Marine16. Kit de pruebas de Gasóleo
El kit de pruebas se puede usar por gasóleo de barcos, vehículos, calefacción, etc.
El uso del kit es sencillo. Con una cantidad pequeña del gasóleo se puede probar. La resulta aparece en 2 – 3
días y se puede comprobar cualquier nivel de contaminación con las fotos a bajo. Pocos puntos significan
contaminación leve, más puntos significan más contaminación
Tratamiento del combustible
Marine16 DBT (Biocida básico) y Marine 16 DFC (Con aditivos de anti-corrosión, mejorador cetano y más) se puede
mata completamente las bacterias, hongos y levaduras del gasóleo.
Con contaminación leve, no será necesario a limpiar el depósito, las bacterias muertos van a pasar los filtros y
queman en el motor. Para más contaminación no hay otra manera que limpiar manualmente el depósito
Con DBT, se puede tratar en 3 niveles de dosificación.
1) Prevención Condicional. (Imprescindible que el gasóleo de repostar esta limpio y se puede conseguir una buena
mezcla del DBT con todo el gasóleo) 100ml se trata 2000 litros.
2) Prevención Normal. 100ml se trata 500 litros
3) Dosificación de Choque. 100ml se trata 100 litros
Con DFC el tratamiento es mililitros de DFC por litros de Gasóleo. Es decir a tratar 380 litros de gasóleo se necesita
380 mililitros de DFC. Esta es la única dosificación
Resultas de la prueba
BoatWide, SL. Distribuidor Exclusivo España. Pasaje Agustina de Aragón, 13 bj. 08860 Castelldefels
Tel: 93 635 07 78.
[email protected]
www.boatwide.es
Marina 16 Kit de prueba de bacterias en Gasóleo
Instrucciones
Nota: El kit compone de una diapositiva que tiene secciones de rojas y amarillo claro. Estas dos secciones son medios de cultivo
(Agar) y se utilizan para causar cualquier micro-organismo cultivar.
1. Obtener una muestra de la mezcla de líquido, agua o combustible/agua en un recipiente limpio con contacto tan poco como sea
posible
2. Quitar la diapositiva del recipiente con cuidado, evitando tocar las secciones de Agar claro o rojo. Sumerja la diapositiva en el
combustible/agua muestra durante 5-10 segundos y quitar de la muestra.
3. Permita que el exceso de líquido a drenar la diapositiva
4. Secar el borde inferior de la diapositiva sobre papel absorbente limpio
5. Atornille firmemente la diapositiva en el tubo original
6. Rellene la etiqueta y adhiéralo al tubo
7. Coloque el tubo vertical en un armario de ventilación o en un radiador a 30 º C. Después de la incubación de 24 a 48 horas el
resultado puede leerse en el Agar de recuento de Total Bacterial Count Agar. Levaduras y hongos mostrará en el Rose Bengal Agar
después de 3 días de incubación. Si la incubación se realiza a temperatura ambiente, pueden leerse los resultados después de 2-4
días y 4-7 días respectivamente
8. Después de la incubación quitar la diapositiva del tubo. Comparar la densidad de las colonias que crecen en las zonas agar con las
cartas de la densidad de modelo sin realmente contar las colonias. Si la temperatura normal del líquido probado substancialmente
difiere de la temperatura de incubación arriba indicada, el puede resultar en lento crecimiento bacteriano durante la incubación. Una
temperatura de incubación correspondiente al líquido probado es la recomendada.
Interpretación de los resultados
Prácticamente todas las bacterias aerobias crecen en el lado de recuento de Total Bacterial Count Agar de la diapositiva. Levaduras y
hongos que aparecen en el Rose Bengal Agar de la diapositiva (agar rosa)
Determinación del recuento Total Bacterial Count Agar (agar incoloro/amarillo)
La mayoría de las bacterias da puntos rojos/colonias rojas. La cuenta bacteriana/ml de las muestras se determina comparando la
densidad de las colonias que aparecen en la diapositiva con densidades que se muestra en el gráfico del modelo. Si hay incoloras
colonias presentes, éstos deben también tenerse en cuenta al calcular la densidad total de crecimiento. En casos donde grandes
colonias producen hay que recordar que es la densidad de las colonias que es importante y no su tamaño.
Observe abajo el uso de la notación científica. Por ejemplo 10e7/ml representa 10.000.000 unidades por mililitro
Si el contenido bacteriano es muy alto (más de 10e7/ml) hay un crecimiento confluente de bacterias. Esto puede parecer como una
capa superficial uniforme roja. Este tipo de crecimiento puede ser malinterpretada como un resultado negativo o pobre (porque toda la
diapositiva es aparece roja) y es recomendable en casos dudosos para comparar la diapositiva incubada con un inusitado. No es
posible dar límites universalmente válidos para ilustrar la crítica cuenta microbiana. Esto tiene que ser determinado por la experiencia.
Infección leve de recuento bacteriano 10e4
Recuento bacteriano 10e5 10e6 moderada infección
Recuento bacteriano 10e6 o infección pesada más
Determinación de levaduras y hongos (agar rosa)
Crecimiento que aparecen en la diapositiva puede consistir en puramente de hongos o levaduras o puede ser causada por hongos y
levaduras formando crecimiento mixto. Hongos dan lugar a colonias suaves y esponjosas, mientras que las colonias de la levadura
son generalmente bola en forma de y un poco hinchados. A veces son planas y secas. Comparación del crecimiento de la levadura
con el gráfico del modelo se lleva a cabo como con bacterias.
Eliminación de diapositivas usadas
Como las diapositivas incubadas son cultivos bacterianos debe ser manipulado con cuidado. Eliminación de diapositivas usadas
puede lograrse mejor mediante incineración, sumergiendo la diapositiva y envase en un hogar de lejía durante la noche o en autoclave
les después de aflojar el tapón (puede usarse una olla a presión para esto).
Almacenamiento
Tubos sin abrir deben almacenarse a temperatura ambiente (unos + 20 º C) y protegido de la luz y calado. La fecha de caducidad que
aparece en el paquete. Diapositivas no pueden ser congeladas. Deben desecharse sin usar diapositivas mostrando crecimiento
bacteriano.
Las fluctuaciones de temperatura pueden producir condensación en la parte inferior del tubo de inmersión-slide. Este estéril
líquido puede eliminarse simplemente el fregadero. La calidad de la prueba y los resultados no son afectados por esto,
siempre que los medios de cultivación no son visualmente hidratados.
Ya esta prueba puede ser afectada por la manipulación y técnicas de muestreo no se puede dar ninguna garantía sobre la
exactitud de estos resultados
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