Fenología y variabilidad genética en mutantes de manzano cv. Golden delicious en la Sierra de Arteaga, Coahuila Phenology and genetic variability in mutants of apple cv. Golden Delicious in the Sierra of Arteaga, Coahuila Alfonso Reyes López1, Justo Pastor Luna Solano2, Victor Zamora Villa3, Rosalinda Mendoza Villarreal4, Alberto Flores Olivas5, Evangelina Rodríguez Solis6 Resumen Se evaluó fenológica y genéticamente a tres variedades de manzano, para conocer en cada una de ellas, aspectos relacionados a: fechas de floración y finalmente la determinación de las características genéticas en cada variedad para detectar parentesco entre ellas, a través del uso de la técnica del RAPDs. Para el análisis de la huella genética se realizó el aislamiento del ADN; se amplificó en el termociclador, para efectuar la reacción del PCR con los iniciadores para RAPDs: C01, C02, C11, C13, C15, C19, C20. Los patrones electroforéticos fueron codificados en matrices de 0 y 1, para realizar un análisis de conglomerados. Los tratamientos evaluados fueron: ‘Golden delicious’ o normal y los mutantes; ‘Vigas’ y ‘Brotador’, plantados en diversas localidades de la Sierra de Arteaga. Los datos obtenidos en cada tratamiento por localidad, fueron analizados mediante un diseño completamente al azar, los análisis de varianza (ANVA) demostraron diferencias significativas en cada una de las variables analizadas, los mutantes demostraron mas precocidad en la floración, el mutante ‘Vigas’ con 15 y el mutante ‘Brotador’ con 25 días antes que la ‘Golden delicious’ o normal, en el análisis de las huellas de ADN usando el tipo de marcador RAPDs, se demuestra que existe diversidad genética entre las variedades mutantes comparadas entre sí y estas con la ‘Golden delicious’ o normal. Palabras clave: Manzana, fenología, variabilidad genética, mutantes. Abstract Three apple tree varieties were phenologically and genetically evaluated in order to know in each of them, aspects related to: flowering date and finally the determination of the genetic characteristic in each variety to detect relationship among them using the RAPDs technic. For the analysis of genetic diversity the DNA isolation was made, the termociclator was used for amplification, to see the reaction of PCR with primers of RAPDs: C01, C02, C11, C13, C15, C19, and C20. The electrophoretic patterns were codified in numbers of 0 and 1, to realize conglomerate analysis. The evaluated treatments were, ‘Golden delicious’ or normal, mutants ‘Vigas’ and ‘Brotador’ planted in several locations of the forest of Arteaga. The data obtained in each sample was analyzed with a Randomly 1. 2, 6 3 4 5 Departamento de Horticultura. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro Departamento de Fitomejoramiento. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro Departamento de Ciencias Básicas. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro Departamento de Parasitología. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro 121 Complete Design to see which was the best. The variance analysis (ANVA) showed significant differences in each of the variables, the mutants showed more precocity in blooming in the mutant ‘Vigas’ 15 and the mutant ‘Brotador’ 25 days before the ‘Golden delicious’ or normal, in the analysis of DNA using RAPDs markers, it showed that there is genetic diversity among the mutant varieties, also in comparison with ‘Golden delicious’ or normal. Key words: Apple, phenology, genetic variability, mutants. Introducción En el estado de Coahuila, específicamente en la Sierra de Arteaga, se han presentado algunas mutaciones en el manzano de materiales medianamente adaptados, que han dado buenos resultados en cuanto a producción y calidad de frutos, teniendo como principal característica sus bajos requerimientos de frío. Dichos materiales se pueden explotar comercialmente, por que ofrecen ventajas comerciales, como cosecha precoz de frutos en cantidad y calidad disponibles para el mercado. Estos mutantes presentan la ventaja que son producidos y manejados por los productores, razón por la que se pueden implementar mayores áreas del cultivo, con el material disponible de estas variedades precoces. El uso de los mutantes ‘Vigas’ y ‘Brotador’ resuelve en gran parte el problema de la deficiencia de horas frío; como también el problema de las altas temperaturas que se presentan en la Sierra de Arteaga al momento de la floración y que ha afectado significativamente a las floraciones tardías. En años anteriores, ambos problemas han provocado baja brotación de flores y altos índices de aborto de frutos por lo que se ha perdido desde un 70 a un 80% de la producción potencial. Basados en la problemática existente en las huertas de los productores y para obtener información mas confiable, se procedió a identificar genéticamente a las variedades, por lo que se empleo la técnica de marcadores moleculares, y específicamente los RAPDs, (polimorfismos de ADN amplificados al azar) con el fin de obtener las disimilitudes genéticas existentes, entre las variedades mutantes (Vigas y Brotador) y el posible progenitor como lo es el ‘Golden delicious’ (normal) que se produce comúnmente en las huertas manzaneras de la Sierra de Arteaga, Coahuila. Metodología experimental Para efectos de la investigación se consideraron tres variedades de manzana ubicadas en tres localidades (San Antonio de las Alazanas, Jamé y El Tunal) de la Sierra de Arteaga, Saltillo, Coahuila, México. La edad de las plantas de las variedades evaluadas oscilan entre 8 y 30 años para el testigo o ‘Golden delicious’ (normal), los mutantes ‘Vigas’ y ‘Brotador’ con 5 años de plantados. La selección y etiquetado de los árboles se llevó a cabo en Octubre del año 2002, cuando las plantas se preparaban para la entrada al reposo. Los mutantes se evaluaron en dos etapas: a) Determinación de los requerimientos de frío para la salida del reposo y evaluación fenológica de las variedades, que comprendió desde la manifestación de la yema floral (botonación en punta plateada) hasta la cosecha. b) y la determinación de la variabilidad 122 genética por medio de marcadores moleculares del tipo RAPDs (amplificación al azar de ADN polimorfico). Cuadro 1. Descripción de los tratamientos por localidad. Trat Variedad 1 2 3 4 5 6 7 8 ‘Brotador’ 1 ‘Golden delicious’ 1 ‘Vigas’ 3 ‘Golden delicious’ 2 ‘Vigas’ 1 ‘Golden delicious’ 3 ‘Vigas’ 2 ‘Golden delicious’ 4 # localidad Nombre de la Localidad 1 1 2 2 3 3 4 4 San Antonio de las Alazanas San Antonio de las Alazanas San Antonio de las Alazanas San Antonio de las Alazanas Jamé Jamé El Tunal El Tunal Edad (año) 5 8 5 8 5 30 25 8 Trat = Tratamiento Las variables evaluadas fueron: Evaluación fenológica de campo Se efectuó, la observación y toma de datos de la aparición de las diversas etapas fenológicas, en campo, y se consideraron los tres estadios importantes de la floración. Punta plateada: Las yemas florales presentan color plata, el tejido foliar comienza a emerger en la punta de la yema. Punta verde: el tejido foliar verde es visible cerca de la punta de la yema. Punta rosada: Las puntas rojas de los pétalos son visibles. La toma de datos comenzó el día 6 de Marzo 2003, cuando las yemas presentaban el primer estadio de floración. Determinación de la variabilidad genética Extracción del ADN Se utilizaron 4 hojas medianas (renuevos) por variedad, se llevaron al ultracongelador (REVCO) a –80ºC, para evitar la degradación del ADN. Para la extracción del DNA, se utilizó el método descrito por (Dellaporta, et al., 1983). En éste, un gramo de tejido fresco se molió en nitrógeno líquido con un mortero y pistilo, hasta obtener un polvo fino; el polvo se agregó directamente a un tubo Sorvall conteniendo 10 ml de solución amortiguadora de extracción (Tris-HCl 100mM pH 8.0, EDTA 50mM, NaCl 500mM, 2-mercaptoetanol 10mM y SDS al 20%) y se colocó en un baño a 65ºC por 10 min. Posteriormente se agregaron 3.3 ml de acetato de potasio 5M, se mezcló suavemente por inversión y se incubó en hielo durante 40 min. Se centrífugo por 20 min a 18,000 rpm a 4ºC en una centrífuga Beckman J2-21 (Instruments, Inc. CA, USA) y el sobrenadante se vació en 10 ml de isopropanol preenfriado a través de un embudo con tela magitel. El tubo conteniendo el sobrenadante se dejó a –20ºC durante 30 a 60 min. La madeja de ADN se colectó con un gancho de vidrio y se colocó en 70 l de solución para diluir (Tris-HCl 50 mM a pH 8.0, EDTA 10mM). 123 Purificación del ADN Para determinar la variabilidad genética por medio de marcadores moleculares del tipo RAPDs, se usó el siguiente protocolo: Se tomaron 1.0 μl del ADN templado, 1 μl del oligonucleótido (Biomol, Monterrey, Mex), 5.0 μl de la mezcla 5x Taq - & - Go (Biogene, EE UU) que incluye a la enzima Taq polimerasa, los dNTPs (dinucleótidos) y el MgCl2 (cloruro de magnesio) la mezcla se diluyó al 1x. Se utilizó un gel de agarosa al 1.5%, en los corrimientos en la cámara horizontal, se usó una concentración de ADN de 10 ng/μl. Se usó el marcador de peso molecular, 100 BP LADDER, para 13 fragmentos desde 100 pb hasta 3000 pb. Los datos de cada localidad se analizaron mediante un diseño completamente al azar. Para el análisis conjunto de los datos se utilizó un análisis combinado sobre las localidades, con anidamiento de las variedades en las localidades. Las comparaciones de medias se realizaron con la metodología DMS. A partir del patrón de bandeo obtenido, de las variedades (tratamientos), se realizó un análisis multivariado de conglomerados, utilizando el índice de Jaccard, este índice da al valor 1 mas importancia que al valor 0, la tabla de contingencia, con ayuda, del algoritmo de Jaccard, es transformada en una matriz de distancias genéticas entre pares de muestras. Obtenida la matriz de distancias genéticas, con el índice de Jaccard, se construye un dendograma utilizando el análisis de agrupamiento con el método AGNES (Agglomerative Nesting) que utiliza el algoritmo aglomerativo llamado Método de promedios no ponderados de pares de grupos (UPGMA), lo cual fue realizado utilizando el programa estadístico SPLUS. Resultados y discusión Resultados del análisis estadístico indicaron diferencias altamente significativas. De manera general los 3 estadios de floración, en punta plateada, en punta verde y en punta rosada, se sucedieron en las fechas comprendidas entre el 6, 15, 21, 31 de Marzo, y 6 de Abril del año 2003, a diferencia del mutante ‘Brotador’ cuya botonación en punta plateada ocurrió a finales de Febrero. El fenómeno de yema en punta plateada para los mutantes ‘Vigas’ ocurrió el 6 de Marzo del 2003, en punta verde el 15, en punta rosada el 21 y el final de plena floración el 30 del mismo mes. Para el mutante ‘Brotador’ el fenómeno punta plateada ocurrió a finales de febrero 2003, ya que esta variedad precoz mostró las yemas florales en punta rosada el 6 de Marzo 2003 y el final de plena floración el día 15 del mismo mes. Para la ‘Golden delicious’ o normal el 40% de yemas florales en punta plateada se sucedieron para el 6 de Marzo 2003, en punta verde el 21 y en punta rosada el 30 del mismo mes, para mostrar el final de plena floración el día 15 de Abril 2003. Es decir para las tres variedades, los rangos aproximados en las ocurrencias de esos fenómenos, fue:15 días para el mutante ‘Brotador’, 25 días para el mutante ‘Vigas’ y 35 días para el ‘Golden delicious’. El final de plena floración se determinó, cuando el 75% de las flores presentes en las ramillas por árbol, estuvieron abiertas. 124 Determinación de la variabilidad genética La diversidad genética estimada mediante los patrones electroforéticos (Figura 1), reportó que existen diferencias entre los materiales evaluados. Figura 1. Gel de agarosa con fragmentos amplificados por PCR, utilizando como DNA templado, variedades de manzano de cuatro localidades. En la Figura 1, podemos notar polimorfismos de ADN entre los cultivares. T1 mutante ‘Brotador’, T2 ‘Golden delicious’ 1, T3 mutante ‘Vigas’ 3, T4 ‘Golden delicious’ 2, T5 mutante‘Vigas’ 1, T6 ‘Golden delicious’ 3, T7 mutante ‘Vigas’ 2, T8 ‘Golden delicious’ 4. La huella de ADN del ‘Golden delicious’ y mutantes, representadas en la Figura 1, muestra en la amplificación del ADN que existen bandas polimorficas con el primer C 13. Es importante mencionar que los mutantes son híbridos, producto de la cruza con patrones MM106 y MM111, ambos por yemas de árboles mutantes o precoces de ‘Golden delicious’. Sin embargo la banda de 900 pares de bases (pb), esta presente en los mutantes y en el tratamiento 6, lo que indica que son descendientes de este último como progenitor común. Por otra parte la banda de 1200 pb esta presente en los tratamientos T1, T2, T3 Y T5, y ausente en los tratamientos T6, T7 y T8, los primeros ubicados dentro de la misma localidad y con las mismas condiciones de manejo, correspondiendo a los mutantes ‘Brotador’, ‘Vigas’ y ‘Golden delicious’ 2. La disimilitud observada en el dendograma (Figura 2) fue 0.9. El tratamiento 6 o ‘Golden delicious’ (normal), ubicado en la localidad número tres, es el más diferente y posiblemente sea el único tratamiento ‘Golden delicious’ (normal), es la plantación con mayor edad con 30 años, y las dimensiones de los árboles superan 125 al resto de tratamientos, se le da poco manejo agronómico: como podas de formación, floración y fructificación se encuentra bastante aislada del resto de variedades cultivadas dentro de la localidad. Figura 2. Dendograma obtenido de la tabla de contingencia, en base a las bandas observadas en el gel electroforético de RAPDs. Conclusiones En todas las localidades evaluadas, se encontró que las variedades presentan una fenología diferente. Genéticamente se determinó mediante el uso del marcador de peso molecular RAPDs, que las muestras presentan polimorfismos, lográndose observar en el dendrograma la disimilaridad al establecer comparaciones entre ellas, lo que deja claro que pertenecen a diferentes variedades dentro de una misma especie. En cuanto a los fenómenos de floración los mutantes son más precoces que la ‘Golden delicious’, sin embargo en amarre de frutos y rendimiento a cosecha esta variedad fue superior. Se considera en la presente investigación que los mutantes; ‘Vigas’ y ‘Brotador’ son las variedades potenciales, para las futuras plantaciones de la manzana en Coahuila, así como en otros estados en donde se aclimaten. Recomendaciones 126 Los mutantes, son la alternativa de solución inmediata al problema de todos los años, como es la brotación tardía, que afecta generalmente a la ‘Golden delicious’ actualmente con mayores áreas plantadas y en etapas de producción. Literatura citada Aguilar, A. 2003. Evaluación de la diversidad genética en poblaciones de durazno Prunus persica L. Batsch, establecidos en el centro del país en base a marcadores de tipo RAPDs. Tesis de Licenciatura. Universidad Autónoma de Querétaro.Santiago de Querétaro. México. Pág. 34-48. Conner, J., Brown, K., and Weeden F. (1995). Examination of Apple (Malus x domestic). Fruit Quality and Tree and Fruit Morphology using Molecular Markers. HortScience, Vol. 30(4), July 1995 ref. 448. De la Loma, J. L. 1970. Historia, modalidades, importancia y utilización de las mutaciones. 1er. Simposio Mexicano sobre Mutaciones. Agrociencia, Chapingo. México. Pág. 6-16. Mendoza, V. R. 2003. Huella de ADN, Características Morfológicas y Viabilidad de Polen en Girasol Cultivado y Poblaciones Silvestres de Helianthus annuus y Tithonia tubaeformis. Tesis de Doctorado en Fitomejoramiento. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. Buenavista, Saltillo, Coahuila, México. Pág. 53-62 Williams, J. G. K., A. R. Kubelik, K. J. Livak and J. A. Rafalski. 1990. DNA Polimorphisms amplified as arbitrary primers are useful genetic markers. Nucleic Acids Res. 18: 6531 – 6535. 127