Ficha Xylella fastidiosa en berries

DIRECCIÓN GENERAL DE SANIDAD VEGETAL
CENTRO NACIONAL DE REFERENCIA FITOSANITARIA
Ficha Técnica
Quemadura foliar bacteriana
Xylella fastidiosa
Foto: Don Hopkins, Mid Florida REC, University of Florida, 2011.
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CONTENIDO
IDENTIDAD ................................................................................................................................................. 3
Nombre científico .................................................................................................................................... 3
Clasificación taxonómica ....................................................................................................................... 3
Nombres comunes ................................................................................................................................. 3
Código EPPO .......................................................................................................................................... 3
Estatus fitosanitario ................................................................................................................................ 3
Situación en México ............................................................................................................................... 3
IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA ...................................................................................... 3
Impacto económico ................................................................................................................................ 3
Impacto económico potencial en México ............................................................................................ 3
DISTRIBUCIÓN .......................................................................................................................................... 4
HOSPEDANTES ......................................................................................................................................... 4
ASPECTOS BIOLÓGICOS ....................................................................................................................... 6
Morfología ................................................................................................................................................ 6
Ciclo biológico ......................................................................................................................................... 6
Síntomas .................................................................................................................................................. 7
ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS .......................................................................................................... 9
Dispersión ................................................................................................................................................ 9
METODOS DE DETECCIÓN ................................................................................................................. 10
MUESTREO .............................................................................................................................................. 10
ESTRATEGIAS DE MANEJO Y CONTROL ........................................................................................ 12
Control cultural ...................................................................................................................................... 12
Control químico ..................................................................................................................................... 12
Uso de plantas resistentes .................................................................................................................. 12
BIBLIOGRAFÍA ......................................................................................................................................... 13
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quemadura foliar (almendra), enanismo (alfalfa),
IDENTIDAD
enfermedad falsa (melocotón), escaldadura foliar
(ciruela), quemadura de la hoja (olmo, roble,
Nombre científico
mora,
Xylella fastidiosa Wells, Raju, Hung, Weisburg,
arce,
arándano),
clorosis
variegada
(cítricos).
Parl & Beemer
Código EPPO
Clasificación taxonómica
XYLEFA (Xylella fastidiosa)
Reino: Bacteria
Estatus fitosanitario
Filum: Proteobacteria
Clase: Gammaproteobacteria
Ausente, sin registro de la plaga.
Orden: Xanthomonadales
Familia: Xanthomonadaceae
Situación en México
Género: Xylella
En México actualmente se llevan a cabo
Especie: fastidiosa (EPPOPQR, 2014).
actividades de vigilancia epidemiológica en
diversos estados país para la especie Xylella
fastidiosa subsp. pauca que afecta cítricos. Para
Nombres comunes
el caso de X. fastidiosa subsp. fastidiosa, que
Enfermedad de Pierce, enfermedad de la vid
afecta vid, se reporta presente sujeta a control
California,
oficial.
enfermedad
Anaheim
(vid),
mortalidad de plantas, aunque al momento no se
IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA
tiene una cifra exacta para cuantificar las
Impacto económico
pérdidas provocadas por esta bacteria en el
La quemadura foliar bacteriana provocada por
cultivo de arándano (Tertuliano et al., 2012).
Xylella fastidiosa es una enfermedad que afecta
algunos cultivares de arándanos altos del sur
(Vaccinium corymbosum L. (Ericaceae) híbridos
interespecíficos] cultivados en el sudeste de
USA, principalmente en Georgia y Florida
(Chang et al, 2009; Harmon y Hopkins, 2009).
Se ha reportado que la variedad (FL 86-19), es
más
susceptible,
presentándose
mayor
Impacto económico potencial en México
En México además de arándano, se cultivan
otras frutillas como son frambuesa, zarzamora y
fresa.
Éstos cultivos en conjunto ocupan una
superficie sembrada de 15536.42 ha, con un
valor de producción de $5, 161,998.21 (SIAP,
2014). Por lo anterior, la presencia de esta
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enfermedad en el país ocasionaría importantes
Oklahoma, Oregon, Pensylvania, Isla Rhode,
pérdidas en estos cultivos.
Carolina del Sur, Tennessee, Texas, Virginia,
Washington, Virginia Occidental, en el caso de
DISTRIBUCIÓN
México se reporta presente sujeta a control
De acuerdo a CABI (2014) Xylella fastidiosa se
encuentra presente en:
fastidiosa subsp. fastidiosa.
ASIA: Taiwán, Turquía.
NORTEAMÉRICA:
Alabama,
Arizona,
Delaware,
Distrito
Georgia,
Indiana,
oficial, aunque esta referencia aplica para Xylella
AMÉRICA CENTRAL Y EL CARIBE: Costa
Canada,
Ontario,
Arkansas,
de
California,
Columbia,
Kentucky,
USA,
Florida,
Louisiana,
Maryland, Mississippi, Missouri, Nueva Jersey,
Rica.
SUDAMÉRICA: Argentina, Brasil, Bahia, Espirito
Santo, Goias, Minas Gerais, Para, Parana, Rio
de Janeiro, Rio Grande do Sul, Santa Catarina,
Sao Paulo, Sergipe, Paraguay y Venezuela.
Nuevo Mexico, Nueva York, Carolina del Norte,
zarzamora.
HOSPEDANTES
X.
fastidiosa
tiene
una
amplia
gama
de
hospedantes (Cuadro 1), se conocen alrededor
de 100 plantas. Entre ellas se mencionan
frutillas tales como arándano, fresa, frambuesa y
Cabe
mencionar
que
el
descubrimiento de X. fastidiosa en arándanos es
muy reciente y falta determinar si se trata de una
nueva cepa de la bacteria o si es una de las
cepas
conocidas
(Balbalian,
2012).
Cuadro 1. Hospedantes reportados para Xylella fastidiosa (CABI, 2014, EPPO-PQR, 2014).
Nombre científico
Nombre común
Acer
arce (principal)
Acer rubrum
arce rojo (silvestre)
Acer saccharum
arce dulce (principal)
Brachiaria
pasto braquiaria (silvestre)
Carya illinoinensis
nuez lisa (principal)
Citrus latifolia
lima Tahití (principal)
Citrus reticulata
mandarina (principal)
Citrus reticulata x paradisi
tangelo (principal)
Citrus sinensis
naranja (principal)
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Coffea
café (silvestre)
Coffea arabica
café arábica (secundario)
Conium maculatum
cicuta (silvestre)
Cynodon
pasto cynodon (silvestre)
Cyperus
juncia (silvestre)
Digitaria
hierba cangrejo (silvestre)
Echinochloa frumentacea
mijo japonés (silvestre)
Fragaria vesca
fresa silvestre (silvestre)
Liquidambar styraciflua
goma dulce (principal)
Lolium
hierba de centeno (silvestre)
Lolium multiflorum
raigrás italiano (silvestre)
Medicago
medicago (silvestre)
Medicago sativa
alfalfa (principal)
Morus alba
mora (principal)
Nerium oleander
adelfa (principal)
Paspalum
paspalum (silvestre)
Paspalum dilatatum
hierba Dallis (silvestre)
Passiflora foetida
fruta roja de la pasión
Persea americana
aguacate (secundario)
Platanus occidentalis
sicomoro (principal)
Poaceae
pastos (silvestre)
Prunus angustifolia
cerezo de montaña (principal)
Prunus dulcis
almendra (principal)
Prunus persica
durazno (principal)
Prunus salicina
ciruelo japonés (principal)
Pyrus
peras (principal)
Quercus rubra
roble rojo del norte (silvestre)
Quercus velutina
roble negro (secundario)
Rubus
mora, frambuesa (silvestre)
Sambucus
saúco (silvestre)
Taraxacum officinale complex
diente de león (silvestre)
Trifolium
trébol (silvestre)
Ulmus
olmo (principal)
Ulmus americana
olmo Americano (silvestre)
Vaccinium
arándano (secundario)
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Vinca minor
vinca común (silvestre)
Vitis labrusca
uva de zorro (principal)
Vitis rupestris
uva de arena (principal)
Vitis vinifera
vid (principal)
ASPECTOS BIOLÓGICOS
forma bacilar sin flagelos y no forma esporas,
Morfología
mide de 0,1 - 0,5 x 1-5 micras (Janse y
X. fastidiosa es una bacteria gram-negativa,
Obradovic, 2010).
estrictamente aeróbica, limitada al xilema, de
Figura 1. Células de X. fastidiosa en vasos de xilema. Créditos: A. Almeira. En: Janse y Obradovic, 2010.
vegetales
Ciclo biológico
Los
hospedantes
infectados
y
posteriormente
de
plantas sanas. En el caso de arándano, la
infectados
sirven
como
reservorios y sitios de hibernación de la bacteria.
Durante la primavera y principios del verano, los
insectos vectores, chicharritas principalmente,
transmiten la bacteria al alimentarse de tejidos
chicharrita de alas cristalinas, Homalodisca
vitripennis, se reporta como el vector más
importante en el sur de Georgia y Florida.
Cuando la bacteria es adquirida por el insecto al
alimentarse de tejido infectado, ésta coloniza el
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canal alimenticio dentro del estilete, el cual es
momento, la bacteria forma colonias, y a través
utilizado por el insecto para punzar los tejidos de
de una combinación de pectinas y tilosas,
la planta. La bacteria adherida a la cutícula del
producidas
insecto crece formando una película fina que se
respuesta a la infección y la producción de
alinea
canal
exudado bacteriano, el xilema es obstruido. Con
alimenticio. Una vez que el insecto ha adquirido
el tiempo, la obstrucción de los vasos llega a un
la bacteria, ésta es transmitida a una nueva
punto en el que tallos individuales o plantas
planta en un lapso de 1 a 2 horas, cuando el
enteras, no son capaces de llevar suficiente
insecto inyecta la bacteria en el xilema (tejido
agua y nutrimentos para mantener viva la planta.
conductor que transporta agua y nutrimentos
En este momento, los síntomas se desarrollan,
desde las raíces a otros tejidos de la planta)
y, finalmente, la planta muere. La muerte de la
durante su alimentación. Tanto los adultos como
planta puede ser relativamente rápida, pero en
las ninfas de H. vitripennis pueden transmitir la
general, el desarrollo de los síntomas comienza
bacteria, pero sólo los adultos pueden transmitir
en un año y continúa a través de, al menos una
la bacteria persistentemente (durante toda su
segunda temporada antes de que ocurra la
vida). Esta especie bacteriana es única, ya que
muerte de la planta (Fletcher y Wayadande,
se limita únicamente al xilema de la planta. El
2002; Gould y Lashomb, 2007; Brannen et al.,
movimiento de la bacteria se produce en todo el
2008; Almeida, 2007).
en
la
superficie
interna
del
por
la
planta
hospedante
en
sistema de xilema de la planta. En determinado
solamente una obstrucción parcial del xilema
Síntomas
Síntomas en hojas y tallos: El síntoma inicial
es una quemadura del margen de la hoja (hojas
viejas), la cual es similar a la observada en
casos de sequía extrema y quemaduras por
sales fertilizantes (Figura 2). En ocasiones, se
observa una banda oscura entre el área de la
hoja afectada y el tejido sano, algunas veces
también se observa un patrón denominado “hoja
de roble” (Figuras 3A y B). Los síntomas en
hojas se pueden distribuir de manera uniforme
por toda la planta, pero en las etapas iniciales, la
lesiones o quemaduras pueden limitarse a tallos
individuales y ocasionalmente a un solo lado de
la planta – lo que indica que se ha producido
que podrá limitarse a un solo vaso o tallo -. El
crecimiento de primavera (crecimiento nuevo) se
caracteriza por ramas de diámetro muy fino,
observándose también un reducido número de
botones florales. Finalmente, existe caída de
hojas, y las ramas / tallos jóvenes pueden tomar
una apariencia amarilla y un aspecto esquelético
(Figura 3C). Después de la caída de hojas, la
planta
finalmente
muere.
Frecuentemente,
cuando una planta ha muerto a causa de
quemadura foliar bacteriana, las plantas vecinas
mostrarán síntomas al año siguiente (Chung-Jan
et al., 2009; Balbalian, 2012; Brannen et al.,
2008).
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Figura 2. Síntomas de quemadura foliar provocados por Xylella fastidiosa en arándano. Créditos:
Brannen et al., 2008.
Figura 3. Síntomas provocados por X. fastidiosa en arándano: A) “patrón de hoja de roble”; B) margen
oscuro entre área de la hoja afectada y tejido sano y C) amarillamiento de tallos y aspecto esquelético
Créditos: D. Hopkins; Brannen et al., 2008.
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ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS
Se ha reportado que en ciertas variedades de
arándanos altos del sur, en Georgia, tales como
Dispersión
Emerald, Star y FL86-19, los adultos de H.
X.
fastidiosa
es
diseminada
por
insectos
vitripennis presentan una mayor preferencia por
la
la variedad Emerald (52,7%) más que por las
propagación a escala local. Sin embargo, la
variedades Star (25,5 %) y FL86-19 (17,7%)
bacteria no se transmite a través de los huevos
respectivamente. Asimismo se reporta una
de insectos vectores y no persiste en mudas de
mayor preferencia de alimentación de este
estados
puede
insecto de la parte media del brote (56,9 %) en
propagarse en material de siembra. En el caso
comparación con las porciones superior (7,8 %)
de arándano (Vaccinium sp.), la chicharrita de
y baja (14,7 %) (Tertuliano et al., 2012).
vectores,
alas
lo
cual
podrían
inmaduros.
cristalinas,
La
asegurar
bacteria
Homalodisca
vitripennis
(Germar) (Hemiptera: Cicadellidae) (Takiya et al,
Xylella fastidiosa se distribuye de manera
2006), es un vector importante de este patógeno
desigual dentro de las plantas sintomáticas, una
(Figura 5). La chicharrita de alas cristalinas es
característica que puede afectar la eficiencia de
muy polífaga y se alimenta de más de 100
adquisición, ya que ciertas especies prefieren
especies de plantas herbáceas y leñosas
alimentarse de los tejidos con concentraciones
incluyendo vegetación natural, malezas, cultivos
bacterianas inferiores. Se ha observado que la
hortícolas y ornamentales (Mizell et al., 2008).
eficiencia de adquisición es mayor en plantas
Tanto los adultos como las ninfas pueden
con cargas bacterianas altas, lo que indica una
transmitir la bacteria, pero sólo los adultos
correlación directa entre la concentración de
pueden transmitir la bacteria persistentemente
bacterias y la eficiencia de transmisión por
(Tertuliano et al., 2012).
vectores
del
patógeno
(Almeida,
2007).
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Figura 5. Homalodisca vitripennis, vector de X. fastidiosa en berries. Créditos: Brannen et al., 2008.
METODOS DE DETECCIÓN
La detección de X. fastidiosa se lleva a cabo
en una bolsa de plástico a 4ºC durante no más
de 7 días (Vaccinium (Blueberry & Cranberry)
Post-Entry Quarantine, 2014; CABI, 2014).
mediante pruebas de reacción en cadena de la
polimerasa (PCR), es recomendable realizarlas
MUESTREO
durante o a finales del verano, la prueba de
ELISA es menos sensible y ha tenido problemas
con falsos positivos. Debido a que Xylella
fastidiosa se limita al tejido vascular, para la
detección se requiere realizar las pruebas en
pecíolos y/o nervaduras de las hojas. En plantas
de Vaccinium deben tomarse muestras de al
menos dos partes de cada tallo incluyendo una
hoja joven, completamente desarrollada del
ápice del tallo y una hoja vieja de la parte media
del tallo. Las muestras deben analizarse lo antes
posible después de colectarse de la planta
hospedante. Si las muestras tienen que ser
almacenadas antes de la prueba, las hojas
deben mantenerse siempre en conjunto, deben
estar libres de agua superficial, y almacenarse
Para el muestreo de X. fastidiosa en berries se
propone una metodología de búsqueda en forma
de guarda griega, considerando una superficie
de 1 ha.
-
Dentro del área a muestrear se realizará
un recorrido en forma de guarda griega iniciando
en la orilla del predio (primera hilera de plantas),
en
la
hilera
seleccionada
se
realizarán
muestreos a cada 40 m, al llegar al final de cada
hilera, el recorrido se continuará en la quinta
hilera y así sucesivamente (Figura 6).
-
En
cada
punto
de
muestreo
se
inspeccionarán 5 plantas en la búsqueda de
síntomas, de cada planta se revisarán 4 hojas
basales de brotes diferentes.
En el caso de
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arándano (Vaccinium sp.) se deben tomar
bolsas de polietileno con cierre hermético para
muestras de 2 hojas jóvenes completamente
su posterior identificación.
expandidas de la parte apical de cada tallo y 2
Se sugiere la realización del primer muestreo
hojas maduras de la parte media del tallo (Park
durante la fase media de desarrollo del cultivo y
et al, 2006; Vaccinium (Blueberry & Cranberry)
otro al final del ciclo del cultivo. En la segunda
Post-Entry Quarantine, 2014).
fecha de muestreo, este se iniciará en la
-
En
caso
de
encontrar
síntomas
segunda hilera de plantas.
sospechosos en hojas, estas se colectaran en
Figura 6. Esquema de muestreo en guarda griega para Xylella fastidiosa en una superficie de 1 ha.
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existe buena humedad y crecimiento activo de la
ESTRATEGIAS DE MANEJO Y CONTROL
planta. De forma paralela, la persistencia de los
Control cultural
1) Evitar tomar esquejes de plantas infectadas
por
X.
fastidiosa
(con
síntomas
de
la
enfermedad).
2) Identificar las plantas infectadas por Xylella en
campo y destruirlas, lo cual retardará la
propagación de la enfermedad.
3) Reducir condiciones de estrés en las plantas,
tal como el estrés por sequía, lo anterior
contribuye a retrasar el desarrollo de síntomas o
neonicotinoides es mucho mejor cuando se
aplican al suelo que de manera foliar. Para el
caso
de
arándanos,
en
Florida,
los
neonicotinoides etiquetados para aplicación en
el suelo incluyen productos imidacloprid (Admire
2F, Admire Pro, Advise 2FL , Alias 2F, Courage
2F , Imida E -AG 2F , Nuprid 2F) y un producto
tiametoxam (Platinum 2EC) (Janse y Obradovic,
2010; Brannen et al., 2008).
en algunos casos evitar por completo el
desarrollo de la enfermedad.
4) Control de malezas dentro y alrededor del
área de cultivo (Gould y Lashomb. 2007; Janse y
Obradovic, 2010).
Uso de plantas resistentes
Se ha reportado que algunas variedades de
arándanos
variedad
Control químico
muestran
'FL86
-
cierta
19'
resistencia.
es
La
particularmente
susceptible a la infección y desarrollo de la
Al momento, no existe un método de control
enfermedad por Xylella. Cuando se compara con
químico
otras variedades de arándanos altos del sur, la
que
elimine
completamente
a
la
bacteria. Sin embargo, es posible reducir la
variedad
velocidad o incluso interrumpir el ciclo de la
rápidamente y mayor carga bacteriana después
enfermedad mediante el manejo de insectos
de
vectores, lo anterior controlando o eliminando a
correlaciona
los insectos que transmiten la bacteria. Se sabe
observada en campo. Por otro parte, se ha
que
sistémicos,
observado que la variedad 'V5' presenta cierta
principalmente neonicotenoides (Imidacloprid)
resistencia a esta bacteria en campo. Sin
aumentan el sistema de defensa de la planta;
embargo se requiere más investigación al
por lo cual para el control de insectos vectores,
respecto, lo cual ayudaría a generar variedades
se sugiere la aplicación al suelo de productos
potencialmente
neonicotinoides
(Brannen et al., 2008).
algunos
insecticidas
(imidacloprid
o
tiametoxam)
'FL86
-
inoculaciones
19'
desarrolla
manuales,
bien
con
resistentes
la
lo
síntomas
cual
se
susceptibilidad
a
X.
fastidiosa
cuando las plantas inician el crecimiento en
primavera. Las cualidades sistémicas de éstos
productos químicos se potencializan cuando
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