TECNICAS DE CULTIVO DE ESPECIES PLANCTONICAS E INVERTEBRADOS.docx

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Licenciatura en Medicina Veterinaria y Zootecnia
Temas Selectos de Acuicultura. Técnicas de cultivo de especies planctónicas e
invertebrados útiles para la alimentación en acuicultura
Clave Semestre Créditos
Medicina y salud animal (X)
Producción y economía pecuarias (X)
10
4
Área
Calidad e inocuidad de los alimentos ( )
Salud pública ( )
Protección del ambiente y cuidado de los
ecosistemas ( )
Campo de
Medicina y Zootecnia
conocimiento
Etapa
Profundización
Modalidad
Carácter
Curso Semestral ( )
Curso Hemisemestral ( )
Obligatorio ( )
Optativo E (X )
Tipo
T(X)
P( )
T/P ( )
Horas
Semana
Semestre/Hemisemestre
Teóricas 4
Teóricas
32
Prácticas 0
Prácticas
0
Total
Total
32
4
Seriación
Asignatura antecedente
Ninguna ( )
Obligatoria (X)
Introducción a la Zootecnia
Metodología Diagnóstica
Medicina y Zootecnia Acuícola
Práctica de Medicina y Zootecnia Acuícola
Asignatura subsecuente
Indicativa (X)
Asignatura antecedente
Introducción a la Acuariología
Asignatura subsecuente
Medicina y Zootecnia de Peces de Agua Dulce
Práctica de Medicina y Zootecnia Acuícola
Medicina y Zootecnia de Crustáceos
Práctica de Medicina y Zootecnia de Crustáceos
Objetivo general:
El alumno distinguirá las técnicas de cultivo de especies planctónicas e invertebrados
comparando su utilidad en la acuicultura para el aprovechamiento óptimo y el desarrollo
sustentable.
1
Objetivos específicos:
Unidad 1. Objetivo temático. El alumno reconocerá el cultivo de microalgas de la División
Chlorophyta y la División Chyrosophyta, para la alimentación de peces herbívoros a través
de las características de cada una de las especies.
Unidad 2. Objetivo temático. El alumno reconocerá las generalidades de la especie a
través de las diferentes fases de vida para la alimentación de organismos acuáticos.
Unidad 3. Objetivo temático. El alumno reconocerá las generalidades de la especie a
través de sus diferentes fases de vida de la Artemia salina para la alimentación de
organismos acuáticos.
Unidad 4. Objetivo temático. El alumno reconocerá las generalidades de la especie a
través de las diferentes fases de vida de Panagrellus redivivus para la alimentación de
organismos acuáticos
Unidad 5. Objetivo temático. El alumno reconocerá la morfología de los diferentes tipos
de protozoarios a través de sus características para utilizarlos como alimento para crías
de peces.
Índice temático
Unidad
1
2
3
4
5
Temas
Cultivo de microalga
Cultivo de Daphnia magna
Cultivo de Artemia salina
Cultivo de Panagrellus redivivus (microgusano)
Cultivo de protozoarios
Total
Horas
semestre/año
Teóricas Prácticas
06
0
06
0
08
0
06
0
06
0
32
0
Contenido Temático
Unidad
1
2
Subtemas
1.1
1.2
1.3
1.4
1.5
1.6
1.6
1.7
1.8
2.1
2.2
2.3
2.4
2.5
2.6
2.7
Morfología
Alimentación
Nutrición
Reproducción
Sistemas de producción
Metodología del cultivo de la microalga a nivel laboratorio
Composición y aporte nutricional de las microalgas.
Costos de producción
Comercialización
Morfología
Alimentación
Nutrición
Reproducción
Ecología
Sistemas de producción
Metodología del cultivo de Daphnia a nivel laboratorio
2
3
4
5
2.8 Composición y aporte nutricional de los diferentes etapas de vida
2.9 Costos de producción
2.10 Comercialización
3.1 Morfología
3.2 Alimentación
3.3 Nutrición
3.4 Reproducción
3.5 Ecología
3.6 Sistemas de producción
3.7 Metodología del cultivo de Artemia salina a nivel laboratorio
3.8 Composición y aporte nutricional de los diferentes etapas de vida
3.9 Costos de producción
3.10 Comercialización
3.11 Calidad nutritiva
4.1 Morfología
4.2 Alimentación
4.3 Nutrición
4.4 Reproducción
4.5 Ecología
4.6 Sistemas de producción
4.7 Metodología del cultivo de Panagrellus a nivel laboratorio
4.8 Composición y aporte nutricional de Panagrellus
4.9 Costos de producción
4.10 Comercialización
5.1 Morfología
5.2 Alimentación
5.3 Nutrición
5.4 Reproducción
5.5 Ecología
5.6 Sistemas de producción
5.7 Metodología del cultivo de protozoarios a nivel laboratorio
5.8 Composición y aporte nutricional
5.9 Costos de producción
5.10 Comercialización
Actividades didácticas
Exposición
Trabajo en equipo
Lecturas
Trabajo de investigación
Prácticas (taller o laboratorio)
Prácticas de campo
Otras (especificar)
Título o grado
Experiencia docente
Otra característica
(X)
( )
(X)
(X)
( )
( )
Evaluación del aprendizaje
Exámenes parciales
Examen final
Trabajos y tareas
Presentación de tema
Participación en clase
Asistencia
Otras (especificar)
(X)
( )
(X)
( )
(X)
(X)
Perfil profesiográfico
Médicos Veterinarios Zootecnistas / Biólogos
3 años en el área acuícola
Con experiencia en el área de acuicultura
3
Bibliografía básica:
1. AMAT F. Antecedentes, estado actual y perspectivas del empleo de Artemia salina en
acuicultura. Inf. Tecn. Inv. Pesq 1980; 75. 24p
2. BARBARENA C. y MONTOYA H. Crecimiento, ciclo de vida y tolerancia a la salinidad de
la microalga Dunaliella viridis Teodoresco. Rev. Fac. Ocean Pesq. Cs. Alimentarias 1990;
2: 34-53.
3. CASTRO T. Biología y cultivo de Artemia franciscana en el ex lago de Texcoco, de
Ecatepec, Estado de México (tesis doctoral). D.F., México: Facultad de Ciencias, UNAM,
1993.
4. COLL MJ. Acuicultura Marina Animal. 2ª ed. Madrid, España: Mundi-Prensa, 1996:367368.
5. FIGUEREDO LJ y CABRERA PJ. Fecundidad, longevidad y talla reproductiva de
Daphnia pulex cultivada en laboratorio. Rev. Lat. Acui. Lima Perú 1988; 35:13-40
6. PAGGI JC y DE PAGGI SJ. Daphnia magna: el canario de las aguas. Madrid, España:
Santillana, 2000: 817.
7. Reyes BH 1999. Evaluación y optimización de la producción de microalgas, del rotífero
Brachionus plicatilis y del cladócero Daphnia magna, bajo diferentes condiciones de
cultivo (Tesis doctoral). D.F., México: Inst. Cienc. Mar y Limn. UNAM,1999:76
Bibliografía complementaria:
1. BARATA C, HONTORIA F y AMAT F. Estimation of the biomasa production of Artemia
with regard to its use in aquaculture: temperatura and strain effect. Aquaculture 1996;
142:171-189.
2. BIEDENBACH JM, SMITH I, THOMSEN T y LAURENCE A. Use of the Nematode
Panagrellus redivivus as an Artemia replacement in a larval Penaeid diet. Journal of the
World Aquaculture Society 2000; 20:61-71.
3. CORREA F. BUCLE L y VOLTOLINA D. The biochemical composition of cysts of some
mexican populations of Artemia franciscana Kellogg, 1906. Comp. Biochem. Physiol
2003.
4. DAWES CJ. Marine Botany. New York, U.S.A: John Wiley & Sons, 2001:672.
5. GESSNER F y SHRAMM W. Salinity Plants. P. En Marine Ecology, Environmental
Factors 1999; 2:705-820.
6. GOLDMAN, JC. Nutrient transformations in mass cultures of marine algae. J. Envir.
Engng Dir. Am. Soc. Cir. Engre 2002; 101: 351-364.
7. LEE RE. Phycology. New York, USA: Cambridge University Press, 1999:172
8. PENNAK, RW. Fresh-Water Invertebrates of the United States. 2ª ed. Ney York, USA:
Wiley- Interscience, 2002: 350-387.
9. ROOTTMANN RW. Microworm culture for aquarium fish producers. University of Florida.
Aquaculture Eng.1988; 3:221-235.
10.STARR, RC. Algal cultures sources and methods of cultivations. New York, USA:
Academia Press 1999:29-53.
11. VANHAECKE P, TACKAERT W y ZORRUELOS P. The biography of Artemia: an
updated review. In Artemia research and its aplications. Morphology, genetics, strain
characterization, toxicology. Belgium: Universa Press, Wetteren, 2000: 129-155.
4