus a través de sus reacciones
MATERIAL
Cajas petri con cultivo de Streptococcus
Colorantes de Gram.
Discos de bacitracina
Discos de optoquina
Medio con bilis esculina
Portaobjetos
Cajas petri con agar sangre
Microscopio
Mechero y aza bacteriológica
Pinza
Estufa de cultivo
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1.-Tinción de Gram.
Realizar un frotis de las colonias sospechosas, teñir con los colorantes de Gram. Observar la
morfología característica de cocos grampositivos
2.- Observación de tipo de hemólisis al rededor de las colonias
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3.- Prueba de la bacitracina y optoquina
Realizar una suspensión de bacterias. Sembrar en una caja petri con agar sangre en
forma masiva, colocar los discos de bacitracina y optoquina, incubar a 35 ºC 24 Hrs.
Observar al día siguiente un halo de inhibición alrededor de los discos.
4.-Inocular en el medio de bilis esculina colonias de Enterococcus faecalis incubar por 24 Hrs. a 35ºC
.al día siguiente observar el cambio de color del medio
RESULTADOS
Bacitracina: (S) sensible: Streptococcus del grupo A
Optoquina: (S) sensible: Streptococcus pneumoniae
Bacitracina y Optoquina (R): Streptococcus Spp.
Bilis esculina (+) Enterococcus faecalis
CONCLUSIONES
Informar la especie de Streptococcus……………………………….
EVALUACIÓN
1.- ¿Qué aspecto presentan las colonias de los Streptococcus?
2.- ¿Qué tipo de hemólisis se pueden observar en el agar sangre?
3.- ¿Qué tipo de hemólisis presenta el Streptococcus pyógenes?
4.- ¿Qué morfología tiene el Streptococcus pneumoniae?
5.- ¿Para qué utiliza la bacitracina y la optoquina?
6 ¿Que medios de cultivo diferenciales se utilizan para identificación del género Enterococcus?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008(Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010Bs. As. Argentina.
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UNIDAD III :Tema 6
TITULO: Identificación de Haemophilus influenzae
FECHA DE ENTREGA: Octava semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Novena semana de clases
FUNDAMENTACION TEORÍA
Los Haemophilus son bacterias pequeñas morfológicamente son Cocobacilos gramnegativos existen
varias especies, la más importante por su patogenicidad es el Haemophilus influenzae causante de la
influenza. Esta bacteria es considerada de crecimiento lento y exigente, crece en agar chocolate con
la adición de factores de crecimiento como son la Hemina y la coenzima A llamados también Factor
X y V.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer a los Haemophilus e identificar utilizando los factores X y V.
MATERIAL
Medio de cultivo (agar chocolate) con desarrollo de Haemophilus
Discos de papel con factores X y V
Mechero
Tubos de ensayo
Pinza
Medio de Müller Hinton ó HTM
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1.- Reconocer macroscópicamente las colonias de haemóphilus
2.- Realizar una siembra masiva en agar Mueller Hinton
3.- Colocar los discos con los factores X y V
4.- Incubar a 35 ºC en la estufa de cultivo durante 24 hrs.
5.- Observar el desarrollo de las bacterias alrededor de los discos con los factores
CONCLUSIONES
Haemophilus influenzae Desarrollo en presencia de factores X y V
Otros Haemophilus: Desarrollo al rededor del factor X
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1.- ¿Qué morfología y tinción presentan los Haemophilus?
2.- ¿Qué es el factor X?
3.- ¿Qué representa el factor V?
4.- ¿En qué medio de cultivo desarrolla el Haemophilus?
5.- ¿Qué aspecto tienen las colonias del género Haemophilus?
6
¿En que tiempo desarrolla el género Haemophilus?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA
GIP # 9
UNIDAD III :Tema 6
TITULO: Identificación del género Neisseria
FECHA DE ENTREGA: Novena semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Décima semana de clases
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA:
La Neisseria gonorrhoeae llamada también gonococo se la reconoce por su típica morfología de
ser diplococo gramnegativo. intr. o extra celular se la puede encontrar en las secreciones uretrales y
endocervicales o conjuntivitis purulenta del recién nacido en pacientes con diagnóstico presuntivo de
gonorrea. Para la identificación se realiza la tinción de Gram. Y el desarrollo en chocolate o Thayer
Martín.
PRÁCTICA
Objetivos .Observar la morfología del diplococo gramnegativo. Neisseria gonorrhoeae en diferentes
muestras
Material
Microscopio
Portaobjetos
Colorantes para la tinción de Gram
Mechero
Aza
Muestra de secreción uretral o endocervical
Agar Chocolate
Oxidasa
Estufa de cultivo
PROCEDIMIENTO.
1.- Recolectar la secreción uretral o endocervical
2.- Realizar un frotis en el portaobjetos
3.- Teñir con técnica de Gram
4.- Observar al microscopio
5.- Reconocer a los diplococos gramnegativos
6.- Cultivo en agar chocolate o Thayer Martín
CONCLUSIONES
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1.-¿Qué aspecto tienen las colonias del género Neisseria?
2.- ¿Qué morfología tiene el gonococo?
3.- ¿Cuáles son las pruebas presuntivas del gonococo?
4.- ¿Cuáles son las pruebas confirmativas de la Neisseria gonorrhoeae?
5.- ¿Cuál es el medio utilizado para el desarrollo de Neisseria?
6 ¿Cual es el tratamiento actual para el gonococo?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008(Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA
GIP 10
UNIDAD IV :Tema 9 Tétanos
TITULO:
Identificación del género Clostridium
FECHA DE ENTREGA:
Décima semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : Décima primera semana de clases
FUNDAMENTO TEÓRICO:
La identificación del género Clostridium bacilo anaerobio estricto se lo puede realizar a partir de
heridas que no cicatrizan en úlceras de pié diabético, o en heridas por objetos corto punzantes, se
realiza a partir de un examen directo con la tinción de Gram. Donde se observan los bacilos gram.
positivos grandes y desarrollan en medio de anaerobiosis cultivados en agar sangre con telurito. El
diagnóstico precoz del Clostridium es de vital importancia para el paciente y el médico.
PRÁCTICA
Objetivo. Realizar la tinción de Gram. Cultivo en agar sangre con telurito para la identificación del
Clostrium.
MATERIAL
Microscopio
Estufa de cultivo
Portaobjetos
Mechero
Aza
Cajas petri
Medio de cultivo de agar sangre con telurito
Colorantes de Gram
Aceite de inmersión
Muestra, secreción purulenta de heridas
MÉTODO Y PROCEDIMIENTO
1.- Obtener la muestra
2.- Realizar el frotis en portaobjetos
3.- Teñir con la técnica de Gram
4.- Realizar la siembre en agar sangre con telurito
5.- Colocar el medio de cultivo en atmósfera para anaerobiosis
6.- Dejar 48 hrs. A 35 ºC
7.- Observar al microcopio la tinción de Gram.
8.- Observar el cultivo el desarrollo de colonias grandes hemolíticas
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9.- Realizar un Gram a las colonias para observar los bacilos grampositivos .
CONCLUSIONES
EVALUACIÓN
1.- ¿Qué morfología presentan en el Gram. Los Clostridium?
2.- ¿Cómo diferencia los diferentes Clostridium?
3.- ¿Qué aspecto tiene la colonia del Clostridium?
4.- ¿Cuáles son los requerimientos para el desarrollo de los Clostridium?
5.- ¿Presentan hemólisis los Clostridium?
6 ¿En que tiempo desarrollan los Clostridium?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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UNIDAD IV :Tema 11
TITULO: Identificación del género Bacillus
FECHA DE ENTREGA: Décima primera semana de clases
PERÍODO DE EVALUACIÓN : décima segunda semana de clases
FUNDAMENTACION TEÓRICA
El género Bacillus comprende varias especies algunas son patógenas como el Bacillus anthracis y
Bacillus cereus y otras especies saprófita, morfológicamente son bacilos grampositivos,forman
esporas y son formadoras de toxinas son aeróbis facultativos y crecen en agar sangre .En la
práctica del laboratorio se podrán reconocer a través de la tinción de Gram. , el desarrollo de las
colonias en el agar sangre característica llamada cabeza de medusa como también la sensibilidad a
la Penicilina.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Identificar el género Bacillus a través de su morfología y desarrollo en agar sangre.
MATERIAL
Muestra con bacillus
Agar sangre
Disco de Penicilina
Coloración de Gram.
Mechero y aza bacteriológica
Estufa bacteriológica
Pinza
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1–Tinción de Gram. . Realizar un frotis y realizar la técnica de Gram.
2.-Realizar siembra en agar sangre, incubar a 35ºC 24 Hrs. Observar las colonias
con
subcrecimiento de la colonia (cabeza de medusa). Observar ausencia de hemólisis.
3.-Sensibilidad a la Penicilina. Realizar un inóculo de bacterias comparable con el tubo O.5 de la
escala de Mac Farland sembrar en forma masiva, colocar el disco de Penicilina, incubar a 35ºC 37º
24 Hrs.
4.-Observar al día siguiente la sensibilidad o resistencia a la Penicilina
RESULTADOS
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Tenciona de gram : Observar bacilos grampositivos .
Desarrollo en agar sangre: Colonias grandes mucoides no hemolíticas de apariencia de cabeza de
medusa
Sensibilidad a la Penicilina: Bacillus anthracis (S) Sensible, Bacillus cereus (R) Resistente
CONCLUSIONES
EVALUACIÓN
1.- ¿Qué tipo de hemólisis presenta el género bacillus?
2.- ¿Qué aspecto tiene las colonias del género Bacillus?
3.- ¿En qué medios de cultivo desarrolla el Bacillus Anthracis?
4.- ¿Cuáles son los requerimientos de oxigeno para el desarrollo del género Bacillus?
5.- ¿Que morfología presentan en la tinción de Gram?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008 (Signatura
topográfica 616.01 B79)
- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
GUÍA DE INVESTIGACIÓN PRÁCTICA - GIP’s # 12
UNIDAD III :Tema 7
TITULO: Identificación de Enterobacteriaceae
FECHA DE ENTREGA: Décima segunda semana de clases
PERÍODO DE EVALUACION: Décima cuarta semana de clases
FUNDAMENTACION TEÓRICA
Las Enterobacteriaceae son bacterias muy parecidas en los medios de cultivo morfológicamente
son bacilos gramnegativos. y solo se puede diferenciar una de otra especie a través de los medios
diferenciales, o pruebas bioquímicas, con ayuda de una tabla de interpretación de las reacciones
químicas
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Diferenciar géneros y especies a través de sus propiedades bioquímicas
MATERIAL
Caja petri con desarrollo de bacterias en Mac Conkey
Tubos de ensayo con medios de cultivo diferenciales. TSI, SIM CITRATO. LIA, UREA
Estufa de cultivo
Aza
Mechero ,reactivo de Kovacs ó Erlich
Tabla de interpretación de Enterobacteriaceae
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
Elegir una colonia del medio de cultivo
Esterilizar el hilo de platino
Inocular en los medios de cultivo diferenciales
Incubar en la estufa de cultivo a 35ºC durante 24 Hrs..
Hacer la lectura de las reacciones con ayuda de la tabla de identificación
CONCLUSIONES
Informar el género y especie identificada en la práctica
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EVALUACIÓN
1.- ¿Qué fundamento tiene el medio del citrato?
2.- ¿Cuál es el fundamento de la reacción del indol?
3.- ¿Cuál es el fundamento de la reacción de la lisina?
4.- ¿Cuál es el fundamento de la Urea?
5.- ¿Cuál es el fundamento del medio TSI?
6
¿Cual es el fundamento del medio SIM?
BIBLIOGRAFÍA BASICA
- Jawest y Melick Microbiología médica ED. El manual Moderno México 2008(Signatura
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- Bailey  Scott: Diagnòstico Microbiógico ED. Panamericana 2010 Bs. As. Argentina.
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