TALLER DE BIOLOGÍA

TALLER DE BIOLOGÍA
Material
 Cuatro botellas de plástico con tapón de rosca
 Plastilina roja y azul
 Dos embudos de plástico
 Tubo de plástico de 4 mm de diámetro
 Dos pinzas
 Colorante alimentario rojo y azul
 Cinta adhesiva negra
Procedimiento
Haz un modelo que bombee de
verdad para ver cómo
funcionan las cuatro cámaras
de tu corazón. Imagínate lo
fuerte que tiene que ser este
músculo para repetir la acción
de bombeo, al menos, 60 veces
por minuto.
1. Haz un agujero pequeño
en los cuatro tapones.
Corta dos trozos cortos
de tubo y mete un
extremo en cada tapón.
Sella los agujeros
alrededor del tubo con
plastilina roja y azul.
2. Corta las botellas 1 y 2.
3. Haz otro agujero más
pequeño en el costado
de las botellas 3 y 4 (A y B). Introduce un trozo largo de tubo (35 cm aprox.
cada uno) por ellos. Sella los agujeros con plastilina.
4. Enrosca los cuatro tapones en las botellas. Usa cinta adhesiva negra para unir las
botellas por parejas.
5. Llena dos jarras de agua e introduce en una colorante azul y en la otra colorante
rojo. El agua roja representa la sangre que contiene oxígeno. El agua azul
representa la sangre que vuelve al corazón con poco oxígeno.
6. Pon las pinzas en los tubos que conectan las botellas. Harán el papel de las
válvulas del corazón. Éstas son como puertas que se abren sólo en una dirección.
7. Utilizando los embudos, echa con cuidado el agua roja en la botella del lado
rojo. Luego echa el agua azul en el lado azul. Abre las pinzas para dejar que la
"sangre" pase por los tubos, y después ciérralas.
8. Aprieta las botellas de abajo. Esta acción es semejante al bombeo del corazón.
Observa lo rápidamente que sube la sangre por los tubos, lista para circular por
todo el cuerpo.
TALLER DE MATERIA
ANÁLISIS NUTRICIONAL DE INSECTOS
Responsable:
Centro: Musseo Nacional de Ciencia Naturales
IES Juan de Mairena (San Sebastián de los Reyes)
Material
Balanza.
Estufa.
Manta calefactora.
Matraz de fondo redondo.
Refrigerante de reflujo.
Extractor Soxhlet.
Gomas de conexión.
Cartucho de celulosa.
Hexano.
¿Sabías que los
insectos están formados por
los mismos componentes que
los animales que nos sirven
de alimento? Entonces, ¿por
qué no comerlos?
Análisis de grasas en insectos
Extracción de la grasa de la muestra, previamente hidrolizada y desecada, por medio de
hexano.
Eliminación del disolvente por evaporación, desecación del residuo y posterior pesada
después de enfriar.
El resultado se expresa como porcentaje de grasa en la muestra.
Desarrollo
Pesar 2,5 g de muestra (con aproximación de 1 mg) e introducirlos en un Erlenmeyer
de 500 mL.
Añadir 100 mL de ácido clorhídrico 3 N y unos trozos de piedra Pómez gránulos.
Cubrir la boca del Erlenmeyer con un vidrio de reloj y someter la mezcla a una
ebullición suave en la placa calefactora durante 1 hora.
Enfriar y filtrar sobre doble filtro evitando cualquier paso de materia grasa al filtrado.
Lavar el residuo con agua fría hasta la desaparición de la reacción ácida. Verificar que
no existe materia grasa en el filtrado.
Colocar los papeles de filtro conteniendo el residuo sobre un vidrio de reloj y
desecarlos durante una hora y media en la estufa a 95-98 °C.
Una vez seco el conjunto, introducirlo en el cartucho de extracción, extrayendo con el
Soxhlet con éter dietílico durante 2 horas, regulando la ebullición de forma que se
produzcan 15 sifonadas al menos en cada hora.
Eliminar el disolvente en el rotavapor y eliminar el resto del disolvente en la estufa
durante hora y media a 75 °C.
Enfriar el matraz con la grasa en desecador, matraz que previamente fue tarado, y pesar
cuando se alcanza la temperatura ambiente.
Repetir el calentamiento y la pesada hasta que la diferencia entre dos consecutivas sea
menor de 5 mg.
Cuidar la boca es natural. ¿Cómo preparar un dentífrico
ecológico?
Fuente: VII Feria Madrid por la Ciencia
Dirigido a: Público en general
Material
Salvia o tomillo.
Aceite esencial de menta.
Sal marina.
Arcilla blanca.
Gasas.
Vaso de cristal.
Cuchara sopera.
Cucharita de té.
Espátula fina.
Fundamento científico
La medicina tradicional ha utilizado las plantas para el cuidado y tratamiento
de las enfermedades. Para la salud bucodental existen varias plantas y
componentes naturales que nos permiten confeccionar un dentífrico casero.
La salvia tiene propiedades antisépticas, antiinflamatorias y astringentes. Sus
indicaciones son diversas, como el tratamiento de espasmos, fiebre,
estimulación de la secreción biliar, aerofagia, flatulencias digestivas y, ya de
forma específica en la boca, inflamación de encías, úlceras y llagas bucales, así
como faringitis.
El tomillo también tiene propiedades antisépticas. Se emplea para la halitosis,
inflamaciones de la boca, aftas, cuidado de los dientes y encías, lavado de
heridas en infecciones de la piel causadas por hongos, dermatosis, caída del
cabello por infecciones y piojos.
La menta calma los dolores dentales. Tiene un efecto refrescante y
contrarresta el mal aliento.
La arcilla blanca contiene oligoelementos que intervienen en la formación y
conservación de los dientes. Impide la proliferación bacteriana y microbiana y
refuerza las defensas del organismo. Resulta excelente como enjuague bucal.
La sal marina es usada como medicina natural ante inflamaciones bucales y de
garganta. Incrementa la acción de la arcilla.
Desarrollo
1. Calentar un vaso con agua en microondas durante 4 minutos (según la potencia
del microondas).
2. Añadir una cucharadita de salvia o tomillo y cubrir durante 15 minutos.
3. Filtrar a través de una gasa la infusión.
4. En un vaso limpio se añaden dos cucharadas de infusión.
5. Se añaden 2 gotas de esencia de menta.
6. Se añade una pizca de sal marina.
7. Se añaden 3 cucharadas de arcilla blanca.
8. Se remueve todo con una espátula fina.
9. Se introduce en un recipiente adecuado y se conserva en frigorífico
Taller de Biología
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Cultivo y observación de microorganismos
Responsables:
Almudena
Alcón
Emilio
Gómez
José
Ángel
Morales
Virginia Eugenia Santos Mazorra
Fuente:
Dirigido
VI
Feria
Madrid
a:
por
Martín
Castro
García
la
Ciencia
Bachillerato
Material
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Bacterias Acetobacter aceti, Xanthomonas
campestris.
Levaduras: Saccharomyces cerevisiae.
Mechero Bunsen.
Matraces Erlenmeyer.
Baño termostático.
Placas Petri estériles.
Pipeta Pasteur.
Microscopio óptico.
Lupa binocular.
Diferentes tipos de crecimiento
bacteriano.
Fundamento científico
Los microorganismos se pueden obtener en instituciones que tengan una colección de
cultivos. En España se pueden conseguir en la Colección Española de Cultivos Tipo de la
Universidad de Valencia (www.cect.org). Para esta experiencia se adquirieron cultivos puros
de diversas bacterias (Acetobacter aceti, Xanthomonas campestris) y levaduras
(Saccharomyces cerevisiae) y se procedió a su crecimiento.
Desarrollo
Los microorganismos se encuentran liofilizados y, por tanto, deshidratados. Por esta razón
hay que activarlos antes de proceder a su cultivo en placas Petri de la siguiente forma:
1. Cerca del mechero Bunsen, abrimos la ampolla que contiene el microorganismo y
añadimos parte de su contenido a uno de los matraces con el medio líquido preparado
como se ha descrito anteriormente (ver actividad 1). Lo incubamos en baño
termostatizado a una temperatura entre 28 y 30 °C durante, al menos, 48 horas.
2. Cuando se observa turbidez en los medios, procedemos a «sembrar» los mismos en
las placas de cultivo. Para ello, cerca del mechero Bunsen y con una pipeta Pasteur
previamente esterilizada en el mechero, añadimos unas gotitas del medio líquido.
Estas gotitas se extenderán con cuidado (haciendo un zigzag de lado a lado) por toda
la placa ayudándonos de la punta de una pipeta doblada en forma de asa.
3. Dejamos las placas boca abajo, para evitar contaminaciones, a temperatura
ambiente, hasta que observemos crecimiento de las colonias.
Diferentes tipos de crecimiento bacteriano.
Finalmente, procedemos a su observación microscópica con ayuda de un microscopio óptico
o lupa binocular. Las levaduras y los mohos son fácilmente observables con esta técnicas.
Sin embargo, la observación morfológica de bacterias no es fácil. Una alternativa interesante
es obtener de Internet fotografías realizadas mediante microscopía electrónica de
transmisión.
Desalando el agua del mar
Responsables:
Alberto
L.
Juana
M.ª
Y
Jesús
Centro:
Fuente:
Colegio
VII
Dirigido
Feria
a:
Pérez
Pascual
Jordán
Amor
de
Madrid
por
Público
García
Recamal
Cerezo
Dios
la
en
(Madrid)
Ciencia
2006
general
Materiales
Aparato desalinizador.
Vasos.
Sal.
Agua.
Patata.
Red.
Pelotas de colores y de ping-pong.
Fundamento científico
La ósmosis inversa es el fenómeno físico más eficaz para desalar el agua del mar. La
aplicación industrial de este fenómeno en plantas desaladoras permite que muchas regiones
del planeta no sufran los graves efectos de la sequía.
Desarrollo
El agua es una molécula polar. La parte del átomo de oxígeno tiene carga negativa; la parte
de los átomos de hidrógeno tiene carga positiva. Podemos disolver la sal porque las
moléculas de agua rodean por atracción electrostática los iones Cl- y Na+ de la superficie de
los microcristales de sal. Como resultado, se obtienen agregados moleculares en los que las
moléculas de agua rodean a los iones. Dichos agregados son, evidentemente, de mayor
tamaño
que
las
moléculas
de
agua.
Se pueden fabricar membranas con poros de diámetro adecuado que dejen pasar a las
moléculas de agua, pero no a los agregados moleculares.
Experimento de ósmosis directa
Cortamos por la mitad una rodaja de una patata y metemos una de las rodajas en agua del
grifo y la otra en agua con sal. Pasadas unas horas, la mitad que está sumergida en el agua
salada ha disminuido su tamaño.
Explicación: La membrana celular de las células de la patata es porosa y divide el
citoplasma del exterior. El agua del citoplasma sale del interior de las células, ya que la
concentración salina es menor, hacia el agua salada. Al perder agua, el volumen de las
células disminuye.
Experimento de ósmosis inversa
El desalinizador portátil de agua de mar que utilizamos consta de una membrana, una
palanca para ejercer presión, una entrada para el agua salada y dos salidas, una para el
agua sin sal y la otra para la salmuera. Al levantar la palanca, se absorbe agua salada y, al
bajarla, se ejerce la presión que permite desalinizar el agua al hacerla pasar por la
membrana.
Explicación: Si ejercemos presión por el lado de más concentración, entonces las moléculas
de ese lado se moverán con más velocidad, por ser más fuertes los choques entre ellas. Los
agregados moleculares seguirán sin pasar (no caben por los poros de la membrana) pero
pasarán ahora más moléculas de agua hacia el lado de menos concentración de sal porque
van más rápido, al tener más presión, que las que vienen del otro lado.
¿Qué hizo el visitante?
En un modelo de membrana construido con una red y pelotas de diferentes tamaños, el
visitante aprendía la ósmosis directa e inversa. Las pelotas de goma pequeñas representan
las moléculas de agua y las de ping-pong representan los agregados moleculares.
Ósmosis directa:
Tira 4 pelotas de goma hacia un lado de la red y 2 de goma y 2 de ping-pong hacia el otro.
Del lado de la sal quedarán 6 pelotas, y al otro lado quedarán solo 2. Pasa más agua al lado
de la sal.
Ósmosis inversa:
En uno de los huecos de la red pon un tubo transparente que representa un canal de la
membrana. Tira por el canal dos pelotas de goma, una con más velocidad que la otra. Las
dos pasan hacia el lado donde no hay sal.
Detección de nitritos en alimentos
Coordinadores:
Esperanza Díaz Miguel y Blanca Ruiz Fernández
Centro: IES Ramiro de Maeztu
Fuente: I Feria Madrid por la Ciencia 2000
Material
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Vidrios de reloj.
Cuchillo de laboratorio.
Espátula con cuchara.
Pinzas.
Nitritotest.
Agua destilada.
Salchichas y embutidos de diferentes marcas.
Procedimiento
1. En una bandeja se depositan tantos vidrios de reloj como muestras se tengan.
2. Se cortan trozos pequeños de igual peso del material experimental, de tal forma que
al depositar las muestras sobre los vidrios de reloj puedan cubrirse completamente
con agua destilada.
3. Se cubren todas las muestras con la misma cantidad de agua destilada.
4. Se dejan reposar media hora aproximadamente.
5. Se introducen los indicadores y después de unos segundos apreciaremos un cambio
de color.
6. Comparando con la escala de colores del indicador nos permitirá apreciar la cantidad
de nitritos que tiene cada muestra.
7. Se rellena la siguiente tabla y se establecen conclusiones.
Taller de Química - Materia
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Determinación de la dureza del agua y de su contenido en fosfatos
Responsables:
Manuel
José
Estrella
Centro:
Fuente:
Jesús
Colegio
VII
Dirigido
Malho
García
Dávila
Feria
a:
Luyferivas
Madrid
ESO
Martín
Sáez
Belinchón
(Rivas-Vaciamadrid)
por
la
y
Ciencia
2006
Bachillerato
Materiales
Kit de análisis de fosfatos.
Kit de análisis de dureza total.
Fundamento científico
La dureza es una característica química del agua determinada por el contenido de calcio y
magnesio y que condiciona los posibles usos del agua, ya que estas sales pueden formar
precipitados
en
las
canalizaciones
y
dañarlas
seriamente.
El fósforo es un nutriente cuyo exceso en el agua puede provocar la consiguiente
contaminación por eutrofización y la proliferación excesiva de algas, debido a una
disminución en la cantidad de oxígeno presente en el agua.
Desarrollo
En esta actividad utilizamos un método de valoración química por colorimetría para
determinar la dureza total (contenido en calcio y magnesio) de cada muestra de agua. Con
una muestra pequeña de agua y unas gotas de un reactivo comercial establecemos los
grados
de
dureza
de
la
muestra.
Además, determinamos de forma cualitativa la presencia de fosfatos en las muestras de
agua, utilizando una pequeña muestra de agua y unas gotas de un kit comercial
estandarizado.