1 Aislamiento y control de Streptomyces spp. Ing. Liliam Gutarra Centro Internacional de la Papa (CIP), Lima, Perú 1. Descripción del agente causal Streptomyces spp. están clasificados como bacterias atípicas, debido a que carecen de núcleo, son gram positivos. Su similitud con los hongos reside en su morfología filamentosa, pero se diferencian notablemente por el reducido diámetro de su filamento vegetativo (aproximadamente una micra) y carencia de núcleo. Existen tres especies que afectan al cultivo de la papa. S. scabies, S. acidiscabies y S. turgidiscabies. los cuales producen un substrato de micelio vegetativo que desarrolla filamentos aéreos. Las esporas provienen de la fragmentación del micelio. Las tres especies producen taxotominas, las cuales parecen jugar un rol importante en el desarrollo de la enfermedad. Estas toxinas inducen los síntomas de la enfermedad, incluyendo hipertrofia del tejido afectado y muerte de células. Las taxotominas A y otras se producen en el tejido del huésped y en agar avena. Las tres especies patógenas se distinguen una de otra por la producción de pigmento, color de micelio, forma de filamento y habilidad de usar los azucares D- glucosa, L-arabinosa, sucrosa, D-xilosa, I-inositol, D-manitol, D-fructuosa, rafinosa, celulosa, acido galacturonico. S.scabies. Ocurre a nivel mundial. En medio extracto de levadura y malta (YME) forma colonias pequeñas de color gris ratón. Forma cadenas de esporas en espiral. En medio agar hierro extracto de levadura-peptona ( PYI) produce pigmento de color marrón. Utiliza todos los azucares. El pH mínimo para crecer en medio de cultivo es 5.0 S. acidiscabies. Ha sido detectado solamente en el Nor-este de USA. En medio YME forma colonias pequeñas de color durazno (crema) en cadenas flexuosas (onduladas) y produce un pigmento rojo en medio agar almidón con sales modificado (MSSA). Utiliza todos los azúcares excepto la rafinosa. El pH mínimo para crecer en medio de cultivo es 4.0 S.turgidiscabies. Ha sido reportado solamente en el Japón. En medio YME forma colonias pequeñas de color gris más claro (azul / verdoso) que S. Scabies. Forma cadenas de esporas rectiflexuosas y no produce pigmento. 2. Control Varios tipos de síntomas pueden ser observados: - lesiones reticulares o superficiales, - lesiones profundas o cóncavas o protuberantes. Diferentes especies de Streptomyces pueden provocar estas variaciones de lesiones. En general la sarna no afecta el rendimiento, solo la calidad del tubérculo, pero hay cepas que pueden ocasionar necrosis de las raíces lo que puede disminuir el rendimiento. Los suelos alcalinos , livianos (arenosos) y secos favorecen la sarna. 2 1. Evitar el uso de semilla con sarna. Los variantes de Streptomyces difieren en virulencia y al sembrar tubérculos con sarna se puede reinfectar el campo con otro variante más agresivo. 2. Tratamientos de la semilla con captan y mancozeb reducen el nivel de inoculo en la semilla. 3. Prolongar el tiempo entre siembras sucesivas de papa (3 a 4 años de rotación) reduce la incidencia de sarna a un nivel más o menos constante, pero rara vez elimina completamente la población de patógeno en el suelo. 4. No sembrar otros hospedantes en rotación como betarraga, nabo, rabanito, zanahoria y perejil. 5. La siembra de alfalfa u otras leguminosas y cereales en abonos verdes reduce el inoculo del suelo. 6. La resistencia o susceptibilidad de las variedades determinan la incidencia de la enfermedad y el tipo de lesión. Las variedades de papa varían considerablemente en su resistencia a la sarna, pero ninguno es inmune. Comparar sensibilidad de las variedades y sembrar un cv. menos susceptible. 7. Mantener altos niveles de humedad en el suelo por unas 4 a 9 semanas desde el inicio de la tuberización. Sin embargo este puede en unos casos favorecer la sarna que provoca el síntoma reticulado. 8. Mantener el pH del suelo a 5-5.2 mediante fertilizantes ácidos o sulfuros. 9. Evitar la aplicación de enmiendas como cal que incrementen el pH del suelo, o usar cal dolomítica. 10. La aplicación de sulfato de manganeso en suelo ha sido reportada efectiva pero a niveles no prácticos. 3. Aislamiento de Streptomyces spp, a partir de lesiones de sarna en tubérculos de papa 1) Lavar los tubérculos de papa con agua corriente 2) Desinfectar los tubérculos con una solución de hipoclorito de sodio al 1% durante un minuto 3) Enjuagar con agua destilada estéril 4) Extraer el tejido color pajizo translucido que se encuentra inmediatamente debajo de la lesión y macerar en agua destilada estéril (1g/10m) en un mortero esterilizado 5) Mezclar un 1 ml del macerado con 9 ml de una solución fenol-agua (1:140) 6) Hacer cuatro diluciones de la mezcla 7) Sembrar 50 µl de cada dilución en medio agar agua o en medio agar agua con antibióticos con una espátula de Drigalski e incubar a 28 oC durante 7a10 días 8) Purificar los cultivos a partir de una sola colonia en medio YME e incubar a 28°C durante 14 días, al cabo de los cuales se pueden observar el color de las colonias y las características morfológicas del patógeno 3 9) Observar la producción de melanina de color marrón en PYI o pigmento rojo en MSSA, para lo cual sembrar por estriado una suspensión del patógeno en PYI y MSSA e incubar a 28°C. 4. Pruebas de patogenicidad Existen muchos métodos para probar la patogenicidad de las tres especies de Streptomyces que afectan el cultivo de la papa. Para todos los métodos se tiene que producir esporas en medio agar YME y contar con tubérculos semilla libre de patógenos. Para favorecer la infección es necesario mantener la humedad del suelo lo más bajo posible durante la tuberización. Temperaturas de suelo sobre los 22oC favorecen el desarrollo de la enfermedad. Método de Labruyere 1) Agregar esporas del patógeno desarrolladas en medio agar YME durante 14 días, en una placa conteniendo perlita estéril saturada con una solución nutriente (Por litro: 20 g de sucrosa, 1.2 g L-asparagiana, 0.6 g K2HP04, 10g de extracto de levadura) 2) Incubar las placas a 28oC durante 10 a 14 días, luego mezclar una placa de perlita (con abundante esporas y micelio) con un kilo (aproximadamente) de una mezcla suelo ( arena, musgo y compost ) esterilizado al vapor o con arena sola. 3) Poner la mezcla de suelo o arena infestada en una bolsa de plástico (un kilo de capacidad), a la cual previamente se le han hecho algunos huecos en la parte inferior para permitir el drenaje, luego colocar esta bolsa dentro de una maceta de arcilla de 12.5 cm de diámetro por 15 cm de alto. Las bolsas se deben llenar parcialmente con la mezcla de suelo o de arena. Ajustar las bolsas dejando que sobresalgan 10 cm del nivel de las macetas para evitar la contaminación durante el riego. 4) Desinfectar los tubérculos semilla de papa sanos con hipoclorito de sodio al 0.5% durante 10 minutos, luego sembrar a 5 cm debajo de la superficie de la mezcla de suelo o de arena. 5) Regar las plantas crecidas en la mezcla de suelo con agua corriente y las plantas crecidas en arena con solución Hoaggland’s. 6) Reducir el riego al mínimo, cuando el diámetro de los tubérculos sea 2 veces mayor que el diámetro del estolón para favorecer la infección. 7) Los tubérculos pueden verse a través de la bolsa y el desarrollo de la enfermedad puede ser monitoreado durante la prueba. 8) Cosechar los tubérculos a las 10 semanas después de la siembra y evaluar la presencia de lesiones de sarna. 4 Tabla 1. Características fisiológicas, morfológicas y condiciones de desarrollo para la diferenciación de Streptomyces spp. que afectan el cultivo de la papa Especie Forma de cadena de esporas Color Producción Utilización Temperatura de de de de micelio pigmento azucares crecimiento y medio S.scabies En espiral (YME) Gris (YME) S.acidiscabies Crema Rectiflexuosas (YME) (YME) S.turgidiscabies Azul / Rectiflexuosas verdoso (YME) (YME) Marrón (PYI) Todos los azúcares 28-30oC (YME) Rojo (MSSA) Todos excepto la rafinosa Todos los azúcares 28-30oC (YME) No produce 28-30oC (YME) YME = Agar extracto de levadura y malta, PYI = Agar hierro extracto de levadura-peptona, MSSA= Agar almidón con sales modificado. Azúcares: D- glucosa, L-arabinosa, sucrosa, D-xilosa, I-inositol, D-manitol, D-fructuosa, rafinosa, celulosa, acido galacturonico. 5. Medios de cultivo para aislamiento Agar agua Agar Agua destilada 20.0 g 1000 ml Esterilizar en autoclave a 15 libras de presión por 15 minutos. La mayoría de las especies patogénicas desarrollan y esporulan en agar agua Medio semiselectivo Solución stock de antibióticos Agar Agua destilada 10.0 ml 20.0 g 1000 ml Agregar el agar en el agua destilada y esterilizar en autoclave a 15 libras de presión por 15 minutos. Agregar la solución de antibióticos al medio agar antes del plaqueado. Solución stock de antibióticos Agua destilada Nystatina Sulfato de polymixina B 100 ml 500.0 mg 50.0 mg 5 Penicilina sodica (Sodium penicillin G) Cycloheximida 10.0 mg 500.0 mg La solución puede ser esterilizada por filtración y almacenada a 5oC o a –20oC durante 4 semanas. 6. Medios de cultivo para producción de esporas y micelio Agar extracto de levadura y malta (YME) Extracto de levadura Extracto de malta Dextrosa Agar Agua destilada 4.0 g 10.0 g 4.0 g 20.0 g 1000 ml Ajustar el pH a 7.0-7.2 con hidróxido de sodio antes de agregar el agar y esterilizar en autoclave a 15 libras de presión por 15 minutos 7. Medios de cultivo para producción de pigmento Agar hierro extracto de levadura-peptona (PYI) Agar hierro peptona Extracto de levadura Agua destilada 36.0 g 1.0 g 1000 ml Mezclar los ingredientes y ajustar el pH a 7.0-7.2 con hidróxido de sodio o ácido clorhídrico. Esterilizar en autoclave a 15 libras de presión por 15 minutos Agar almidón con sales modificado (MSSA) Almidón soluble NaN03 MgCO3 K2HP04 NaCl Agar Agua destilada 10.0 g 1.0 g 1.0 g 0.3 g 0.5 g 15.0 g 1000 ml Mezclar los ingredientes y esterilizar en autoclave a 15 libras de presión por 15 minutos