inmunoserologia - Facultad de Ciencias Biológicas

UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS
(Universidad del Perú, Decana de América)
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA
DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA
SYLLABUS
SEMESTRE ACADÉMICO: 2015– II (Agosto-Diciembre)
I. DATOS GENERALES
1.1. NOMBRE DEL CURSO
: INMUNOSEROLOGÍA
1.2. CÓDIGO DEL CURSO
: B03164
1.3. NÚMERO DE CRÉDITOS
: 3.0
1.4. DURACIÓN DEL CURSO
: 17 SEMANAS
1.5. AÑO DE ESTUDIOS
: CUARTO O QUINTO
1.6. NÚMERO DE HORAS
:5
1.6.1 TEORÍA
: 1 horas semanales; 17 semestrales
1.6.2. PRÁCTICA
: 4 horas semanales; 64 semestrales
1.7. PRE-REQUISITO
: INMUNOLOGÍA
1.8. PROFESORA RESPONSABLE: Dra. Libertad Alzamora Gonzales (5h semanales)
1.8.1. PROFESORES DE TEORÍA: Dra. Libertad Alzamora Gonzales
Biólogo Erasmo Colona Vallejos
Bióloga Jeanne R. Alba Luna
1.8.2. PROFESORES DE PRÁCTICA: Dra. Libertad Alzamora Gonzales
Biólogo Erasmo Colona Vallejos
Bióloga Jeanne R. Alba Luna
1.8.3. PROFESORES INVITADOS: Biólogo Waldo Medina Corrales (FARVET)
Biólogo Daniel Gómez Bellido (Emp. La Ensenada S.A.)
Biólogo Enrique Castillo (Ex miembro DIRINCRI)
Bach. Emely Chauca T. (Lab. de Inmunología-FCBUNMSM)
1.8.4. ASISTENTES DE LABORATORIO: Est. Luis Rodríguez Carnero (EAP
Genética y Biotecnología)
Egres. Ricardo Arones Farfán (EAP Microbiología y
Parasitología)
1.9. HORARIOS Y AMBIENTES:
1.9.1. Teoría: Miércoles 13-14 hrs (Aula 211)
1.9.2. Seminarios: Miércoles 9-13 hrs (Lab. 301)
1.9.3. Laboratorio: Miércoles 9-13 hrs (Lab. 301)
II. SUMILLA
El curso trata sobre los métodos inmunoserológicos, su manejo e interpretación para ser
empleados en la investigación y diagnóstico de enfermedades de origen inmunológico,
genético o infeccioso; así como en el control de calidad de aguas, alimentos y en la
caracterización taxonómica de los serogrupos de organismos.
III. OBJETIVOS DEL CURSO
3.1. GENERALES
Establecer el aspecto práctico de la Inmunología que sea útil en la determinación de
epítopes presentes en células normales y transformadas, y en microorganismos
patógenos, ambientales o empleados en la industria.
3.2. ESPECÍFICOS
 Adiestrar al estudiante en la aplicación de distintas metodologías que permitan la
extracción de antígenos que puedan ser empleados en las pruebas serológicas
convenientes.
 Proveer de adecuada información teórica que permita interpretar las reacciones
inmunológicas.
 Promover en el estudiante su capacidad para adaptar las técnicas de laboratorio a
sus necesidades, conservando la eficacia de las mismas.
 Adiestrar al estudiante en el conocimiento de las pruebas inmunoserológicas más
utilizadas y otras de mayor sofisticación.
IV. EVALUACIÓN
El Curso consta de dos capítulos. Se realizarán dos evaluaciones teóricas. Las sesiones
de Laboratorio serán evaluadas semanalmente, al término de cada capítulo se obtendrá la
nota que será promediada con la que se obtenga en el examen de teoría.
SUSTITUTORIO: Se sustituirá una de las dos evaluaciones programadas.
Las fechas programadas son INALTERABLES.
PRIMERA EVALUACIÓN: Miércoles 07 de Octubre (T1-T6; P1-P6)
SEGUNDA EVALUACIÓN: Miércoles 02 de Diciembre (T7-T12; P7-P14)
SUSTITUTORIO: Miércoles 09 de Diciembre
V. METODOLOGÍA

El alumno deberá participar activamente en el desarrollo del curso. Las prácticas de
laboratorio se desarrollarán de manera individualizada en la medida de lo posible a fin
de cumplir con los objetivos del Curso.
La evaluación es permanente. Cada sesión de Laboratorio es calificada, el
promedio de las notas obtenidas equivale a la nota de Laboratorio por cada capítulo.
El promedio de notas por Capítulo comprende los siguientes aspectos:
Promedio de Teoría 50%
Promedio de Laboratorio 50% (considera resultados obtenidos en cada sesión,
intervenciones orales, exposición de temas asignados, evaluación de destreza en el
manejo de las técnicas inmunoserológicas).
Para el promedio final se suman los promedios de cada Capítulo y se divide entre 2.


La asistencia a las clases teóricas y prácticas de laboratorio es obligatoria. El alumno
será automáticamente excluido si su inasistencia es superior al 30%. Cualquier
inasistencia debe justificarse de manera oficial.
La nota del sustitutorio se publicará al final del curso, una vez inscritos invalidarán la
nota obtenida en el capítulo que deseen sustituir, de manera que si no asisten a dicho


examen tendrán la nota de CERO. Se sugiere una inscripción RESPONSABLE Y
MEDITADA.
Está terminantemente prohibido salir del laboratorio de prácticas sin la autorización
del profesor de su grupo.
El ingreso a las teorías y a laboratorio es hasta 13:10 hrs. y 9:10 respectivamente,
pasada esta hora deberán esperar el intermedio para ingresar, teniendo falta en la
primera hora de teoría o práctica respectiva. Se ruega no insistir.
VI. PROGRAMACIÓN CALENDARIZADA DEL CURSO
FECHA
TEMA
PROF. RESPONSABLE
M 19-Agos
T-1
Presentación del curso (Syllabus).
Organización de actividades lectivas
L. Alzamora
M.26-Agos
T-2
P-1
Métodos de obtención de antígenos
Preparación de material para IEF, CIEF
E. Colona
L. Alzamora
M.02-Set
P-2
T-3
Métodos de obtención de antígenos
Elaboración de patrones de hemólisis
Métodos de obtención de antígenos de
Secreción - excreción
E. Chauca
E. Colona
M.09-Set
P-3
Liberación de Ags. de membrana por citolisis
Pruebas de verificación de los métodos empleados
Antígeno: Componentes de un antígeno complejo
E. Chauca
E. Chauca
T-5
Liberación de Antígenos por shock
Térmico
Categorías de las técnicas inmunoserológicas
M.23-Set
P-5
T-6
Liberación de Antígenos por sonicación
Métodos Inmunoserológicos I
E. Colona
L. Alzamora
M.30-Set
P-6
Obtención de antígeno secretor-excretor
de Fasciola hepática
Obtención de antígenos recombinantes
E. Colona
T-4
M.16-Set
P-4
S-1
M.07-Oct
L. Alzamora
L. Alzamora
L. Alzamora
EXAMEN DEL CAPÍTULO I (T1-T6; P1-P6)
M.14-Oct
P-7
T-7
Pruebas de unión primaria
Inmunoensayo ligado a enzima (ELISA)
Métodos Inmunoserológicos II
E. Colona
W. Medina
M.21-Oct
P-8
T-8
Citometría de flujo (Práctica en FARVET)
Exposición de temas asignados
W. Medina
L. Alzamora
M.28-Oct
P-9
M.04-Nov
P-10
T-9
Pruebas de Unión Secundaria
Aglutinación en látex: Determinación de Factor
Reumatoideo
Inmunocromatografía
Métodos Inmunoserológicos III
P-11
Inmunoelectroforesis
L. Alzamora
L. Alzamora
L. Alzamora
E. Colona
T-10
Métodos Inmunoserológicos IV
E. Colona
M.11-Nov
P-12
T-11
Contrainmunoelectroforesis
Inmunoserología Forense
E. Colona
E. Castillo
M.18-Nov
P-13
Aplicación médico legal de las reacciones
serológicas
Inmunoserología aplicada a control de calidad
de alimentos
L. Alzamora
T-12
M.25-Nov
P-14
S-2
Inmunoserología aplicada a control de calidad de D. Gómez-J. Alba
Alimentos
Técnicas inmunoserológicas en fitopatología
L. Alzamora
M.02-Dic
EXAMEN DEL CAPÍTULO II (T7-T12; P7-P14)
M 09-Dic
SUSTITUTORIO
VII.
J. Alba
BIBLIOGRAFÍA
Abbas, A. Lichtman,A. y Pillai, S. Inmunología Celular y Molecular 7ª Ed. Elsevier. 2012.
Burmester Gerd-Rüdiger y Antonio Pezzuto. Color Atlas of Immunology. Edit. Grammlich,
Pliezhausen. 2003.
Burrell, R. and Mascole. Experimental Immunology. 1987.
Janeway, Ch.; Travers, P.; Walport, M. and Capra, D. Inmunobiología. Edit. Masson S.A.
4ª Edic. 2000.
Peakman, M y Vergani, D. Inmunología Básica y Clínica. Edit. Elsevier. 2011.
Regueiro, J. y López Larrea, C. Inmunología. Biología y Patología del sistema inmune.
Edit. Médica Panamericana S.A. 4ª Edic. 2010.
Roitt, I.; Brostoff, J. and Male, D. Inmunología. Edit. Harcourt Brace de España. 5ª Edic.
2002.
Tizard, I. Inmunología Veterinaria. Edit. McGraw-Hill Interamericana. 8ª Edic. 2009.
Weir, Donald. Handbook of experimental Immunology in four volumes. 5ª Edic. 1997.
Enlaces importantes
Peter Delves / Seamus Martin / Dennis Burton / Ivan Roitt- Inmunología. 2008
Immunology Methods for Medical Students. Second edition. Department of ImmunologyChina
Medical
University.
September，2007.
http://www.cmu.edu.cn/jc_sys1/upl_files/200858184159474.pdf