Silabus - Facultad de Medicina Veterinaria

UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS
(Universidad del Perú, DECANA DE AMÉRICA)
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MEDICINA VETERINARIA
DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE SALUD ANIMAL Y SALUD PÚBLICA
Laboratorio de Microbiología y Parasitología Veterinaria
SYLLABUS
I.
INFORMACIÓN GENERAL
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Curso
Código
Créditos
Tipo
Año de estudios
Ciclo Académico
Período lectivo
Horas semanales
Horario y aula
:
:
:
:
:
:
:
:
:
10. Profesor Responsable :
11. Profesores Colaboradores:
Profesora Invitada:
Graduados Adscritos:
II.
MICROBIOLOGÍA VETERINARIA
MV0046
6.0
Obligatorio
Segundo
2014
Del 17 de marzo al 13 de diciembre 2014
2 horas de teoría y 4 de practica
Teoría: Martes de 10 a 12 horas (Aula: 4)
Prácticas
Grupo A: Martes:
14 – 16 horas
Grupo B: Miércoles: 13 - 15 horas
Grupo C: Miércoles: 10 - 12 horas
(Laboratorio de Prácticas de Microbiología.)
Dra. Sonia Calle Espinoza
PP (DE)
Dr. Raúl Rosadio A.
PP (DE)
MV.Mg. Hermelinda Rivera G
PP (DE)
MV. Mg. Alberto Manchego S.
PA (DE)
M.V. Siever Morales C.
PA (TP)
M.V. Mg. Mercy Ramírez V.
PAux (DE)
Dra. Chris Pinto Jimenez
MV. Mg. Juan More Bayona
M.V. Juan Siuce Moreno
Bach. Guillermo Salvatierra Rodríguez
SUMILLA
Comprende el estudio de la estructura, fisiología, genética y ecología de los
microorganismos importantes en Medicina Veterinaria. Incluye a los principales
microorganismos que producen infección en los animales, enfatizando sus factores de
virulencia, mecanismo de patogénesis de infección, colección de muestras y los
métodos de diagnóstico de laboratorio para su aislamiento e identificación.
1
III.
COMPETENCIA
3.1 COMPETENCIA GENERAL
El alumno analiza y describe las características morfológicas y bioquímicas básicas
de los microorganismos, la patogénesis de la infección a nivel celular y aplica los
métodos de diagnóstico para identificar al microorganismo causante de una
infección en el animal.
El aprendizaje y desarrollo de la competencia arriba descrita pone en juego de
forma integrada las capacidades personales para:
 Analizar, discernir y reflexionar acerca de la importancia y repercusión de la
investigación científica en el desempeño profesional del Medico veterinario
 Manejar el criterio para el uso de los procedimientos metodológicos para el
diseño y desarrollo de proyectos de investigación científica
 Valorar la práctica de investigación como base y factor determinante del
perfeccionamiento profesional permanente
3.2 COMPETENCIAS ESPECÍFICAS
El curso consta de 5 Unidades Didácticas. 50% sobre bacterias y hongos y el otro
50% sobre virus.
Primera Unidad: conoce, importancia histórica y clasificación de bacterias,
desarrolla habilidades de manejo de instrumentos del laboratorio, explica la
estructura y morfología bacteriana, conoce los medios para su cultivo In Vitro,
explica metabolismo bacteriano, pruebas bioquímicas para identificar bacterias,
conceptos básicos de genética bacteriana, conceptos de pruebas moleculares,
mecanismos de resistencia bacteriana, pruebas de sensibilidad, factores de
virulencia y patogenicidad.
Segunda Unidad comprende mecanismos de patogenicidad y su manejo In Vitro de
grupos bacterianos Gram positivos: Staphylococcus, Streptoccocus, Listeria,
Erysipelothrix, Bacillus y Clostridium. Bacterias Gram negativas: Actinobacillus,
Mannheimia, Mycoplasma, su asociación con problemas respiratorios y su manejo
In vitro; E. coli, Salmonella, y su asociación con problemas digestivos y su manejo In
Vitro.
Tercera Unidad comprende: Bacterias intracelulares: Mycobacterium, Brucella, su
mecanismo de persistencia y su manejo In Vitro. Estructura y biología de hongos
internos y externos y su cultivo In Vitro. Bacterias con características especiales:
Leptospira, Rickettsia y Clamydia, su cultivo in vitro. Composición y morfología de
los virus, normas de bioseguridad para manejo de virus in vitro, criterios de
2
clasificación y nomenclatura de los virus, sistemas biológicos para cultivo in vitro de
los virus.
Cuarta Unidad comprende Interacción virus –célula, cultivo de células in vitro,
replicación de virus ADN, replicación de virus ARN, modelos de replicación de virus
in vitro, genética viral, mecanismos de infección viral, mecanismos de diseminación
viral en el organismo, cuantificación de virus in vitro.
Quinta Unidad comprende factores de virulencia, efectos del virus en cultivos
celulares, patogénesis de infección viral aguda, patogénesis de infección viral
crónica, oncogénesis viral, enfermedades virales emergentes y exóticas, métodos
para el diagnóstico de enfermedades virales.
UNIDAD DIDACTICA I. 17 marzo al 25 abril 2014
Título: Características biológicas y moleculares de las bacterias
Competencia especifica: Describe, discute y compara las características morfológicas,
metabólicas, factores que intervienen en la resistencia microbiana y factores de
virulencia, y patogenia de las bacterias.
Sem/fecha
Docente
responsable
Actividades
Teoría.El profesor da la bienvenida
entrega los sílabos a cada
estudiante llamándolos por
su nombre.
1ª
Explica el porqué del curso.
martes 18
Utilizando
el
equipo
marzo
S. Calle
multimedia
explica
la
10 – 12 horas
evolución
de
los
conocimientos y eventos
históricos de la microbiología
y los criterios para su
clasificación.
Práctica.El profesor da instrucciones
S. Calle
sobre buenas prácticas de
J.Siuce
Laboratorio y metodología en
18 y 19 marzo
S. Morales clases.
GA: 14 – 16
G.Salvatierra El
alumno
visita
los
GB: 13- 15
H. Rivera
ambientes del laboratorio,
GC: 10-12
R. Rosadio observa y manipula los
M.Ramírez, equipos y materiales de
A.Manchego laboratorio.
J.More
Conoce los equipos de
esterilización.
Contenido temático
Introducción.
Presentación de los profesores del
curso.
Importancia de microbiología en
la
medicina
veterinaria.
Explicación del sílabo- explicación
de metodología del curso
Desarrollo histórico de los
microorganismos, basados en los
avances de carácter estructural,
fisiológico y filogenético.
Clasificación de las bacterias y
hongos.
Bioseguridad en el laboratorio de
microbiología.
Principios y utilidades de equipos
y materiales.
Conceptos de esterilización y
desinfección.
Video sobre evolución de los
microorganismos.
3
Se les agrupa y asigna temas
de seminario y metodología.
2ª
martes 25
marzo
10 – 12 horas
Teoría.Clase
magistral
sobre
S. Calle
estructura, morfología y
desarrollo bacteriano.
Práctica.El alumno manipula
los
materiales de laboratorio.
Reconoce los medios de
J.Siuce
cultivo bacteriano y realiza
S. Morales
la preparación de estos.
S. Calle
Reconoce los diferentes
25 y 26 marzo G.Salvatierra
colorantes y técnicas de
GA: 14 – 16
H. Rivera
coloración.
GB: 13- 15
R. Rosadio
Realiza la técnica de frotis y
GC: 10-12
M.Ramírez,
aplica las técnicas básicas de
A.Manchego
coloración.
J. More
Realiza técnicas de siembra
de muestras.
Observación de la bacteria
en el microscopio
Prepara informe de su
práctica.
martes 01
Teoría.abril
S. Morales Clase magistral
sobre
10 – 12 horas
metabolismo bacteriano
S. Morales
j. Siuce
Práctica.S. Calle
01 y 02 abril
Observa cultivos bacterianos,
G.Salvatierra
GA: 14 – 16
sus características. Utiliza y
H. Rivera
GB: 13- 15
ejecuta las pruebas
R. Rosadio
GC: 10-12
bioquímicas y la técnica de
M.Ramírez,
galería API.
A.Manchego
J.More
Teoría.4ª
Clase magistral.
martes 08
S. Calle
Profesor promueve
abril
participación activa del
10 – 12 horas
alumno.
Estructura,
morfología
desarrollo bacteriano.
y
Procedimientos
para
la
preparación de medios de cultivo
bacteriano.
Técnicas de coloración de
bacterias y el fundamento de
cada una de ellas.
Técnicas de siembra de muestras.
Metabolismo bacteriano
Pruebas bioquímicas útiles en la
identificación bacteriana
Principios del Sistema de
Identificación estandarizado API.
Aspectos básicos de la genética
molecular bacteriana.
4
08 y 09 abril
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
5ª
martes 15
abril
10 – 12 horas
15 y 16 abril
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
6ª
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
.J. More
S. Calle
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
Práctica.
Explicación teórica y
esquemática de la prueba
PCR.
Principios de las pruebas
moleculares utilizadas para el
estudio de la genética bacteriana.
Conoce el fundamento de las
pruebas moleculares más
comunes.
Teoría.Exposiciones de diferentes
mecanismos de resistencia
microbiana.
El profesor facilita la
discusión
Mecanismos de resistencia
microbiana.
Práctica.
El alumno realiza pruebas de
antibiograma (Método Kirby
Bauer)
Principios de la técnica de disco
difusión para determinar
susceptibilidad bacteriana.
SEMANA: EXAMEN DE PRIMERA UNIDAD: Lunes 21 al viernes 25 de abril
UNIDAD DIDACTICA II. 28 de abril al 06 de junio
Título: Patogénesis a nivel celular de las bacterias Gram positivas y Gram negativas
Competencia específica.
El alumno comprende, describe e interpreta los diferentes mecanismos de patogénesis a
nivel celular de las principales bacterias Gram positivas y Gram negativas causantes de
infecciones generalizadas, del tracto respiratorio y digestivo de los animales.
Sem/fecha
7ª
martes 29
abril
10 – 12
horas
29 y 30
abril
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
Docente
responsable
S. Morales
S.Morales
S. Calle
j. Siuce
G.Salvatierra
Actividades
Contenido temático
Teoría.Factores de virulencia.
Clase magistral sobre factores
Mecanismos y patogenicidad
de virulencia y mecanismos de
bacteriana.
patogenicidad bacteriana.
Práctica.
SEMINARIO
Grupos explican mecanismos 1.Manipulation of host
de interrelación de bacteriana
membrane machinery by
– hospedador.
bacterial
5
GC: 10-12
8ª
martes 06
mayo
10 – 12
horas
06 y 07
mayo
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
9ª
martes 13
mayo
10 – 12
horas
13 y 14
mayo
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
10ª
martes 20
mayo
10 – 12
horas
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
S. Calle
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
S. Morales
Grupos explican mecanismos
de adhesión e invasión
bacteriana a la célula blanco.
El Profesor es facilitador.
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación del alumno.
Práctica.
Grupos explican tema de
seminario. Discuten el tema
en pleno. Toma y remisión de
muestras.
Cultivan e identifican las
bacterias causantes de
mastitis.
Ejecuta los protocolos de
aislamiento bacteriano.
Conoce los métodos para
diagnosticar: Streptoccocus,
Staphylococcus,
Corynebacterium, Listeria.
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación del alumno.
Mecanismos de patogénesis de
bacterias: Bacillus y Clostridium
Patogénesis de Bacillus
anthracis.
Patogénesis de Clostridium
perfringens.
Práctica.
S. Morales Grupos explican tema de
j. Siuce
seminario.
S. Calle
Se discuten los temas en el
G.Salvatierra pleno.
H. Rivera
El profesor es facilitador.
R. Rosadio Toma y remisión de muestras
M.Ramírez, Cultiva e identifica las
A.Manchego bacterias causantes de
J.More
infecciones sistémicas
Ejecuta los protocolos de
aislamiento bacteriano.
S.Calle
Pathogens. Current Opinion in
Cell Biology 2010, 22:547–554
2. Adhesins and invasins of
pathogenic bacteria: a
structural view. Microbes and
Infection 6 (2004) 101–112
Mecanismos de patogenicidad de
bacterias Gram positivas
causantes de infecciones en
animales.
Streptoccocus, Staphylococcus,
Corynebacterium, Listeria,
Erysipelothrix
Teoría
Clase magistral
Profesor promueve
participación del alumno.
SEMINARIO
Anthrax undervalued zoonosis.
Veterinary Microbiology 140
(2010) 318–331
CASO PRACTICO:
Bacillus anthracis.
Clostridium perfringens
Mecanismos de patogenicidad
de bacterias causantes de
infecciones respiratorias en
animales.
Mannheimia, Actinobacillus,
Pasteurella Haemophilus.
6
20 y 21
mayo
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
Práctica.
Toma y remisión de muestras
Cultiva e identifica las
bacterias causantes de
enfermedades respiratorias
Ejecuta los protocolos de
aislamiento bacteriano.
Conoce los métodos para
identificar las bacterias:
Mannheimia, Actinobacillus,
Haemophilus, Erysipelothrix
DESARROLLO CASO PRACTICO
Mecanismos de patogenicidad
de bacterias Gram negativos
causantes de enfermedades
respiratorias en animales.
Mycoplasma, Bordetella,
Pseudomonas
11ª
martes 27
mayo
10 – 12
horas
S. Calle
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación del alumno
27 y 28
mayo
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
S. Calle
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
Práctica.
Ejecución de la técnica de
ELISA indirecta para
Mycoplasma
EXPOSICIÓN CASO PRACTICO
12ª
martes 03
junio
10 – 12
horas
S. Calle
Teoría
Clase magistral
Profesor promueve
participación del alumno.
Mecanismos de patogénesis de
bacterias causantes de
infecciones digestivas.
Géneros Escherichia coli,
Samonella y Lawsonia
03 y 04
junio
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
S. Calle
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
Práctica.
Toma y remisión de muestras
Cultiva e identifica las
bacterias causantes de
infecciones digestivas.
Ejecuta los protocolos de
aislamiento
Conoce los métodos para
identificar las bacterias:
Escherichia coli, Salmonella spp.
ASIGNACION CASO PRACTICO
13ª
SEMANA: EXAMEN DE SEGUNDA UNIDAD: Lunes 09 al viernes 13 de junio
UNIDAD DIDACTICA III. 16 de junio al 19 de julio
Título: Patogénesis a nivel celular y mecanismos de persistencia de bacterias intracelulares y
generalidades de los virus
Competencia específica.
7
El alumno comprende, describe e interpreta la patogénesis a nivel celular de bacterias
intracelulares, de bacterias con características biológicas especiales, hongos y generalidades
de virus
Sem/fecha
Docente
responsable
14ª
martes 17
junio
10 – 12
horas
S. Morales
17 y 18
junio
GA: 14 – 16
GB: 13- 15
GC: 10-12
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
15ª
martes 24
junio
10 – 12
horas
24 y 25
junio
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12
16ª
martes 01
julio
10 – 12
horas
J. Siuce
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
S. Morales
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
S.Calle
H. Rivera
Actividades
Teoría.Clase magistral.
Profesor
promueve
participación del alumno.
Contenido temático
Mecanismos de patogénesis de
bacterias
intracelulares:
Géneros Mycobacterium y
la Brucella.
Estrategias de evasión de la
respuesta inmunitaria.
Práctica.
Realiza prueba de aglutinación
e inmunodifusión doble en
agar gel para el diagnóstico de
brucelosis.
Los grupos explican los temas
y se discute en el pleno.
Teoría.Clase magistral
Profesor
promueve
participación del alumno.
Fundamentos de la prueba de
aglutinación e inmunodifusión
en agar gel.
DESARROLLO CASO PRACTICO
Mecanismos de patogénesis de
las bacterias con impacto
reproductivo:
modelo
la
Leptospira sp.
Práctica.
Conoce
las
técnicas
diagnósticas serológicas del
genero Leptospira
Desarrollo técnica MAT
Realiza
la
técnica
de EXPOSICION CASO PRACTICO
aislamiento de hongos de
acuerdo al protocolo de
trabajo.
Reconocimiento y mecanismos
de la Patogénesis de hongos
Teoría.Patogénesis
de internos y externos que
hongos internos y externos afectan a los animales
que afectan a los animales
Origen de los virus
.
Composición: ácido nucleído,
proteína y otros componentes
Morfología viral
8
01 y 02
julio
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
R. Rosadio
M.Ramírez,
A.Manchego
J.More
Práctica.
El alumno Conoce las técnicas
diagnósticas
de
hongos Método de aislamiento e
internos y externos que identificación de hongos.
afectan a los animales de EXPOSICION CASO PRACTICO
acuerdo al protocolo de
trabajo
Semana de Veterinaria (del lunes 07 al 12 de julio).
17ª
martes 15
julio
10 – 12
horas
H. Rivera
Criterios de clasificación de los
Clase magistral
virus
El
profesor
promueve
Sistema de cultivos celulares,
participación del estudiante
tipos de células, importancia
M. Ramírez
A.Manchego
15 y 16
H. Rivera
Práctica.
julio
J.More
Alumnos adquieren guías de
GA: 24 – 25
R. Rosadio
prácticas
GB: 13- 15
S. Morales
Forman grupos y reciben los
GC: 10-12
j. Siuce
temas de seminarios.
S. Calle
G.Salvatierra
Lunes 21 julio a viernes 26 de julio: VACACIONES
Normas de bioseguridad para
manipulación de virus
Reconocen equipos y
materiales utilizados para
trabajos con virus
Lunes 28 julio a viernes 01 de agosto: VACACIONES
18ª
martes 05
agosto
10 – 12
horas
M. Ramírez
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación del estudiante
Sistemas de cultivo de virus in
Vitro:
En cultivos celulare, huevos
embrionados, animales de
laboratorio.
M.Ramírez,
Práctica.Reconoce materiales usados
A.Manchego
El alumno recibe un feto
en cultivos celulares
05 y 06
H. Rivera
bovino, porcino obtenido en
Prepara y reconoce los medios
agosto
J.More
mataderos
y buffers especiales
GA: 24 – 25 R. Rosadio
Obtiene los tejidos y realiza el
Principios de los método
GB: 13- 15
S. Morales
cultivo celular
enzimático y por explante
GC: 10-12
j. Siuce
El profesor es facilitador y
Importancia del sistema de
G.Salvatierra
promueve discusión
cultivo celular
S. Calle
19ª
SEMANA: EXAMEN DE TERCERA UNIDAD: Lunes 11 al viernes 15 de AGOSTO
9
UNIDAD DIDACTICA IV. 18 AGOSTO al 26 SETIEMBRE
Título: Variación genética viral e interacción virus célula
Competencia específica.
El alumno comprende, describe los mecanismos de variación genética viral, la interacción de
los virus con la célula del hospedador, efectos que produce en la misma como resultado de
la replicación de virus ARN y ADN.
Docente
responsable
Actividades
20 ª
martes 19
agosto
10 – 12 horas
H. Rivera
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación de estudiante
Etapas y estrategias de
replicación de virus ADN.
19 y 20 agosto
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12
M.Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
Práctica.Inocula virus ADN y ARN en
cultivo celular
El profesor facilita la
ejecución del trabajo y
promueve discusión
Siembra de virus Herpes bovino
tipo 1 (ADN) y diarrea viral
bovina (ARN) en monocapas
celulares secundarios
21ª
martes 26
agosto
10 – 12 horas
H. Rivera
Teoría.Clase magistral.
Profesor promueve
discusión del tema de clase.
Etapas y estrategias de
replicación de virus ARN.
26 y 27 agosto
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12
M. Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
Práctica.El alumno observa la lesión
celular causado por virus
ADN y ARN.
Cada grupo recibe
embriones para su
inoculación en distintas
rutas.
Efecto citopático en el sistema
de cultivo celular.
Inoculación de virus en huevos
embrionados aviares.
Vías: Saco vitelino/ Saco
alantoideo/ Membrana
corioalantoidea.
22ª
martes 02
setiembre
10 – 12 horas
A.Manchego
Teoría.Clase magistral.
El profesor promueve
discusión grupal del tema
tratado.
Mecanismos de mutaciones,
recombinaciones como base
genética de virulencia y
evolución viral.
02 y 03 set
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
M. Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
Práctica.Realiza cosecha de virus
inoculados
Efectos del virus en embriones
aviares
Cosecha de virus en embriones
aviares
Sem/fecha
Contenido temático
10
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
23ª
Lunes 09
setiembre
8 – 10 am
09 y 10
setiembre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
24ª
Lunes 16
setiembre
8 – 10 am
M. Ramírez
M. Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
A.Manchego
16 y 17
setiembre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
M. Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
G.Salvatierra
S. Calle
25ª
Lunes 23
setiembre
8 – 10 am
A.Manchego
24 y 25
setiembre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
M. Ramírez,
A.Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
Teoría.El profesor organiza a los
grupos y facilita la discusión
sobre el tema tratado
Práctica.El alumno realiza las
pruebas
Considerando las medidas
de bioseguridad
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve análisis
y discusión
Práctica.El alumno observa láminas
preparadas con diversas
lesiones de utilidad con el
diagnóstico
El alumno realiza la
titulación viral para
determinar dosis infectante
50%
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
discusión grupal del tema
Práctica.El grupo presenta un
resumen del seminario
El profesor nombre al
expositor mediante un
sorteo
El alumno decide la
metodología a seguir:
pizarra, papelógrafo,
retroproyector.
Se prohíbe el uso de
Mecanismos de infección viral:
Cambios en las células inducidos
por la infección viral
Prueba de hemaglutinación para
evidenciar virus del fluido
alantoideo
Prueba de inhibición de la
hemoaglutinación para
confirmación del agente viral
aislado
Determinantes de la resistencia
del hospedador
Factores que dependen del
hospedador
Factores que dependen del
agente viral
Observación los efectos
citopáticos: lesiones, pústulas
corpúsculos de inclusión
intracitoplásmático e
intranuclear, sincitios.
Cuantificación de la presencia
de virus en una muestra
Determinación dosis infectante
50%
Mecanismo de infección viral:
Rutas de acceso viral al
organismo animal
SEMINARIO
1.- Familia Picornaviridae.
Ejemplo virus aftoso
2.- Familia Herpesviridae.
Ejemplo: virus herpes bovino
tipo 1
Características de la familia
viral, subfamilias y/o serotipos
de importancia en animales y
humanos. Clasificación,
replicación, patogénesis,
11
multimedia
26ª
SEMANA: EXAMEN DE CUARTA UNIDAD:
de OCTUBRE
UNIDAD DIDACTICA V.
inmunidad, colección y envío de
muestras y pruebas diagnósticas
de laboratorio.
Lunes 29 SETIEMBRE al viernes 04
06 octubre al 13 diciembre
Título: Infecciones agudas y crónicas e impacto de enfermedades emergentes
Competencia específica.
El alumno comprende, describe
la patogénesis de infecciones agudas, crónicas,
oncogénicas, la interacción de los virus con la célula del hospedador, efectos que produce en
la misma como resultado de la replicación de virus ARN y ADN.
Conoce las causas de la ocurrencia de las enfermedades exóticas y por último las diversas
técnicas diagnósticas de laboratorio utilizados para los virus
Sem/fecha
27ª
Lunes 07
octubre
8 – 10 am
07 y 08
octubre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
28ª
martes 14
octubre
8 – 10 am
Docente
responsable
A.Manchego
M. Ramírez,
A. Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
Actividades
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
participación del
estudiante
Práctica.El grupo presenta un
resumen del seminario
El profesor nombre al
expositor mediante un
sorteo
El alumno decide la
metodología a seguir:
pizarra, papelógrafo,
retroproyector.
Se prohíbe el uso de
multimedia
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
discusión grupal del
tema
Contenido temático
Mecanismos de infección y
diseminación viral en el organismo
animal
Respuesta del organismo frente al
daño viral
SEMINARIO
3.- Familia Orthomyyxoviridae
Ejemplo: virus Influenza A
4.- Familia Coronaviridae
Ejemplo: virus bronquitis infecciosa
aviar
Características de la familia viral,
especies y/o tipos de importancia en
animales y humanos. Clasificación,
replicación, patogénesis, inmunidad,
colección y envío de muestras y
pruebas diagnósticas.
Patogénesis de infección viral aguda:
Daño celular y sus consecuencias,
activación de los mecanismos de
respuesta innata y adquirida.
12
14 y 15
octubre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
29ª
martes 21
octubre
8 – 10 am
21 y 22
octubre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
M. Ramírez,
A. Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
H. Rivera
M. Ramírez,
A. Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
Práctica.El grupo presenta un
resumen del seminario,
Se elije al expositor
El alumno decide la
metodología a seguir:
pizarra, papelógrafo,
retroproyector.
Se prohíbe el uso de
multimedia
SEMINARIO
5.- Familia Coronaviridae
Ejemplo: Gastroentritis
transmisible/ diarrea epidémica
porcina
6.- Familia Arteriviridae
Ejemplo: virus Síndrome
Reproductivo y Respiratorio Porcino.
Características de la familia viral,
clasificación, replicación,
patogénesis, inmunidad, colección y
envío de muestras y pruebas
diagnósticas
Teoría.Clase magistral
Profesor promueve
discusión del tema
Patogénesis de infección viral
crónicas: mecanismos, factores que
depende del animal y del virus
Práctica.El grupo presenta un
resumen del tema.
Se nombra al expositor
mediante un sorteo
El alumno decide la
metodología a seguir:
pizarra, papelógrafo,
retroproyector.
Se prohíbe el uso de
multimedia
Lunes 27 octubre al 01 de noviembre
30ª
martes 04
noviembre
8 – 10 am
04 y 05
noviembre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
R. Rosadio
M.Ramírez,
A. Manchego
H. Rivera
R. Rosadio
J.More
S. Morales
j. Siuce
S. Calle
G.Salvatierra
SEMINARIO
7.- Familia Flaviviridae
Ejemplo: virus de Diarrea viral
bovina
8.- Familia Retroviridae
Ejemplo: virus Artritis encefalitis
viral caprina.
Características de la familia viral.
Géneros importantes. clasificación,
replicación, patogénesis, inmunidad,
colección y envío de muestras y
pruebas diagnósticas
27-28 semana Taller EAPMV
29-30 Semana taller IVITA
Teoría
Clase magistral
Profesor forma grupos y
reparte temas sobre
diagnóstico viral para
siguiente clase
Oncogénesis viral
Mecanismos de transformación
celular de origen viral
Características de células
transformadas
El grupo presenta un
resumen del seminario
El profesor nombre al
expositor mediante un
sorteo
El alumno decide la
metodología a seguir:
pizarra, retroproyector
SEMINARIO
9.- Familia Rabdoviridae
Ejemplo: virus rábico
10.- Familia Birnaviridae
Ejemplo: virus de la Pancreatitis
Necrótica Infecciosa del salmón
Características de la familia viral.:
clasificación, replicación,
patogénesis, inmunidad, colección y
envío de muestras y pruebas DX
13
31ª
martes 11
noviembre
8 – 10 am
11 y 12
noviembre
GA: 24 – 25
GB: 13- 15
GC: 10-12G
32ª
33ª
34ª
M. Ramírez
Teoría.El profesor facilita la
discusión de los grupos
Enfermedades emergentes y
exóticas para el Perú, su
Importancia, factores que favorecen
la emergencia viral
Técnicas diagnósticas
M.Ramírez,
El grupo presenta un
A. Manchego
resumen del seminario
H. Rivera
El profesor nombre al
R. Rosadio
expositor mediante un
Impacto de las enfermedades
J.More
sorteo
emergentes y exóticas
C. Pinto
El alumno decide la
S. Morales
metodología a seguir:
j. Siuce
pizarra, retroproyector
S. Calle
SEMANA: EXAMEN DE QUINTA UNIDAD: Lunes 17 al viernes 22 de
noviembre (Todos)
SUSTITUTORIOS Lunes 24 al viernes 28 de noviembre
SUSTITUTORIOS Y ENTREGA DE NOTAS Lunes 01 al viernes 05 de noviembre
SUSTITUTORIOS Y ENTREGA DE NOTAS Lunes 08 al viernes 13 de DICIEMBRE
IV METODOLOGÍA Y MATERIALES
4.1 METODOLOGIA: El contenido del curso se desarrolla con actividades teóricoprácticas. En las sesiones teóricas el profesor trata con los estudiantes en el aula en
forma dinámica promoviendo la participación, diálogo, trabajo en equipo y
pensamiento crítico utilizando material impreso, audiovisual y pizarra que le
permita discutir los conceptos teóricos de los diversos temas en cada una de las
unidades.
En las sesiones prácticas efectuadas en el laboratorio, el alumno realiza un conjunto
de actividades para observar las características de los microorganismos o los efectos
de los mismos en sistemas biológicos y adquirir destrezas para su manipulación y
cultivo in vitro así como su identificación mediante técnicas o métodos especiales.
Así mismo, investiga, prepara y discute artículos cuidadosamente seleccionados que
refuerzan el aprendizaje (seminarios y casos prácticos).
4.2 MATERIALES Y RECURSOS REQUERIDOS:
- Manual de prácticas
- Sistemas audiovisuales
- Microscopios
- Materiales de enseñanza (medios de cultivo, coloraciones, sol químicas
- Maquetas y ayuda didáctica
V SISTEMAS DE EVALUACIÓN
14
Sera continua y permanente en base a los siguientes indicadores:
 De acuerdo a la participación en los debates en clase de manera crítica y
pertinente
 Trabajo en equipo con responsabilidad y actitud empática
 Control de asistencia a clases prácticas regularmente (70% como mínimo y de
acuerdo a ley)
 Desarrollos de pasos de la guía de practica
 Entrega de trabajos con puntualidad
TEORIA:
Exámenes teóricos: serán 5 y de tipo cancelatorios, los cuales
comprenden preguntas alternativas múltiple y de otras modalidades y
constituye el 40% de la nota final.
PRACTICA: Exámenes prácticos: serán 5 de tipo cancelatorio en donde se medirá
el dominio psicomotriz, cognoscitivo y constituirá el 20% de la nota
final
Pasos escritos: constituirán el 5% de la nota final
Pasos cortos en teoría: evaluación corta sin previo aviso y con
cuaderno abierto. Se tomará durante la clase y comprenderá solo en
material dictado durante esa clase. Se tomarán al menos 05 pasos. En
este caso se mide dominio cognoscitivo y actitudinal y representará el
5% de la nota final
Desarrollos y pasos orales en prácticas: evaluación que comprende los
conocimientos adquiridos y las actitudes durante la práctica,
comprenderá el 5% de la nota final
Informe de práctica: según la guía de prácticas y representará el 5 %
de la nota final
Seminario: incluye evaluaciones del aspecto cognoscitivo, psicomotriz
y actitudinal del estudiante durante la presentación del seminario y
representará el 20% de la nota final
5.1 OBTENCIÓN DE LA NOTA PROMOCIONAL
La nota promocional se obtendrá sacando el promedio ponderado de las notas
obtenidas en cada uno de los tipos de evaluación.
Exámenes
Examen teórico (ET)
Examen práctico (EP)
I
% Nota
6 1.2
4 0.8
II
% Nota
6 1.2
4 0.8
III
% Nota
6
1.2
4
0.8
VI
% Nota
6 1.2
4 0.8
V
% Nota
6 1.2
4 0.8
Total
% Nota
30
6
20
4
15
Pasos escritos (PE)
Pasos cortos en teoría
(PCT)
Pasos en práctica (PP)
Informe (I)
Seminario (S):
- Desarrollo
- Exposición
- Monografía
Apreciación (APR)
Total
10
2.0
10
2.0
10
2.0
10
2.0
10
2.0
5
1
5
1
10
5
2
1
7.5
10
2.5
5
100
1.5
2
0.5
1
20
Promedio Final= 0.3(ET)+0.2(EP)+0.05(EP)+0.05(PCT)+0.10(PP)+0.05(I)+0.20(S)+0.05(APR)
EXÁMENES SUSTITUTORIOS
Se tomará solamente un examen sustitutorio según el reglamento vigente de
evaluación de los estudiantes. El examen sustitutorio será exclusivamente de la
teoría.
CONDICIONES PARA SUSTITUIR EXAMEN
Los alumnos que no alcancen el 70% de asistencia a las clases teóricas y/o prácticas,
pierden el derecho a ser evaluados en el curso. El cómputo de la inasistencia a teoría
o práctica se llevara a cabo por separado.
Se consideran indicadores de logro, los siguientes
1. Promedio aprobado de los controles de lectura
2. Promedio aprobatorio de los trabajos prácticos en clase
3. Frecuencia y calidad de las intervenciones en clase
4. Sustentación del resultado del o de los trabajos de investigación realizado(s)
VI. BIBLIOGRAFÍA
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3. Carlton L. Gyles 2010. Pathogenesos of Bacterial Infections in Animals. Fourth Edition.
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16
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Acribia. España.
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6. Fenner, F. et. al. 1987. Veterinary Virology 2da. Ed. Academic Press. Inc. Orlando,
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8. Gómez Lucia. 2007 manual de Inmunologia Veterinaria.
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Panamericana. Bs.As. Argentina.
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Acribia.S.A. Zaragoza. España.
13. Outtbrige, P.M. 1985 Veterinary Immunology. Ed. Academic Press pp. 228
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S.A. Zaragoza-España.
15. Roit, Ivan. 1994. Essencial Immunology. Blacwell Sc. Pub.
16. SCANLAN 2000. Bacteriologia Veterinaria. Editorial: ACRIBIA ISBN: 9788420007076
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REVISTAS
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5. Trends of Microbiology.
6. Current Opinion in Microbiology.
7. Journal Diagnosis Investigation.
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8. Veterinaria México.
9. Revista Latinoamericana de Microbiología.
10. Medical Mycology
18