Tesis en arroz Guillermo Lupercio Briones Huacón.pdf

UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
TESIS DE GRADO
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERO
AGRÓNOMO
TEMA:
“CALIDAD DE SEMILLA DE ARROZ EN FUNCIÓN DE
LA INCIDENCIA Y SEVERIDAD DE ENFERMEDADES EN
LA ZONA DE DAULE”
POR:
GUILLERMO LUPERCIO BRIONES HUACÓN
DIRECTOR:
ING. AGR. MARÍA LETICIA VIVAS VIVAS, MSc.
DAULE - ECUADOR
2014
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
La presente tesis de grado titulada “CALIDAD DE SEMILLA DE
ARROZ EN FUNCIÓN DE LA INCIDENCIA Y SEVERIDAD DE
ENFERMEDADES EN LA ZONA DE DAULE” realizada por el Egdo.
Guillermo Lupercio Briones Huacón, bajo la dirección del Ing. Agr. Leticia
Vivas Vivas, MSc ha sido aprobada y aceptada con la calificación de 10,
10, 10 equivalente a Sobresaliente por el Tribunal de Sustentación como
requisito parcial para obtener el título de:
INGENIERO AGRÓNOMO
TRIBUNAL DE SUSTENTACIÓN
ii
Guayaquil 28 de Abril del 2014
CERTIFICADO GRAMÁTICO
ING. AGR. LETICIA VIVAS VIVAS, MSc. CON DOMICILIO EN LA
CIUDAD DE GUAYAQUIL, POR LA PRESENTE CERTIFICO QUE HE
REVISADO LA TESIS DE GRADO ELABORADA POR EL SEÑOR
GUILLERMO LUPERCIO BRIONES HUACÓN CON C.I.
0920496486, PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
INGENIERO AGRÓNOMO, CUYO TEMA ES: “CALIDAD DE LA
SEMILLA DE ARROZ EN FUNCIÓN DE LA INCIDENCIA Y
SEVERIDAD DE ENFERMEDADES EN LA ZONA DE DAULE”.
LA TESIS DE GRADO ARRIBA SEÑALADA HA SIDO ESCRITA DE
ACUERDO A LAS NORMAS GRAMATICALES Y DE SINTAXIS
VIGENTE DE LA LENGUA ESPAÑOLA.
iii
Las investigaciones, resultados, conclusiones y
recomendaciones del presente trabajo, son de
exclusiva responsabilidad del autor
Guillermo Lupercio Briones Huacón
C.I.: 0920496486
Email: [email protected]
iv
DEDICATORIA
Dedico la presente tesis a Dios, gracias a él he podido
ser cuanto soy, porque sin él no soy nada.
También dedico esta tesis a mis queridos padres Sr.
Guillermo Briones y Sra. Clarivel Huacón de Briones
gracias a sus esfuerzos y sacrificios, por haber
depositado su confianza e impartido sus sabios consejos
guiándome por los senderos de la vida.
A mi tía Grace Huacón Plúas que más que una tía es mi
segunda madre, gracias a sus consejos, comprensión y
su apoyo incondicional en cada instancia de mi vida.
A mis hermanos Dolores y Francisco por haberme
brindado todo su cariño y comprensión permaneciendo
conmigo en los buenos y malos momentos.
A mi novia Isabel Hidalgo por estar conmigo en todos
estos años de carrera universitaria, apoyándome para ser
mejor cada día, por ser mi amiga, mi compañera, por ser
tan incondicional y por su amor sin medida.
v
AGRADECIMIENTOS
A mis padres y hermanos.
A la Universidad de Guayaquil en especial a la Facultad de Ciencias Agrarias
Paralelo Daule, a todos los profesores que impartieron sus conocimientos y
experiencias durante el desarrollo de mi carrera universitaria.
Expreso también mi agradecimiento al Instituto Nacional Autónomo de
Investigaciones Agropecuarias, Estación Experimental Litoral Sur “Dr. Enrique
Ampuero Pareja”, laboratorio de Fitopatología del Departamento Nacional de
Protección Vegetal por haberme permitido realizar mi trabajo de tesis.
Con gratitud a mi tutora Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas, por su gran calidad
humana a quien le debo muchas horas de amable dedicación y paciencia.
De manera especial a la Ing. Agr. Elena Corozo Ayoví, por su ayuda y
conocimientos compartidos.
A todos mis amigos, compañeros y familiares que de muchas formas aportaron con un
grano de arena para que logre la culminación de este trabajo investigativo.
vi
REPOSITARIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS
TITULO Y SUBTITULO: CALIDAD DE SEMILLA DE ARROZ EN FUNCIÓN DE LA
INCIDENCIA Y SEVERIDAD DE ENFERMEDADES EN LA ZONA DE DAULE
AUTOR/ES:
Guillermo Lupercio Briones
Huacón
INSTITUCIÓN:
Universidad de Guayaquil
CARRERA: Agronomía
FECHA DE PUBLICACIÓN:
25-04-2014
ÁREAS TEMÁTICAS:
Cultivo, manejo, rendimiento.
TUTOR:
Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas
REVISORES:
Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas
Ing. Agr. MSc. Eison Valdiviezo Freire
Ing. Agr. Dds. Pedro Vera Asang
FACULTAD:
Ciencias Agrarias
N. DE PAGS: 51
PALABRAS CLAVE:
Semillas, microorganismos, reciclada, granos manchados.
RESUMEN:
Las enfermedades que afectan la calidad de la semilla de arroz son Pyricularia oryzae,
Alternaria spp, Bipolaris oryzae, Curvularia spp, Sarocladium oryzae, Ustilaginoidea virens,
Pseudomonas fuscovaginae y Fusarium spp.
Los objetivos de la presente investigación fueron: 1) Determinar la presencia de
microorganismos en las semillas de arroz certificada y reciclad y 2) Evaluar la incidencia y
severidad de enfermedades en semillas de arroz certificada y reciclada en condiciones de campo.
El trabajo se realizó durante la época seca del 2013 en la Hacienda Santa María, recinto
San Pedro, cantón Daule, provincia del Guayas. Se utilizó un diseño de bloques completamente
al azar (DBCA), con 3 tratamientos y 4 repeticiones. Los tratamientos fueron semillas de las
variedades SFL 11, INIAP 15 e INIAP 11(reciclada).
vii
Los microorganismos aislados en semillas de la variedad SFL 11 antes de la siembra fueron
Bipolaris oryzae, Curvularia sp., Rhizoctonia solani, Fusarium y Aspergillus flavus; en INIAP
15 el género Penicillium y en INIAP 11 A. flavus y Penicilium. Después de la cosecha los
hongos más incidentes fueron Curvularia sp., Nigrospora sp., Bipolaris oryzae Aspergillus
flavus, A. niger y Penicilium sp.
N. DE CLASIFICACIÓN:
DIRECCIÓN URL (tesis en la web):
ADJUNTO URL (tesis en la web):
ADJUNTO PDF:
CONTACTO CON AUTORES/ES:
CONTACTO EN LA
INSTITUCION: Ciudadela
Universitaria "Dr. Salvador Allende"
Av. Delta s/n y Av. Kennedy s/n
Teléfono: 593-42288040
SI
'
Teléfono:
042795539 0985484358
NO
E-mail:
[email protected]
Nombre: Ing. Agr. MSc. Leticia Vivas Vivas
Teléfono: 593-42288040
E-mail: [email protected]
viii
ÍNDICE GENERAL
Contenido
Pág.
Carátula
i
Página de aprobación
ii
Certificado gramático
iii
Responsabilidad del autor
iv
Dedicatoria
v
Agradecimiento
vi
Ficha de registro de tesis
vii
Índice General
ix
Índice de Cuadros
xi
Índice de Fotos
xii
Índice de Figuras
xiii
Índice de Anexos
xiv
Resumen
xv
Summary
xvi
I.
INTRODUCCIÓN
1
Objetivo general
2
Objetivos específicos
REVISIÓN DE LITERATURA
2
3
2.1
Enfermedades que se transmiten por semilla en el cultivo de arroz
3
2.1.1
Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoemaker
3
2.1.2
Sarocladium oryzae (Sawada)
3
2.1.3
2.1.4
2.1.5
2.1.6
2.1.7
2.1.8
Curvularia sp. Bugnicourt
Nigrospora spp.
Penicillium Link, 1809
Fusarium Link ex Grey, 1821
Pseudomonas fuscovaginae Tanii, et al. 1976
Ustilaginoidea virens (Cooke) Takah., (1896)
4
5
5
5
6
7
II.
2.2
Enfermedades que afectan la calidad de la semilla de arroz
8
2.2.1
Pyricularia grisea (Cooke) Sacc.
8
2.2.2
Alternaria padwickii (Gamguly) M.B. Ellis, (1971)
9
2.2.3
Rhizoctonia solani Kuhn
9
ix
2.3
III.
3.1
3.2
3.3
3.4
3.5
3.6
3.7
3.8
3.9
IV.
V.
VI.
VII.
2.2.4
El virus de la hoja blanca (VHB)
10
2.2.5
Entorchamiento del arroz
11
Requerimiento de la calidad de la semilla
12
MATERIALES Y MÉTODOS
15
Ubicación Geográfica
15
Condiciones climáticas
15
Factores estudiados
16
Materiales
16
Tratamientos
17
Diseño experimental
17
Delineamiento experimental
18
Variables registradas
18
Manejo del experimento
19
3.9.1 Fase de laboratorio
19
Aislamiento de microorganismos asociados a semillas de arroz
19
Porcentaje de germinación
20
3.9.2
Fase de campo
21
Practicas agronómicas o Labores culturales
21
Preparación del terreno
21
Semillero
21
Trasplante
21
Riego
21
Nutrición del cultivo
22
Control de malezas
22
Control de insectos plagas
22
Control de enfermedades
22
RESULTADOS
23
Presencia de microorganismos en la semilla de arroz
4.1
23
certificada y reciclada.
Incidencia y severidad de enfermedades en semilla de arroz
4.2
29
certificada y reciclada en condiciones de campo.
DISCUSIÓN
31
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
32
LITERATURA CITADA
33
ANEXOS
39
x
ÍNDICE DE CUADROS
Contenido
Pág.
Cuadro 1.
Porcentaje de germinación de semillas de arroz sin y con manchas
antes de la siembra Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
25
Cuadro 2.
Porcentaje de germinación de semillas de arroz después de la
siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
25
Cuadro 3.
Porcentaje de granos llenos y vanos, aparentemente sanos y
manchados después de la cosecha Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013.
26
Cuadro 4.
Porcentaje de humedad de la semilla después de la cosecha. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
27
Cuadro 5.
Rendimiento de arroz (kg / ha) en el estudio de calidad de la semilla.
Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
27
Cuadro 6.
Evaluaciones de enfermedades presentes en variedades certificadas y
recicladas en el campo Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule,
2013.
30
Cuadro 7.
Microorganismos presentes a los 120 días en variedades certificadas
y recicladas en el campo Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule,
2013.
30
xi
ÍNDICE DE FOTOS
Contenido
Pág.
Foto 1.
Metodología de siembra e identificación de patógenos: Semillas en
cámara húmeda (A), Presencia de patógenos en semillas (B),
Preparación de las muestras en el porta objeto (C), Identificación de
los microorganismos presentes (D).
19
Foto 2.
Microorganismos presentes en semillas de las variedades de arroz
SFL 11. INIAP 15, INIAP 11 (Reciclada) por repetición, incubados
en caja Petri.
20
Foto 3.
Metodología para determinar porcentaje de germinación de semillas
de arroz.
20
Foto 4.
Metodología de evaluación de la sanidad del cultivo en sus diferentes
estados de fenológicos.
21
Foto 5.
Metodología de prácticas agronómicas del cultivo de arroz:
Preparación del terreno (A), Semillero (B), Trasplante (C), Riego
(D), Control manual de malezas (E), Control fitosanitario (F).
22
Foto 6.
Microorganismos aislados de semillas de arroz: Curvularia sp. (A),
Nigrospora sp. (B), Rhizopus sp. (C), Aspergillus sp. (D), A. flavus
(E), A. niger (F).
28
xii
ÍNDICE DE FIGURAS
Contenido
Pág.
Figura 1.
Porcentaje de microorganismos asociados a semillas aparentemente
sanas de arroz antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San
Pedro, Daule, 2013.
23
Figura 2.
Porcentaje de microorganismos asociados a semillas manchadas de
arroz antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule,
2013.
24
Figura 3.
Porcentaje de microorganismos aislados en granos sin manchas
después de la cosecha Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule,
2013.
28
Figura 4.
Porcentaje de microorganismos aislados en granos manchados de
arroz después de la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013.
29
xiii
ÍNDICE DE ANEXOS
Contenido
Cuadro 1A.
Pág.
Porcentaje de microorganismos asociados de semillas de arroz sin
manchas antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013.
Porcentaje de microorganismos asociados de semillas de arroz
manchadas antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013.
Número de semillas de arroz sin manchas germinadas antes de la
siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013
Número semillas de arroz manchadas germinadas antes de la siembra.
Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
40
Cuadro 5A.
Número semillas de arroz germinadas después de la cosecha. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2014.
43
Cuadro 6A.
Número de semillas de arroz llenas sin manchas. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Número de semillas de arroz llenas manchadas. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Número de semillas de arroz vanos sin manchas. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Número de semillas de arroz vanos con manchas. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Porcentaje de humedad de la semilla después de la cosecha. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Rendimiento de arroz en kg/Ha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013.
Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin
manchas variedad SFL 11 después de la cosecha. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin
manchas variedad INIAP 15 después de la cosecha. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin
manchas variedad INIAP 11 (Reciclada) después de la cosecha. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz con
manchas después de la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule, 2013
Marbetes de semillas certificadas variedad SFL 11 e INIAP 15. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
44
Cuadro 2A.
Cuadro 3A.
Cuadro 4A.
Cuadro 7A.
Cuadro 8A.
Cuadro 9A.
Cuadro 10A.
Cuadro 11A.
Cuadro 12A.
Cuadro 13A.
Cuadro 14A.
Cuadro 15A.
Foto 1 A.
xiv
40
41
42
45
46
47
48
49
50
50
51
51
51
RESUMEN
En Ecuador el arroz es el primer componente de la canasta básica, el cual brinda
fuente de calorías y genera trabajo para el sector rural, con una producción de 1’565535
Tm en el 2012. Los problemas fitosanitarios no se alejan del cultivo de arroz, las
enfermedades que afectan la calidad de la semilla son Pyricularia oryzae, Alternaria
spp, Bipolaris oryzae, Curvularia spp, Sarocladium oryzae, Ustilaginoidea virens,
Pseudomonas fuscovaginae, Fusarium spp.
La utilización de semillas recicladas conlleva a una mayor presencia de problemas
fitosanitarios. Por ello, es necesario realizar un análisis a la semilla reciclada y
certificada para conocer que microorganismos que están y su implicación en la
incidencia de enfermedades. Los objetivos específicos fueron: 1) Determinar la
presencia de microorganismos en las semillas de arroz certificada y reciclad y 2) Evaluar
la incidencia y severidad de enfermedades en semillas de arroz certificada y reciclada en
condiciones de campo.
El presente trabajo de investigación se realizó durante la época seca del 2013 en la
Hacienda Santa María, ubicada en el recinto San Pedro, cantón Daule, provincia del
Guayas. Para el ensayo de campo se utilizó un diseño de bloques completamente al azar
(DBCA), con 3 tratamientos y 4 repeticiones. En laboratorio se usó un diseño
completamente al azar (DCA), con 100 unidades experimentales (semillas) por
tratamiento y 5 repeticiones. Los tratamientos fueron el uso de dos semillas certificadas
SFL 11 y INIAP 15; y el uso de una semilla reciclada INIAP 11.
Los microorganismos aislados en semillas de la variedad SFL 11 antes de la
siembra fueron Bipolaris oryzae, Curvularia sp., Rhizoctonia solani, Fusarium y
Aspergillus flavus; en INIAP 15 el género Penicillium y en las semillas INIAP 11
(Reciclada) A. flavus y Penicilium. Después de la cosecha los hongos más incidentes
fueron Curvularia sp., Nigrospora sp., Bipolaris oryzae Aspergillus flavus, A. niger y
Penicilium sp.
No se observó síntomas de enfermedades foliares durante el trabajo de campo.
xv
SUMMARY
In Ecuador rice is the first component of the basket, which provides a source of
calories and creates jobs for the rural sector, with a Tm 1'565535 production in 2012.
Phytosanitary problems do not depart from rice cultivation, diseases affecting the seed
quality are Pyricularia oryzae, Alternaria spp, Bipolaris oryzae, Curvularia spp,
Sarocladium oryzae, Ustilaginoidea virens, fuscovaginae Pseudomonas, Fusarium spp.
The use of recycled seeds leads to an increased presence of plant health problems.
Therefore, it is necessary to analyze the recycled seed and certified for that
microorganisms are and their involvement in disease incidence. The specific objectives
were: 1) Determine the presence of microorganisms in certified rice seeds and Recycler
and 2) Evaluate the incidence and severity of diseases in rice seed certified and recycled
under field conditions.
This research was conducted during the dry season of 2013 at Santa Maria, located
in San Pedro, canton Daule, Guayas province. For the field trial design of a randomized
complete block (RCBD) with 3 treatments and 4 replications was used. In laboratory
used a completely randomized design (CRD) with 100 experimental units (seeds) and 5
replicates per treatment. Treatments were using two certified seed lNlAP SFL 11 and 15;
and the use of recycled seed lNlAP 11.
Microorganisms isolated from seeds of the variety SFL 11 before sowing were
Bipolaris oryzae, Curvularia sp, Rhizoctonia solani, Fusarium and Aspergillus flavus; in
Penicillium spp. lNlAP 15 and seeds lNlAP 11 (Recycled) A. flavus and Penicillium.
After harvest the fungi were more incidents Curvularia sp., Nigrospora sp. Bipolaris
oryzae Aspergillus flavus, A. niger and Penicillium sp.
No
symptoms
of
foliar
diseases
xvi
were
observed
during
fieldwork.
I.
INTRODUCCIÓN
El Arroz (Oryza sativa L), es la gramínea de mayor consumo a nivel mundial con
una superficie de siembra de 165.1 millones de hectáreas (FAO, 2012), En Ecuador es
el primer componente de la canasta básica, el cual brinda fuente de calorías y genera
trabajo para el sector rural, con una producción de 1’565535 Tm en el 2012 (INEC,
2012).
En el país la superficie sembrada en el 2012 fue 411.459 Has, distribuida la
mayor área prácticamente en dos provincias, Guayas dedica el 62.53 %, Los Ríos el
30.69 %, el 6.78 % restante es cultivada en otras provincias del Litoral, Sierra (Loja,
Cañar, Cotopaxi, Bolívar) y Amazonia (INEC, 2012).
Los problemas fitosanitarios no se alejan del cultivo de arroz, a nivel mundial es
afectado por más de 70 enfermedades provocadas por hongos, bacterias, virus, y
nematodos, de las cuales se estima alrededor de una docena limitan la producción en
Latino América. En el país las enfermedades que afectan la calidad de la semilla en el
campo son Pyricularia oryzae, Alternaria spp, Bipolaris oryzae, Curvularia spp,
Sarocladium oryzae, Ustilaginoidea virens, Pseudomonas fuscovaginae, Fusarium spp,
durante el almacenaje también se presentan diferentes microorganismos como
Aspergillus, Penicillium, Mucor, Rhizopus (Espinoza y Vivas, 2007).
El Programa de Arroz del INIAP ha liberado 13 variedades las mismas que fueron
evaluadas en varias localidades, mismas demostraron potencial de rendimiento y
tolerante a los principales insectos plagas y enfermedades.
Por su parte, PRONACA también ha lanzado dos variedades con características de
rendimiento, calidad de grano y culinaria; sin embargo, el ingreso de “semilla” desde
países vecinos ha traído consigo nuevas patologías a este cultivo (Benítez, 2012).
La utilización por parte del agricultor de semillas que no posee las características
varietales de una semilla certificada, conlleva a una mayor presencia de problemas
fitosanitarios, que aumentan el costo de producción y disminuyen el rendimiento. Por
ello es necesario realizar un análisis a la semilla reciclada y certificada para conocer sus
microorganismos y su implicación en la incidencia de enfermedades, de allí la
importancia de la producción de semillas de alta calidad en el país, permite incrementar
los rendimientos por unidad de superficie.
Por lo anteriormente expuesto se realizó esta investigación para cumplir con los
siguientes objetivos:
Objetivo general
 Determinar la calidad de la semilla sobre la presencia de enfermedades en el
cultivo de arroz.
Objetivos específicos
1. Determinar la presencia de microorganismos en las semillas de arroz
certificada y reciclada.
2. Evaluar la incidencia y severidad de enfermedades en semillas de arroz
certificada y reciclada en condiciones de campo.
2
II. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1
Enfermedades que se transmiten por semillas en el cultivo de arroz
2.1.1
Bipolaris oryzae (Breda de Haan) Shoemaker
Considerada en segundo lugar de importancia económica entre las
enfermedades que afectan al cultivo de arroz, B. oryzae se aloja principalmente
en las glumas, pero se encuentra en todos los componentes de la semilla de arroz;
la sobrevivencia del hongo en las semillas de arroz depende de la temperatura al
momento del almacenaje siendo 3 C la menos favorable para la sobrevivencia
del hongo (Ojeda y Subero, 2004).
Cueva (sf) describe que B. oryzae afecta a los tallos, hojas y semillas, se
presentan manchas pardas que se tornan color café al extenderse, las lesiones
tienen forma ovalada y circular con un halo externo de color amarillo. Sus
estructuras de reproducción pueden ser alargadas, cilíndricas, oscuras y curvas.
Pruebas de patogenicidad realizadas en plantas de arroz de
21 días,
mostraron síntomas de la enfermedad a los 5 y 7 días después de la inoculación y
pudieron ser reaisladas de los tejidos enfermos, comprobándose así la capacidad
patogénica de este hongo (Cardona y González, 2008).
Ojeda y Subero (2004) mencionan que existe una correlación altamente
positiva entre el grado de manchado de la semilla de arroz y la transmisión del
hongo B. oryzae a las plántulas, es decir, que a mayor grado de manchado de la
semilla, mayor porcentaje de transmisión del hongo a la planta.
2.1.2
Sarocladium oryzae (Sawada)
Espinoza (2007) manifiesta que S. oryzae posee una gran viabilidad
fisiológica y patogénica. La alta humedad favorece se presencia en el campo,
3
formando una capa blanca de micelio y conidios entre la vaina infectada y el
tallo. Puede sobrevivir en los residuos de la cosecha y ser transmitido por
semillas lo que constituye una de las fuentes de inóculo primario en la plantación
y punto de partida para que los conidios se diseminen por diferentes vías.
Los síntomas que presenta la enfermedad son lesiones oblongas y alargadas
con borde café y centro grisáceo que aparecen en las vainas superiores y de la
hoja bandera, conforme progresa la enfermedad las lesiones se alargan y
coalescen. El ataque severo del patógeno en edades tempranas no permite que la
panícula emerja completamente y en algunas ocasiones se pudra; si las panículas
logran emerger presentan flores curvas y de color café oscuro. También puede
causar esterilidad y el vaneamiento de los granos (Meneses et al, 2008).
2.1.3
Curvularia sp. Bugnicourt
Gutierrez y Mazzanti (2001), mencionan a C. oryzae como parte de los
patógenos asociados al manchado del grano y su relevancia en la transmisión por
medio de la semilla.
Estrada y Sandoval (2004), indican que los síntomas en las hojas se
presentan con manchas puntiformes y ojivales, pardo-rojizas con halos
amarillento alrededor que pueden unirse y secar gran parte de la hoja.
Las especies de Curvularia provocan marchitez del semillero, coloración
negruzca del grano, marchitez de la panícula y manchado del grano Nenínger et
al (2003)
Esta enfermedad se manifiesta con manchas amarillas a marrón en el ápice
de la hoja y deformidad en la semilla; la incidencia que puede presentar en
semilla certificada es de 1,81% y 22,88% en las plantas (Pineda et al, 2007).
Estudios realizados por Nenínger et al (2003), indican los mayores niveles de
incidencia en semillas de arroz al presentar el 61%.
4
2.1.4
Nigrospora spp.
Este género desarrolla conidios unicelulares, castaños, de forma globosa o
subglobosa, sobre conidióforos simple cortos, oscuros y algo ensanchados, con
micelio aéreo de crecimiento radial, blanquecino a grisáceo (Batalla, 2014).
Las especies de Nigrospora causan infecciones en láminas foliares y
granos, presentando manchas necróticas puntuales que miden alrededor de 3 mm
y son de color café rojiza, en el caso que se forme una necrosis generalizada, la
forma angular en el extremo apical del grano ocupa entre ½ y 1/3 de la longitud
(Marín y Jiménez, 1981)
Pineda et al, (2007), indican que en algunos casos este patógeno muestra
un escaldado de color marrón desde el ápice foliar, pueden presentar incidencia
en las plantas en un 3.88 % y en semillas certificadas en un 0,39%.
2.1.5
Penicillium Link, 1809
Este género incluye más de 300 especies, puede encontrarse en casi todas
partes, siendo el género de hongos más abundante en suelos. Son de fácil
proliferación, sobre todo en los alimentos, algunas especies producen toxinas
perjudiciales para los seres humanos (Wikipedia, 2014).
Jurado (1982), considera a Penicillium sp como hongos de almacén el cual
presenta una mayor incidencia, si mayor es el tiempo de almacenaje.
Arias (1996), destaca a P. sp como un excelente controlador biológico del
chinche Tibraca limbativentris en el cultivo de arroz.
2.1.6
Fusarium sp. Link ex Grey 1821
Este organismo es patógeno de la semilla y puede causar oscurecimiento y
manchado del grano de arroz, mermando la germinación y provocar la muerte
post emergencia (Nenínger et al, 2003).
5
Rivera y Gómez (2012), indican la patogenicidad de Fusarium después de
10 a 15 días de la inoculación, causa marchitez y amarillamiento de las hojas,
además, manchado de la panícula, la cual está asociada al oscurecimiento y
manchado de los granos.
En infecciones severas puede causar hasta el 90% de pérdidas en la cosecha
(Marín y Jiménez, 1981).
2.1.7
Pseudomonas fuscovaginae Tanii, et al. 1976
Armijos (2007), menciona que en el año 1987 la presencia del manchado
del grano en Ecuador fue reportada como una nueva enfermedad, la cual es
causada por una bacteria P. fuscovaginae.
Los síntomas pueden observarse a las 48 horas después de la emergencia de
la espiga. Las glumas son las primeras en afectarse, a los 7 días de la emergencia
de la enfermedad de la panícula, luego se extiende hasta las glumas más
inferiores. La mancha inicial es irregular de color pardo claro, casi imperceptible,
al desarrollarse se torna pardo oscuro cubriendo en algunos casos toda la
superficie. El deterioro de la semilla es evidente, tanto en su aspecto interno y
externo originando pérdidas en la calidad de la semilla (Armijos, 2007).
En base a los registros de Agrocalidad (2013), uno de los requisitos
fitosanitarios para la importación de semillas de arroz provenientes de Brasil es
que el producto se encuentre libre de varios patógenos entre ellos P.
fuscovaginae.
La alta humedad con periodos prolongados de lluvia son importantes en el
desarrollo de la enfermedad. Desde el inicio de la floración P. fuscovaginae se
aloja en las anteras y ovario, invadiendo todos los tejidos de la semilla; lo cual
provoca su
diseminación, el patógeno se transmite hasta por semillas
6
aparentemente sanas, encontrándose la bacteria infestando
semillas
no
manchadas (Armijos, 2007).
2.1.8
Ustilaginoidea virens (Cooke) Takah., (1896)
Este patógeno es de poca importancia, adquiere relevancia cuando afecta las
plantaciones de arroz destinadas a la producción de semilla certificada, ya que de
acuerdo con el reglamento vigente para certificación de semillas no se pueden
utilizar para este fin lotes que contengan más del 0.1 % de enfermedades
transmisibles por semillas (Espinoza, 2007).
Según los registros de Agrocalidad (2013), uno de los requisitos
fitosanitarios para la importación de semillas de arroz provenientes de Colombia
es que el producto se encuentre libre de U. virens.
Cova et al, (2007) mencionan que esta enfermedad se puede presentar en
las últimas etapas del cultivo en áreas con alta humedad relativa. No obstante, la
infección puede suceder antes y después de la formación del grano. Un factor
favorable para la presencia de U. virens es el exceso de fertilización nitrogenada.
De acuerdo a Espinoza (2007), en el estado temprano de la floración el
hongo puede invadir el ovario o granos maduros. Los conidios, secundarios y las
ascosporas son capaces de provocar infección. El hongo sobrevive como
esclerocio contenido en la cápsula globosa. Los conidios pueden sobrevivir en
condiciones de campo por más de cuatro meses.
Se pueden observar los síntomas cuando el endospermo de la semilla es
reemplazado por una cápsula globosa aterciopelada con más de 1 cm de
diámetro, la misma que crece hacia afuera entre las glumas. Sólo unos pocos
granos de la panícula son afectados, pero se ha reportado que los granos
adyacentes se producen estériles (Espinoza, 2007).
7
2.2
Enfermedades que afectan la calidad de la semilla de arroz
2.2.1
Pyricularia grisea (Cooke) Sacc.
Conocida como añublo o quemazón es una de las enfermedades más
importantes en nuestro país y a nivel mundial, las pérdidas varían de acuerdo a
las condiciones ambientales que favorecen el desarrollo del hongo; las
variedades susceptibles y la excesiva fertilización nitrogenada ocasionan la
pérdida parcial o total del cultivo (Armijos, 2007).
Carreres (2005) manifiesta que la primera infección comienza en una espora
invernante que puede ser diseminada por el agua o viento hasta unos 35 Km de
distancia y 25 m de altura hasta llegar a una planta. Cuando germina la espora se
desarrolla una mancha, la mayoría de las esporas se concentran a menos de un
metro. Una mancha típica de Pyricularia llega a producir por día entre 2000 a
6000 esporas, durante unos 10 días, y pueden causar una severa infestación.
Los ataques críticos ocurren en plántulas y en el periodo de floración; los
síntomas se presentan con lesiones foliares típicas, son alargadas con extremos
puntiagudos, de bordes marrón - rojizo y centros grisáceos. Cuando estas
manchas coalescen producen secamiento parcial o total de la lámina foliar
(Rodriguez y Nass, 1991).
Se detecta con facilidad cuando la enfermedad incide en el cuello de la
panícula, esta presenta lesiones de color pardo rojizo alrededor de la base,
provocando un debilitamiento de los tejidos y la caída de la panícula por la
pudrición y rotura de su base lo que desencadena reducciones en la cosecha. Los
ataques tempranos, antes de emerger la panícula, originan granos vanos; mientras
que los tardíos, los producen livianos y lechosos (Armijos, 2007).
8
2.2.2
Alternaria padwickii (Gamguly) M.B. Ellis, (1971)
Lovato y Gutiérrez (2012) indican que Alternaria padwickii es el principal
patógeno asociado a las semillas de arroz cuando hay una disminución en el
crecimiento y vigor de las plántulas.
En el campo se puede presentar con una alta incidencia de manchas foliares,
este hongo causa reducción de los rendimientos del cultivo de arroz por el
manchado de los granos (Méndez y Reyes, 2009).
Rivero et al (2012) mencionan que A. padwickii produce manchas de color
pardo oscuro a negros en las glumas, fundamentalmente hacia los extremos del
grano. Cuando crece abundante micelio y se produce conidióforos y conidios,
estas manchas de tornan posteriormente grisáceas o blanquecinas, en algunos
casos pueden delimitarse con un borde pardo oscuro. Al invadir el grano el
patógeno penetra el endospermo y produce un manchado negruzco en los bordes.
Los síntomas pueden extenderse hasta la mitad de la longitud del grano,
resecándolo y haciéndolo quebradizo.
A. padwickii puede estar presente en semillas enteras, preferentemente en
el endospermo, la palea y en la lema (Lovato, Gutiérrez y Carmona, 2011).
2.2.3
Rhizoctonia solani Kuhn
Según Espinoza, 2007 el tizón de la vaina cuyo agente causal es
Rhizoctonia solani forma esclerocios en las lesiones, que son estructuras de
resistencia, al inicio son blanco y luego se tornan café oscuro, estas lesiones se
desprenden, flotan en el agua, germinan y al ponerse en contacto con la planta
penetran e inicia el desarrollo de la enfermedad.
9
Las pocas horas de luz y la alta humedad relativa, son los factores que
condicionan la presencia de R. solani. Las lesiones de esta enfermedad se inician
cerca del nivel de la lámina de agua, luego se desarrolla hacia arriba y a los lados
de los macollos, la vaina afectada se debilita y posteriormente se produce el
acame, esto aumenta el número de granos estériles y disminuye el peso
(Espinoza, 2007).
2.2.4.
El virus de la hoja blanca (VHB)
Esta enfermedad se ha encontrado en todas las zonas arroceras de nuestro
país, en algunos años su alta incidencia ha ocasionado graves pérdidas en los
rendimientos o la eliminación comercial de la variedad (Armijos, 2007)
Vivas y Astudillo (2008), menciona que el VHB es transmitido por el
insecto Tagosodes oryzicolus, el cual produce dos daños en el cultivo arroz,
directo por las incisiones que hace en las hojas al alimentarse y ovipositar; y el
daño indirecto al inocular el virus de la hoja blanca. La enfermedad no se
transmite mecánicamente ni por semilla (Calvert, 1999).
Observar en las hojas rayas o bandas longitudinales blancas, paralelas a la
nervadura es el síntoma más característico de la enfermedad (Armijos, 2007). La
panícula sufre deformación y la distorsión en espiral del eje; las espiguillas
sufren manchas y vaneamiento, estos síntomas se presentan en infecciones
tardías (Vivas y Astudillo, 2008).
Según Armijos (2007), otro síntoma distintivo se observa en las glumas,
que presentan una decoloración pardusca y repentino secamiento, a menudo
tienen un desarrollo muy anormal. La severidad de los síntomas depende de la
edad de la planta en que se produce la infección, lo cual afecta los rendimientos.
10
Reyes (1999), indica que cuando las plantas son infectadas en edad
temprana presentan enanismo, necrosis y hasta la muerte; si la infección es tardía
puede afectar las panículas, reducir la calidad y el número de granos.
2.2.5. Entorchamiento del arroz
Identificada en Ecuador en el 2003, la enfermedad viral conocida como
entorchamiento, ingreso al país desde Colombia, en granos y semilla de
variedades de arroz introducidas ilegalmente para siembras comerciales (Paz,
2007).
Aristizabal et al, (1999) determinaron que el hongo del género Polymyxa
graminis es el agente transmisor del virus de la necrosis rayada del arroz (RSNV)
este patógeno puede sobrevivir en el suelo por largos periodos de tiempo a través
de estructuras denominadas cistosoros, los cuales dan origen a zoosporas móviles
que transportan el RSNV de plantas enfermas a plantas sanas de arroz y a
algunas malezas. Esta enfermedad se inicia cuando las semillas cuando las
semillas y plántulas de arroz se siembran en un campo infestado con cistosoros
con presencia de RSNV (Paz, Espinoza y Yasuji, 2011).
La sintomatología que presenta esta enfermedad se puede observar en
condiciones de invernadero y en el campo 30 días después de la siembra. Las
plantas afectadas manifiestan un secamiento
que comienza en el ápice
extendiéndose a toda la planta causando la muerte (Paz, 2007).
Según (Paz 2007), P. graminis se encuentra en el sistema radical de las
plantas de arroz y otras especies, catalogándose como parásito biotrofo obligado.
El uso de semillas procedentes de campos de arroz con problemas de
“entorchamiento” constituye un riesgo de infestación en su cubierta con
partículas de suelo que lleven cistosoros portadores del RSNV.
11
2.3
Requerimiento de la calidad de la semilla
MAG (1978), MINISTERIO DE AGRICULTURA Y GANADERIA,
señala en el Reglamento General de la ley de semillas vigente desde 1978 en el
CAPITULO X DE LAS NORMAS DE CALIDAD describe lo siguiente:
Art. 42. Toda semilla que se expenda en el territorio nacional deberá
cumplir las normas específicas mínimas de calidad que se establecen en este
capítulo.
Referente a las ESPECIES DE MALEZAS estipula:
Art. 43. Para efecto de determinar los niveles permisibles de malezas en el
campo y la tolerancia de su semilla, por kilogramo de material analizado, se
consideran malezas nocivas y altamente nocivas, de acuerdo con su agresividad,
difícil control en el campo, vehículo de diseminación de plagas y enfermedades y
eliminación por el procesamiento.
Referente a las SEMILLAS CERTIFICADAS hay consideraciones
generales y específicas detalladas desde el artículo 45 hasta el 51, especificando
en este último varios factores de campo para determinar la sanidad de la semilla.
12
FACTORES
Aislamiento (metros)
BÀSICA
REGISTRADA
CERTIFICADA
5
5
5
Enfermedades
(%inflorescencias)
Ustilago nuda
0.0
0.1
0.5
Ustilago Hordei
0.0
0.1
0.5
0
0
Claviceps purpurea
0
Al momento de la fiscalización, el campo de
Malezas nocivas
Multiplicación no debe contener en total más de
250 plantas por hectárea.
Malezas altamente nocivas
0
20
40
1:2.500
1:1.500
1.500
1:5.000
1:3.000
1:1.000
(Pl/ha.)
Otras variedades
(inflorescencias)
Otros cultivos
(inflorescencias)
Germinación (% mínimo)
85
85
85
Semilla pura (% mínimo)
97
97
97
2
2
2
2
4
8
1
2
3
0
1
2
2
4
8
2
10
20
14
14
14
Materia inerte (% máximo)
Malezas comunes
(sem./kg.máx.)
Malezas nocivas
(sem./kg.máx.)
Malezas altamente nocivas
(sem./kg.máx.)
Otros cultivos (sem./kg.máx.)
Otras variedades
(sem./kg.máx.)
Humedad (% máximo)
13
Quiroz (s.f) destaca el trabajo de INIAP al satisfacer la demanda de los
productores, industrias y consumidores ha obtenido 10 variedades de arroz con
rendimientos superiores, óptima calidad de grano, resistencia o tolerancia a
enfermedades e insectos plagas, alta calidad culinaria y precocidad de su ciclo de
vida.
La variedad de arroz INIAP 11 es considerada una alternativa en
condiciones de riego, con un ciclo vegetativo de 97 a 110 días puede producir de
60 a 75 sacas/ha, otras característica de esta variedad son sus granos largos, una
latencia de 4 a 6 semanas
y en la parte fitosanitaria es moderadamente
susceptible a Pyricularia oryzae, resistente al virus de la hoja blanca VHB y
moderadamente resistente al manchado de grano (Andrade, s.f).
Andrade, Celi y Hurtado (2006) describen a INIAP 15 como una variedad
de arroz de alto rendimiento y calidad de grano superior, tiene un ciclo
vegetativo de 117 a 128 días, con un rendimiento de 64 a 91 sacas/ha, granos de
7,5 mm de longitud, latencia de 4 a 6 semanas, es resistente a la presencia de
Pyricularia grisea y moderadamente resistente al VHB. Esta semilla certificada
tiene un porcentaje mínimo de germinación del 80% (Marbete INIAP 15).
Los requerimientos que cumple la semilla SFL 11 es 97% de pureza
mínima y porcentaje mínimo de germinación del 80% (Marbete SFL11).
14
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1
Ubicación geográfica
El presente trabajo de investigación se realizó durante la época seca del 2013 en la
Hacienda Santa María, ubicada en las coordenadas S 01° 51' 58,79"W, 79° 58' 55,16"
longitud occidental en el recinto San Pedro, cantón Daule, provincia del Guayas y en el
Laboratorio de Fitopatología del
Departamento Nacional de Protección Vegetal,
Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Estación
Experimental del Litoral Sur “Dr. Enrique Ampuero Pareja”, está ubicada entre las
coordenadas geográficas 2º 15’ 15’’ latitud Sur y 79º 3 ’ 4 ’’ de longitud Occidental, en
el km 26 al este de Guayaquil en la vía Durán – Tambo, parroquia Virgen de Fátima,
cantón Yaguachi, provincia del Guayas.
3.2
Condiciones climáticas
El lugar donde se realizó la investigación, según la clasificación ecológica de
Holdrige1/, pertenecen al bosque tropical seco y de acuerdo a la posición geográfica
posee las siguientes características climáticas:
Altura:
Temperatura promedio:
Estación Experimental del
Litoral Sur2/
17 msnm
24 a 26.7ºC
19 msnm
25.6 a 36ºC
Humedad relativa:
75 a 83 %
75 %
Precipitación anual:
1025 mm / año
1587.5 mm/año
Heliofanía:
898.66 horas / año
997,5 horas / año
Características climáticas
Hda. Santa Maria3/
---------1/
Clasificación Ecológica de Holdridge.
Datos tomados en el Instituto Nacional de Meteorología del Ecuador. (Año 2013).
3/
Datos proporcionados por Departamento de Catastro de la Ilustre Municipalidad de Daule
(Año 2013).
2/
15
3.3
Factores estudiados
Durante el trabajo se estudiaron los siguientes factores:
a) Dos variedades de semillas certificadas (SFL 11), (INIAP 15).
b) Semilla reciclada (cultivada por el Agricultor INIAP 11).
3.4
Materiales

Ácido láctico

Cajas Petri

Calculadora

Cámara fotográfica

Cinta adhesiva transparente

Cinta para medir

Determinador de humedad

Estacas de caña guadua

Fundas plásticas

Grapadora

Libreta de campo

Lonas

Lupa de bolsillo

Marcadores indeleble

Microscopio

Piola

Porta y cubre objetos

Semillas de arroz variedad (INIAP 15 y SFL11)

Semilla de arroz variedad INIAP 11( Reciclada)

Servilletas

Tarjetas plásticas (identificación)

Tijera
16
3.5
Tratamientos
El estudio constó con tres tratamientos tanto para los ensayos de laboratorio y
campo que se detallan a continuación:
1. Semillas de arroz SFL 11
2. Semillas de arroz INIAP 15
3. Semillas de arroz INIAP 11 (Reciclada)
3.6
Diseño experimental
En el ensayo de laboratorio se usó un diseño completamente al azar (DCA), con
100 unidades experimentales (semillas) por tratamiento y 5 repeticiones. La
comparación de las medias se realizó con la prueba de Duncan al 5% de probabilidad
como se describe en el análisis de varianza:
ESQUEMA DEL ANALISIS DE VARIANZA
Fuente de Variación
Grado de Libertad
Total
Tratamientos
Error experimental
1499
2
1497
En el ensayo de campo se utilizó un diseño de bloques completamente al azar
(DBCA), con 3 tratamientos y 4 repeticiones, La comparación de las medias se realizó
con la prueba de Duncan al 5% de probabilidad. El esquema del análisis de varianza se
describe a continuación:
ESQUEMA DEL ANALISIS DE VARIANZA
Fuente de Variación
Grado de Libertad
Repetición
Tratamientos
Error experimental
Total
3
2
6
11
17
3.7
Delineamiento experimental
Número de repeticiones
4
Número de tratamientos
3
Número de parcelas
12
Distancia entre repeticiones
1,00 m
Distancia entre tratamientos
1,50 m
Distancia entre hileras
0,25 m
Distancia entre plantas
0,25 m
Largo de la parcela
20 m
Ancho de parcela
20 m
Área total de cada parcela (20 x 20m)
400 m2
Área útil de cada parcela (10 x 10m)
100 m2
5229 m2
Área total del ensayo
3.8
Variables registradas
Las variables registradas fueron las siguientes:
 Microorganismos presentes en las semillas
 Porcentaje de germinación
 Incidencia y severidad de enfermedades
18
3.9
Manejo del experimento
3.9.1. Fase de laboratorio
Aislamiento de microorganismos asociados a semillas de arroz
En los laboratorios del DNPV-Sección Fitopatología y de la Facultad de Ciencias
Agrarias de la Universidad de Guayaquil antes de realizar el semillero y después de
cosecha se hicieron cámaras húmedas y aislamiento en medio de cultivo papa dextrosa
agar (PDA) para determinar los microorganismos presentes en las semillas de los tres
cultivares estudiados.
Las semillas previamente fueron desinfectadas con hipoclorito de sodio al 10%
durante cinco minutos y enjuagadas tres veces con agua destilada estéril (ADE) para
eliminar los residuos del cloro.
La cámara húmeda consistió en colocar las semillas en cajas Petri, que contenían
servilleta estéril humedecida con agua destilada estéril.
Luego se incubaron a
temperatura ambiente durante una semana, para luego identificarlos en el microscopio
simple de luz (Foto 1).
A
B
D
C
© Guillermo Briones, U. G. 2014
Foto 1. Metodología de siembra e identificación de patógenos: Semillas en cámara
húmeda (A), Presencia de patógenos en semillas (B), Preparación de las
muestras en el porta objeto (C), Identificación de los microorganismos
presentes (D).
19
Para el aislamiento de microorganismos asociados a semillas después de la cosecha
se procedió igual con la desinfección de las mismas y colocadas en medio de cultivo
(Papa Dextrosa Agar) (Foto 2), se incubaron a temperatura ambiente durante siete días,
luego se procedió a la identificación mediante el uso de claves especializada (Ainsworth,
Sparrow y Sussman, 1973; Barnet y Hunter, 1983).
Se usaron 100 semillas de cada cultivar y por repetición lo que totaliza 1200, los
datos se expresan en porcentaje de microorganismos.
SFL 11
INIAP 15
INIAP 11 (Reciclada)
© Guillermo Briones, U. G. 2014
Foto 2. Microorganismos presentes en semillas de las variedades de arroz SFL 11. INIAP
15, INIAP 11 (Reciclada) por repetición, incubados en caja Petri.
Porcentaje de germinación
La prueba de germinación se realizó dos veces, la primera antes de la siembra y la
segunda con semillas de la cosecha, para cada una se utilizaron 400 semillas al azar,
100/repetición
semillas; estas fueron confinadas en un lugar con las condiciones
propicias para favorecer su germinación y provistas de riego todos los días, luego de
siete días emergieron las semillas, se contabilizó el número de germinadas y sin
germinar para establecer el porcentaje de germinación (Foto 3).
© Guillermo Briones, U. G. 2014
Foto 3. Metodología para determinar porcentaje de germinación de semillas de arroz de arroz
20
3.9.2.
Fase de campo
Se realizó en la Hacienda Santa María, lote Tablones; en cada uno de los cultivares
se evaluaron la incidencia de enfermedades a los 10, 20, 30 40, 50, 60, 70, 80, 90 y 100
día de edad, para este propósito se evaluaron 10 plantas al azar por cada cultivar y
repetición (Foto 4).
© Guillermo Briones, U. G. 2014
Foto 4. Metodología de evaluación de la sanidad del cultivo en sus diferentes estados de
fenológicos
Además se realizaron las siguientes prácticas de cultivo:
Practicas agronómicas o Labores culturales
Preparación del terreno
Consistió en dos pases de rastra pesada de disco (rome plow) y se fangueó
el suelo a cultivar (Foto 4 A).
Semillero
Para el semillero se realizó una cama húmeda de 1m de ancho por 15m de
largo (Foto 4 B).
Trasplante
Se colocó de 5 a 6 plantas a los 17 días en el sitio definitivo a una distancia
de 0,25 x 0,25 m. (Foto 4 C)
Riego
Se regó cada 15 días, en base al requerimiento del cultivo (Foto 4 D).
21
Nutrición del cultivo
La fertilización del cultivo se realizó de acuerdo al resultado del análisis de
suelo y requerimientos del cultivo.
Control de malezas
Durante el manejo del cultivo hubo la presencia de Echinocloa sp. Se
realizó control mecánico con rabón (Foto 4 E).
Control de insectos plagas
En base a las evaluaciones realizadas la presencia de insectos plaga no
supero el umbral económico, motivo por el cual no se tomó medidas de control.
Control de enfermedades
A los 38 días después del trasplante se aplicó de manera preventiva el
fungicida Juwel (Kresoxim-methyl + Epoxiconazole) (dosis 350 cc/ha.), para
evitar enfermedades (Foto 4 F).
A
B
C
D
E
F
© Guillermo Briones, U. G. 2014
Foto 5. Metodología de prácticas agronómicas del cultivo de arroz: Preparación del
terreno (A), Semillero (B), Trasplante (C), Riego (D), Control manual de
malezas (E), Control fitosanitario (F).
22
IV. RESULTADOS
4.1.
Presencia de microorganismos en semillas de arroz certificada y reciclada.
En la Figura 1 (Anexo 1A), se observan los microorganismos presentes en
semillas aparentemente sanas de arroz antes de la siembra. La variedad SFL 11
mostró el mayor porcentaje de microorganismos, siendo Bipolaris oryzae el más
incidente, seguido de Curvularia sp. Rhizoctonia solani, además,
Fusarium y
Aspergillus flavus. En semillas reciclada A. flavus tuvo el mayor porcentaje; en la
variedad INIAP 15 solamente se observó al género Penicillium.
Figura 1. Porcentaje de microorganismos asociados a semillas arroz sin manchas
antes de la siembra. Hda Santa María Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Los microorganismos aislados en las semillas de arroz manchadas en la
variedad SFL 11 fueron B. oryzae y A. flavus con un mayor porcentaje, seguido de
Rhizopus y Fusarium; las semillas reciclada tuvo mayor incidencia de A. flavus y en
la variedad INIAP 15 no se observaron microorganismos (Figura 2, Anexo 2A).
23
Figura 2. Porcentaje de microorganismos asociados a semillas manchadas de arroz
antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
El porcentaje de germinación de las diferentes variedades difieren
estadísticamente; la variedad INIAP 15 mostró un 77% tanto en las semillas sin
manchas y manchadas fue estadísticamente diferente de los demás tratamientos,
seguidas SFL 11 con un 52 y 47% respectivamente, la variedad INIAP 11
(Reciclada) presentó el porcentaje más bajo tanto en semillas sin y con manchas un
15 y 24% en su orden (Cuadro 1, Anexo 3A y 4A).
24
Cuadro 1. Porcentaje de germinación de semillas de arroz sin y con manchas antes de
la siembra Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
Porcentaje de germinación
Sin manchas
con manchas
b1/
SFL 11
52
INIAP 15
77 A
INIAP 11 (Reciclada)
15
Significancia
**
**
5,33
3,31
CV (%)
47
b1/
77 A
c
24
C
1/
Las cifras de la columna con la misma letra son iguales estadísticamente de acuerdo a la
prueba de rangos múltiples de Duncan =0,05
En el Cuadro 2 (Anexo 5A), se observa los porcentaje de germinación de las
semillas después de la siembra, mismas que no fueron significativo entre los
cultivares. La variedad INIAP 15 presentó 95,75 %, seguido por SFL 11 con 87,25
% y la semilla INIAP 11 (Reciclada) con 84%.
Cuadro 2. Porcentaje de germinación de las semillas de arroz después de la siembra.
Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Porcentaje de germinación
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
Después de la cosecha
SFL 11
87,25
INIAP 15
95,75
INIAP 11 (Reciclada)
84,00
Significancia
Ns
CV (%)
4,73
ns = no significativo
25
El mayor porcentaje de semillas llenas sin manchas los presentó la variedad SFL
11 con 87 %, seguido de las variedades INIAP 15 e INIAP 11 (Reciclada) con 72 y 67%
respectivamente. El porcentaje de semillas llenas con manchas en las variedades INIAP
15 e INIAP 11 (Reciclada) con 24 y 22 % en su orden fueron iguales estadísticamente
entre sí. Mientras que la semilla SFL 11 presento el 6% siendo altamente significativo;
INIAP 15 mostró el menor porcentaje de granos vanos sin manchas y las semillas INIAP
11 (Reciclada) y SFL 11 se mostraron estadísticamente iguales con 8 y 7 %
respetivamente; el porcentaje de granos vanos con manchas no mostró diferencia
estadística (Cuadro 3, Anexos 6A, 7A, 8A y 9A).
Cuadro 3. Porcentaje de granos llenos y vanos, aparentemente sanos y manchados
después de la cosecha Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Semillas llenas
Semillas vanas
TRATAMIENTOS
Sin
Con
Sin
(Variedades de arroz)
manchas
manchas
manchas Con manchas
SFL 11
87 a1/
INIAP 15
72
b
24 A
2
INIAP 11 (Reciclada)
67
b
22 A
8 a
Significancia
CV (%)
b1/
6
7 a1/
0
b
2
4
**
**
**
ns
3,71
14,14
13,90
6,70
1/
Las cifras de la columna con la misma letra son iguales estadísticamente de acuerdo a la prueba
de rangos múltiples de Duncan =0,05
El Cuadro 4 (Anexo 10A), muestra el porcentaje de humedad de la semilla
después de la cosecha de las diferentes variedades, siendo la semilla SFL 11 quien
presentó el mayor porcentaje con 28,49 %, seguida por INIAP 15 e INIAP 11
(Reciclada) con 25,75 y 23,79% respectivamente.
26
Cuadro 4. Porcentaje de humedad de la semilla de arroz después de la cosecha. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
Porcentaje de humedad
SFL 11
28,49 c1/
INIAP 15
25,75
INIAP 11 (Reciclada)
23,79
Significancia
b
a
**
CV (%)
1,64
1/
Las cifras de la columna con la misma letra son iguales estadísticamente de acuerdo a la prueba
de rangos múltiples de Duncan =0,05
El mayor rendimiento se obtuvo en la variedad SFL 11 con 6073,86 kg /ha,
seguido de las variedades INIAP 15 e INIAP 11 (Reciclada) con 5823,86 y 5681,82
en su orden (Cuadro 5, Anexo 11A).
Cuadro 5. Rendimiento de arroz (kg / ha) en el estudio de calidad de la semilla. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
Rendimiento
(Kg/ha)
SFL 11
6073,86
INIAP 15
5823,86
INIAP 11 (Reciclada)
5681,82
Significancia
ns
CV (%)
8,86
ns = no significativo
Después de la cosecha, los microorganismos mayormente aislados de granos de
arroz sin manchas (Foto 5) en la variedad SFL 11 fueron: Curvularia sp., Nigrospora
sp., Aspergillus niger, Penicilium sp., A. flavus, Aspergillus. sp, Fusarium sp., y
Rhizopus sp (Foto 5) con 22, 20, 18, 12, 10, 2, 2 y 2 en su orden; seguida por la
27
variedad INIAP 15 donde se encontró Nigrospora sp., Curvularia sp., A. niger, A.
flavus, Penicilium sp. y Bipolaris oryzae con 32, 24, 9, 9, 9, y 4 % respectivamente;
en la variedad INIAP 11 (Reciclada) se aisló Curvularia sp., Nigrospora sp., B.
oryzae, A. flavus, Penicilium sp., A. niger y Rhizopus sp. 45, 23, 7, 7, 5, 3 y 2% en
su orden (Figura 3, Anexos 12A, 13A y 14A).
Figura 3. Porcentaje de microorganismos aislados en granos sin manchas después de
la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Foto 6. Microorganismos aislados de semillas de arroz: Curvularia sp. (A), Nigrospora sp.
(B), Rhizopus sp. (C), Aspergillus sp. (D), A. flavus (E), A. niger (F).
28
En la Figura 5 (Anexo 15A), se muestran los microorganismos aislados de
granos manchados de arroz, la variedad INIAP 11 (Reciclada) presentó Curvularia
sp., Nigrospora sp., Bipolaris oryzae, A. niger, Penicilium sp. y Chalariopsis con
40, 20, 10, 10, 10 y 10% en su orden; mientras que en INIAP 15 se aisló Nigrospora
sp., Curvularia sp., A. niger, con 50, 25 y 25 % respectivamente; la variedad SFL 11
no mostró microorganismos.
Figura 4. Porcentaje de microorganismos aislados en granos sin manchas después de
la cosecha Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013..
4.2.
Incidencia y severidad de enfermedades en semilla de arroz certificada y
reciclada en condiciones de campo.
De acuerdo a las evaluaciones desde los 10 hasta los 100 día no se
observaron síntomas de enfermedades foliares en ninguno de los cultivares
(Cuadro 6).
29
Cuadro 6. Evaluaciones de enfermedades presentes en variedades certificadas y
recicladas en el campo Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Evaluación en campo ddt
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
SFL 011
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
INIAP 15
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
INIAP 11 (Reciclada)
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
No obstante a los 120 días se observó síntomas de varias enfermedades en
los tres cultivares, las cuales fueron identificadas como Sarocladium oryzae,
Rhizoctonia sp. y Gaeunommanonyces graminis var. graminis en las variedades
SFL 11, INIAP 15 e INIAP 11 (Reciclada) (Cuadro 7).
Cuadro 7. Microorganismos presentes a los 120 días en variedades certificadas y
recicladas en el campo Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Microorganismos
INIAP 11
SFL 11
INIAP 15
Sarocladium sp.
33
26
32
Rhizoctonia sp.
37
40
29
30
24
39
Gaeunommanonyces graminis
var. Graminis
30
(Reciclada)
V. DISCUSIÓN
5.1.
Presencia de microorganismos en la semilla de arroz certificada y reciclada.
La presencia de B. oryzae en las variedades INIAP 11 (Reciclada) e INIAP
15 con mayor porcentaje de granos manchados fue evidente, datos que
concuerdan con Ojeda y Subero (2004), quienes mencionan que a mayor grado
de manchado de la semilla, mayor porcentaje de transmisión del hongo a la
planta.
Curvularia sp. y Nigrospora sp. se aisló de las semillas SFL 11, INIAP 15 e
INIAP 11 (Reciclada), corroborando con Pineda et al (2007) que la incidencia de
estos microorganismos se puede presentar en semillas certificadas.
La baja incidencia de Penicillium en las variedades de arroz fue evidente
como menciona Wikipedia (2014), debido a que este hongo es de fácil
proliferación sobre todo en alimentos.
La variedad INIAP 15 presentó el mayor porcentaje de granos manchados y
no se aisló Fusarium sp. de sus semillas, información que difiere de Rivera y
Gómez (2012) que asocian el oscurecimiento y manchado de grano con la
patogenicidad de Fusarium sp.
5.2.
Incidencia y severidad de enfermedades en semilla de arroz certificada y
reciclada en condiciones de campo.
Al no manifestarse síntomas de enfermedades en 100 días del cultivo se
pone en contradicho la información generada por Pineda et al (2007), que
Nigrospora sp. muestra escaldado de color marrón desde el ápice foliar; al igual
Estrada y Sandoval (2004), indica que Curvularia sp. presenta manchas
puntiformes y ojivales con halos amarillos que pueden unirse y secar gran parte
de la hoja.
31
VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
Basándose en los resultados obtenidos en la presente investigación se
concluye y recomienda.
Conclusiones:
1. Los microorganismos aislados en semillas de arroz antes de la siembra
con mayor incidencia fue en la variedad SFL 11 con Bipolaris oryzae,
Curvularia sp., Rhizoctonia solani, Fusarium y Aspergillus flavus; en
INIAP 15 el género Penicillium y en las semillas INIAP 11 (Reciclada) A.
flavus y Penicilium.
2. Después de la siembra los hongos más incidentes fueron Curvularia sp.,
Nigrospora sp.,
Bipolaris oryzae,
Aspergillus flavus,
A. niger y
Penicilium sp.
3. La semilla INIAP 15 presentó el mayor porcentaje de granos manchados
después de la cosecha.
4. La variedad SFL obtuvo el mayor porcentaje de granos sin manchas y
mayor rendimiento.
Recomendaciones:
1. Utilizar semillas certificadas para evitar la presencia de microorganismos
que afecten la calidad de la misma.
2. Realizar investigaciones que permitan conocer las condiciones que
favorecen la presencia de microorganismos en semillas certificadas.
32
VII.
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38
ANEXOS
39
Cuadro 1A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin
manchas antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro,
Daule. 2013.
INIAP 11
Microorganismos
SFL 11
INIAP 15
(Reciclada)
Aspergillus flavus
10
0
98
Bipolaris
20
0
0
Curvularia
10
0
0
Rhizoctonia
9
0
0
Fusarium
5
0
0
Penicillium
0
10
2
Sin presencia
46
90
0
Cuadro 2A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz con
manchas antes de la siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule.
2013.
Microorganismos
SFL 11
INIAP 15
INIAP 11
(Reciclada)
Aspergillus flavus
37
0
81
Bipolaris
39
0
0
Fusarium
3
0
0
Rhizopus
9
0
19
Sin presencia
12
100
0
40
Cuadro 3A. Número de semillas de arroz sin manchas germinadas antes de la
siembra. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule. 2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
REPETICIONES
TOTAL
PROMEDIO
48
208
52
76
84
308
77
24
8
16
60
15
184
144
148
576
144
I
II
III
IV
SFL 011
36
64
60
INIAP 15
52
96
INIAP 11 (Reciclada)
12
TOTAL
100
A N A L Y S I S
Fuente de
Variación
O F
V A R I A N C E
G.L
S.C
Repeticiones
3
12.67
Tratamientos
2
7784.00
Error
6
39.33
Total
11
T A B L E
C.M
F ”C”
4.22
3892.00
F “T”
5 %
1 %
0.64 NS
4.76
9.78
593.69 **
5.14
10.92
6.56
7836.00
Coefficient of Variation=
5.33%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
INIAP 15
SFL 011
INIAP 11
(Reciclada)
Medias con una letra
diferentes (p<= 0,05)
Medias
n
E.E.
77.00
4
1.28
52.00
4
1.28
15.00
4
1.28
son
significativamente
común
41
no
a
b
c
Cuadro 4A. Número semillas manchadas germinadas antes de la siembra. Hda.
Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
REPETICIONES
TOTAL
PROMEDIO
32
188
47
86
74
308
77
24
36
16
96
24
192
158
122
592
148
I
II
III
IV
SFL 011
40
80
36
INIAP 15
60
88
INIAP 11 (Reciclada)
20
TOTAL
120
A N A L Y S I S
Fuente de Variación
G.L
O F
V A R I A N C E
S.C
C.M
Repeticiones
3
36.00
Tratamientos
2
5650.67
Error
6
16.00
Total
11
12.00
2825.33
T A B L E
F “T”
F ”C”
4.50 NS
1059.50 **
5 %
1 %
4.76
9.78
5.14
10.92
2.67
5702.67
Coefficient of Variation=
3.31%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 15
77.00
4
0.82
SFL 011
47.00
4
0.82
a
b
INIAP 11 (Reciclada)
24.00
4
0.82
c
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
42
Cuadro 5A. Número semillas germinadas después de la cosecha. Hda. Santa Maria,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
TOTAL
PROMEDIO
84
349
87,25
90
98
383
95,75
92
88
85
336
84,00
280
265
267
1068
267,00
I
II
III
IV
SFL 011
88
90
87
INIAP 15
97
98
INIAP 11 (Reciclada)
71
TOTAL
256
A N A L Y S I S
Fuente de Variación
O F
G.L
V A R I A N C E
S.C
Repeticiones
3
98.00
Tratamientos
2
Error
6
215.50
Total
11
608.00
294.50
Coefficient of Variation=
T A B L E
C.M
F ”C”
32.67
0.91 NS
147.25
F “T”
4.10 NS
5 %
1 %
4.76
9.78
5.14
10.92
35.92
4.73%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 15
95.75
4
3.00
a
SFL 011
87.25
4
3.00
a
b
INIAP 11 (Reciclada)
84.00
4
3.00
c
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
43
Cuadro 6A. Número de semillas de arroz llenas sin manchas. Hda. Santa María, Rcto.
San Pedro. Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
I
98
63
70
231
SFL 011
INIAP 15
INIAP 11 (Reciclada)
TOTAL
A N A L Y S I S
O F
Fuente de Variación
G.L
II
80
78
74
232
III
83
71
55
209
IV
87
75
70
232
V A R I A N C E
TOTAL
PROMEDIO
348
287
269
904
87
72
67
226
T A B L E
S.C
C.M
F ”C”
F “T”
5 %
1 %
Repeticiones
3
48.67
16.22
2.08 NS
4.76
9.78
Tratamientos
2
857.17
428.58
54.91 **
5.14
10.92
Error
6
46.83
7.81
Total
11
952.67
Coefficient of Variation=
3.71%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
SFL 011
87.00
4
1.40
a
INIAP 15
72.00
4
1.40
INIAP 11 (Reciclada)
67.00
4
1.40
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
44
b
b
Cuadro 7A. Número de semillas de arroz llenas manchadas. Hda. Santa María, Rcto.
San Pedro, Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
TOTAL
PROMEDIO
6
22
6
23
19
94
24
16
26
20
86
22
42
55
45
202
51
I
II
III
IV
SFL 011
3
7
6
INIAP 15
33
19
INIAP 11 (Reciclada)
24
TOTAL
60
A N A L Y S I S
O F
Fuente de Variación
V A R I A N C E
G.L
T A B L E
S.C
C.M
F ”C”
5.67
Repeticiones
3
17.00
Tratamientos
2
778.67
Error
6
34.00
Total
11
389.33
F “T”
5 %
1 %
1.00 NS
4.76
9.78
68.71 **
5.14
10.92
5.67
829.67
Coefficient of Variation=
14.14%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 15
24.00
4
1.19
a
INIAP 11 (Reciclada)
22.00
4
1.19
a
6.00
4
1.19
SFL 011
Medias con una letra
diferentes (p<= 0,05)
común
45
no
son
b
significativamente
Cuadro 8A. Número de semillas de arroz vanos sin manchas. Hda. Santa María, Rcto.
San Pedro, Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
TOTAL
PROMEDIO
7
29
7
2
2
10
2
1
16
10
30
8
14
29
19
69
17
I
II
III
IV
SFL 011
1
10
11
INIAP 15
3
3
INIAP 11 (Reciclada)
3
TOTAL
7
A N A L Y S I S
Fuente de Variación
O F
G.L
V A R I A N C E
S.C
C.M
Repeticiones
3
0.92
0.31
Tratamientos
2
63.50
31.75
Error
6
3.83
0.64
Total
11
68.25
Coefficient of Variation=
T A B L E
F ”C”
F “T”
5 %
1 %
0.48 NS
4.76
9.78
49.70 **
5.14
10.92
13.90%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 11 (Reciclada)
8.00
4
0.40
a
SFL 011
7.00
4
0.40
a
INIAP 15
3.00
4
0.40
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
46
b
Cuadro 9A. Número de semillas de arroz vanos con manchas. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
TOTAL
PROMEDIO
0
0
0
4
4
9
2
9
3
0
15
4
9
7
4
24
6
I
II
III
IV
SFL 011
0
0
0
INIAP 15
1
0
INIAP 11 (Reciclada)
3
TOTAL
4
A N A L Y S I S
O F
V A R I A N C E
T A B L E
F “T”
Fuente de Variación
G.L
S.C
C.M
F ”C”
5 %
1 %
Repeticiones
3
0.00
0.00
0.00 NS
4.76
9.78
Tratamientos
2
2.67
1.33
0.00 NS
5.14
10.92
Error
6
0.00
0.00
Total
11
2.67
Coefficient of Variation=
6.70
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 11 (Reciclada)
4.00
4
0.00
a
INIAP 15
2.00
4
0.00
a
SFL 011
0.00
4
0.00
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
47
b
Cuadro 10A. Porcentaje de humedad de la semilla después de la cosecha. Hda. Santa
María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
REPETICIONES
TRATAMIENTOS
(Variedades de arroz)
TOTAL
PROMEDIO
22,20
91,00
22,75
18,20
19,00
75,50
18,88
16,00
16,40
16,40
65,10
16,28
57,90
57,50
57,60
231,60
57,90
I
II
III
IV
SFL 011
22,50
23,40
22,90
INIAP 15
19,80
18,50
INIAP 11 (Reciclada)
16,30
TOTAL
58,60
A N A L Y S I S
Fuente de Variación
O F
G.L
V A R I A N C E
T A B L E
S.C
C.M
F ”C”
F “T”
5 %
1 %
Repeticiones
3
0.13
0.04
0.24 NS
4.76
9.78
Tratamientos
2
44.50
22.25
122.07 **
5.14
10.92
Error
6
1.09
0.18
Total
11
45.73
Coefficient of Variation=
1.64%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
Medias
n
E.E.
INIAP 11 (Reciclada)
23.79
4
0.21
INIAP 15
25.75
4
0.21
A
SFL 011
28.49
4
0.21
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
48
B
C
Cuadro 11A. Rendimiento de arroz en kg/Ha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule,
2013.
TRATAMIENTOS
(Variedades de
arroz)
REPETICIONES
TOTAL
PROMEDIO
5681,82
24295,45
6073,86
5681,82
5965,91
23295,45
5823,86
6250,00
5113,64
22727,27
5681,82
17761,36 17897,73 17897,73 16761,36 70318,18
17579,55
I
II
III
IV
SFL 011
6681,82
5965,91
5965,91
INIAP 15
5965,91
5681,82
INIAP 11
(Reciclada)
5113,64
6250,00
TOTAL
A N A L Y S I S
O F
V A R I A N C E
T A B L E
F “T”
Fuente de Variación
G.L
S.C
C.M
Repeticiones
3
301651.35
Tratamientos
2
315168.09
Error
6
1616986.96
Total
11
2233806.39
Coefficient of Variation=
F ”C”
0.37
NS
0.58
100550.45
157584.04
NS
5 %
1 %
4.76
9.78
5.14
10.92
269497.83
8.86%
Test: Duncan Alfa=0.05
TRATAMIENTOS
SFL 011
INIAP 15
Medias
6073.87
5823,87
n
4
4
E.E.
259.57
259.57
A
A
INIAP 11 (Reciclada)
5681.82
4
259.57
A
Medias con una letra común no son significativamente
diferentes (p<= 0,05)
49
Cuadro 12A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin manchas
variedad SFL 11 después de la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San
Pedro, Daule, 2013.
Microorganismos
Bipolaris oryzae
Nigrospora sp
Curvularia sp.
Fusarium sp.
Penicilllium sp.
Aspergillus sp.
Aspergillus niger
Aspergillus flavus
Rhizopus sp.
Sin crecimiento
Total
I
0
20
28
5
22
0
2
11
0
12
100
II
0
24
20
2
7
4
12
14
7
10
100
SFL 11
III
0
18
32
2
6
0
10
12
2
18
100
IV
0
18
8
0
12
2
20
34
0
6
100
Total
Promedio
0
80
88
9
47
6
44
71
9
46
400
0
20
22
2
12
2
11
18
2
12
100
Cuadro 13A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin manchas
variedad INIAP 15 después de la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San
Pedro, Daule, 2013.
Microorganismos
Bipolaris oryzae
Nigrospora sp
Curvularia sp.
Fusarium sp.
Penicilllium sp.
Aspergillus sp.
Aspergillus niger
Aspergillus flavus
Rhizopus sp.
Sin crecimiento
Total
I
3
48
9
0
11
0
13
0
0
16
100
INIAP 15
II
III
2
4
36
33
16
18
1
0
9
7
1
0
11
8
5
18
1
0
18
12
100
100
50
IV
8
12
46
0
10
0
4
14
0
6
100
Total
Promedio
17
129
89
1
37
1
36
37
1
52
400
4
32
22
0
9
0
9
9
0
13
100
Cuadro 14A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz sin manchas
variedad INIAP 11 (Reciclada) después de la cosecha. Hda. Santa María,
Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
Microorganismos
Bipolaris oryzae
Nigrospora sp
Curvularia sp.
Fusarium sp.
Penicilllium sp.
Aspergillus sp.
Aspergillus niger
Aspergillus flavus
Rhizopus sp.
Sin crecimiento
Total
I
0
26
40
0
8
0
11
3
0
12
100
INIAP 11 (Reciclada)
II
III
0
28
24
20
56
38
0
0
4
2
0
0
4
6
2
2
2
4
8
0
100
100
IV
0
20
47
0
7
0
8
6
2
10
100
Total
Promedio
28
90
181
0
21
0
29
13
8
30
400
7
23
45
0
5
0
7
3
2
8
100
Cuadro 15A. Porcentaje de microorganismos aislados de semillas de arroz con manchas después
de la cosecha. Hda. Santa María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013
Microorganismos
Bipolaris oryzae
Nigrospora sp
Curvularia sp.
Aspergillus niger
Penicilllium sp.
Chalariopsis
Suman
SFL 11
INIAP 15
0
0
0
0
0
0
100
0
50
25
25
0
0
100
INIAP 11
Reciclada
10
20
40
10
10
10
100
Foto 1A. Marbetes de semillas certificadas variedad SFL 11 e INIAP 15. Hda. Santa
María, Rcto. San Pedro, Daule, 2013.
51