Anestesia en reptiles.

Curso GREFA
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Objetivo del Tema
Conocer las características de los pacientes,
fármacos y métodos empleados en la
Anestesia de Reptiles, Pequeños Mamíferos
y Aves mas comunes en la fauna Ibérica
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Conceptos generales
•
•
•
•
•
•
ANESTESIA
ANALGESIA
SEDACION
INMOVILIZACION QUIMICA
NEUROLEPTOANALGESIA
EUTANASIA
4
Anestesia en Reptiles
5
Anestesia en reptiles.
• Quelonios
– Galápagos leprosos
• Ofidos
– Escalera
– Bastarda
– Natrix
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Anestesia en reptiles.
•
•
•
•
•
Características fisiológicas particulares
Poiquilotermia
Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos
Sistema porta-renal
Adaptaciones físicas específicas
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Sistema porta-renal
• Característico de la circulación sanguínea de reptiles y
aves.
• Existencia de válvulas:
• Son modificaciones de músculo liso.
• En la unión de venas iliacas externas con venas eferentes renales.
• Bajo control adrenérgico y colinérgico.
• Circulación sanguínea desde las extremidades
posteriores a través del riñón o a circulación central.
• Se recomienda no usar fármacos nefrotóxicos o que se
excretan por el riñón en la musculatura de las patas.
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Anatomía respiratoria
•
Glotis
• En la base de la lengua: intubación
sencilla
• Quelonios: lengua es más gruesa
que dificulta la intubación
• Cocodrilos: epiglotis desarrollada
y disponen del pliegue gular que
debe ser deprimido para permitir
la intubación
•
Tráquea
• Saurios y los ofidios: anillos
traqueales incompletos
• Cocodrilos y quelonios: anillos
completos
• Quelonios: traquea pequeña que
se bifurca al entrar en la cavidad
celómica.
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Administración de sustancias
IM, extremidad posterior
• Intramuscular
– en extremidades anteriores o posteriores.
– Ofidios, a lo largo de los paquetes musculares,
preferentemente de los dorsales.
• Intravenosa
– Ofidios, vena ventral de la cola, o por punción
intracardiaca
– Quelonios y saurios: venas yugular, dorsal de la
cola, femoral y longitudinal del caparazón
IV, dorsal de la cola
IC
IV, dorsal de la cola
IV, yugular
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Administración de
Fármacos
• Intraósea
– En tortugas y lagartos, en
húmero y fémur, en tortugas
además en puente del
caparazón
• Intracelómica
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Inducción Anestésica
Fases de la inducción anestésica en reptiles:
•
•
•
•
•
•
Excitación.
Pérdida del reflejo de enderezamiento.
Relajación muscular.
Pérdida del reflejo de retirada.
Reflejo de la membrana nictitante, en las especies que
la tienen, se mantiene..
Disminución de la frecuencia cardiaca, nunca por
debajo del 80%.
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Inducción Anestésica e
Intubación
•
Inducción
– Con mascarilla con isofluorano, halotano y
sevofluorano
– Reptiles acuáticos y semiacuáticos son
capaces de permanecer en apnea largos
periodos de tiempo: se emplean sedantes
inyectados
•
Intubación
– La glotis se situa en la base de la lengua.
– Dificultades: Abrir el pico de los quelonios,
– En tortugas y cocodrilos los anillos
traqueales son completos
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Mantenimiento
• Anestésico de elección
– Isoflurano 1-2%
• Flujo de O2
– <5 kg, sistema abierto, 0,3-0,5 l/kg/min.
– >5kg , sistema con absorción de CO2, 2-4 l/min para
inducir, y 1-2 l/min para mantener
• Ventilación
 Frecuencia respiratoria normal 10-20 resp/min
 En ventilación asistida: 2-6 resp/min, presión pico < 12
cm H2O
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Recuperación
• Según anestésico
– Isoflurano: 20-30 min para intervenciones de <1 hora.
– Anestésicos Inyectables: de horas a días
• Ventilación asistida
– Mantener hasta que el animal ventile regular y
espontáneamente.
Se puede reducir a 2 resp/min para aumentar el CO2, o
ventilar con aire ambiental
• Soporte
– Mantener la temperatura y la fluidoterapia, para evitar
retrasar la recuperación
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Protocolos Anestésicos
• Isoflurano
Inducción y mantenimiento
•
Propofol
5-10 mg/kg IV, IO + 0,25 mg/kg/min
•
Ketamina + Butorfanol
10-30 mg/kg + 0,5-1,5 mg/kg IM
para pequeñas intervenciones en quelonios
•
Ketamina + diazepam
60-80mg/kg + 0.2-0.8 mg/kg IM
para procedimientos que requieran relajación muscular
•
Ketamina + Medetomidina
10 mg/kg + 0.1-0.3 mg/kg IM
•
Tiletamina + Zolazepam
4-5 mg/kg SC, IM. Cirugía 30 min, recuperación en 1-12 h
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Anestesia en Pequeños
Mamíferos y
Ungulados
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Especies
– Lobo
– Zorro
– Gatos monteses
– Ginetas
– Hurón – Turón
– Tejón
– Comadrejas
– Conejos
– Liebres
– Erizos
– Rumiantes
salvajes
– Murcielagos
– Corzos
– Ciervos
– Gamos
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Manejo
•
•
•
•
Fundamentalmente depende del tamaño y agresividad
Animales muy estresables
El manejo puede resultar peligroso
El estado general grave puede hacer a un mamífero
grande muy manejable
• Jaulas de contención, contención física
– Resultan muy útiles para administración de fármacos y
medicación vía parenteral (IM)
• Jaulas – Guantes
– Anestesia a distancia con dardos NARCOTIZANTES
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Fármacos
• Tranquilización / Inmovilización Química
– Es fundamental para manejo y transporte de
carnívoros mas o menos agresivos
• Combinaciones de KETAMINA
–
–
–
–
–
KETAMINA 5-20 mg/Kg
+ Xilacina 0,5 -2 mg/Kg
+ Medetomidina 0,05 – 0,01 mg/Kg
+ Midazolam 0,3 mg/Kg
+ Diacepam 0,1 mg/Kg
– DURAN DE 20 a 45 min
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Fármacos
• Inducción parenteral
– Propofol
– Tiopental sódico
– Alfaxalona
• Inducción Inhalatoria
– Administración de anestesico en cámara de
inducción
– Tras la perdida del reflejo de estación se continua
con mascarilla
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Mantenimiento anestésico
• La anestesia inhalatoria presenta ventajas
fundamentales
– Control dinámico de la profundidad anestésica
– Recuperación rápida en caso de complicaciones
• Necesitamos
– Intubar
– Maquina y circuito anestésico
– Monitorizar
• Mantenimiento de la TEMPERATURA
– Mantas eléctricas (Ojo)
– Agua circulante
– Aire caliente
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Monitorizar
• El control e integración de
– Parámetros circulatorios
– Cardiacos
– Respiratorios
– Tª
• Nos permite “ver” como está de “deprimido”
el paciente y actuar en consecuencia
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Recuperación
• De anestesia “Parenteral”
– Generalmente mas largas. Hay que esperar que el
paciente filtre y elimine los fármacos
administrados
– Algunos tienen antagonistas
• Atipamezol – Alfa-2agonistas adrenergicos
• De anestesia Inhalatoria
– Es rápida. Pocos minutos despues de cerrar el
vaporizador, el animal ha expulsado el anestesico
via respiratoria
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ANESTESIA EN UNGULADOS
SALVAJES.
•
•
•
•
•
•
Especies : ciervos, corzos, gamos…
Extremadamente sensibles al estrés.
Difícil aproximarse a ellos.
Cocean.
Miopatía de captura.
Fallo cardíaco.
ANESTESIA EN UNGULADOS
SALVAJES.
• MIOPATÍA DE CAPTURA.
– Patofisiología,
• Distrofia muscular.
• Rabdomíolisis
• Enfermedad del músculo blanco.
• Aumenta el ac. Láctico
• Deplección del Ca y K intracelular.
• Daño tisular = mioglobina a torrente sanguíneo
= fallo renal.
ANESTESIA EN UNGULADOS
SALVAJES.
•
•
•
•
•
•
PREVENCIÓN DE LA MIOPATÍA DE CAPTURA.
Evitar tiempos de captura prolongados.
No sobredosificar si usamos opioides.
Reducir el manejo al mínimo.
Zona de recuperación tranquila y en penumbra.
No repetir el manejo del animal en, al menos, 1
semana.
• No manejar hembras preñadas o lactantes.
• Aportar Selenio y complejo vit B.
ANESTESIA EN UNGULADOS
SALVAJES.
• La técnica de inmobilización mas frecuente es
mediante dardos.
• Se usan drogas potentes y de acción rápida.
• Importante conocer el tiempo del que
disponemos, cuando se trabaja en el campo.
ANESTESIA EN UNGULADOS
SALVAJES
Farmacos
Induccion(min)
Duracion(min)
Antagonistas
Opioides:
*Etorfina
*Fentanilo
*Carfentanil
2.0-12.0
3.0-5.0
2.0-10.0
360-480
60-120
360-600
Diprenorfina
Diprenorfina
Naltrexona
Ciclohexaminas
*Ketamina
*Zoletill®
2.0-5.0
1.5-4.0
45-120
180-300
Ninguno
Alpha-agonistas
*Xylacina
*Medetomidina
*Detomidina
10.0-15.0
2.0-8.0
2.0-10.0
120-240
120-240
120-360
Yohimbina
Atipamezol
Atipamezol
Fenotiacinas
*Acepromacina
10.0-20.0
240-480
Ninguno
Benzodiacepinas
*Diacepam
*Midazolan
*Zolazepam
1.0-2.0
1.0-2.0
(comb. con Tiletamina)
60-120
60-120
Flumazenil
Flumazenil
Flumazenil
Anestesia
en Aves
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Fisiología Sensorial / Comportamental
• Ya cazadores o presas…
– La mayor parte de la información que reciben es
VISUAL
• Eliminando su vista podemos controlar sin estresar
– El oído juega en un segundo plano
• En buena parte del manejo es fundamental reducir LA
VISION y EVITAR EL RUIDO
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Manejo
• En lo posible suave y sin excitación
• Evitar autolesiones
– Manejo especial
– Paños envolventes
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Fisiología Cardiovascular
• Frecuencia Cardiaca
– Entre 200-500 lpm. Colibríes 1000 lpm.
• Gasto Cardiaco
– Mayor que en mamíferos y dependiente de la
frecuencia Cardiaca
• Presión Arterial
– Control poco conocido.
– Presiones arteriales más altas, > 150 mmHg en
algunas especies
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Anatomía Respiratoria
• Glotis
– Ausencia de epiglotis, cuerdas vocales, cartílago tiroides
• Tráquea
– Anillos cerrados de diámetro variable cráneo-caudal (hasta 1/3).
– Diferentes morfologías (dobles, enrollamientos, divertículos)
• En Anestesia:
– Espacio muerto elevado (x 4,5 respecto a mamíferos)
– Emplear tubos endotraqueales sin balón y con tamaño acorde a la
porción caudal. No deben alcanzar la siringe
– Divertículos traqueales: Colocar vendajes en el cuello.
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Pulmón
Sacos Aéreos
Saco Aéreo Torácico Caudal
• Avasculares, No contribuyen al
intercambio gaseoso.
• Termo regulan y humidifican el
aire.
• Reducen y distribuyen el peso en
el vuelo
• Huesos neumatizados
Saco Aéreo Clavicular
Saco Aéreo Torácico Craneal
Saco Aéreo Abdominal
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Fisiología Respiratoria
• Frecuencia Respiratoria muy variable
– Avestruces (7rpm)  colibries (143 rpm)
• Volumen corriente ligeramente superior a los
mamíferos
• Intercambio gaseoso en parabronquios y capilares
aéreos
• Modelo doble ciclo respiratorio
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Ciclo respiratorio en las Aves
40
Fisiología Respiratoria
Inspiración y espiración son activas:
• No existe diafragma que separe cavidad abdominal
y torácica
• La musculatura respiratoria facilita el flujo de aire
desde los sacos aéreos
• Existe un flujo continuo de gas a través de los
capilares aéreos desde los sacos aéreos
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Implicaciones Anestésicas del
movimiento respiratorio
• Monitorización de la frecuencia respiratoria difícil
– Se observa el movimiento de la quilla o
capnografía
• La posiciones en decúbito dorsal (supino) dificulta la
ventilación:
– Pared abdominal no sigue al esternón.
– Vísceras abdominales bloquean ostium y comprimen sacos
aéreos caudales.
– Disminución volumen corriente y ventilación pulmonar.
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Eficiencia Respiratoria
El intercambio gaseoso de las aves es muy eficiente,
con una barrera de difusión muy delgada y extensa
y con un intercambio continuo en los
parabronquios y capilares alveolares
• Ello implica:
Posibles sobredosificaciones (grisú)
Recuperaciones prolongadas por el efecto acumulativo en los sacos
aéreos: el aire tarda más tiempo en renovarse.
La hipoxia/apneas no son bien toleradas en aves al ser el
metabolismo elevado
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Termorregulación
• Animales homeotermos
• Temperaturas varían entre 3842ºC. Hipotermia <38ºC.
• Piel sin glándulas sudoríparas,
eliminación calor por la erección
de las plumas
• La anestesia, especialmente los
agentes inhalatorios y la relajación
muscular provocan grandes
pérdidas de calor
EVITAR PÉRDIDAS y APLICAR CALOR
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Vías de administración
Vía venosa
v. cubital
v. metatarsiana
45
Farmacología aplicada en aves
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Parasimpaticolíticos
• No obligatorio su uso rutinario
• Utilizar cuando se presente un animal
con una historia previa de
bradiarritmia
• Atropina: 0,02-0,08 mg/kg IM
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Ketamina
•
•
•
•
Amplio margen de seguridad
Inducción rápida
Mantiene Frecuencia Cardiaca
Mantiene estabilidad ventilatoria
• Excitación en la recuperación
• Gran variabilidad de respuestas
individuales
• Utilización:
– Procedimientos cortos
– Cirugía menor
– Previo a anestesia general
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Ketamina + Xilacina
• Combinación común: 100-200 mg/kg (ket) + 20-40 mg/kg
(xil.)
• Buena relajación muscular y analgesia para la mayoría de
intervenciones.
• Inducción rápida y recuperación suave
• Por especies:
– Género Buteo responde muy mal.
– Falconiformes y psitácidas responden muy bien.
– Acuáticas y columbiformes presentan movimientos
espontáneos incluso a dosis muy altas.
• Ketamina + Medetomidina: 100-200 mg/kg + 0,1-0,2 mg/kg:
similar a la anterior
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Antagonización
• Fármacos:
• Yohimbina
• (ANTAGONIL®)
• 0.2 mg/kg) IV (0.5
mg/kg) IM.
• Atipamezol
• (ANTISEDAN®)
• 5x dosis de
medetomidina
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Tiletamina-Zolacepam
– Inducción es rápida y suave
– Recuperación es muy prolongada y esta
asociada a factores desfavorables como
temblores, excitación, aleteo.
• Podemos tener autolesiones
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Propofol
• Dosis: 20 mg/kg + 3mg/kg según demanda, IV
– Poco empleada en aves aunque con buenos resultados
– Gran incidencia de apneas:
• Depresión respiratoria aguda y apneas
documentadas en palomas (14 mg/kg).
• Utilizado en patos con pocas apneas.
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Analgesia
• Características Generales:
Información escasa y confusa
Distribución de los receptores:
• en cerebro de palomas:
– kappa 76%,
– mu 14%
Difícil reconocimiento del dolor en aves.
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Analgesia
• Monitorización del dolor mediante la
respuesta al estímulo nociceptivo en:
– Cabeza
– Cera del pico
– Articulaciones
– Cloaca
– Periostio
– Espacio Interdigital
– Almohadilla plantar
– Piel y vísceras
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Analgésicos
• Buprenorfina
– 0,01-0,03 mg/kg IM, IV, SC
– Seguro REDUCE LA la CAM
• Butorfanol
– 0,1-0,5 mg/kg, IM, IV, SC
• Muy utilizado en psitácidas
• Puede producir bradicardia, y
disminución de la ventilación
• Fentanilo: ¡ Sin acción analgésica !
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Anestésicos Locales y AINEs
• Anestésicos Locales
– Uso limitado en aves
– Tópicamente para tratar heridas:
benzocaina y bupivacaina
– Toxicidad: adecuar las diluciones
• Bupivacaina 0,5% (5 mg/ml):
1 mg/kg
• Lidocaina 0,2% sin adrenalina
(2 mg/ml): Diluir
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Anestésicos Locales y AINEs
• AINEs
– Ketoprofeno 5 mg/kg IM, en patos
– Meloxicam 0,2 mg/kg
– Carprofeno 1 mg/kg SC
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Anestesia Inhalatoria
• Características Generales:
– Muy sensibles a las sobredosis
– Inducción y recuperación más
breves
– Pueden producirse cambios
bruscos de plano
– Muy sensibles a hipoxia e
hipercapnia
– Decúbito dorsal interfiere
ventilación
– Potencian hipotermia y
deshidratación
– Huesos neumatizados
fracturados
– complican la anestesia
– No se produce colapso pulmonar
por cirugía torácica y abdominal
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Anestesia Inhalatoria
Isofluorano:
– Efectos similares a mamíferos
(Hipotensión)
– La potencia es también similar
(CAM)
– Mejor tolerado en aves que el
halotano
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CAM en aves
CAM para halotano, isoflurano y sevoflurano en aves
Halotano(%)
Isoflurano (%)
Sevoflurano (%)
Cacatúa
-
1,44
-
Gallina
0,85
-
2,21
Pato
1,05
1,32
-
Grulla
-
1,35
-
Perro
0,9
1.3
2,4
60
Mascarillas y Tubos
endotraqueales
Mascarillas
• Han de adaptarse al pico y sus
variaciones anatómicas
• Empleadas en la inducción y
mantenimiento de la anestesia
Tubo de sacos aéreos
61
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Ventilación Asistida
• Se suele emplear cuando la depresión
respiratoria de los anestésicos inhalatorios
es excesiva
– La presión pico aplicada se inferior a 15 cm H2O
– Vigilar el movimiento de la pared abdominal y de la
quilla para ajustar
– Frecuencia Respiratoria:
• Aves grandes: 8-25 resp/min
• Aves pequeñas: 30-40 resp/min.
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Recuperación
• Oxigenación
– Mantener oxigenado hasta que empiece a moverse, p.e.
la cabeza
• Extubación
– Evitar aspiración de secreciones pero no retrasar
• Evitar hipotermia
– Incubadora …
– Jaula acolchada, ambiente tranquilo, con calor
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Monitorización
Plano anestésico
•
Superficial: reflejos presentes, ausencia de movimientos
voluntarios
•
Medio: reflejo corneal (3er párpado) y podal presentes aunque
reducidos, parpebral ausente. Respiración lenta, regular y
profunda
•
Profundo: ausencia total de reflejos, Respiración lenta, irregular
y superficial. Puede aparecer apnea
Signos vitales
•
•
•
Frecuencia cardiaca, ECG
Frecuencia respiratoria, capnografía
Pulsioximetría
Soporte
•
•
Mantener caliente
Minimizar sangrado
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Cuidados postanestésicos
• Envolver al ave con una toalla para
prevenir traumatismos
• Analgesia:
– Vigilar signos de dolor
– Iniciar o mantener protocolos de
analgesia postoperatoria
• Mantener fluidoterapia
• Mantener temperatura
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Anestesia por Sacos Aéreos
•
Casi siempre requieren de Sedacion parenteral, o una
anestesia inhalatoria previa con mascarilla
•
Diagnósticas y Quirúrgicas
•
Endoscopia de vías aéreas
(laringe, tráquea y siringe).
Oftalmología.
Cirugía y exploración de la
cabeza, cuello, buche, esófago y
vías aéreas.
Obstrucción de vías aéreas:
semillas, granulomas fúngicos,
tumores, concreciones de células
epiteliales y mucus.
•
•
•
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